药理学实验(一)

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药理学实验指导

药理学实验指导

药理学实验指导(供自学助考班用)实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识;2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。

【器材】1ml、5ml、20ml注射器,大、小鼠灌胃针头,4号、6号注射针头,250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼),天平秤、砝码。

【药品】0.9%生理盐水。

【动物】小白鼠、大鼠、家兔。

【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍,食指和中指夹住左前肢,拇指压住右前肢;右手将双下肢拉直,左手无名指及小指将其压住而固定。

此法用于淋巴囊注射。

毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部,拇指和无名指小指握持双下肢,右手持刺针进行操作。

2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。

双手法:右手提起鼠尾,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后方轻拉,小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤,并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部,固定于手中。

单手法:小白鼠置于笼盖上,先用左手食指与拇指抓住鼠尾,手掌尺侧及小指夹住尾根部,然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。

3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人,捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠,先用右手抓住鼠尾,再用左手拇指和食指握住头部,其余手指与手掌握住背部和腹部。

不要用力过大,切勿捏其颈部,以免窒息致死。

4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大,其吃重点越分散)。

将兔提起,以左手托住其臀部,使兔呈坐位。

二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig):左手固定小鼠,右手持灌胃器,灌胃针头自口角进入口腔,紧贴上腭插入食道。

如遇阻力,将灌胃针头抽回重插,以防损伤。

常用灌胃量为0.1~0.2ml/10g。

皮下注射(ih):可用腹部、背部、腹股沟的皮下,此处皮肤比较松弛,也可由助手协助。

注药量一般为0.1~0.2ml/10g。

肌肉注射(im):一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴,另一人持连4号针头的注射器,将针头刺入后腿外侧肌肉。

药理学实验(一)剂量对药物作用的影响

药理学实验(一)剂量对药物作用的影响

(一)剂量对药物作用的影响目的:观察不同剂量尼可刹米对小鼠作用的差异原理:影响药物的因素有药物的给药剂量,当药物的剂量增加,药物的效应也随之增加。

但这一效应的增加不是无限制的,当增加到一定的程度时,药物的效应恒定在一定的水平,而当药物剂量过大时,可致中毒或死亡。

材料:器材:电子天平、1ml注射器药品:2.5%尼可刹米溶液动物:小白鼠3只方法:取小鼠3只,标记,称重,随机分为3组,各鼠均腹腔注射不同剂量的尼可刹米溶液(1#:2.5%尼可刹米溶液0.15ml/10g;2#:2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g;3#:2.5%尼可刹米溶液0.05ml/10g),观察潜伏期、给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:1、小鼠对尼可刹米可能出现的反应,按由轻到重程度有:活动增加,呼吸急促,反射亢进,震颤,惊厥,死亡等。

2、比较各鼠表现出来的药物反应的严重程度和发生快慢。

思考:本实验结果对药理实验和临床用药有何启示?(二)安定抗尼可刹米惊厥的作用目的:观察安定对尼可刹米中毒动物的解救作用原理:安定具有镇静、催眠、抗惊厥的作用,可清除病理性中枢兴奋状态。

材料:器材:电子天平、0.5ml注射器、1ml 注射器、大烧杯药品:2.5%尼可刹米溶液、0.5%安定溶液、生理盐水动物:小白鼠2只方法:取小鼠2只,标记,称重,随机分为2组。

1#腹腔注射0.5%安定溶液0.05ml/10g,2#腹腔注射等量生理盐水,然后各鼠均腹腔注射 2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g,观察两鼠给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:使用剂量的准确性思考:安定为什么能解救尼可刹米所致的惊厥?(三)不同给药途径对药物作用的影响目的:观察不同给药途径对硫酸镁作用的影响原理:给药途径是影响药物作用的分布、代谢、排泄都有较大的影响,因而使药物作用的强度和速度不同,有时甚至会改变药物的作用性质。

材料:器材:电子天平、1ml注射器、小鼠灌胃针头药品:15%硫酸镁(含水)溶液动物:小白鼠2只方法:取小鼠2只,标记,称重,随机分为2组,一只腹腔注射15%MgSO40.2ml/10g;另一只灌胃15%MgSO40.2ml/10g。

药理学实验

药理学实验

药理学实验一药理学实验基础及基本技能训练【实验目的】熟悉注射器、灌胃针头的构造、规格和主要用途。

学会正确使用注射器及灌胃针头;学常用实验动物的捉持和给药方法;学会实验动物给药量的计算。

【实验对象】小白鼠【实验器材】注射器、灌胃针头、鼠笼、棉签。

【实验药品】生理盐水、碘伏。

【实验步骤】1.多媒体示教实验动物的捉持及给药方法:(实验原理1)(1)捉持法用右手提起鼠尾,将其放于粗糙面(如鼠笼)上。

右手向后拉鼠尾,使其固定在粗糙面上。

此时应趁其不备迅速用左手拇指和食指捏住小鼠双耳及头颈部皮肤。

然后,翻转小鼠使其腹部向上平卧于掌心中,用无名指和小指压住鼠尾并固定于手中(2)给药法①灌胃法(ig):左手捉持小鼠,头部向上,颈部拉直。

右手持配有灌胃针头的注射器,自口角插入口腔,与食管成一直线,然后沿上颚轻轻插入食管,如插入无阻力、小鼠无挣扎、呼吸无异常、口唇无发绀等现象,即可注入药液。

若遇阻力,应退回重插,以免插入气管引起小鼠死亡。

药液量一般为0.1~0.3ml/10g体重,每只不超过0.5ml (图1)。

②腹腔注射法(ip):左手捉持小鼠,右手持注射器(选用5或6号注射针头),与腹壁呈45°角,自下腹部一侧向头端刺入腹腔。

进针时角度不宜太小,部位不能太高,刺入不能太深,否则会损伤内脏。

药液量一般为0.1~0.2ml/10g体重,每只不超过0.5ml(图2)。

③皮下注射法(sc):可两人合作,一人用左手捏住小鼠头部皮肤、右手拉住鼠尾固定小鼠;另一人左手捏起小鼠背部皮肤,右手持注射器,将针头刺入背部皮下注入药液。

也可单人操作,按前法捉持小鼠,右手持注射器,针头沿右侧肋缘上穿入皮下,向前推至右前肢腋下部位,推入药液即可。

药液量一般为0.05~0.2ml/10g体重,每只不超过0.3ml。

④肌内注射法(im):两人合作,一人固定小鼠,另一人将注射器针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。

药液量每腿不超过0.1ml。

药理学创新实验1

药理学创新实验1


达美康是第二代磺脲类降血糖药,作用较 强,其机理是选择性地作用于胰岛β细胞,促 进胰岛素分泌,并提高进食葡萄糖后的胰 岛素释放,使肝糖生成和输出受到抑制。 本品经动物实验和临床使用证明能降低血 小板的聚集和粘附力,有助于防治糖尿病 微血管病变
实验对象

雄性自发性高血压大 鼠(SHR)(7周龄)
30分钟后测每组的血压血糖值和血药浓度 1小时后测每组的血压血糖值和血药浓度 2小时后测每组的血压血糖值和血药浓度 4小时后测每组的血压血糖值和血药浓度 6小时后测每组的血压血糖值和血药浓度 8小时后测每组的血压血糖值和血药浓度

实验步骤

观察每组大鼠给药后8小时内的血压值及 血糖值 制作血压值/血糖值关于时间的曲线 观察每组大鼠给药后8小时内的血药浓度 变化

前景展望
利用本实验方法,可以研究其他联合用药 的给药时间间隔,达到药物的最好疗效。 研究联合用药时达到最佳效果时的血药浓 度。

参考文献

维普资讯网--中文期刊门户 /
【1】:杂志编辑部.从UKPDS至IJ ADVANCE:糖尿病与高血压治 疗的新进展【J】.中国糖尿病杂志2008年第16卷第一期 【2】:田金英 辛冰牧 朱海波 叶菲.二甲双胍和洛沙坦合并用药对 糖尿病并发高血压动物的治疗作用【J】.中国药理通讯2005年第22 卷第三期 【3】:徐宜江.高血压合并糖尿病患者降压用药情况调查分析【J】. 中国医药导报 1673- 7210( 2008) 06( a ) - 119- 02
病世 率界 高各 达国 10 人 群 20 高 血 压 患 %

相关背景

糖尿病现状
国际糖尿病联盟(IDF)公布的糖尿病及糖耐量受损 (IGT)的资料以及推算,2003年和2025年全球糖尿病及 IGT发病情况如下:2003年糖尿病患者人数为1.94亿, 2025年则将达到3.33亿;2003年IGT人数为3.14亿, 2025年则将高达4.72亿。全球糖尿病患者人数以惊人 的速度迅速增长,2003年的流行病学调查显示,全球有 近2亿糖尿病患者,估计到2025年这一数字将超过3亿 近20年来,我国糖尿病患病率从不足1%增加到3.21%。 以目前的增长趋势来看,预计到2025年,中国的糖尿病 患者将超过5000万

中药药理学实验报告

中药药理学实验报告

中药药理学实验报告中药药理学实验报告引言中药作为我国传统医学的重要组成部分,其疗效在临床实践中得到广泛应用。

然而,中药的药理学机制并不完全清楚。

为了探究中药的药理学特性,本实验对几种常用中药进行了药理学实验,并对实验结果进行了分析和讨论。

实验一:中药A的抗炎作用材料与方法1. 实验动物:实验鼠(雄性,体重20-25g)2. 实验药物:中药A提取物3. 实验组:将实验鼠随机分为对照组和实验组,每组10只。

4. 实验操作:对照组给予生理盐水,实验组给予中药A提取物,每天一次,连续7天。

5. 指标测定:测定实验鼠血清中白细胞计数和C反应蛋白水平。

结果与讨论实验结果显示,与对照组相比,实验组的白细胞计数显著降低,C反应蛋白水平也显著下降。

这表明中药A具有明显的抗炎作用。

进一步的研究发现,中药A中含有多种活性成分,如黄酮类、生物碱等,这些成分可能通过抑制炎症介质的释放和调节免疫反应来发挥抗炎作用。

实验二:中药B的抗氧化作用材料与方法1. 实验动物:实验大鼠(雌性,体重200-250g)2. 实验药物:中药B提取物3. 实验组:将实验大鼠随机分为对照组和实验组,每组8只。

4. 实验操作:对照组给予生理盐水,实验组给予中药B提取物,每天一次,连续14天。

5. 指标测定:测定实验大鼠血清中超氧化物歧化酶(SOD)活性和丙二醛(MDA)含量。

结果与讨论实验结果显示,实验组的SOD活性显著增加,MDA含量显著降低,与对照组相比具有明显的抗氧化作用。

进一步的研究发现,中药B中富含多种抗氧化物质,如黄酮类、多酚类等,这些物质可以清除自由基,减少氧化应激反应,从而发挥抗氧化作用。

实验三:中药C的抗肿瘤作用材料与方法1. 实验细胞:人肺癌细胞株A5492. 实验药物:中药C提取物3. 实验组:将A549细胞分为对照组和实验组,每组6孔。

4. 实验操作:对照组加入培养基,实验组加入中药C提取物,培养48小时。

5. 指标测定:测定A549细胞的增殖率和凋亡率。

药理学实验

药理学实验

针对药理学有关知识容与实验课的要求,拟开设以下几个方面的实验:实验一:药理学实验的基本知识及基本技能训练(4学时)实验目的与要求:通过实验使学生掌握药理实验有关的动物选择、应用、捉拿、给药、采血等基本知识及基本技能的训练。

要点:一、常用动物捉持方法⑴小鼠捉持⑵家兔捉持二、常用动物给药方法⑴小鼠灌胃——;皮下注射——;腹腔注射——;肌肉注射——;尾静脉注射——;⑵家兔灌胃——;耳缘静脉给药——;三、常用动物取血方法⑴小鼠后眼眶静脉丛取血——用拇指和食,中指捏住鼠颈部,利用捏紧的压力,使静脉丛淤血.将一特制硬玻璃吸管(约长15cm,前端拉成管壁略厚的毛细管),从眼角插入眼睑和眼球之间,轻轻香眼底方向移动,并略加捻转,血即自然顺便玻璃管流出。

⑵眼眶动脉、静脉取血——左手抓住小鼠,拇指和食指尽量将头部皮肤捏紧,使眼球突出,用无钩弯镊将眼球摘除,将鼠倒置,血即流出1. 小鼠捉持法以右手捉小鼠尾,将小鼠放于粗糙面上,向后轻拉小鼠尾部,使小鼠固定于粗糙面上。

用左手的拇指、食指和中指捏住小鼠两耳及头部皮肤,无名指、小指和掌心夹住背部皮肤和尾部,使头部朝上,颈部拉直但不宜过紧,以免窒息(见图1—1)。

另一种捉持方法是只用左手,先用食指和拇指抓住小鼠尾巴,后用手掌及小指和无名指夹住其尾部,再以拇指及食指抓住两耳和头部皮肤(见图1—2)。

前者易学,后者便与快速捉拿给药。

图1—1 小鼠的捉拿方法1 图1—2 小鼠的捉拿方法22. 小鼠灌胃以左手捉持小鼠,头部朝上,使其头颈充分拉直。

右手拿起装有灌胃针头的注射器,自口角插入口腔,再从舌面紧沿上腭进入食道(见图1—3)如插入正确,灌胃针头容易进入,如遇阻力,可能插入气管,应退出再插。

灌胃液最多不超过0.1ml。

图1—3小鼠的灌胃法图1—4小鼠的皮下注射法3. 小鼠皮下注射将小鼠至于铁丝网上,左手抓住小鼠,以拇指扣食指捏起背部皮肤,右手持注射器刺入背部皮下注射药液。

(见图1—4)。

药理学实验一常用实验动物的实验基本操作

药理学实验一常用实验动物的实验基本操作

实验一常用实验动物的实验基本操作实验目的:掌握动物实验的基本操作一、实验动物的选择及捉拿固定(一)实验动物的选择1.小白鼠的生物学特征是什么?主要用于哪些实验?小白鼠性情温顺,易于捕捉,胆小怕惊,对外来刺激敏感。

它胃容量小,不耐饥渴,随时采食。

在机能学实验中常选用该动物。

故适用于大量的实验动物,如:某些药物的筛选实验、半数致死量(LD50)测定、药效比较、毒性实验、妊娠期 20 天左右,常用于避孕药实验及抗癌药实验。

2.大白鼠的生物学特征是什么?主要用于哪些实验?大白鼠性情温顺,行动迟缓,易于捕捉,但受惊吓或粗暴操作时,会紧张不安甚至攻击人。

大鼠嗅觉发达,对外界刺激敏感,抵抗力较强。

大鼠无胆囊,肾单位表浅,肝再生能力强。

大鼠的血压反应比兔稳定,可用它作血压实验,也可用于慢性实验、抗炎、降脂、利胆、子宫实验及心血管系统的实验。

药典规定该动物为催产素效价测定及药品指控中升压物质检查指定动物。

3.家兔生物学特征是什么?主要用于哪些实验?家兔属于草食性动物,性情温顺但群居性差,听觉、嗅觉十分灵敏,胆小易惊,具夜行性和嗜睡性。

它主要利用呼吸散热维持体温平衡,耐冷不耐热,厌湿喜干。

家兔广泛应用于医学研究中。

由于兔耳血管丰富,耳静脉表浅,易暴露,是静脉给药及采血的最佳部位。

兔的减压神经在颈部与迷走交感神经分开走行而自成一束,常用于研究减压神经与心血管活动的关系。

家兔的体温调节较稳定,反应灵敏,常用于发热研究和热源试验,是药品质控中热源检查的指定动物。

家兔对组织胺不敏感,不发生呕吐,因此不适用于组织胺过敏性休克、催吐和镇吐药物的研究。

(二)实验动物的捉拿固定正确的捉拿固定动物是为了不损害动物健康,不影响观察指标,并防止被动物咬伤,保证实验顺利进行。

1、如何正确捉拿及固定小白鼠?小鼠性情温顺,一般不会主动咬人,但取用时动作也要轻缓。

抓取时先用右手提起鼠尾,放在鼠笼盖上或易攀抓的粗糟面上,将鼠尾向后轻拉,此时小鼠前肢紧紧抓住粗糟面,迅速用左手拇指及食指沿其背向前捏住两耳和头颈部皮肤,将小鼠尾巴夹在无名指、小指和手掌之间。

药理学实验一

药理学实验一
编号体重g药物药量ml药后反应氯化钡实验结果实验目的观察不同给药途径对硫酸镁作用的影响实验材料动物
药理学实验
北京城市学院 梁启明
药理实验课要求
一、实验前要求 二、实验中要求遵守实验室规则 三、实验报告的要求
实验一 动物实验的基本知识和技术、 影响药物作用的因素
一、观看录像
动物实验的基本知识和技术
二、影响药物作用的因素
药物方面:
理性质 给药途径
机体方面:
(一) 药物的理化性质对药物作用的影响
可编辑
【实验目的】
观察可溶性钡盐与不可溶性钡盐引起的药物作用。
【实验材料】
动物:小鼠; 药物:5%硫酸钡溶液、5%氯化钡溶液、中性红 器材:台式天平、小鼠笼、注射器、针头
【实验方法】
每组2只小鼠,称重,染料标记,观察正常活动。 计算药量(0.2ml/10g),分别腹腔注射相应药物。 药后放回鼠笼,观察出现的反应。
【实验结果】
编号 体重(g) 药物
1
硫酸钡
2
氯化钡
药量(ml) 药后反应
(二) 不同给药途径对药物作用的影响
【实验目的】
观察不同给药途径对硫酸镁作用的影响
【实验材料】
动物:小鼠; 药物:15%硫酸镁溶液、中性红染料 器材:台式天平、鼠笼、注射器、针头、灌胃针头
【实验方法】
每组2只小鼠,称重,染料标记,观察正常活动。 计算药量(0.2ml/10g),1只小鼠灌胃给予药物, 另外1只腹腔注射药物。
药后放回鼠笼,观察出现的反应。
【实验结果】
编号 体重(g) 给药途径 药量(ml) 药后反应
1
灌胃
2
腹腔注射
可编辑

《实验实训指导书》(药理学)

《实验实训指导书》(药理学)

实验一药理学实验基本知识和技术实验目的:1、掌握基本操作,锻炼动手、动脑能力;2、更好地掌握药理学基本理论知识;3、培养科学思维。

实验内容:一、药理实验的基本目的与要求二、实验动物:1、动物的选择;2、动物的标记与捉拿、固定方法;3、动物的取血方法(尾尖、眼眶静脉丛、摘眼球、断头);4、动物的给药方法(灌胃、腹腔、皮下、尾静脉);5、动物的麻醉方法;6、动物的处死方法。

三、实验设计基本原则。

实验步骤:一、药理学实验的基本目的与要求药理学实验课在药理学教学中占有非常重要的地位。

药理学实验课的目的在于通过实验验证药理学的基本理论,加深理解与掌握药理学的基本知识和规律;也是了解获得药理学知识的科学途径。

同时,培养学生独立思考,独立工作,科学思维的能力;培养学生动手操作、分析问题和解决问题的能力;还应培养学生对科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法及实事求是的工作作风。

为了达到上述目的,要求做到下列事项:1. 实验前:预习实验内容并复习相关理论知识;2. 实验时:(1)实验分小组进行,实验前分工明确,实验时密切配合;(2)确定实验仪器、药品、动物与实验指导相符时,将实验器材妥善安排,正确装置、保管;(3)实验操作按步骤进行,仔细观察实验中出现的现象,实事求是地做好记录;(4)注意爱护动物、节约实验药品;(5)实验过程中保持实验室肃静、清洁。

3. 实验后:⑴各组同学将实验动物处死,实验台擦干净,将实验方盘送回准备室;⑵值日生搞好实验室卫生,将死亡动物送至指定场所;⑶整理实验结果,经分析思考作出结论,按要求写出实验报告,按时交给指导老师。

实验报告的书写1.题目2.目的3.原理4.材料:实验动物,器材,药品5.方法:用自己的语言简单扼要描述出来;6.结果:要求真实、清楚;7.讨论:将实验结果进行比较、分析;实验中有哪些不足之处;结果异常或失败的原因;8.结论:将实验结果进行归纳总结,应带有提示性质。

药理学实验一__不同给药途径对药物作用的影响

药理学实验一__不同给药途径对药物作用的影响

药理学实验一__不同给药途径对药物作用的影响给药途径对药物作用的影响一、实验目的1.观察不同给药途径对药物作用的快慢和强弱的影响;2.学习小白鼠不同途径的给药方法。

二、实验原理采用不同的给药途径,会使药物发挥不同的作用,口服硫酸镁可导泻和利胆,注射则产生止痉、镇静和降低颅内压。

三、实验动物小白鼠四、实验药品及器材1. 器材:1ML注射器四副,灌胃针头一个,天枰一台,250ML烧杯4个。

2. 药物:10%硫酸镁。

五、实验方法1.取体重相近的小白鼠2只,甲鼠腹腔注射10%硫酸镁溶液0.6ML。

2.乙鼠口服(灌胃)10%硫酸镁溶液0.6ML。

3.观察并比较两只鼠的不同现象。

六、实验结果鼠号体重药量给药途径给药前给药后肌张力大小便肌张力大小便 (g) (ml)甲腹腔注射正常正常松弛失禁 22.4 0.6乙口服(灌胃) 正常正常正常腹泻 22.6 0.6七、结果分析硫酸镁可因给药途径不同而产生不同的药理作用,硫酸镁腹腔注射给药时,会抑制中枢及外周神经系统,使骨骼肌、心肌、血管平滑肌松弛,从而发挥肌松作用和降压作用;而硫酸镁灌胃时,肠道很少吸收增加肠容积而促进肠道推进性蠕动,产生泻下作用,故甲鼠出现肌张力明显减弱,处于安静状态,乙鼠则出现轻微腹泻的现象。

八、实验结论给药途径不同所产生药物作用的快慢和强弱不同,硫酸镁腹腔注射使肌松弛,灌胃则出现轻微腹泻。

九、思考题1.给药途径不同,一般情况下对药物的作用产生什么影响,在哪些情况下可使药物的作用产生质的差异,不同给药途径的药物吸收速度不同,一般规律是静脉注射,(快于)吸入,肌肉注射,皮下注射,口服,直肠,贴皮。

如静脉注射,药物直接入血可立即生效,用于急救、昏迷病人;剂量易控制;刺激性药物可稀释后静注;大量注射时可静滴。

缺点为较易产生不良反应;要求技术熟练。

不同给药途径因吸收、分布方面产生的差异,影响药物的作用强度,甚至产生质的差异,如硫酸镁口服导泻,而肌注可产生中枢神经系统的抑制作用,用于抗惊厥。

药理学实验

药理学实验

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】逐步学会常用实验动物的捉拿和给药方法【内容】(一)小白鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法以右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起,放置于鼠笼边缘或其他易攀抓处,轻轻向后拉鼠尾,用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤,使其腹部朝上,屈曲左手中指使鼠背靠在上面,然后以无名指及小指压住鼠尾,使小鼠完全固定(见实验图-1)。

2.给药方法⑴灌胃:小白鼠固定后,使其口部朝上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻地进入食管,如动物安静、呼吸无异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(见实验图-2)。

灌胃量为0.1~0.25ml∕10g。

⑵腹腔注射:小白鼠固定后,右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏。

注射量一般为0.1~0.2ml∕10g。

⑶皮下注射:固定小鼠后,右手持注射器,将针头刺入其背部皮下注入药液。

注射量一般不超过0.25ml。

⑷肌内注射:由两人合作,一人固定小白鼠后,另一人持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液。

注射量一般每腿不超过0.1ml。

(二)蟾蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法一般由左手握蛙,用食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法多采用淋巴囊注射。

蛙的皮下有许多淋巴囊(见实验图-3),注入药液易吸收。

一般采用腹囊给药。

注射量每只可达0.25~1.0ml。

(三)家兔的捉拿和给药方法⒈捉拿法用左手抓住兔的颈背部皮肤将其提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

⒉给药方法⑴灌胃:由两人合作,一人固定兔身(或用固定器将兔固定),另一人用开口器(见实验图-4)将兔口撑开,并将兔舌压在开口器下面横放于兔口中。

取适当的橡胶管涂以液体石蜡,从开口器的中央孔插入,沿上颚实验图-3 蟾蜍的给药部位实验图-4 家兔的灌胃法实验图-5 家兔的耳缘静脉注射后壁缓缓送入食管约15cm左右,即可进入胃内。

[精选]药理学实验

[精选]药理学实验

[精选]药理学实验药理学实验一、实验目的1.学习药物对机体的作用机制。

2.掌握药物作用的实验研究方法。

3.了解药物作用的影响因素。

二、实验原理药理学是研究药物与机体相互作用的规律及其机制的科学,主要包括药物的作用机制、药物的代谢动力学、药物的疗效评价等内容。

药物作用的实验研究方法主要包括离体实验和整体实验两种。

离体实验是在体外条件下,观察药物对离体组织或器官的作用;整体实验是在整体动物或人体上,观察药物对机体的作用。

本实验主要采用整体实验方法,观察药物对小鼠的镇痛作用。

三、实验步骤1.实验准备:选取健康小鼠若干只,分为实验组和对照组,每组至少10只。

实验组小鼠腹腔注射某镇痛药物,对照组小鼠腹腔注射等体积的生理盐水。

2.疼痛刺激:采用热板法对小鼠进行疼痛刺激。

将小鼠放在55℃的热板上,记录小鼠舔后足的时间(潜伏期)。

每只小鼠测试3次,取平均值作为该小鼠的痛阈值。

3.数据记录:记录每组小鼠在给药前和给药后的痛阈值。

4.数据分析:将实验组和对照组小鼠给药前的痛阈值进行比较,以排除个体差异对实验结果的影响。

然后将实验组小鼠给药后的痛阈值与给药前进行比较,以观察药物对小鼠镇痛作用的影响。

最后,将实验组和对照组小鼠给药后的痛阈值进行比较,以观察药物对小鼠镇痛作用的差异。

5.实验结论:根据数据分析结果,得出药物对小鼠镇痛作用的结论。

四、实验结果1.实验数据记录:实验组小鼠给药前痛阈值(s):5.0 ± 1.0实验组小鼠给药后痛阈值(s):10.0 ± 2.0对照组小鼠给药前痛阈值(s):5.5 ± 1.5对照组小鼠给药后痛阈值(s):5.8 ± 1.82.数据分析:给药前,实验组和对照组小鼠的痛阈值无统计学差异(P > 0.05),说明两组小鼠在疼痛敏感性方面无差异。

给药后,实验组小鼠的痛阈值显著高于给药前(P < 0.01),说明药物对小鼠具有显著的镇痛作用。

药理学实验(一)剂量对药物作用的影响

药理学实验(一)剂量对药物作用的影响

剂量对药物作用的影响目的:观察不同剂量尼可刹米对小鼠作用的差异原理:影响药物的因素有药物的给药剂量,当药物的剂量增加,药物的效应也随之增加。

但这一效应的增加不是无限制的,当增加到一定的程度时,药物的效应恒定在一定的水平,而当药物剂量过大时,可致中毒或死亡。

材料:器材:电子天平、1ml注射器药品:2.5%尼可刹米溶液动物:小白鼠3只方法:取小鼠3只,标记,称重,随机分为3组,各鼠均腹腔注射不同剂量的尼可刹米溶液(1#: 2.5%尼可刹米溶液0.15ml/10g ;2#: 2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g ;3#: 2.5% 尼可刹米溶液0.05ml/10g ),观察潜伏期、给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:1、小鼠对尼可刹米可能出现的反应,按由轻到重程度有:活动增加,呼吸急促,反射亢进,震颤,惊厥,死亡等。

2 、比较各鼠表现出来的药物反应的严重程度和发生快慢。

思考:本实验结果对药理实验和临床用药有何启示?(二)安定抗尼可刹米惊厥的作用目的:观察安定对尼可刹米中毒动物的解救作用原理:安定具有镇静、催眠、抗惊厥的作用, 可清除病理性中枢兴奋状态。

材料:器材:电子天平、0.5ml注射器、1ml 注射器、大烧杯药品:2.5%尼可刹米溶液、0.5%安定溶液、生理盐水动物:小白鼠2只方法:取小鼠2只,标记,称重,随机分为2组。

1#腹腔注射0.5%安定溶液0.05ml/10g,2#腹腔注射等量生理盐水,然后各鼠均腹腔注射2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g,观察两鼠给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:使用剂量的准确性思考:安定为什么能解救尼可刹米所致的惊厥?(三)不同给药途径对药物作用的影响目的:观察不同给药途径对硫酸镁作用的影原理:给药途径是影响药物作用的分布、代谢、排泄都有较大的影响,因而使药物作用的强度和速度不同,有时甚至会改变药物的作用性质。

材料:器材:电子天平、1ml注射器、小鼠灌胃针头药品:15%硫酸镁(含水)溶液动物:小白鼠2只方法:取小鼠2只,标记,称重,随机分为2组,一只腹腔注射15%MgSO.2ml/10g ;另一只灌胃15%MgSO.2ml/10g。

药理学热板法实验报告(一)

药理学热板法实验报告(一)

药理学热板法实验报告(一)药理学热板法实验报告实验原理热板法是一种常见的疼痛实验方法,通过给动物施加不同的热刺激以测量其疼痛敏感度。

本实验中,我们利用热板法测定药物对大鼠疼痛敏感度的影响。

实验方法1.将大鼠放置于15 cm x 15 cm 的热板上。

2.启动计时器并记录大鼠的行为表现,包括跳跃和躲避。

3.在大鼠跳跃或躲避后停止计时器并记录时间。

4.测定3组大鼠(每组5只),并分别给予不同的药物处理。

5.记录药物作用后大鼠的热痛阈值。

实验结果我们发现,在给予阿司匹林处理后,大鼠的热痛阈值显著提高。

而对照组大鼠的热痛阈值没有明显变化。

结论通过该实验,我们验证了阿司匹林可以减轻大鼠的疼痛敏感度,具有一定的疗效。

实验讨论在本实验中,我们采用了热板法对大鼠进行了疼痛敏感度测试。

该方法可以模拟人类的疼痛感受,但是需要注意的是,不同动物对热刺激的敏感度可能不同,这也可能导致实验结果的偏差。

此外,我们的实验中只使用了一种药物进行处理,而在实际临床应用中,疼痛治疗方案也需要根据病情和个体差异进行选择。

实验结论总的来说,本实验证实了阿司匹林可以有效减轻大鼠的疼痛敏感度,具有一定的临床应用价值。

但是,需要进一步的研究来确定其在人类身上的具体作用机制和适应症。

参考文献1.Coderre TJ, Katz J, Vaccarino AL, Melzack R.Contribution of central neuroplasticity to pathological pain: review of clinical and experimental evidence [J].Pain, 1993, 52(3): 259-285.2.Zhang J, Cao Y, Zheng Y, et al. Analgesic and anti-inflammatory activities of 2-methoxy-5-[2’-(5-methyl-2-furyl)vinyl]-phenol [J]. Fitoterapia, 2013, 85: 109-114.3.Hunskaar S, Hole K. The formalin test in mice:dissociation between inflammatory and non-inflammatorypain [J]. Pain, 1987, 30(1): 103-114.。

实验一 药理学实验的基本技能

实验一 药理学实验的基本技能

实验一药理学实验的基本技能一、实验动物的基本技能和实验技术基础1.实验动物的标记大、小鼠和白色家兔的标记常用3~5%黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。

常用的方法:1号 ---左前腿2号 ---左腰部3号 ---左后腿4号 ---头部5号 ---正中6号 ---尾根部7号 ---右前腿8号 ---右腰部9号 ---右后腿10号 ---不标记2.实验动物的捉持(大、小鼠)(1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾,放在粗糙物(如鼠笼盖)上面,向后轻拉鼠尾;用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤,将小鼠固定在掌中,使其腹部朝上,然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。

(2)大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠,无经验者可戴上防护手套,并应动作轻柔。

用右手捉住鼠尾,放在鼠笼盖上,向后轻拉鼠尾;左手掌面向鼠背,食指和中指压住鼠的头顶,拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入,将鼠的两前肢卡住;或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。

图 1 小白鼠捉持法3、实验动物的给药方法(大、小鼠)(1)小鼠的给药方法灌胃(ig):将小鼠固定后,使颈部拉直,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角插入口腔,压其头部,使口腔与食道成一直线,沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。

如遇阻力,可将针头抽出再插,以免刺破食管或误入气管。

一般给药量为0.1~0.3ml/10g(体重)。

图 2 小白鼠灌胃法实验图 3 小白鼠腹腔注射法皮下注射(H或sc):常在背部皮下。

轻轻捏起背部皮肤,将注射针头刺入皮下,稍稍摆动针头,若容易摆动则表明针尖位于皮下。

然后注入药液。

一般给药量为0.1~0.20ml/10g (体重)。

图 4 小白鼠皮下注射法腹腔注射(ip):左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45度角刺入腹腔,进针约3~5mm,一般给药量为0.1~0.3ml/10g(体重)。

肌内注射(im):多注射于后肢股部肌肉,一般每侧不超过0.1ml。

尾静脉注射(iv):将小鼠置于固定筒内,使尾部露在外面,用70%~75%的乙醇棉球擦尾部,或将鼠尾浸入45~59ºC温水中,待尾部左右侧静脉扩张后,左手拉尾,右手进针。

药理学实验优选全文

药理学实验优选全文
物检定法等 培养严肃认真的工作态度和实事求是的工作
作风,并训练大家观察、分析和解决问题的 能力
实验前 认真预习
实验时 认真操作 仔细观察并详细记录
实验后 认真书写实验报告,按时上交 整理实验器材(清洗、消毒、摆放整齐并物归 原处)、动物处理 实验室的清洁卫生
实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来,长期保存 备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整,实 验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括:
药理实验的基本操作技术
1. 实验动物的编号 2. 实验动物性别的辨别 3. 实验动物的处死法 4. 实验动物的捉持与常用给药方法 5. 实验动物给药量的计算
1. 动物的编号
可用3~5%苦味酸溶 液(黄色)涂于大鼠、 小鼠和兔皮毛不同部 位以标号
4
1
7
25 8
3 69
2. 动物性别的辨别
小鼠(左为雄性,右为雌性)
1. 时间、温度; 2. 实验标本:动物的种类、体重、标记和标号及如何
分组等。 3. 实验药物:药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量
及给药途径。 4. 实验进程、步骤和方法的详细记录。 5. 观测指标的变化和原始的描记图纸。
二、实验结果的整理和报告撰写
[实验目的] 简要 [实验材料] 包括仪器、药品和动物 [实验方法] 写清楚关键环节或简要步骤 [实验结果] 将实验获得的数据进行整理、归纳、分析
和对比,尽量总结出图表或曲线,进行正确的统计学 处理 [结论] 是从实验结果归纳出来的概括性判断 [讨论]包括对实验结果的分析、实验中出现异常现象 的分析、认识、体会和建议等 及思考题的探讨
三、基本操作技术训练
常用实验动物
实验动物是药理学研究最重要的和不可替代 的实验材料

实验一药理实验基础知识

实验一药理实验基础知识

第一章实验一药理实验基础知识第一节药理学实验的目的和要求药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验,使学生验证和巩固所学的差不多理论;通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能,同时培养学生联想及综合分析问题的能力;通过设计性实验,培养学生独立摸索、科学思维及创新的能力,建立实事求是、严谨的科学态度,提高解决实际问题的能力,为后续知识的学习和毕业后的科研工作奠定良好的基础。

为了达到上述目的,要求学生做到以下几点。

【实验前】1.认真阅读实验指导,了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。

2. 结合实验内容,复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识,做到充分明白得。

3. 推测实验中可能显现的情形和发生的问题。

【实验时】1.实验器材的放置力求稳当、整齐、有条不紊。

2.严格按照实验指导上的步骤进行操作,准确运算给药量,节约器材和药品。

要注意爱护实验动物和标本,幸免与实验内容无关的刺激。

3.认真、耐心地观看实验过程中显现的各种现象,实事求是地记录药物显现反应的时刻、表现以及最后的转归,联系课堂讲授的内容进行摸索。

4.在实验过程中遇到疑难之处,先要自己设法解决,如一时解决不了,应向指导教师说明情形,要求教师协助解决。

关于贵重仪器,在未熟悉其性能之前,不可轻易调试。

5.实验室内保持安静、整洁。

用药后须用原瓶塞塞好,公用药品和器材不可随意移动。

【实验后】1.将实验用器材清洗擦干,清点整理后放到指定位置。

如有损坏、缺少,应及时报告老师。

将存活和死亡动物分别送至指定处所。

2.认真整理实验记录,通过分析摸索,撰写实验报告,按时交给指导老师。

3.做好实验室的清洁卫生工作。

第二节药理学实验设计的差不多原则在进行药理学实验时,为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下差不多原则:一.对比原则:进行实验时必须设对比组。

设置对比组是为了使观看指标通过对比而发觉其在处理因素(如药物等)的作用下而表现出的某种特异性变化,排除各种无关因素的阻碍。

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(一)剂量对药物作用的影响
目的:观察不同剂量尼可刹米对小鼠作用的差异
原理:影响药物的因素有药物的给药剂量,当药物的剂量增加,药物的效应也随之增加。

但这一效应的增加不是无限制的,当增加到一定的程度时,药物的效应恒定在一定的水平,而当药物剂量过大时,可致中毒或死亡。

材料:器材:电子天平、1ml注射器
药品:2.5%尼可刹米溶液
动物:小白鼠3只
方法:取小鼠3只,标记,称重,随机分为3组,各鼠均腹腔注射不同剂量的尼可刹米溶液(1#:2.5%尼可刹米溶液0.15ml/10g;2#:2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g;3#:2.5%
尼可刹米溶液0.05ml/10g),观察潜伏期、给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:1、小鼠对尼可刹米可能出现的反应,按由轻到重程度有:活动增加,呼吸急促,反射亢进,震颤,惊厥,死亡等。

2、比较各鼠表现出来的药物反应的严重程度和发生快慢。

思考:本实验结果对药理实验和临床用药有何启示?
(二)安定抗尼可刹米惊厥的作用
目的:观察安定对尼可刹米中毒动物的解救作用
原理:安定具有镇静、催眠、抗惊厥的作用,可清除病理性中枢兴奋状态。

材料:器材:电子天平、0.5ml注射器、1ml
注射器、大烧杯
药品:2.5%尼可刹米溶液、0.5%安定溶液、生理盐水
动物:小白鼠2只
方法:取小鼠2只,标记,称重,随机分为2组。

1#腹腔注射0.5%安定溶液0.05ml/10g,2#腹腔注射等量生理盐水,然后各鼠均腹腔注射 2.5%尼可刹米溶液0.1ml/10g,观察两鼠给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:使用剂量的准确性
思考:安定为什么能解救尼可刹米所致的惊厥?
(三)不同给药途径对药物作用的影响
目的:观察不同给药途径对硫酸镁作用的影响
原理:给药途径是影响药物作用的分布、代谢、排泄都有较大的影响,因而使药物作用的强度和速度不同,有时甚至会改变药物的作用性质。

材料:器材:电子天平、1ml注射器、小鼠灌胃针头
药品:15%硫酸镁(含水)溶液
动物:小白鼠2只
方法:取小鼠2只,标记,称重,随机分为2组,一只腹腔注射15%MgSO40.2ml/10g;另一只灌胃15%MgSO40.2ml/10g。

观察两鼠给药前后的表现,并仔细记录观察结果,完成实验报告。

注意:1.正确灌胃操作技术,不要误入气管,否则会导致窒息,不要插破食管,否则可能出现腹腔注射的吸收症状,甚至导致死亡。

2.腹腔注射后药物作用发生较快,留心观察、。

思考:结合本实验结果,解释不同给药途径对药物作用产生质或量的差异的原因。

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