标准操作规程(SOP)——流感病毒的鸡胚分离方法
标准操作规程(SOP)——流感禽流感微量中和抗体检测
标准操作规程（SOP）——一、目的微量中和试验是一种敏感性高、特异性强的血清学方法，用于测定血清中的病毒特异性中和抗体水平。
中国国家流感中心的所有技术人员，必须按照本文件相关的操作规程，进行流感/禽流感微量中和抗体检测实验，以确保实验的准确性。
二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行流感/禽流感微量中和抗体检测。
三、责任进行流感/禽流感微量中和抗体检测的技术人员需严格按照规定进行操作。
四、程序（一）生物安全要求H5，H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的操作需要在生物安全3级（BSL-3）实验室中进行。
其余流感病毒的操作需要在生物安全2级（BSL-2级）实验室中进行。
操作人员必须严格按照相应实验室的要求做好个人防护。
（二）材料1．中和反应实验材料（1）病毒：一般采用接种鸡胚尿囊腔后收获的流感/禽流感病毒液，在-70℃中保存，并且注意避免反复冻融。
进行中和试验之前，需先进行病毒滴度（TCID50）的滴定。
具体步骤如下，1）病毒的稀释：可采取对数或者半对数稀释的方法。
以下介绍半对数稀释法。
取1管冻存病毒尿囊液，用病毒培养液进行1:100稀释。
第一列4个孔每孔加入146μL 1:100稀释过的病毒液，其它各列每孔加入100 μL 病毒培养液。
然后用多道加样器从第一孔吸46μL 至第二孔，做系列半对数稀释，使之成为10－2、10－2.5、10－3、10－3.5……10－7。
每孔含有100μL 病毒液。
2）每孔加入100μL MDCK 细胞悬液（1.5×104细胞/孔），37℃，5%CO 2培养箱孵育18～22h 。
每一滴度作平行4孔。
3）细胞固定、ELISA 操作如下述。
4）OD 值 〉2倍MDCK 细胞对照OD 值判定为阳性5）病毒滴度计算见组织细胞半数感染量滴定SOP 。
（2）血清样品：包括待检血清、阳性及阴性血清对照。
如果待检血清有可能需要多次检测，则需将待检血清进行小量分装，-20℃至-70℃保存均可，避免多次反复冻融。
标准操作规程(SOP)——禽流感病毒H5N1 NASBA检测
一、目的确保H5N1禽流感疑似病例标本得到有效的检测，为禽流感H5N1感染提供可靠的实验室诊断依据。
国家流感中心实验室按照规定方法对疑似H5N1禽流感感染病例的标本进行处理和检测，使疑似禽流感病例标本的处理和检测得到有效的控制。
保证检测结果的快速性和可靠性，同时确保样本不被污染和污染环境。
二、范围适用中国国家流感中心操作人员进行疑似H5N1禽流感病例标本的检测。
三、定义核酸序列依赖性扩增（Nuclear acid sequence-based amplification ，NASBA ）检测技术是一项快速等温核酸扩增并能实时观测结果的检测技术，该技术的检测反应有赖于AMV 逆转录酶、噬菌体T7 RNA 多聚酶、核糖核酸酶H 、两种特别设计的特异性寡核苷酸引物和分子信标探针共同协作而完成。
如下是在检测结果分析中涉及到的几个概念：1．样品检测信号值（WT signal ）：在扩增过程中分子信标探针与靶基因发生特异性结合后，产生荧光信号的荧光信号被收集经软件转换后的强度值，即WT signal 。
2．阈值（threshold ）：在NASBA 反应过程中会产生荧光信号，阈值是判断阴性或阳性结果的荧光信号界线值，样本荧光信号≥阈值者为阳性，反之为阴性。
图1：NASBA 检测标准曲线Time WT Signal标准操作规程（SOP H5N1 NASBA四、背景本SOP是为了疑似H5N1禽流感感染的诊断而制定，确保禽流感病例诊断的快速性和可靠性，同时要求实验操作过程中标本不被污染或污染环境。
五、程序（一）生物安全要求标本裂解在BLS-3实验室，其余操作部分在具有规范分区（体系配制区、核酸提取区和检测分析区）的BSL-2级实验室进行并遵守相应生物安全规定。
详细生物安全防护参见“生物安全个人防护SOP”。
（二）材料及仪器1．梅里埃公司 Nulisens EasyQ 检测分析系统。
2．孵育器3．离心机4．移液器：规格分别为0.5~10μL、20~200μL和100~1000μL各一支。
标准操作规程(SOP)——流感禽流感单放射免疫扩散溶血技术抗体检测
该文件用以说明单放射免疫扩散溶血技术（SRH ，Single Radial Hemolysis Technique ）的详细操作过程和操作规范以及结果判定标准。
该技术是一种简便、可靠、重复性好、特异性强、敏感性高的血清抗体测定方法，本文件确保使用该技术时操作规范，从而确保实验结果准确可靠，得到准确、可重复的血清抗体滴度。
二、范围适用于中国国家流感中心所有技术人员进行流感/禽流感单放射免疫扩散溶血技术对血清中的抗体进行检测。
三、程序（一）生物安全要求抗原的制备和血清灭活在根据所从事病毒的种类在相应的生物安全级别实验室进行，SRH 检测在生物安全二级（BSL-2）实验室进行操作。
（二）材料1．Alsever’s 液葡萄糖 2.05g枸橼酸钠 0.8g枸橼酸 0.055g氯化钠 0.42g蒸馏水 加至 100mL上述药品加微热溶解后，过滤，以121 20min ℃灭菌，放4℃保存。
2．pH 7.2 PBS 缓冲液1包PBS 粉剂（Gibco 或Sigma ）溶于1000mL 去离子水中。
121℃高压灭菌，置4℃保存，保存期为3周。
一、目的标准操作规程（SOP ）——流感3．10%叠氮钠（sodium azide， NaN3）溶液10 g NaN3加入灭菌过的去离子水至100mL，溶解后置4℃保存。
4．5×10-4mol/L KIO4（过碘酸钾）溶液11.5 mg KIO4加入pH7.2 PBS 溶液至100mL，完全溶解后置4℃保存。
5．1%琼脂糖1g 琼脂糖（最好用超纯化、低熔点，Biowest Agarose Shanghai）加入pH 7.2 PBS至100mL，煮沸使完全溶解，立即分装，恒温于60℃水浴中，也可冷却后置4℃保存，时间不超过一个月。
6．1%鸡红细胞悬液，按《1%鸡红细胞悬液配制SOP》进行配制。
7．浓鸡红细胞，按《1%鸡红细胞悬液配制SOP》相关步骤进行配制。
8．补体的制备至少6只健康成年豚鼠，采血前一天下午禁食，第二天上午从心脏采血，每只可采5～10mL，每只采完后速至冰上，多只豚鼠血清混匀后使用，当天分离血清，分装，置-70℃冰箱中保存。
流感病毒的收集与纯化标准操作规
流感病毒的收集与纯化标准操作规程（编号：054）1、目的及适用范围该SOP用来规范流感病毒的收集和纯化标准操作。
2、主要仪器试剂超净工作台、冷冻立式超速离心机（BeckmanXL90）、冷冻台式高速离心机、天平、超速离心管、50mL离心管、0.01 mol/L PBS pH7.4、30%、40%、50%、60%蔗糖3、操作步骤3.1将病毒接种于SPF鸡胚，48 h收集尿囊液以5000 rpm（#3334）离心30 min，取上清液；或者将病毒接种于细胞，待细胞基本病变收取上清。
12000rpm（#3332），离心15min，去上清。
3.2 将上清液以100000g（Ti40）离心2 h，将沉淀物用1 mL 0.01 mol/L PBS pH7.4悬浮，振荡均匀；3.3 加至依次由30%、40%、50%、60%蔗糖制成的密度梯度上，以100000g（SW40）离心2h，取沉淀条带；3.4 取沉淀条带加10倍量PBS悬浮、振匀，再次以100000g （Ti80）离心2 h，取沉淀用200μL 0.01 mol/L PBS pH7.4或20 mM Hepes/20mM Mes/130mM NaCl, pH7.5悬浮、振匀，-80℃保存。
4、注意事项4.1 注意对称平衡。
使用天平，进行配平，保证离心对称平衡。
4.2 如离心管盖子密封性差液体就不能加满（针对高速离心且使用角度头），以防外溢。
外溢后果污染转头和离心腔，并失去平衡，影响感应器正常工作。
最高液面查离心机相应说明书。
4.3 SW40超速离心时，液体一定要加满离心管，只余留2mm空间，超离时需抽真空，只有加满才能避免离心管变形。
4.4 使用角度头时别忘盖转头盖，如未盖，离心腔内会产生很大的涡流阻力和摩擦升温，这等于给离心机的电机和制冷机增加了额外负担，影响离心机的使用寿命。
113。
标准操作规程(SOP)——流感禽流感病毒 RT-PCR 引物制备
RT-PCR 引物制备，用于流感/禽流感病毒RT-PCR 检测，确保RT-PCR 检测结果的可靠性。
二、范围
适用于中国国家流感中心所有技术人员对疑似流感/禽流感病毒感染标本进行RT-PCR 检测。
三、程序
（一）引物合成
六合通（大连宝生物）或同类公司合成，PAGE 纯化。
（二）引物配制
1．10×储存液配制：
（1）将新合成的引物在开盖前短暂离心（12000rpm ，15s ）。
（2）用RNase Free Water 溶解，加水量为10×总摩尔数，充分混匀，此时引物浓度为100pmol/μL ，即100μM 。
（例如：合成引物2OD ，9.5nmol ，则加水量为10×9.5＝95μL 。
）
2．引物使用浓度配制：将100μM 的引物浓度再10倍稀释，配成浓度为10μM ，即可直接用于PCR 反应。
（三）引物保存
1．引物未溶解前4℃保存。
2．引物溶解之后-20℃或-20℃以下保存。
注意：引物配制前，先将引物管短暂离心，以免引物丢失。
一、目的标准操作规程（SOP 毒RT-PCR。
标准操作规程(SOP)——流感病毒的鸡胚分离方法
一、目的流感病毒的鸡胚分离方法是流感病毒分离方法之一，常用于流感病毒的分离、培养。
本SOP 是为确保鸡胚分离流感病毒的操作准确、规范和可靠而制定。
二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行流感病毒的鸡胚分离。
三、程序（一）生物安全要求H5,H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的鸡胚分离实验室生物安全级别：BSL-3。
实验操作人员需进行BSL-3防护，具体详见“生物安全个人防护SOP ”。
H5,H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的鸡胚接种和病毒培养液的收获操作必须在BSL-3级实验室的生物安全柜中进行。
其余流感病毒的鸡胚分离实验室生物安全级别：BSL-2。
实验操作人员需进行BSL-2防护，具体详见“生物安全个人防护SOP ”。
其余流感病毒的鸡胚接种和病毒培养液的收获操作必须在BSL-2级实验室的生物安全柜中进行。
（二）材料1．9～11日龄SPF 鸡胚2．照卵灯3．70%～75％酒精4．一次性注射器5．鸡蛋开孔器6．蜡或医用胶布7．液体石蜡8．15mL 无菌离心管、试管架标准操作规程（SOP ）——分离方法9．10mL无菌移液管10．无菌镊子。
（三）实验步骤1．验卵（1）用照卵灯检测鸡胚，标记出鸡胚的气室与尿囊的界限、胚胎的位置。
（2）如果鸡胚是死胚、没有受精、有裂痕、发育不全或表面有好多渗水孔，应弃掉。
（3）如何判断鸡胚状态1）血管：活胚血管清晰，死胚模糊，成淤血带或淤血块2）胎动：活胚有明显的自然运动，死胚无胎动。
3）绒毛尿囊膜发育界限：密布血管的绒毛尿囊膜与鸡胚胎的另一面形成明显的界限。
2．鸡胚接种（1）将鸡胚的气室朝上放置在蛋盘上，标记每个鸡胚，通常每个样本接种3个鸡胚。
（2）用70%～75％酒精消毒鸡胚，在气室端钻孔，开10×6mm裂口。
（3）用注射器吸200µL处理过的临床标本，装上16号针头。
（4）从裂口中滴入无菌的液体石蜡，然后轻轻晃动鸡胚，让液体石蜡在鸡胚壳膜内层（脏层）铺开，此时在照卵灯下即可清楚的看到鸡胚胎的位置。
标准操作规程(SOP)——禽流感病毒RT PCR 检测
一、目的确保疑似禽流感病例标本得到有效的检测，为禽流感病毒感染提供可靠的实验室诊断依据。
国家流感中心实验室按照规定方法对疑似禽流感感染病例的标本进行处理和检测，使疑似禽流感病例标本的处理和检测得到有效的控制。
保证检测结果的快速性和可靠性，同时确保样本不被污染和污染环境。
二、范围适用于中国国家流感中心所有技术人员进行疑似禽流感病例标本的检测。
三、背景本SOP 是为配合疑似H5N1禽流感感染病例的诊断而制定，确保禽流感病例诊断的快速性和可靠性，同时要求实验操作过程中标本不被污染或污染环境。
四、程序（一）生物安全要求分装标本、裂解病毒需在BSL-3级实验室操作；核酸提取可在BSL-2级实验室生物安全柜内操作；PCR 反应体系配制在体系配制区；PCR 产物检测在电泳区操作。
要遵守相应生物安全规定（见“生物安全个人防护SOP ”）。
（二）材料及仪器1．提RNA Kit ：QIAGEN RNeasy Mini Kit （catalog #74104）2．β－巯基乙醇（SIGMA β-Mercaptoethanol Lot 062K0115）3．70％乙醇4．RT-PCR Kit ：QIAGEN One step RT-PCR Kit （catalog #210212）5．Promega RNasin Ribonuclease Inhibitor （catalog #N2111）6．检测引物：Forword and Reverse Primers （均为10μM ），序列如下：标准操作规程（SOP ）——PCR 检测类型序列甲型通用FluA-M-F173FluA-M-R3825’-GAC CAA TCC TGT CAC CTC TGA C-3’5’-AGC TGA GTG CGA CCT CCT TAG-3’H5 H5HA-F920H5HA-R11385’-GCC ATT CCA CAA CAT ACA CCC-3’5’-CTC CCC TGC TCA TTG CTA TG-3’N1 AN1-F550AN1-R11645’-TTG CTT GGT CAG CAA GTG C-3’5’-CAG TCA CAC CAT TTG GA TCC-3’H7 H7HA-F245H7HA-R4285’-CCC AAT GTG AYC AAT TCC T-3’5’-GCT CCA TTR GTT CTT ATT CC-3’N7 N7-F1126N7-R14075’-ATG YTG AAR ATA CCT AAT GC-3’5’-GTA TTN GAT YTG TGC CCC ATC-3’H9 H9HA-F426H9HA-R8085’-GAA TCC AGA TCT TTC CAG AC-3’5’-CCA TAC CAT GGG GCA ATT AG-3’N2AN2-F1121AN2-R14015’-CGC TAC GGT TAT GAG ACT TTC AG-3’5’-ATA TTC GCC CCA TCA GGC CAT GAG-3’ 7．Axygen 1.5mL离心管，货号：MCT-150-C8．Axygen 0.2mL PCR管，货号：PCR-02-C9．Axygen 10μL，100μL，200μL，1000μL带滤芯枪头10．BIOHIT 10μL，100μL，200μL，1000μL加样器11．可调转速14K离心机：Eppendorf 5417R12．旋涡混合器：QL-901（国产）13．生物安全柜：LABCONCO（CLASS11）14．PCR仪：Biometra15．琼脂糖：Biowest Agarose Distributed by Gene Tech（Shanghai）Company Limited Lot No. 10168516．核酸染料：Gold View，北京赛百盛基因技术有限公司，cat# HGV－1。
流感病毒分离标准操作规程
流感病毒分离标准操作规程(SOP)病毒分离分离病毒是诊断病毒性疾病最常用,并且高度敏感的方法之一。
分离出的病毒须经免疫学、基因分析或电子显微镜等进一步鉴定确诊。
病毒可长期保存,亦可用来作抗原性、基因特性或药物敏感性等分析。
病毒分离亦受一定限制。
目前用于分离病毒的组织细胞种类有限,每种细胞只能用来分离培养一或数种病毒。
MDCK(狗肾细胞)是目前用于分离培养流感病毒最常用的细胞系。
分离流感病毒最常用的活体是鸡胚,目前有些实验室用MDCK细胞代替鸡胚分离培养流感病毒。
由于MDCK细胞属肿瘤细胞系,故用该细胞分离的病毒不能用于疫苗生产。
各实验室应同时采用鸡胚和MDCK两种方法分离病毒,不应放弃用鸡胚分离病毒的方法。
流感病毒细胞分离标准操作规程材料:1、细胞瓶或细胞管培养成片的MDCK细胞2、TPCK处理胰酶(牛胰腺来源XIII型)Sigma Cat. # T-86423、HEPES 缓冲液, 1 M 母液GIBCO BRL Cat. # 15630-0234、D-MEM培养基,GIBCO BRL Cat. # 11965-0925、青、链霉素母液(10,000 U/ml 青霉素G; 10,000 μg/ml 硫酸链霉素) ,GIBCO BRL Cat. # 15140-0236、牛血清白蛋白组分V, 7.5%溶液,GIBCO BRL Cat. # 15260-0117、放置于2ml wheaton 小瓶中的临床样品8、T-25培养瓶用于病毒培养,(组织培养管也可被应用,若样本量大的话应选用培养瓶,细胞数量按规定调整。
)9、1ml 滴管10、10ml 滴管培养基和试剂的准备:(建议:要求经常检查试剂使用的有效期)500 ml D-MEM液中加入:青、链霉素母液5 ml (终浓度达: 100 U/ml 青霉素and 100 μg/ml 链霉素) 牛血清白蛋白12.5 ml (终浓度: 0.2 %)HEPES缓冲液12.5 ml (终浓度: 25 mM)病毒生长液:每500毫升不含血清的D-MEM液之中加0.5 ml of TPCK-胰酶(母液浓度为2mg/ml )使TPCK-胰酶的浓度为2 μg/ml。
国家流感中心标准操作规程
1%鸡红细胞悬液制备 ...................................................................................................63 1%豚鼠红细胞悬液制备 ...............................................................................................67 1%马红细胞悬液制备 ...................................................................................................71 受体破坏酶制备.............................................................................................................75 血清处理.........................................................................................................................79 流感/禽流感病毒红细胞凝集试验................................................................................83 红细胞凝集抑制试验鉴定流感/禽流感病毒方法 ........................................................ 85 流感病毒神经氨酸酶活性试验及其活性抑制试验 .....................................................91 禽流感 H5N1 病毒感染间接免疫荧光检测技术 .........................................................97
流感病毒的分离鉴定(二)
0.2
弃0.2
病毒稀释度 1:20 1:40 1:80 1:160 1:320 1:640 1:1280 1:2560 1:5120 对
照
0.5%鸡红细胞 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2
0.2
0.2
摇匀置室温60～90分钟
结果
++++ ++++ ++++ +++ ++ ++
▪ 目的：熟悉病毒血凝、血凝抑制试验的方法及其应用。
▪ 原理：流感病毒颗粒表面有血凝素,具有使鸡、豚鼠 等血细胞凝集的能力。把一定浓度的鸡红细胞加到待 检的鸡胚尿囊液或羊水中，如出现血细胞凝集现象， 即表示有病毒存在；如血凝阳性，则可进一步用血凝 抑制试验进行病毒鉴定，流感病毒的血凝性，可被免 疫血清中的特异性抗体所抑制，使其失去凝集作用， 借此可用已知抗体鉴定未知病毒及病毒的型、亚型。
(5)稀释完毕后加人体积分数为0．5％的压积鸡红 细胞悬液，每管0．2mL,室温放置30~60mn。
流感病毒血凝试验
试管号
12 3 4 5
67
8
9
10
生理盐水 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2
0.2
0.2
病毒液 (1:10) 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2
边缘不整齐。
“+++”：大部分红细胞凝集，在管底铺成薄膜状，但尚有少数红细胞不
凝，在管底中心形成小红点。
“++”：约有半数红细胞凝集，在管底铺成薄膜，面积较小，不
流感病毒的分离技术操作规范
流感病毒的分离技术操作规范病毒分离培养是流感样病例病原学监测的基础，是流感病毒检测最常用和最可靠的方法之一。
目前多采用鸡胚和MDCK细胞进行流感病毒分离。
通过鸡胚分离的流感毒株与原始标本的抗原性和基因特性可能会有所不同，而通过MDCK细胞所分离的流感病毒与原始标本相似。
另外由于“O”相毒株的重现，MDCK细胞对“O”相毒株的敏感性远高于鸡胚，所以MDCK细胞已成为流感病毒分离不可缺少的一种宿主系统。
但是目前全球主要使用鸡胚进行流感疫苗生产，MDCK分离的病毒在很多国家尚未批准用于疫苗生产，因此鸡胚分离仍然发挥着举足轻重的作用。
具备流感病毒分离能力的流感监测网络实验室收到哨点医院的常规监测标本后，要求利用状态良好的MDCK 细胞和（或）鸡胚进行病毒分离。
若同时进行MDCK细胞和鸡胚分离，为减少工作量，可先用MDCK细胞对原始标本进行筛选，MDCK细胞病毒分离结果为阳性后，再将另外一份-70℃或以下温度保存的原始标本进行鸡胚双腔接种（羊膜腔和尿囊腔），进行病毒分离。
（一）实验室生物安全级别和生物安全规定1. 流感病毒分离实验室生物安全级别：季节性流感病毒和2009甲型H1N1流感病毒生物安全二级；高致病性禽流感病毒生物安全三级。
2. 流感病毒分离实验室生物安全规定应当遵守生物安全实验室的有关生物安全的规定。
（二）流感病毒的细胞分离标准操作规程（所列试剂生产厂家及货号仅供参考）1. 试验材料（1）刚75-90％成片的MDCK细胞，T-25细胞瓶（2）TPCK处理胰酶（牛胰腺来源Ⅷ型）（SIGMA T8802）（3）HEPES缓冲液,1M母液（4）D-MEM培养基（高糖，含有L-谷氨酰胺），Hank's 液（5）青、链霉素母液(10,000U/mL青霉素G，10,000µg/mL硫酸链霉素)（6）牛血清白蛋白组分Ⅴ，7.5%溶液（GIBCO Cat No 15260）（7）处理好的临床标本0.5mL（标本处理参见附件1第一部分）（8）无菌移液管：1mL和10mL2. 培养基和试剂的准备（建议：经常检查试剂的有效期）（1）500mLD-MEM液中加入：a) 青、链霉素母液5mL(终浓度达：100U/mL青霉素和100µg/mL链霉素)b) 牛血清白蛋白组分V12.5mL(终浓度:0.25％)c) H EPES缓冲液12.5mL(终浓度:25mM)d) 加入7.5%NaHCO310-15mL（终浓度：2-3%)（2）病毒生长液：再向上述培养液中每500mL加入0.5mL的TPCK-胰酶（母液浓度为2mg/mL）使TPCK-胰酶的浓度为2µg/mL。
标准操作规程(SOP)——病毒 EID50测定
标准操作规程（SOP）——一、目的本SOP明确了流感病毒鸡胚半数感染剂量（EID50，50% egg infections dose）的标准测定方法，保证实验结果的准确可靠。
病毒EID50作为标定病毒的感染能力及病毒滴度的指标在病毒学研究中广泛应用。
二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员测定病毒EID50。
三、程序（一）生物安全要求H5、H7亚型高致病性禽流感病毒及H2N2亚型流感病毒的操作需要在BSL-3级实验室中进行。
其余流感病毒的操作需要在BSL-2级实验室中进行。
操作人员的生物安全防护要求详见流感中心“生物安全个人防护SOP”（二）材料9-11日龄鸡胚，病毒储存液，无菌PBS液（pH7.2），检卵灯，开卵器，卵盘，70%～75％酒精，一次性注射器，蜡或胶水，10mL试管和试管架，10mL 移液管，无菌镊子。
（三）实验步骤1．验卵：用照卵灯检测鸡胚，标记出鸡胚的气室与尿囊的界限、胚胎的位置。
弃去不合格鸡胚。
2．将病毒储存液用PBS溶液进行系列10倍稀释，如：10-1 ~10-11。
3．接种鸡胚：用70%～75％酒精消毒鸡胚，在气室端钻孔，开10×6mm裂口。
每枚鸡胚接种0.1mL稀释液，每个稀释度需要接种4枚鸡胚。
将针头弃于合适的生物安全装置中。
用消毒过的医用胶布封口。
4．35℃或37℃温箱（哺乳动物流感病毒35℃培养），A型流感病毒鸡胚培养48h，B型流感病毒培养72h。
每天检查鸡胚生长情况，24h内死亡的鸡胚，认为是非特异死亡应弃去。
5．收获病毒尿囊液进行红细胞凝集（HA）滴定，具体方法见“流感/禽流感病毒红细胞凝集滴度测定SOP”。
6．结果判定根据Reed-Muench方法（Burleson et al., 1992, Reed and Muench, 1938）距离比例=（大于50%的阳性百分比－50）/（大于50%的阳性百分比－小于50%的阳性百分比）EID50的对数=大于50%的阳性百分比的最高稀释对数 + 距离比例×稀释系数的对数举例：如大于50﹪的阳性百分比最高稀释度是 10-6, log稀释值就是-6如果以10倍稀释 (10-1)，那么稀释系数为-166.7%-50%= 0.366.7%-14.3%(-6)+0.3 ×(-1.0) = -6.3那么，EID50 = 10-6.3106.3 EID50 0.1 mL-110 ×106.3 EID50 mL-1 = 107.3 EID50 mL-1。
流感病毒的鸡胚培养,收获及血凝效价测定实验报告
篇一：鸡胚培养法鸡胚培养法（病毒分离培养）鸡胚是发育的机体，适合许多人类和动物病毒及立克次体的生长增值，常用于痘类病毒、粘液病毒、和疱疹病毒的分离、鉴定、抗原准备、疫苗生产以及病毒性质等方面的研究。
鸡胚培养病毒，常用的接种途径包括绒毛尿囊膜，尿囊腔、羊膜腔以及卵黄囊接种四种。
根据不同病毒，不同实验目的以及不同来源的标本，选择不同的途径接种鸡胚进行培养，即可达到分离培养病毒和传代病毒的目的。
本片主要介绍尿囊腔和羊膜腔两种接种途径在病毒分离培养和传代中的应用。
鸡胚的接种方法、孵育及收获一、仪器和器材spf鸡卵或鸡胚、二级生物安全柜、孵卵箱或恒温箱、检卵灯、照蛋灯、开卵钻、卵盘、1ml、1次注射器、医用胶布、液体石蜡、无菌镊子、巴氏吸管、15 ml无菌离心管、试管架、96孔微量反应板、加样槽、移液器、75%酒精、生理盐水等。
二、鸡胚的孵育应选择保存温度在100左右，时间不超过10天，卵壳薄而色浅的鸡卵，用于鸡胚的孵育。
特别脏的鸡卵需用清水清洗，用布擦干后孵育，干净的鸡卵不必做任何处理。
将鸡卵置于380c---390c孵卵箱，在孵卵箱底层盛水器中放入干净自来水，以保证鸡胚发育的湿度，病保持良好的通风，孵育至第四天，于检卵灯上检查鸡胚受精与否及发育情况。
受精鸡卵可见清晰地血管小团和发育的鸡胚迹象，似蜘蛛壮，未受精鸡卵仅能看见模糊的卵黄黑影，无鸡胚迹象。
在孵育过程中，应随时对鸡胚进行检查，淘汰濒死或已经死亡的鸡胚。
若在恒温箱里孵育鸡胚，则应在恒温箱底层放入装满水的广口容器，并从孵育的第3天起，每天180度转到鸡胚1—2次，是鸡胚发育匀称。
也可直接订购孵育9—11日龄的鸡胚。
如何判断鸡胚存活状态：1胎动：于检卵灯下可见活胎有明显的自然运动，但胎龄大于14天的胚胎，胎动不明显，甚至无胎动，死胎则无任何胎动，胎发红似出血样，有的呈现黑快。
2血管：活胚可见清晰地血管，卵壳较薄者还可见血管的搏动。
死胎血管模糊，成淤血带或淤血块。
标准操作规程(SOP)——流感禽流感灭活抗原的制备和纯化
该文件用以说明流感、禽流感灭活抗原的制备和纯化的操作规范。
流感/禽流感灭活抗原是为国家流感中心、全国各网络实验室提供季节性流感以及禽流感疫情监测用的参比抗原，该操作规范确保参比抗原的质量得到有效控制，保证参比抗原不被污染和污染环境。
二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行流感/禽流感灭活抗原的制备和纯化。
三、程序（一）生物安全要求H5，H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的操作需要在生物安全3级（BSL-3）实验室中进行。
其余流感病毒的操作需要在生物安全2级（BSL-2级）实验室中进行。
操作人员必须严格按照相应实验室的要求做好个人防护。
（二）材料1．鸡胚：9-10日龄SPF 鸡胚试剂：多聚甲醛，β-丙内酯（取 2 g 于100mL 冰浴过的双蒸水中），7.5%BSA ，7%的Na 2HCO 3，0.5M 磷酸氢二钠缓冲液，无菌PBS 100mmol/L ，pH 7.2~7.4，浓度分别为60%和30%的灭菌蔗糖溶液，75% 酒精，蔗糖，T75细胞瓶。
2．仪器：照卵灯，鸡卵开孔器， 天平，超速离心机，离心管等。
（三）实验步骤1．病毒制备（见流感病毒的鸡胚分离方法SOP ）2．灭活抗原一、目的标准操作规程（SOP ）——（1）禽流感病毒的灭活1）根据鸡胚尿囊腔内收获的量，用移液管吸取多聚甲醛，加入收获的病毒液内，使多聚甲醛的终浓度为1‰。
2）加入多聚甲醛后，立刻充分混匀，并置4ºC放置48h。
3）48h后，将多聚甲醛作用过的病毒液接种9日龄鸡胚进行三次安检盲传，每一种灭活抗原每次安检需接种3~4枚鸡胚（鸡胚接种见鸡胚分离流感病毒SOP）。
4）盲传后收集的鸡胚尿囊液，取部分做HA试验，如果结果为阴性则为灭活安检合格。
5）按此共进行三次安检盲传，如果三次检测均为阴性，则灭活成功，方可安全拿出生物安全三级实验室（BSL-3），供相关实验所需；如果未达到三次安检均合格，则需要再次进行灭活，直至安检合格为止。
【医学实验】禽流感病毒的鸡胚培养法 PPT课件
4. 温度、反应时间、反应体系对血凝试验的结果影 响都很大。温度过高病毒毒力过强会出现溶血， 不利于判定。反应的时间不能太长，对照孔出现 沉淀就可以判定。
思考问题
加病毒液和红细胞悬液时为什么要反向加？ 血凝试验设置空白对照的意义？ 病毒悬液为什么采取倍比稀释而不是更高倍 数如十倍比稀释？
鸡胚原代细胞培养及流感病毒感染细胞的红细胞吸附
鸡胚的结构与生理
鸡胚由三个胚层发育而来，即外胚层，中胚 层和内胚层，它们构成了胚胎的组织与器官
鸡 胚培养的病毒接种
（一）活胚检查
1.血管 2.胎动 3.绒毛尿囊膜
（二）实验材料
鸡受精卵, 照蛋灯, 打孔器或剪刀, 蛋盘, 无菌注 射器和针头, 消毒酒精, 酒精灯, 石腊 病毒毒种用生理盐水稀释备用
1. 第1孔加入0.4ml尿囊液，第2孔加入0.1ml 尿囊液。
2. 吸取0.9ml生理盐水于血凝板第2孔，从第 3孔至第10孔每孔各加生理盐水0.4ml。
3. 反复吹打3～4次第2孔，从混匀的第2孔中 丢弃0.2ml，吸取0.4ml至第3孔混匀，再 吸0.4ml至第4孔，依次稀释到第9孔，第9 孔经稀释吹打后吸出0.4ml，
6）将烧杯中的细胞平均分配于5个25ml细胞瓶中， 补充1640培养基至3ml，置37 ℃培养
7）培养24小时后观察细胞的生长情况并描述细胞形 态。
原代细胞的培养与维持
1) 充分漂洗; 2) 起始的2天中尽量减少振荡; 3) 分离繁殖或测定病毒之用，细胞浓度可以加大，
尽量贴壁形成厚层； 4) 待细胞基本贴壁伸展并逐渐形成网状，此时的pH
（四）收获病毒
鸡胚为活的有机体，因此要严格无菌操作， 同时动作要仔细，以免造成物理死亡。接种 后24小时内死亡应不计结果。
标准操作规程(SOP)——红细胞凝集抑制试验鉴定流感禽流感病毒方法
本SOP 是为了规范红细胞凝集抑制试验（HI ，hemagglutination inhibition test ）的操作规程，确保试验质量而制定。
二、范围适用于中国国家流感中心所有技术人员进行红细胞凝集抑制试验，鉴定流感/禽流感病毒。
三、程序（一）生物安全要求季节性流感病毒及经完全灭活的高致病禽流感病毒和H2N2流感病毒操作可以在BSL-2实验室里进行，操作人员采取BSL-2级防护。
禽流感H5、H7亚型高致病性禽流感病毒及H2N2亚型流感病毒的操作需要在BSL-3级实验室中进行，操作人员采取BSL-3级防护。
具体防护参见“流感中心生物安全个人防护SOP ”。
（二）材料1．流感病毒参比抗原及参比抗血清2．待检病毒3．1%红细胞悬液（鸡、豚鼠红细胞，由于“O ”相毒株不能凝集鸡红细胞，所以在对该种病毒进行鉴定时应使用豚鼠红细胞）4．磷酸缓冲液（PBS ），0.01M ，pH 7.4 (Sigma P 3813)5．多道及单道可调加样器单通道可调加样器量程为 20μL ～200μL 、200μL ～1000μL8通道或12道可调加样器量程为 20μL ～200μL6．96孔微量板：鸡红细胞选择“V ”型或“U ”型底微量板；豚鼠红细胞选一、目的标准操作规程（SOP ）——试验鉴定流感/择“U”型底微量板。
7．其它耗材，200μL、1000μL滴头、试管、加样槽等。
（三）实验步骤1．试验前准备（1）PBS配制：按照Sigma的说明书的要求配制PBS缓冲液。
121℃高压灭菌20min，分装，4℃储存。
（2）1%红细胞悬液：按照“1%鸡红细胞悬液配制SOP、1%豚鼠红细胞悬液配制SOP”配制红细胞悬液。
（3）制备用于红细胞凝集抑制试验的4个红细胞凝集单位的抗原1）一个红细胞凝集单位指能引起等量标准化的红细胞凝集时病毒的量。
进行红细胞凝集抑制试验时一般用4个红细胞凝集单位（指25μL体积中含有4个红细胞凝集单位）的病毒量。
标准操作规程(SOP)——流感禽流感病毒鸡抗血清制备
一、目的本文件用以说明流感、禽流感灭活病毒免疫的鸡抗血清制备的操作规范和相关技术要求，以确保利用流感、禽流感灭活病毒免疫动物后能够得到较高质量的抗体血清，该血清能被用于制备流感、禽流感病毒的标准检测血清。
同时避免在操作过程中发生流感、禽流感暴露。
二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行流感、禽流感病毒免疫的鸡抗血清的制备。
三、程序（一）生物安全要求H5，H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的动物处死和处置操作需要在动物生物安全三级实验室（ABSL-3）进行。
其它动物处死和处置操作需要在动物生物安全二级实验室（ABSL-2）中进行。
（二）材料1．8周龄SPF 雄性来亨鸡2．灭活的病毒抗原：流感病毒采用当年的国内流行株，包括A （H1N1）亚型代表毒株参比抗原、A （H3N2）亚型代表毒株参比抗原、B 型Yamagata 系代表毒株参比抗原、B 型Victoria 系代表毒株参比抗原；禽流感病毒采用已分离到的毒株。
3．弗氏佐剂4．1%鸡红细胞悬液，配制见《1%鸡红细胞悬液制备SOP 》5．受体破坏酶（RDE ）6．无菌500mL 三角瓶7．细胞冻存管标准操作规程（SOP ）——抗血清制备8．红细胞凝集板9．1mL或2mL注射器、5mL注射器及60mL注射器10．医用酒精棉及干棉球11．5mL血清分离管（BD）（三）实验步骤1．制备免疫用抗原：见《流感/禽流感灭活抗原的制备和纯化SOP》。
2．免疫前试血：（1）操作者进入实验室前，需将所带实验器具用75%的酒精消毒处理，然后放入传递窗，并打开紫外线进行照射。
（2）进入缓冲间后，换上专用的工作服，戴上口罩和手套后方可进入实验区。
（3）从传递窗中取出所带实验器具，放置操作台上。
（4）操作者在助手的协助下将实验鸡从隔离器中取出并固定在操作台上。
（5）助手将鸡翅膀展开，即可见到明显的翅静脉，此静脉是由翼尖进入翼根部的一条较粗静脉。
用碘酒或医用酒精消毒表皮。
标准操作规程(SOP)——高致病性禽流感毒种接收、保存与使用
中国疾病预防控制中心病毒病预防控制所
毒株接收函（存根）
送交单位
接收单位
中国疾病预防控制中心病毒病预防控制所流感室
送交时间
毒株类型及 数量
样品送检 单
□有 □无
保存状态
℃或 运输盒内冰袋： □ 有 如有，请描述状态：
□无
运输方法
送交人签字： 接收人签字：
年月 日
中国疾病预防控制中心病毒病预防控制所
编号：
编号
课题负责人 （签字）
年月 日
研 究 室 意 见
主任（签字）： 年月日
流感室（国家流感中心） 禽流感毒株领取登记表
申请单位：
课题或任务来源：
毒种名称 及编号
毒种单位 及数量
经手人
1.
（签字） 2.
申请日期： 年 月 日
编号：
申请登记表编号：
领取人
1.
（签字） 2.
领取时间： 年 月 日
经手时间： 年 月 日
收获日期
毒株数量 毒株送交人 接收人 接收日期
流感室（国家流感中心） 禽流感毒株保存登记表
编号
名称
来源 危险类别 传代史 收获时间 毒株数量 保存地点
保存日期
毒株保存人
流感室（国家流感中心） 禽流感毒株申请使用情况登记表
申请单位：
毒株名称 课题（项目）名称或
任务来源 用途
计划使用时间
使用人
申请日期： 年 月 日
同时填写记录并报告相关领导。 4）核对毒株与送检单。 5）详细记录毒株收到的状态和毒株核对情况，填写禽流感毒株接收登记 表。 （2）国家流感中心毒株的接收
经红细胞凝集和 RT-PCR 双项鉴定均为阳性的分离毒株由毒株分离 人员将毒株交与毒株保存人员，并填写禽流感毒株接收登记表。 2．毒株保存方法
标准操作规程（SOP）——蔗糖密度梯度离心纯化流感病毒
标准操作规程（SOP）——一、目的流感病毒的浓缩和纯化方式可以分为物理和化学的方法。
如：超速离心法，酸沉淀法，红细胞吸附-释放法，蒸馏水透析法及聚乙二醇浓缩法等。
其中超速离心法最为常用并且纯度较高。
本SOP明确流感病毒蔗糖密度梯度离心纯化的标准操作方法，保证了实验结果的职能却可靠。
二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行蔗糖密度梯度离心纯化流感病毒。
三、程序（一）生物安全要求H5、H7亚型高致病性禽流感病毒及H2N2亚型流感病毒的操作需要在BSL-3级实验室中进行。
其余流感病毒的操作需要在BSL-2级实验室中进行。
操作人员的生物安全防护要求详见流感中心“生物安全个人防护SOP”（二）材料1．病毒液2．PBS（100mmol/L pH7.2）液3．30%和60%蔗糖溶液4．耗材（注射器，离心管，吸管，实验滤纸）（三）实验步骤1．将待纯化的流感病毒种子株接种鸡胚或者MDCK细胞，收获病毒尿囊液。
具体接种方法参见“流感病毒的鸡胚分离方法SOP”和“MDCK细胞分离流感病毒SOP”。
2．将流感病毒收获的鸡胚尿囊液使用实验滤纸粗滤，以去除蛋壳或者其它沉淀物。
MDCK细胞培养的病毒收获液可以省略此步骤。
3．收集过滤液，使用SIGMA3K18 高速离心及2000rpm离心20min，去沉渣。
4．将上清使用OptimaTM L-80XP 超速离心机30000rpm的转速离心1h，去上清。
加入100mmol/L pH7.2的PBS液数滴浸泡沉淀，置4℃冰箱过夜。
5．制备蔗糖梯度管，用10mL吸管加5mL的60%的蔗糖溶液于管底，在其上小心加入10mL的30%的蔗糖溶液。
在其上缓慢加入20mL病毒悬液。
6．使用OptimaTM L-80XP 超速离心机20000rpm的转速离心1.5h，取出离心管。
使用注射器小心吸取位于30%和60%之间的靠近管底的病毒条带。
7．于所收获的液体加入5倍体积的PBS液，混匀后30000rpm的转速离心1h，去上清。
标准操作规程(SOP)——流感毒株的复苏
标准操作规程（SOP）——
一、目的
本SOP是为了规范流感干燥毒株的复苏、确保毒株复苏的质量而制定。
二、范围
适用于中国国际流感中心所有技术人员进行流感毒株的复苏。
三、程序
（一）生物安全要求
季节性流感毒株的复苏在BSL-2级实验室里操作，采取生物安全二级个人防护。
高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的操作需要在BSL-3级实验室中进行，采取生物安全三级防护，具体防护参见“流感中心生物安全个人防护SOP”。
（二）材料
磷酸缓冲液（PBS），0.01M，pH 7.4 (Sigma P 3813)，9日龄SPF鸡胚或70－90%成片的MDCK细胞，干燥保存毒株，1mL注射器及200μL待滤芯移液器头等耗材。
（三）实验步骤
1．试验操作人员进入实验室按照规定进行相应级别的个人防护。
2．PBS配制：按照Sigma的说明书的要求配制PBS缓冲液。
121℃高压灭菌15min，分装，4℃储存。
3．对于鸡胚来源的干燥保存毒株，采用鸡胚复苏；MDCK来源的干燥毒株采用MDCK细胞复苏。
4．在生物安全规内打开干燥毒株保存管，用1.8mL PBS充分使其溶解。
5．将溶解物200µL分别接种9日龄鸡胚4枚或MDCK细胞（见MDCK细胞病毒分离SOP）。
6．48h后收获鸡胚尿囊液，采用HA试验检测培养物的HA滴度。
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一、目的
流感病毒的鸡胚分离方法是流感病毒分离方法之一，常用于流感病毒的分离、培养。
本SOP 是为确保鸡胚分离流感病毒的操作准确、规范和可靠而制定。
二、范围
适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行流感病毒的鸡胚分离。
三、程序
（一）生物安全要求
H5,H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的鸡胚分离实验室生物安全级别：BSL-3。
实验操作人员需进行BSL-3防护，具体详见“生物安全个人防护SOP ”。
H5,H7亚型高致病性禽流感病毒，H2N2亚型流感病毒的鸡胚接种和病毒培养液的收获操作必须在BSL-3级实验室的生物安全柜中进行。
其余流感病毒的鸡胚分离实验室生物安全级别：BSL-2。
实验操作人员需进行BSL-2防护，具体详见“生物安全个人防护SOP ”。
其余流感病毒的鸡胚接种和病毒培养液的收获操作必须在BSL-2级实验室的生物安全柜中进行。
（二）材料
1．9～11日龄SPF 鸡胚
2．照卵灯
3．70%～75％酒精
4．一次性注射器
5．鸡蛋开孔器
6．蜡或医用胶布
7．液体石蜡
8．15mL 无菌离心管、试管架
标准操作规程（SOP ）——分离方法
9．10mL无菌移液管
10．无菌镊子。
（三）实验步骤
1．验卵
（1）用照卵灯检测鸡胚，标记出鸡胚的气室与尿囊的界限、胚胎的位置。
（2）如果鸡胚是死胚、没有受精、有裂痕、发育不全或表面有好多渗水孔，应弃掉。
（3）如何判断鸡胚状态
1）血管：活胚血管清晰，死胚模糊，成淤血带或淤血块
2）胎动：活胚有明显的自然运动，死胚无胎动。
3）绒毛尿囊膜发育界限：密布血管的绒毛尿囊膜与鸡胚胎的另一面形成明显的界限。
2．鸡胚接种
（1）将鸡胚的气室朝上放置在蛋盘上，标记每个鸡胚，通常每个样本接种3个鸡胚。
（2）用70%～75％酒精消毒鸡胚，在气室端钻孔，开10×6mm裂口。
（3）用注射器吸200µL处理过的临床标本，装上16号针头。
（4）从裂口中滴入无菌的液体石蜡，然后轻轻晃动鸡胚，让液体石蜡在鸡胚壳膜内层（脏层）铺开，此时在照卵灯下即可清楚的看到鸡胚胎的位
置。
将注射针头刺入胚胎的鄂下胸前，用针头轻轻拨动下颚及腿，当进
入羊膜腔时，能看到鸡胚随着针头的拨动而动，即可注射100µL临床标
本。
将针头退出至1/2寸，将另外100 µL临床标本注入鸡胚尿囊腔。
（5）用同一注射器将同一标本依上法接种另外的两枚鸡胚。
（6）用注射器反复吸取2‰次氯酸钠消毒液2~3次后，将针头放于毁形器中销毁，注射器针筒弃于锐器桶中。
（7）用蜡或者消毒过的医用胶布封口。
（8）35℃或37℃温箱（哺乳动物流感病毒35℃培养）培养鸡胚2～3天。
鸡胚进行病毒分离培养时，每天检查鸡胚生长情况，24h内死亡的鸡胚，认为是非特异死亡应弃去。