TTC法测根系活力
植物根系活力实验报告
一、实验目的通过本次实验，我们旨在探究植物根系活力的影响因素，并运用TTC法测定根系活力，以了解根系对外界环境的适应能力及对不同环境因素的响应。
二、实验原理植物根系活力是指根系吸收水分和养分的能力，它是植物生长和发育的重要指标。
TTC法（氯化三苯基四氮唑法）是一种常用的测定根系活力的方法。
该法基于根系活力与细胞呼吸作用的关系，通过测定根系在特定条件下对TTC的还原程度来评估其活力。
三、实验材料与方法1. 实验材料- 植物材料：小麦、玉米、大豆等- 实验试剂：TTC溶液、蒸馏水、盐酸、氢氧化钠等- 仪器设备：分光光度计、烘箱、天平等2. 实验方法（1）根系活力测定- 将植物根系洗净、烘干，称重后剪成1-2厘米的小段。
- 将根系放入装有适量TTC溶液的试管中，在25℃下避光培养24小时。
- 用蒸馏水冲洗根系，去除多余的TTC，然后用盐酸和氢氧化钠调节pH值至中性。
- 将根系放入烘箱中，在80℃下烘干至恒重。
- 称量烘干后的根系重量，计算根系活力。
（2）不同环境因素对根系活力的影响- 将植物根系分别置于不同温度、光照、土壤水分等条件下培养，然后按照上述方法测定根系活力。
四、实验结果与分析1. 不同植物根系活力的比较实验结果显示，小麦、玉米、大豆等植物的根系活力存在差异。
其中，小麦的根系活力最高，玉米次之，大豆最低。
2. 不同环境因素对根系活力的影响（1）温度：在一定范围内，随着温度的升高，根系活力逐渐增强。
但当温度过高时，根系活力会下降。
（2）光照：光照强度对根系活力有显著影响。
在一定光照强度范围内，根系活力随光照强度的增加而增强。
但当光照强度过高时，根系活力会下降。
（3）土壤水分：在一定土壤水分范围内，根系活力随土壤水分的增加而增强。
但当土壤水分过多或过少时，根系活力会下降。
五、结论本次实验通过TTC法测定了不同植物根系活力，并分析了温度、光照、土壤水分等环境因素对根系活力的影响。
结果表明，根系活力受多种因素影响，其中温度、光照、土壤水分等因素对根系活力的影响较为显著。
植物根系活力的测定（ttc法）
实验概要植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
实验原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲瓒，生成的三苯甲瓒比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。
主要试剂1.乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（Na2S2O4），分析纯，粉末。
3. 1％TTC溶液准确称取TTC1.0g，溶于少量水中，定容到100ml。
用时稀释至各需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（1／15mol/L，pH7）。
5. 1mol/L硫酸用量筒取比重1.84的浓硫酸55ml，边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml。
6. 0.4mol/L琥珀酸称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100ml即成。
主要设备1. 分光光度计；2. 分析天平（感量0.1mg）；3. 电子顶载天平（感量0.1g）；4. 温箱；5. 研钵；6. 三角瓶50ml；7. 漏斗；8. 量筒100ml；9. 吸量管10ml；10. 刻度试管10ml；11. 试管架；12. 容量瓶10ml；13. 药勺；14. 石英砂适量；15. 烧杯10ml、1000ml。
实验材料水培小麦根系。
实验步骤1. 定性测定1）配制反应液把1％TTC 溶液、0.4 mol／L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按1:5:4 比例混合。
2）把根仔细洗净，把地上部分从茎基部切除。
将根放入三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37℃左右暗处放1～3h ，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。
5植物根系活力的测定TTC法
实验 5 植物根系活力的测定（ TTC 法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、原理氯化三苯基四氮唑（ TTC ）是标准氧化电位为 80 mV 的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲（ TTF ），如下式：生成的三苯甲（ TTF ）比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以 TTC 被广泛用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的 TTC 还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以 TTC 还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）试剂1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（ Na 2 S 2 O 4 ，分析纯），粉末。
3. 1 ％ TTC 溶液：准确称取 TTC 1.0 g ，溶于少量水中，定容到 100 mL 。
用时稀释至需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（ 1/15 mol/L ， pH7.0 ）。
5. 1 mol/L 硫酸：用量筒取比重 1.84 的浓硫酸 55 mL ，边搅拌边加入盛有 500 mL 蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至 1000 mL 。
6. 0.4 mol/L 琥珀酸：称取琥珀酸 4.72 g ，溶于水中，定容至 100 mL 即成。
（三）仪器设备小烧杯 3 个，研钵 1 个，移液管： 0.5 mL 1 支、 10 mL 1 支、 5 mL 3 支，刻度试管 6 支，分光光度计，分析天平（感量 0.1 mg ），电子顶载天平（感量 0.1 g ），温箱，试管架，药勺，石英砂适量，滤纸。
三、实验步骤1. 定性测定（ 1 ）配制反应液把 1 ％ TTC 溶液、 0.4 mol ／ L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按 1:5:4 比例混合。
TTC根系活力测定方法
TTC溶液的配制：取3g TTC溶于1L蒸馏水或冷开水中，配制成01％的TTC溶液。
药液PH应在65～75，以PH试纸试之(如不易溶解，可先加少量酒精，使其溶解后再加水)。
【方法】1将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子，用温水(30℃)浸泡2～6H，使种子充分吸胀。
2随机取种子2份，每份50粒，沿种胚中央准确切开，取每粒种子的一半备用。
3把切好的种子分别放在培养皿中，加TTC溶液，以浸没种子为度。
4放入30～35℃的恒温箱内保温30Min。
也可在20℃左右的室温下放置40～60Min。
5保温后，倾出药液，用自来水冲洗2～3次，立即观察种胚着色情况，判断种子有无生活力植物根系活力的测定（TTC法）一、原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80 mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲（TTF），如下式：生成的三苯甲（TTF）比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）试剂1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（Na2S2O4，分析纯），粉末。
3. 1％TTC溶液：准确称取TTC 1.0 g，溶于少量水中，定容到100 mL。
用时稀释至需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（1/15 mol/L，pH7.0）。
5. 1 mol/L硫酸：用量筒取比重1.84的浓硫酸55 mL，边搅拌边加入盛有500 mL蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000 mL。
6. 0.4 mol/L琥珀酸：称取琥珀酸4.72 g，溶于水中，定容至100 mL即成。
（三）仪器设备小烧杯3个，研钵1个，移液管：0.5 mL 1支、10 mL 1支、5 mL 3支，刻度试管6支，分光光度计，分析天平（感量0.1 mg），电子顶载天平（感量0.1 g），温箱，试管架，药勺，石英砂适量，滤纸。
植物根系活力的测定方法 ( TTC 法)
实验 5 植物根系活力的测定（ TTC 法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、原理氯化三苯基四氮唑（ TTC ）是标准氧化电位为 80 mV 的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲（ TTF ），生成的三苯甲（ TTF ）比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以 TTC 被广泛用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的 TTC 还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以 TTC 还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力的指标。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）试剂1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（ Na 2 S 2 O 4 ，分析纯），粉末。
3. 1 ％ TTC 溶液：准确称取 TTC 1.0 g ，溶于少量水中，定容到 100 mL 。
用时稀释至需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（ 1/15 mol/L ， pH7.0 ）。
5. 1 mol/L 硫酸：用量筒取比重 1.84 的浓硫酸 55 mL ，边搅拌边加入盛有 500 mL 蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至 1000 mL 。
6. 0.4 mol/L 琥珀酸：称取琥珀酸 4.72 g ，溶于水中，定容至 100 mL 即成。
（三）仪器设备小烧杯 3 个，研钵 1 个，移液管： 0.5 mL 1 支、 10 mL 1 支、 5 mL 3 支，刻度试管 6 支，分光光度计，分析天平（感量 0.1 mg ），电子顶载天平（感量 0.1 g ），温箱，试管架，药勺，石英砂适量，滤纸。
三、实验步骤1. 定性测定（ 1 ）配制反应液把 1 ％ TTC 溶液、 0.4 mol ／ L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按 1:5:4 比例混合。
ttc法测定根系活力实验报告
ttc法测定根系活力实验报告实验目的：本实验旨在通过使用TTC法测定根系活力，探究不同处理对植物根系活力的影响，从而了解植物根系的生理状态和适应能力。
实验材料和方法：材料：1. 小麦种子2. TTC（三唑化合物）3. 无菌蒸馏水4. 无菌培养皿5. 无菌培养基方法：1. 将小麦种子用无菌蒸馏水浸泡一夜，使其吸水膨胀。
2. 将无菌培养皿分为两组，每组放置10颗小麦种子。
3. 在一组培养皿中加入无菌蒸馏水作为对照组，另一组培养皿中加入含有TTC 的无菌培养基。
4. 将培养皿放置在恒温箱中，温度设定为适宜小麦生长的温度。
5. 观察培养皿中小麦种子的发芽情况，并记录下发芽数。
6. 在培养结束后，取出小麦种子，用无菌蒸馏水洗净表面的TTC。
7. 将小麦种子放入95%乙醇中煮沸5分钟，使其脱色。
8. 取出小麦种子，用无菌蒸馏水冲洗干净，然后用滤纸吸干水分。
9. 将小麦种子放入无菌培养皿中，加入无菌蒸馏水，使其吸水膨胀。
10. 用显微镜观察小麦种子根系的颜色变化，并记录下来。
实验结果：通过实验观察，发现加入TTC的培养皿中的小麦种子发芽数量明显较少，而对照组的发芽数量较多。
在观察小麦种子根系颜色时，发现加入TTC的培养皿中的小麦种子根系呈现红色，而对照组的小麦种子根系呈现白色。
实验分析：TTC法通过检测细胞内的还原酶活性来间接反映细胞的活力。
在本实验中，加入TTC的培养皿中的小麦种子根系发芽数量较少，根系呈现红色，说明这些小麦种子的根系活力较低。
而对照组中的小麦种子根系发芽数量较多，根系呈现白色，说明这些小麦种子的根系活力较高。
根系活力的差异可能是由于TTC对细胞内酶的影响。
TTC在细胞内被还原为可溶性产物，产生红色的沉淀物。
这种还原反应需要细胞内的还原酶参与，而还原酶的活性与细胞的代谢活力密切相关。
因此，加入TTC的培养皿中小麦种子的根系活力较低，表明这些小麦种子的代谢活力较弱。
结论：通过TTC法测定根系活力的实验，我们得出了加入TTC的培养皿中小麦种子的根系活力较低，而对照组的小麦种子根系活力较高的结论。
根系活力的测定
根系活力的测定（TTC法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水本。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲腙比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。
二、材料、设备仪器及试剂（一）材料：水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）仪器设备：1. 分光光度计；2. 分析天平（感量）；3. 电子顶载天平（感量0.1g）；4. 温箱；5. 研钵；6. 三角瓶50ml；7. 漏斗；8. 量筒100ml；9. 吸量管10ml；10. 刻度试管10ml；11. 试管架；12. 容量瓶10ml；13. 药勺；14. 石英砂适量；15. 烧杯10ml、1000ml。
（三）试剂：1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（Na2S2O4），分析纯，粉末。
％TTC溶液准确称取TTC1.0g，溶于少量水中。
定容到100ml。
用时稀释至各需要的浓度。
4. 磷酸缓冲液（1／15mol/L，pH7）。
5. 1mol/L硫酸用量筒取比重的浓硫酸55ml，边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml。
6. 0.4mol/L琥珀酸称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100ml即成。
三、实验步骤（1）TTC标准曲线的制作取％TTC溶液放入10ml量瓶中，加少许Na2S2O4粉摇匀后立即产生红色的甲月替。
再用乙酸乙酯定容至刻度，摇匀。
然后分别取此液、、、、置10ml容量瓶中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含甲月替25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列，以空白作参比，在485nm波长下测定吸光度，绘制标准曲线。
ttc法根系活力标准曲线
ttc法根系活力标准曲线
ttc法（氯化三苯基四氮唑法）是一种测定植物根系活力的方法。
标准曲线是实验中用于计算根系活力的基础，它通过测定不同浓度的ttc 溶液与植物根系的还原反应，得出一个标准曲线，从而推算出植物根系的活力。
以下是ttc法根系活力标准曲线的一个示例：
1. 配制不同浓度的ttc溶液，如0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%等。
2. 取植物根系样品，分别放入不同浓度的TTC溶液中，保持在适当的温度和光照条件下。
3. 经过一定时间后（如1小时），取出根系样品，用滤纸吸干表面水分。
4. 测定根系样品在485nm波长下的吸光度，记录下各浓度点的吸光度值。
5. 将吸光度值与ttc浓度绘制在坐标轴上，得到标准曲线。
总结，通过绘制标准曲线，可以找出植物根系活力与ttc浓度之间的关系，从而更准确地计算植物根系的活力。
在实际操作中，可以根据实验需要适当调整ttc溶液的浓度范围和实验时间。
根系活力的测定(TTC法)实验综述报告
根系活力的测定(TTC法)实验综述报告一、引言根系是植物的重要组成部分，对植物的生长和发育起着重要的影响。
因此，准确测定根系活力对于研究和监测植物生长状态、生理代谢以及适应环境的能力具有重要意义。
TTC法是一种常用且经典的根系活力测定方法，可以通过测定细胞色素酶的活性来反映细胞线粒体的代谢能力。
本综述将详细介绍TTC法的原理、实验步骤、结果分析以及存在的局限性，旨在为相关科研人员提供参考和指导。
二、原理TTC法通过将三氯化四氯化三苯巴比妥酸（TTC）还原为有色产物，间接测定细胞线粒体氧化还原酶活性，从而反映细胞的代谢能力。
在活力高的细胞中，细胞色素酶能将TTC迅速还原为甲基砌和氯化苯胺，溶液呈现出红色。
而在活力低或死亡的细胞中，由于细胞色素酶活性降低或丧失，不能将TTC完全还原，溶液呈现淡红色或无色。
三、实验步骤1. 实验前准备：准备好所需材料和试剂，如TTC、缓冲液、植物根系样品等。
2. 根系样品处理：将根系样品取出，并进行清洗和去皮处理。
3. 根系活力测定：将处理后的根系样品放入含有TTC和缓冲液的培养皿中，然后放入恒温培养箱中，在适宜的温度下进行静置培养。
4. 反应终止：在适当时间后，将培养皿取出，加入适量酸性水溶液终止反应。
5. 读取吸光度：使用分光光度计读取反应溶液的吸光度值，得到各组的吸光度数据。
6. 结果分析：根据吸光度数据，计算出样品的根系活力值。
四、结果分析通过TTC法测定的根系活力实验结果，可以从吸光度值得出根系活力的信息。
活力高的根系样品，其吸光度值较高，溶液呈现出深红色；活力低或死亡的根系样品，吸光度值较低，溶液呈现淡红色或无色。
同时，根据根系活力值的大小可以进行不同样品之间的比较，从而判断不同处理或条件对根系活力的影响。
五、存在的局限性尽管TTC法是一种常用的根系活力测定方法，但其也存在一些局限性。
首先，TTC法只能反映细胞线粒体氧化还原酶活性，对其他代谢能力不能进行直接测定。
ttc法测定根系活力实验报告
ttc法测定根系活力实验报告实验报告：TTC法测定根系活力一、实验目的通过TTC法测定根系的活力，了解植物根系对外界条件的适应能力以及对不同环境因素的响应。
二、实验原理TTC(2,3,5-三苯基四氮唑氯化物)法可用于测定细胞线粒体等颗粒物质的活力。
根在呼吸作用下，产生的CO2可以和TTC反应生成甲烷基红色染色物质，反应方程式如下：TTC + 2e- + 2H+ → 染色物质染色物质色深程度与细胞活力成正比，因此可以用染色物质的颜色来评估样品的活力。
三、实验步骤1. 准备材料：TTC试剂、木瓢、淀粉液、滴定管、97%乙醇、植物根系样品。
2. 切取根系样品，在温水中清洗后，将样品放置于淀粉液中进行苏木素染色。
清洗样品的目的是除去外表的污垢和细胞内的胶质物，以避免影响反应的准确性。
在样品染色前，淀粉液要先煮沸，以破坏淀粉酶。
3. 若样品过大，可以在放入淀粉液前用刀片切成较小片段。
4. 取出染色后的样品，用纸巾吸干淀粉液。
避免在植物根系上留下过多的染料，以免干扰实验结果。
5. 将植物根系样品放入烟花瓶内，并加入0.1%TTC试剂，再加入适量的滴定水保持水位2cm左右。
盖住烟花瓶口，避免空气进入。
6. 放置到37℃恒温实验箱中培养30分钟后，加入5～10mL的1N HCl，使混合液呈现明显的色泽变化。
7. 用滴定管加入97%乙醇混合液，振荡均匀。
8. 在另一试管中取相同量的HCl和TTC，作为对照。
9. 用比色计或分光光度计测定样品和对照试管的吸光度值，计算出样品的活力。
四、实验结果本次实验得出了样品的活力，数据如下表所示（数据为典型数据，仅供参考）：根系样品过氧化氢消耗量（mg）活力（%）样品1 3.2 68样品2 2.5 57样品3 3.8 76五、结论通过TTC法测定根系活力，我们可以对植物根系对外界条件的适应能力以及对不同环境因素的响应有一个更加全面的了解。
本次实验得出的活力数据，说明样品的抗逆能力较强，在不同环境下能够保持一定的生命活力。
TTC测根系活力的方法
氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定根系活力原理：TTC+2H=TTF+HCLTTC无色,TTF红色且比较稳定,不会被空气中的氧气自动氧化,所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体,所以TTC还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标.试剂:95%乙醇Na2S(还原剂)0.4%TTC溶液:准确称取TTC 0.4g,溶于少量蒸馏水中,定容至 100 ;0.2M PH8.4 Tris-HCL 缓冲液:母液 A:0.2mol/l三羟甲基甲烷(Tris：分子量121g/mol)(24.2g溶至1000ml) B:0.2mol/l HCL A:5OmL+B:16.5 mL,稀释至200ml.1mol/l硫酸:用量筒取比重1.84的浓硫酸55ml,边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中,冷却后稀释定容至1000ml定量测定:(1)TTC标准曲线的制作吸取0.25ml0.4%TTC溶液放入10ml容量瓶中,加少许Na2S晶体（药匙后端一点即可）,摇匀后立即产生红色的TTF.再用95%乙醇定容至刻度,摇匀.然后分别取此液0.25ml、0.5ml、1.00ml、2.00ml、4ml置10ml容量瓶中,用95%的乙醇定容至刻度,即得到含TTF25μg、50μg 、100μg、200 μg、400 μg的标准比色系列,以空白做参比,在485nm波长下测定光密度,绘制标准曲线.(2)称取样品0.5g,放入25ml的小烧杯中(空白实验先加硫酸再加根样品,其他操作相同),加入0.4%TTC溶液和PH8.4 Tris-HCL 缓冲液的等量混合液10ml,把根充分浸没在溶液中,37℃下暗处保温6h,此后加入1mol/l硫酸2ml(除对照外),以停止反应.(3)把根取出,用吸水纸把材料表面的水吸干,转移到原来的小烧杯中,先加6ml95%的乙醇,浸提15-20min或者封口后放置过夜,直至红色物质完全提出。
提取液转入到10ml的离心管中,用乙醇反复洗涤2-3次,皆转入离心管中,最后加95%的乙醇定容至刻度,4000转速下离心10min,冷却,用分光光度计在485nm下比色,以空白作参比读出光密度,查标准曲线,求出四氮唑还原量.(4)计算将所得数据带入下式,求出四氮唑还原强度四氮唑还原强度=四氮唑还原量(μg)/根重(g)/时间(h)注意事项:1、把根从TTC和Tris-HCL等量混合液中取出时可以不过滤，而直接把根和溶液倾倒在一层纱窗上，在其上面再盖一层纱窗，在纱窗的上面用吸水纸把根上的水分吸干2、37℃保温一定在暗处.3.根切成1cm左右的小段。
根系活力的测定(TTC法)实验综述报告
根系活力的测定(TTC法)实验综述报告根系活力的测定(TTC法)实验综述报告摘要：根系活力是评估植物健康状况和生长能力的重要指标之一。
本实验综述报告将介绍一种常用的根系活力测定方法——三苯基氯化四唑(TTC)法，并重点介绍了该方法的原理、步骤和应用。
通过对多个实验研究的概述，我们可以了解到TTC法在根系活力测定中的优势和不足，并展望了未来在该领域的发展方向。
1. 引言根系活力是植物根系生理功能的重要指标之一。
通过测定根系活力，可以评估植物吸收和利用养分的能力，以及应对环境胁迫和病原体的能力。
因此，测定根系活力对于研究植物生长发育、抗逆性和资源利用效率等具有重要意义。
2. TTC法的原理和步骤TTC法是一种常用的根系活力测定方法，它利用三苯基氯化四唑颜料的还原作用来反映根系活力。
其原理是，根系组织通过代谢产物还原三苯基氯化四唑，使其从无色变为红色。
实施TTC法的步骤主要包括：准备TTC溶液、处理根系样本、添加TTC溶液、孵育和测定根系活力。
3. TTC法的应用TTC法广泛应用于不同植物根系的活力测定中。
它可以用于各种实验条件下的根系活力研究，包括光照、温度、生长激素、缺水和盐胁迫等。
通过TTC法，我们可以了解不同处理对根系生理代谢的影响，评估植物在不同环境条件下的生长适应性。
4. TTC法的优势和不足TTC法作为根系活力测定的常用方法，具有一些优势。
首先，它操作简单、成本低廉、效果可靠。
其次，可以通过可视化的红色形成判断根系活力，评估根系的发育状况。
然而，TTC法也存在一些不足之处，如容易受到环境条件的干扰，结果的可视化程度受到主观因素的影响等。
5. 未来发展方向在未来，TTC法可以与其他技术相结合，以提高根系活力测定的准确性和可靠性。
光学显微镜、分子生物学技术和高通量测定等新技术的应用，将进一步拓展我们对根系活力的认识。
此外，开展TTC法的标准化研究，建立更严格的操作规范，有助于提高测定结果的一致性和可比性。
实验3 根系活力的测定(TTC法)
实验3 根系活力的测定（TTC法）植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水本。
本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
一、实验目的熟悉测定根系活力的方法和原理二、原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲腙比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC 被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。
所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。
三、材料、设备仪器及试剂1、材料：水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
2、仪器设备：分光光度计；分析天平（感量0.1mg）；电子顶载天平（感量0.1g）；温箱；研钵；三角瓶50ml；. 漏斗；. 量筒100ml；吸量管10ml；. 刻度试管10ml；. 试管架；容量瓶10ml；. 药勺；. 石英砂适量；. 烧杯10ml、1000ml。
3、试剂：乙酸乙酯（分析纯）。
次硫酸钠（Na2S2O4），分析纯，粉末。
.1％TTC溶液准确称取TTC1.0g，溶于少量水中。
定容到100ml。
用时稀释至各需要的浓度。
磷酸缓冲液（1／15mol/L，pH7）。
. 1mol/L硫酸用量筒取比重1.84的浓硫酸55ml，边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml。
.0.4mol/L琥珀酸称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至100ml即成。
四、实验步骤1、TTC标准曲线的制作取0.4％TTC溶液0.2ml放入10ml量瓶中，加少许Na2S2O4粉摇匀后立即产生红色的甲月替。
再用乙酸乙酯定容至刻度，摇匀。
然后分别取此液0.25ml、0.50ml、1.00ml、1.50ml、2.00ml 置10ml容量瓶中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含甲月替25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列，以空白作参比，在485nm波长下测定吸光度，绘制标准曲线。
植物生理学实验 氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定根系活力
实验目的
根系活力是衡量根系活动能力强弱的 重要指标，可以衡量根系吸收水分或矿 质元素的能力大小，甚至可以反映地上 部分的营养状况以及产量水平。学会利 用TTC法测定根系活力。
一、原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）溶于水中成为无色 溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的 三苯基甲替（TTF），如下式：
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化， 所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根所 引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹 果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所 以TTC还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系活力 的指标。
二、材料、设备仪器及试剂
（一）材料： 玉米等植物根系。 （二）仪器设备： 分光光度计； 天平； 恒温箱1台； 研钵1套； 漏斗； 量筒； 移液管；试管； 刻度试管 10ml； 试管架； 药勺； 石英砂适量； 烧杯； 小培养皿；洗瓶。
四、结果计算
四氮唑还原强度： mg/g(根鲜重)/h= 四氮唑还原量（mg）/ 根重（g）×时间(h)
五 注意事项
分光光度计的使用：看视频
保险粉的量要过量。 乙酸乙酯容易挥发，研磨时要求操作迅速。 T T F暴露空气中易被还原，标准曲线要求现配 现用。
标准曲线制作
定量试验
定性实验
二、材料、设备仪器及试剂
（三）试剂： 1. 乙酸乙酯 2. 次硫酸钠（Na2S2O4，强还原剂，俗称保险粉） 3. 1mg/ml的TTC溶液： 4. 磷酸缓冲液（66mmol/L，pH7）。 5. 1mol/L硫酸： 6. 0.4mol/L琥珀酸：
三、实验步骤
1．定性测定(教师做演示实验） （1）配置反应液 把1%TTC溶液，0.4moL/L琥珀酸钠和 磷酸缓冲液按1︰5︰4比例混合。 （2）把根仔细洗净，把地上部分从茎基切除，将根放入 三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37℃左右暗处 放1h，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明 显地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。
ttc法测定植物根系活力的原理
ttc法测定植物根系活力的原理植物根系活力是指植物根系的生长和发育能力，是植物生长的重要指标之一。
根系活力的高低直接影响着植物的生长和发育状况，因此对于研究植物根系活力的测定方法具有重要的意义。
目前，有许多方法可以用来测定植物根系活力，其中一种常用的方法是 TTC 法（Triphenyltetrazolium chloride method）。
TTC 法是一种常用的生化试验方法，通过测定植物根系细胞内还原酶的活性来间接反映根系的活力水平。
TTC 法的原理是基于细胞内的还原酶对 TTC 的还原作用。
TTC 是一种无色的化合物，在细胞内被还原为红色的三苯基四唑盐（Tetrazolium salt），这种红色产物在细胞内会积累并沉积在细胞质中，形成红色颗粒。
这些红色颗粒的数量和颜色的深浅可以反映细胞内还原酶的活性水平，从而间接反映出植物根系的活力。
TTC 法的具体操作步骤如下：1. 准备 TTC 溶液：将 TTC 溶解在缓冲液中，得到一定浓度的TTC 溶液。
一般来说，TTC 的最佳浓度为 0.5%。
2. 取一定量的植物根系样品：将待测植物的根系样品取出，并将其洗净去除表面污物。
3. 处理样品：将根系样品切碎，并加入适量的 TTC 溶液中，使样品充分浸泡在 TTC 溶液中。
4. 孵育样品：将处理后的样品置于一定温度下孵育一段时间，一般常温孵育 2-4 小时。
5. 观察样品：观察样品的颜色变化情况。
如果样品呈现红色或深红色，说明根系细胞内还原酶活性较高，根系活力较强；如果样品呈现浅红色或无色，说明根系细胞内还原酶活性较低，根系活力较弱。
通过上述步骤，我们可以利用 TTC 法测定植物根系活力。
需要注意的是，在进行实验时要注意控制好各项实验条件，如温度、时间和浓度等，以确保实验结果的准确性和可靠性。
TTC 法具有操作简便、结果直观等优点，因此被广泛应用于植物生理学和农业科学研究中。
通过测定植物根系活力，可以评估植物对环境逆境的适应能力、抗逆性以及生长发育状态，为研究植物生长机理、筛选抗逆品种以及优化农业生产提供重要参考。
(完整版)植物生理学实验氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定根系活力
四、结果计算
四氮唑还原强度： mg/g(根鲜重)/h=
四氮唑还原量（mg）/ 根重（g）×时间(h)
五 注意事项
分光光度计的使用：看视频 保险粉的量要过量。 乙酸乙酯容易挥发，研磨时要求操作迅速。 T T F暴露空气中易被还原，标准曲线要求现配
现用。
标准曲线制作
定量试验
定性实验
试管编 1 号
TTF含量 0 (ug)
TTF
0
(ml )
乙酸乙 4 酯（ml)
OD(485 nm)
2 3 4 5 6 空白 样品 20 40 60 80 100 12345
9 8 7 6 5 ｝10 10
三、实验步骤
（2）.样品的提取及测定 样品提取：称取根样品0.5g，放入小培养皿，加入
0.4%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液10ml，把 根充分浸没在溶液内，在37℃下暗处保温1h，此后加 入1mol/L硫酸2ml，以停止反应。（与此同时做一空 白实验，先加硫酸，再加根样品，其他操作同上）。
实验4
氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定根系 活力
实验目的
根系活力是衡量根系活动能力强弱的 重要指标，可以衡量根系吸收水分或矿 质元素的能力大小，甚至可以反映地上 部分的营养状况以及产量水平。学会利 用TTC法测定根系活力。
一、原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）溶于水中成为无 色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水 的三苯基甲替（TTF），如下式：
三、实验步骤
2．定量测定 （1）TTC标准曲线的制作
取1mg/mL的T T C 2mL于100mL容量瓶中，加入2勺 （黄豆大小）保险粉摇匀，加入乙酸乙酯40mL左右 剧烈震荡至保险粉充分溶解，用乙酸乙酯定容至刻度， 即成TTF标准液(20 µg /mL )。
植物生理学实验 氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定根系活力
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化， 所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根 所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸、延胡索酸、 苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。 所以TTC还原量能表示脱氢酶活性，并作为根系 活力的指标。
二、材料、设备仪器及试剂
（一）材料： 玉米等植物根系。 （二）仪器设备： 分光光度计； 天平； 恒温箱1台； 研钵1套；
三、实验步骤
2．定量测定 （1）TTC标准曲线的制作
取1mg/mL的T T C 2mL于100mL容量瓶中，加入2勺 （黄豆大小）保险粉摇匀，加入乙酸乙酯40mL左右 剧烈震荡至保险粉充分溶解，用乙酸乙酯定容至刻度， 即成TTF标准液(20 µg /mL )。
按下表制作 T T F标准曲线。以空白作参比，在 485nm波长下测定光密度，绘制标准曲线。
三、实验步骤
1．定性测定(教师做演示实验） （1）配置反应液 把1%TTC溶液，0.4moL/L琥珀酸钠和 磷酸缓冲液按1︰5︰4比例混合。 （2）把根仔细洗净，把地上部分从茎基切除，将根放入三 角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37℃左右暗处放 1h，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显 地变成红色，表明该处有脱氢酶存在。
试管编 1 号
TTF含量 0 (ug)
TTF
0
(ml )
乙酸空白 样品 20 40 60 80 100 12345
9 8 7 6 5 ｝10 10
三、实验步骤
（2）.样品的提取及测定 样品提取：称取根样品0.5g，放入小培养皿，加入
0.4%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液10ml，把 根充分浸没在溶液内，在37℃下暗处保温1h，此后加 入1mol/L硫酸2ml，以停止反应。（与此同时做一空 白实验，先加硫酸，再加根样品，其他操作同上）。
根系活力的测定(ttc法)实验综述报告
根系活力的测定(ttc法)实验综述报
告
TTC法是一种用来衡量根系活力的有效实验方法，在许多现有的测量植物生长
与发育状况中已被广泛应用。
它是对植物源区域生长活力和发育状况的直接反映，主要通过检测植物根系中是否存在勃起层来量化测量根系的活力。
TTC法的实验步
骤如下：
（1）前期备料：从植物根系挖取一定数量的根系，将其浸入TTC溶液中，然后放
置在25℃恒温环境中诱导根系活力。
（2）TTC测试：以半芯径0.5厘米为主，采用2％——4％TTC溶液测定植物根系
组织的活力，其原理就是那些有活力的根系细胞被黑色染料染色，而死亡的细胞则没有。
（3）固定检测：根据TTC测试结果，将TTC活力分为正活力、弱活力、失活力等
几种，进而检测植物的生长发育状况。
TTC法的实施，可以获知植物根系的情况，也可以作为植物如何应对显著条件
的变化的有效测量依据，因此被广泛应用于植物的生长、发育状况的评价中。
然而，TTC法也有一定的局限性，比如，整个TTC实验过程耗时较长，容易产生假阴性结果，可能误报出尚未出现生长力衰弱的根系组织。
总之，TTC法是衡量植物根系活力的一种有效实验方法，它可以为决定环境要
素对植物生长发育状况的影响提供重要参考意见，是植物学家和拟研究环境因子与植物生长发育关系的科学家的重要研究工具。
但TTC法也具备一定的局限性，在实验步骤的实施中，需要注意控制各项参数，以准确获取植物根系活力的信息。
实验 5 植物根系活力的测定 ( TTC 法)
2. 定量测定
（ 1 ） TTC 标准曲线的制作 取 0.4 ％ TTC 溶液 0.2 mL 放入大试管中，加 9.8 mL 乙酸乙酯，再加少许 Na 2 S 2 O 4 粉末摇匀，则立即产生红色的 TTF 。此溶液浓度为每毫升含有 TTF 80 μg 。分别取此溶液 0.25 mL 、 0.50 mL 、 1.00 mL 、 1.50 mL 、 2.00 mL 置 10 mL 刻度试管中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含 TTF 20 μg 、 40 μg 、 80 μg 、 120 μg 、 160 μg 的系列标准溶液，以乙酸乙酯作参比，在 485 nm 波长下测定吸光度，绘制标准曲线。
二、实验材料、试剂与仪器设备
（一）实验材料
水培或砂培小麦、玉米等植物根系。
（二）试剂
1. 乙酸乙酯（分析纯）。
2. 次硫酸钠（ Na 2 S 2 O 4 ，分析纯），粉末。
3. 1 ％ TTC 溶液：准确称取 TTC 1.0 g ，溶于少量水中，定容到 100 mL 。用时稀释至需要的浓度。
式中： C ——四氮唑还原量， μg 。
W ——根重， g 。
h ——时间， h 。
[ 思考题 ]
为什么要测定根系活力 ? 植物的根与地上部分有何关系 ?
实验 5 植物根系活力的测定 （ TTC 法）
植物根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。本实验练习测定根系活力的方法，为植物营养研究提供依据。
植物根系活力的测定——TTC法
植物根系活力的测定——TTC法TTC即氯化三苯基四氮唑(2, 3, 5-Tripheyl Tetrazolium Chloride)，又可称为红四氮唑，是一种氧化还原物质。
当TTC溶于水后，溶液呈现无色透明状，但当TTC被根系细胞内的脱氢酶还原时，其产物便呈红色，名为三苯甲腙(TTF)。
TTF比较稳定，不溶于水且不易被空气中存在的氧气氧化。
利用氯化三苯基四氮唑(TTC) 的还原能力，在一定程度上能够反映出植物根系活力的强弱如何。
植物根系的呼吸速率越高代表其活力越强，因此根系中TTC还原的量就愈多；相反，当根系呼吸速率变弱时，其还原的量就相对减少。
一、实验器材分光光度计；恒温箱；容量瓶；刻度试管；研钵。
二、试剂配制1. 连二亚硫酸钠(Na2S2O4)，俗称保险粉；2. 乙酸乙酯(分析纯)；3. 石英砂(适量)；4. 0.4mol·L-1琥珀酸：使用电子天平称取4.72g的琥珀酸，使其溶解在盛有约90mL的蒸馏水中，然后定容至100mL(不需配制)；5. 4g·L-1 (0.4%) TTC：使用电子天平准确称取TTC试剂1.0g，将其溶解在盛有适量蒸馏水的小烧杯中，用玻璃棒充分搅拌均匀，倒入250mL棕色容量瓶定容至刻度，现用现配；6. pH=7.0 66mM磷酸缓冲液：由A液和B液混合而成，A液：使用电子天平准确称取1.1876g Na2HPO4·2H2O(分子量177.99 g·moL-1) 或2.3896g Na2HPO4·12H2O(分子量358.14 g·moL-1)，将其溶解在蒸馏水中，定容至100mL。
B液：在电子天平上准确称取0.9078g的KH2PO4，使其溶解在蒸馏水中，定容至100mL。
实验用pH=7.0 66mM磷酸缓冲液可取A液60mL再加入B液40mL混合；7. 1mol·L-1 H2SO4：戴上手套后小心量取5.435mL 98%的浓硫酸，加入盛有蒸馏水的烧杯中(用玻璃棒边搅拌边加入)，冷却后稀释至100mL。
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氯化三苯基四氮唑（TTC）法测定根系活力
摘要：氯化三苯基四氮唑是标准氧化还原电位为80mV的氧化还原物质,溶于
水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯基甲,TTC被广泛地用作酶试验的氢受体,植物根所引起的TTC还原,可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制.所以TTC还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标.
【原理】
氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化还原电位为80mV的氧化还原物质,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯基甲（TTF）,如下式：
生成的TTF比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体,植物根所引起的TTC还原,可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制.所以TTC还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标. 【仪器与用具】
分光光度计；分析天平（感量0.1mg）；恒温箱1台；研钵1套；100ml三角瓶；漏斗；移液管10ml 1支、2ml 1支、0.5ml 1支；20ml刻度试管；10ml容量瓶；小培养皿；试管架,药匙；石英砂适量.
【试剂】
1、乙酸乙酯；
2、连二亚硫酸钠（Na2S2O4,为强还原剂,俗称保险粉）；
3、1%TTC溶液：准确称取TTC 1.0g,溶于少量蒸馏水中,定容至100ml；
4、0.4%TTC溶液：准确称取TTC 0.4g,溶于少量蒸馏水中,定容至100ml；
5、磷酸缓冲液（1/15mol/L,pH7.0）；
6、1mol/L硫酸：用量筒量取比重1.84的浓硫酸55ml,边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中,冷却后稀释至1000ml；
7、0.4mol/L琥珀酸钠：称取琥珀酸钠（含6个结晶水）10.81g,溶于蒸馏水中,定容至100ml.
【方法】
1、定性测定
（1）配置反应液把1%TTC溶液,0.4moL/L琥珀酸钠和磷酸缓冲液按1:5:4比例混合. （2）把根仔细洗净,把地上部分从茎基切除,将根放入三角瓶中,倒入反应液,以浸没根为度,置37℃左右暗处放1h,以观察着色情况,新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红
色,表明该处有脱氢酶存在.
2、定量测定
（1）TTC标准曲线的制作
吸取0.25ml 0.4%TTC溶液放入10ml容量瓶,加少许Na2S2O4粉末,摇匀后立即产生红色的TTF.再用乙酸乙酯定容至刻度,摇匀.然后分别取此液0.25ml、0.5ml、1.00ml、1.50ml、2.00ml置10ml容量瓶中,用乙酸乙酯定容至刻度,即得到含TTF25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列,以空白作参比,在485nm波长下测定光密度,
绘制标准曲线.
（2）称取根样品0.5g,放入小培养皿（空白试验先加硫酸再加入根样品,其他操作相同）,加入0.4%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液10ml,把根充分浸没在溶液内,在37℃下暗处保温1h,此后加入1mol/L硫酸2ml,以停止反应.
（3）把根取出,吸干水分后与乙酸乙酯3~4ml和少量石英砂一起磨碎,以提出TTF.把红色提出液移入试管,用少量乙酸乙酯把残渣洗涤二至三次,皆移入试管,最后加乙酸乙酯
使总量为10ml,用分光光度计在485nm下比色,以空白作参比读出光密度,查标准曲线,
求出四氮唑还原量.
（4）计算
将所得数据带入下式,求出四氮唑还强度.。