标本的采集与运输ppt课件
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检验标本采集与运送PPT课件
黄色
3.8％枸橼酸钠 2ml
EDTA—K2 2ml
肝素钠
3ml
3.8％枸橼酸钠 2ml
无抗凝剂
4ml
无抗凝剂
4ml
凝血检查
血常规、血型 血液流变学
血沉
生化类、PCR定 量等 免疫类
条码的使用
条码统一张贴样式: 名字向上、管盖平行、张贴平整、打印清楚、一管一码
条码的使用
条码统一张贴样式:尿液、大便、分泌物、CSF、血沉等条码统一张贴在医 技单，血气分析张贴在外包装管体；
条码的使用
错误张贴条码引发的标本不合格、作废条码应重新打印
痰标本
❖ 痰液常规+找真菌 ❖ 痰找抗酸杆菌（抗酸染色） ❖ 痰革兰氏染色 ❖ 痰细胞学检查 ❖ 痰细菌培养+真菌培养+药敏分析 ❖ 痰结核杆菌DNA检测
痰标本采集
能自理的患者：
—晨起后用清水漱口 —以清晨第一口痰为宜 —深吸气后用力咳出气管深处的痰液 —不可混入漱口液、唾液、鼻涕等
无法咳痰或不合作者：
—用吸痰法收集（集痰器）
痰标本采集注意事项
1、如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或用 10%甲醛固定后送检；
2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中；
标本采集的原则
❖ 遵照医嘱： ❖ 充分准备：患者准备、用物准备、护士自身
准备 ❖ 严格查对：检查项目、患者姓名、床号、住
院号等（查对制度） ❖ 正确采集：方法、时间、量、容器（标本采
集手册） ❖ 及时送检：
注：
❖ 明确检验项目、检验目的及注意事项； ❖ 标本的容器贴好条码（唯一标识），附上申
请单：患者的姓名、科室、床号、住院号、 送检目的、送检日期和时间等,详细进行“查 对制度”； ❖ 每次采集血标本时应做到“三个一”：一患 者、一化验单、一容器
3.8％枸橼酸钠 2ml
EDTA—K2 2ml
肝素钠
3ml
3.8％枸橼酸钠 2ml
无抗凝剂
4ml
无抗凝剂
4ml
凝血检查
血常规、血型 血液流变学
血沉
生化类、PCR定 量等 免疫类
条码的使用
条码统一张贴样式: 名字向上、管盖平行、张贴平整、打印清楚、一管一码
条码的使用
条码统一张贴样式:尿液、大便、分泌物、CSF、血沉等条码统一张贴在医 技单，血气分析张贴在外包装管体；
条码的使用
错误张贴条码引发的标本不合格、作废条码应重新打印
痰标本
❖ 痰液常规+找真菌 ❖ 痰找抗酸杆菌（抗酸染色） ❖ 痰革兰氏染色 ❖ 痰细胞学检查 ❖ 痰细菌培养+真菌培养+药敏分析 ❖ 痰结核杆菌DNA检测
痰标本采集
能自理的患者：
—晨起后用清水漱口 —以清晨第一口痰为宜 —深吸气后用力咳出气管深处的痰液 —不可混入漱口液、唾液、鼻涕等
无法咳痰或不合作者：
—用吸痰法收集（集痰器）
痰标本采集注意事项
1、如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或用 10%甲醛固定后送检；
2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中；
标本采集的原则
❖ 遵照医嘱： ❖ 充分准备：患者准备、用物准备、护士自身
准备 ❖ 严格查对：检查项目、患者姓名、床号、住
院号等（查对制度） ❖ 正确采集：方法、时间、量、容器（标本采
集手册） ❖ 及时送检：
注：
❖ 明确检验项目、检验目的及注意事项； ❖ 标本的容器贴好条码（唯一标识），附上申
请单：患者的姓名、科室、床号、住院号、 送检目的、送检日期和时间等,详细进行“查 对制度”； ❖ 每次采集血标本时应做到“三个一”：一患 者、一化验单、一容器
临床微生物标本采集与运送课件
留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集，不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。
采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过30分钟；将注射器针头插入采样
端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
•
收集中段尿液5-10ml，及时送检。
室温保存下不得超过2小时，否则应置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖，因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏，
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征：
•
•
•
•
•
•
•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养：
1.粪便涂片白细胞>5个/HP；
2.体温>38℃;
3.重症腹泻；
4.脓血便；
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人；
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
•
•
•
•
•
采集：
按脊椎穿刺操作规程，采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中，每支试管至少1-2ml，然后马
上将第2支（或第1支）送至实验室。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送：
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
应该采多少血量？
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml，共20ml；要求至少采两份标本，即
采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过30分钟；将注射器针头插入采样
端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
•
收集中段尿液5-10ml，及时送检。
室温保存下不得超过2小时，否则应置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖，因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏，
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征：
•
•
•
•
•
•
•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养：
1.粪便涂片白细胞>5个/HP；
2.体温>38℃;
3.重症腹泻；
4.脓血便；
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人；
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
•
•
•
•
•
采集：
按脊椎穿刺操作规程，采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中，每支试管至少1-2ml，然后马
上将第2支（或第1支）送至实验室。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送：
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
应该采多少血量？
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml，共20ml；要求至少采两份标本，即
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
4
采集原则与要求
01
02
03
04
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则，避免污染标本。
正确选择采集部位
根据不同感染类型选择相应的 采集部位，如呼吸道、泌尿道
、伤口等。
采集足量标本
确保采集到足够数量的微生物 ，以满足后续实验需求。
及时送检
标本采集后应尽快送至实验室 进行检测，避免延误诊断和治
疗。
确保采集顺利进行。
PART 02
微生物标本采集方法
REPORTING
2024/1/28
7
空气微生物采集
采样时间选择
通常在清洁后和消毒前进 行空气采样，避免人为因 素干扰。
2024/1/28
采样高度
距离地面1.5米左右的高度 进行采样，以反映室内空 气污染情况。
采样方法
使用空气微生物采样器， 设置合适的采样流量和时 间，进行空气微生物的收 集。
2024/1/28
5
采集前准备工作
了解患者病情
熟悉患者病史、症状、 体征等，以便选择合适
的采集部位和方法。
2024/1/28
准备采集用品
根据采集部位和需要准 备相应的采集用品，如 无菌棉签、试管、培养
基等。
消毒处理
与患者沟通
对患者采集部位及周围 皮肤进行消毒处理，减
少污染可能性。
6
向患者解释采集目的和 过程，取得患者配合，
标本处理
标本保存
根据标本类型选择合适的处理方法，如涂 片、培养、药敏试验等。
按照相关规定妥善保存标本，确保标本在有 效期内可用于复检或质量控制。
2024/1/28
17
常用检测方法介绍
采集原则与要求
01
02
03
04
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则，避免污染标本。
正确选择采集部位
根据不同感染类型选择相应的 采集部位，如呼吸道、泌尿道
、伤口等。
采集足量标本
确保采集到足够数量的微生物 ，以满足后续实验需求。
及时送检
标本采集后应尽快送至实验室 进行检测，避免延误诊断和治
疗。
确保采集顺利进行。
PART 02
微生物标本采集方法
REPORTING
2024/1/28
7
空气微生物采集
采样时间选择
通常在清洁后和消毒前进 行空气采样，避免人为因 素干扰。
2024/1/28
采样高度
距离地面1.5米左右的高度 进行采样，以反映室内空 气污染情况。
采样方法
使用空气微生物采样器， 设置合适的采样流量和时 间，进行空气微生物的收 集。
2024/1/28
5
采集前准备工作
了解患者病情
熟悉患者病史、症状、 体征等，以便选择合适
的采集部位和方法。
2024/1/28
准备采集用品
根据采集部位和需要准 备相应的采集用品，如 无菌棉签、试管、培养
基等。
消毒处理
与患者沟通
对患者采集部位及周围 皮肤进行消毒处理，减
少污染可能性。
6
向患者解释采集目的和 过程，取得患者配合，
标本处理
标本保存
根据标本类型选择合适的处理方法，如涂 片、培养、药敏试验等。
按照相关规定妥善保存标本，确保标本在有 效期内可用于复检或质量控制。
2024/1/28
17
常用检测方法介绍
《标本采集和送检》课件
05 案例分析
案例一：血液标本采集不当引发的误诊
总结词
血液标本采集是临床诊断中常见的检验项目，采集过程中需注意避免交叉感染 、防止溶血等。
详细描述
某患者因发热就诊，医生采集血液标本进行血常规检查，结果提示贫血、白细 胞升高。但重新审视采血过程，发现采血器消毒不彻底，导致交叉感染。最终 诊断为败血症，与初步诊断大相径庭。
粪便标本
粪便标本应保存在适当的 容器中，并避免污染和交 叉污染。在送检前应将粪 便中的水份适当干燥。
04
注意事项与问题处理
采集过程中的注意事项
采集时间
01
需在规定时间内完成采集，确保样本的有效性 。
采集方法
02
按照规定的操作流程进行采集，避免样本被污 染或破坏。
样本标识
03
确保每个样本都有唯一的标识，便于后续识别 和管理。
异常结果的处理与报告异常结果，需进行核 实，确认是否为操作误差或
真实异常。
01
02
根据复检结果撰写报告，详 细说明异常情况及处理建议
。
03
04
复检与确认
如为真实异常，需进行复检 和确认，以保障结果的准确
性。
反馈与改进
将异常结果反馈给相关人员 ，并针对问题进行分析和改
进，提高检测质量。
02
常见标本采集方法
血液标本采集
静脉血液标本采集
从肘静脉或手背静脉采集，常用真空 采血管。
末梢血液标本采集
严格消毒，防止交叉感染；确保采血 量足够；避免溶血和凝血。
动脉血液标本采集
用于血气分析，常用股动脉、肱动脉 或桡动脉。
注意事项
用于快速血糖检测，从手指或耳垂采 集。
尿液标本采集
检验标本的采集及运送ppt课件
4、检验人员：必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时，才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录：保存2年。
5/22/2024
4
四、标本采集方法：
收取检验申请单——审核合格后，检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2：血液标本的运送应由患者（除血交叉标本外） 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全， 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
3
三、检验的申请：
1、临床医生：应完整填写申请单各项内容，字迹必须清楚，包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意：患者的饮食，高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等，都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后，尽快送检验科检测，因为葡萄糖
在空气中，在血细胞的作用下，很容易孝解。 全血标本室温放置1小时，血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时，血糖值下降。10-30%
↓
阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
2
二、采集血液标本的职责：
1：住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件，要求及注意事项（如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等）；医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题，标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等，指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请，适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。
标本采集与运送ppt课件
湖南省肿瘤医院
HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
.
1
主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
.
19
血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂：EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
.
20
血沉管
• 适用于血沉（ESR)检测 • 抗凝剂：柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1：4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖（血脂高患者） – 5.凝血功能（血脂高患者） – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
.
12
标本采集
.
13
明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
.
观察病情
.
21
血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动，采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动，采血前应有10分钟 的休息。采血时，患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
.
7
血液样品采集前患者的准备
HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
.
1
主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
.
19
血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂：EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
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20
血沉管
• 适用于血沉（ESR)检测 • 抗凝剂：柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1：4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖（血脂高患者） – 5.凝血功能（血脂高患者） – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
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12
标本采集
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13
明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
.
观察病情
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21
血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动，采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动，采血前应有10分钟 的休息。采血时，患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
.
7
血液样品采集前患者的准备
2024版标本采集PPT课件
定期对质量管理体系进行内部审 核和外部评审，确保其有效性。
加强人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训， 包括理论知识、操作技能、安全
防护等方面。
定期对标本采集人员进行考核， 评估其操作技能水平和理论知识
掌握程度。
建立奖惩机制，对表现优秀的标 本采集人员给予表彰和奖励，对 操作不规范或造成质量问题的进
穿刺与采血
穿刺静脉，使血液自然流入采 血管。
止血与后处理
用无菌棉球按压穿刺点止血， 嘱患者保持穿刺部位干燥、清
洁。
尿液标本采集
01
02
03
采集前准备
核对患者信息，指导患者 正确留取尿液。
采集方法
留取清晨第一次尿或随机 尿，避免污染。
标本保存与运输
及时送检，避免光照和高 温。
粪便标本采集
采集前准备
保持低温环境
01
对于需要低温保存的标本，要确保在运输过程中维持适当的低
温环境，防止标本变质。
避免剧烈震动
02
在运输过程中要避免剧烈震动和碰撞，以免对标本造成损坏。
防止污染和泄漏
03
要确保容器密封性良好，防止标本在运输过程中发生泄漏或污
染。
到达后接收与登记流程
接收核对
在接收标本时，要仔细核对标本信息、容器完整性以及运输文件 等，确保无误。
生殖道分泌物标本采集
根据不同部位选择合适的采集方法，注意无 菌操作。
04
标本处理与保存
标本处理流程
接收标本
核对患者信息、标本类型及数量， 确保准确无误。
标本前处理
根据检测项目要求，对标本进行 离心、分离血清或血浆等处理。
标本检测
按照实验室标准操作程序进行标 本检测，确保结果准确可靠。
标本的采集和运送PPT课件
标本的采集和运送
正确规范的采集和运送标本， 通过实验室检查，结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中，不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理，立即送往实验 室；对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤：应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物，以碘酒、酒精消毒皮肤， 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿：用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿：以无菌干燥注射器穿刺抽取；疑为厌 氧菌感染者，取脓液后立即排净注射器内空气，针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱，不耐 冷，容易死亡，故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少，宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本：性传播疾病－尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液；生殖道疱疹－穿刺疱疹液；盆腔脓 肿－于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外，所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中，自然凝固、 血块收缩后吸取血清，56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于－20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检，排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率（如霍乱）。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在，对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
正确规范的采集和运送标本， 通过实验室检查，结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中，不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理，立即送往实验 室；对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤：应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物，以碘酒、酒精消毒皮肤， 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿：用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿：以无菌干燥注射器穿刺抽取；疑为厌 氧菌感染者，取脓液后立即排净注射器内空气，针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱，不耐 冷，容易死亡，故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少，宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本：性传播疾病－尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液；生殖道疱疹－穿刺疱疹液；盆腔脓 肿－于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外，所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中，自然凝固、 血块收缩后吸取血清，56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于－20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检，排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率（如霍乱）。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在，对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
新冠病毒标本采集与运输学习培训课件PPT教程(核酸采集工作人员教育培训)
标本的采集
发热
乏力
标本的采集
标本采集和处理
4．粪便标本：取1ml标本处理液，挑取黄豆粒大小的便标本加至管中，轻轻吹吸3～5次 ，室温静置10分钟，以8000rpm离心5分钟，吸取上清液进行检测。
也可使用HANK’S液或其它等渗盐溶液、组织培养液或磷酸盐缓冲液溶解便标本制备 便悬液。如患者出现腹泻症状，则留取粪便标本3～5ml，轻轻吹打混匀后，以8000rpm 离 心5分钟，吸取上清液备用。
发热 乏力 人群筛查应根据核酸提取、检测所用试剂的要求确定采样管，可选择含病毒灭活 剂（胍盐或表面活性剂等）的采样管。用于病毒分离的标本应放置于不含有病毒 灭活剂的采样管
标本的采集
采集标本种类
每个病例必须采集急性期呼吸道标本（包括上呼吸道标本和下呼吸道标本），重症 病例优先采集下呼吸道标本；根据临床需要可留取便标本、全血标本、血清标本和 尿标本。物品和环境标本根据检测需求采集。
病毒标本采集与运输
新
型
冠
状
病
毒
目
contents
录
01 标本的采集 02 标本的包装、保存与运输
壹
标本的采集
标本的采集
采集对象 新冠肺炎病例、可疑感染人员和其他需要进行检测的人员，以及可能被污 染的环境或物品等。
标本的采集
采样人员基本要求 从事新型冠状病毒检测标本采集的技术
人员应经过生物安全培训、监测技术培训 并合格，熟悉标本采集方法，熟练掌握标 本采集操作流程。应严格按照操作流程进 行采样，按要求做好标本信息记录，确保 标本质量符合要求、标本及相关信息可追 溯。
标本的采集
发热
采集要求： 用物准备 1. 采样拭子棉签 2. 病毒采集管和50ml离心管 3. 记号笔 4. 密封袋 5. 生物安全运输箱 6. 医疗垃圾袋
样品的采集运输保存【共28张PPT】
标本采集
4.血液
2）采样操作：通常采血部位为肘静脉，将止血带 扎在静脉取血部位的上方，采用商品化的一次性注 射器或真空采血管采血；
拿下止血带，用无菌棉压迫止血；
标本采集
三、采集方法
5.鼻咽抽吸物
用商品化的粘液抽吸器从双侧鼻孔中抽吸获得，导管在鼻 尖到外耳道中间的位置连接，不停的转动导管，采用负压
标本编号:无锡识别号+县区识别号+医疗机构识别号+标本序号
采集份数
具有PCR检测资质的县（市）级及以上（含二级、三级）医疗机构作为省级
监测点： ➢ PCR检测：对流感样病例详细询问流行病学史，开展相关医学检查、检验，
在抗病毒治疗前进行进行甲型流感病毒通用引物PCR检测，剩余核酸样本约 45ul于-20℃冻存 ➢ 标本采集：若胶体金检测结果阳性，在抗病毒治疗前再采集1份咽拭子（ 或呼吸道分泌物）3管。同时用5ml促凝管采集静脉血1份（5ml）标记编号 ，并填写阳性标本登记表。 ➢ 监测工作开展第一周同时采集咽拭子和血标本，第二周开始只采集咽拭子，血标本 可以不采。标本编号:无锡识别号+县区识别号+医疗机构识别号+标本序号。
将拭子头插入病毒采样管中。
监测工作开展第一周同时采集咽 和血标本，第二周开始只采集咽拭子，血标 拭子 用商品化的粘液抽吸器从双侧鼻孔中抽吸获得，导管在鼻尖到外耳道中间的位置连接，不停的转动导管，采用负压100mmHg持续15秒的间歇性抽吸后慢慢退出。
本可以不采。 于超声雾化器雾化杯中加入4％的NaCl溶液40ml，吸入高渗盐溶液15～25min，嘱病人漱口，用力咳出深部痰，收集入无菌采集容器中送检。
由临床医生按相应操作规程，采集标本置 入无菌采集容器中，标本量应≥5 ml，立即送检， 但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群 的污染。
完整微生物标本的正确采集运送ppt课件
05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少，可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符，导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集，可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染，可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染，确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器，以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏，应使用适当的冷藏设 备，以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器，以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤，正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长，可能导致微生物死亡或
繁殖，影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送，温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护，可能导致标本受到污染 或损坏。
临床检验标本采集运送及保存-课件-PPT
标本检查的意义
标本采集检查的意义 协助明确疾病诊断 制定治疗措施 推测病程进展 观察病情
标本采集原则
遵照医嘱 充分准备 严格查对 正确采集 及时送检
标本采集原则
遵照医嘱 根据医嘱采集标本
标本采集原则
采集前做好充分准备 医护人员准备 病人准备 物品准备 明确检查项目、检验目的、选择采集方
由于体位的因素，在确立参考值时，应 考虑门诊和住院病人可能存在的结果差 异，故采集标本时要注意保持正确的体 位和保持体位的一致性。
病人准备
5．时间 时间对人的影响可大致分为线性和周期
性两种 线性时间影响：最主要的是年龄 周期性时间影响：最主要的是季节循环、
月经周期和昼夜变化。
病人准备
病人准备还应考虑病人的生物钟规律， 特别是激素水平分析，如女性生殖激素 与月经周期密切相关；胆固醇则在经前 期最高，排卵时最低；纤维蛋白原在经 前期最高，血浆蛋白则在排卵时减少。 生长激素于入睡后会出现短时高峰。胆 红素、血清铁以清晨最高；血浆蛋白在 夜间降低；血Ca往往在中午出现最低值。 故采血时间应在相同时间进行。
病人准备
喝带咖啡的饮料，可引起淀粉酶(AMY)、 AST谷丙转氨酶(ALT)、碱性磷酸酶 (ALP)、血糖（GLU）、儿茶酚氨等升高。
但空腹时间过长，会使血糖（GLU）和 蛋白质降低，而使胆红素升高。
病人准备
(2) 高脂餐后2～4h采血，多数人ALP含量增高， 主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系， O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。
前言
古人云：“差若毫厘，谬以千里”，高 质量的标本是高质量检验的第一步，没 有高质量的标本，再先进、精密的仪器 也得不出准确的结果，相反，医护人员 往往出于对先进仪器的信赖而忽视标本 质量引起的结果偏差，盲目相信检验结 果，影响诊断、治疗及疗效判断。
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妊娠的影响
妊娠：妊娠期由于胎儿的生长发育影响， 其血浆生化指示变化见表2
表2：妊娠期主要血浆变化指标及其机制
机制 血浆运输蛋白↑ 血液稀释 体重及代谢增加 凝血系统机能↑ 需要增加造成相对缺 乏
变化 甲状腺素脂类、铜和铁蛋 白质量↑ TP,ALB降低 肾小球滤过率、肌酐清除 率上升 凝血因子活性↑ PT、 APTT↓FIB ↑ 铁、铁蛋白缺乏 血沉加快， CRP↑
临床检验中心
《医学检验标本采集手册》 《医学检验服务手册》
全面质量管理
其实质是对检验过程的控制： 分析前质量管理：医生开单至送至实验室 分析中质量管理：根据实验室标准进行检验 分析后质量管理：标本储存
检验误差70%来自分析前因素，正确的采集标本和正 规标本运送是检验结果准确的前提。 摘自于医学界检验频道
分析前工作
检验申请
病人准备
标本采集
采集过程
标本管理
注意：把收集的尿液应放置阴凉的地方,
应规范打包
。
临 床 检 验 中 心
打包不规范
打包不规范
打包不规范
打包不规范
打包不规范
打包不规范
打包不规范
规范打包
标本运送
1.所有样本由护工、外勤人员运送。 2.护工、外勤人员接收样本时，应做好记录。 3.样本运输至检验科后，由检验科工作人员刷批量 条码完成接收，此时为标本接收时间。 4.门诊夜间的急诊标本及时送检。
饮食的影响
进食：血清中多数酶不受饮食影响，对ALP、 AST影响较大，尤其是采血的前一天晚上暴 饮暴食，对很多结果会产生明显的影响， 主要影响生化仪的比色系统
饥饿：48小时可使胆红素升高24%，做
糖耐量试验前3天内，饮食中碳水化合 物不得少于300g/日，否则糖耐量曲线 可能偏高；还可使TG,TC,TP,apo,BUN降
运送、接收
完整的临床检验过程
医生开出 检验申请 确认并审核 检验结果
患者 准备
护士采集 标本 分析测定 标本
后勤人员 运送标本
实验室核对接 收与处理标本
发出检验报告
标本储存
标本
是指采取患者少许的血液、排泄物（粪、尿）、 分泌物（痰、鼻、阴道分泌物）、体液（胸腔 积液、腹腔积液、心包积液）和精液、前列腺 液等样品，经过物理、化学和生物学的实验室 技术和方法对其进行检验
临床
护士
标本
患者
实验室
标本采集的意义
检验就是得到准确的实验室数据 观察患者身体健康情况
明确疾病诊断
指导制定治疗措施
观察病情及疾病预后的评估
治疗效果的监测
临床医生应掌握每项检验项目的实验室
检验原理及临床意义 一、正确选择检验项目或项目组合：
(1)有效性：即检验项目诊断价值；普查时应选
择敏感度较高的项目；确诊时应选择特异性 较高的项目。
二、不断与实验室工作人员进行信息沟通，以便能 根据患者临床表现、体征和病史准确地选择项 目用于诊断及治疗，并及时地了解实验室诊断 项目和方法的最新进展及临床意义。 三、熟悉实验室项目的具体检验时间，合理安排标 本采集时间，避免错过检验时间：
特检组尿肾功能A+B项目节假日不能做； 肾病尿全套、PCR项目均节假日不能做； 术前及肝炎项目不能加急； 结核T-Spot 试验必须十二点钟之前送至实验室，并 采集至检验的时间不超过四个小时。
标本的采集、运输及分析前质量 控制
目录
1.分析前质量管理的重要性
2.标本采集管理 3.标本采集的注意事项 4.患者准备 5.运送管理 6.不合格标本拒收
前言
随着检验医学的发展，实验室自动化与计算 机信息技术的普及，人员素质的提高，人们的 质量意识在不断增加，临床诊断和治疗越来越 依赖于临床检验，这就使检验科面临新的挑战： 必须重视实验室全面质量管理
3.标本的容器贴好条码 条码应沿着容器方向侧着贴，不能横着贴 一圈 条码上面不要用铅笔乱画 血培养瓶贴条码不能覆盖到瓶子原有的条 码
正确贴好条码
4. 按《医学检验标本采集手册》要求规定 采血量采血，并标本采集完后抗凝管、 促凝管颠倒混匀。
常规项目项目的采血量
项目 生化全项 采血管 红盖促凝管 单独开的生化项目 红盖促凝管 血常规 凝血功能/DIC 甲乙丙/HIV/术 前 结核T-Spot 血流变 真菌D-葡聚糖 紫盖抗凝管 蓝盖抗凝管 红盖促凝管 绿盖抗凝管 绿盖抗凝管 采血量 5ml 3-5ml 1.5ml 3ml 3-5ml
5ml*2 5ml BD红盖无添加剂管 3ml
按规定采血量采血!!! 采血量不足：血液及抗凝剂比例不当,会引
起血常规结果偏低，血凝PT、APTT延长；
采血量过多：血液及抗凝剂比例不当， 易出现凝块，影响检验结果。
5.应规范选择采血部位：肘部静脉、手背静脉、股静脉； a避免输液时采血，防止血细胞被稀释； b严禁在输液同侧采血：影响血液成分。 c 严禁从静脉留置针中采血：留置针内残留 的肝素会严重干扰凝血功能检测的结果。
蛋白质 镜检 细菌、亚硝酸盐、葡萄 糖消耗试验
应用理由
长时间浓缩标本、阳性率高 尿液的浓度及渗透压高，胞 形态保存好 尿液中膀胱内停留时间长，细 菌有足够的生长时间，能充分 对亚硝酸盐和糖起作用 方便、实用 临床意义大 避免尿液成分的时间差别 尿沉渣定量 糖尿病诊断 糖尿病诊断
晨尿
随意尿 下午2-4小时尿 留24小时尿 留12小时尿 空腹尿 餐后尿
低，Cr,UA 升高。
尿液标本的收集
1.尿常规：晨尿/饭后2~3小时尿—不超 过2小时； 2.尿沉渣：晨尿！不得少于10ml. 3.尿培养：留取晨尿中段尿—无菌-专用管！ 4.尿生化定量：24小时尿，记尿量； 5.尿液蛋白分析：晨尿。
表5：尿液常规检验标本的采集：
检查内容 检查内容
(2)时效性：应病情发展变化恰当地选择标本采
集时机。
(3)经济性：临床医生应该关注检验项目的 经济-效益关系，合理选择检验项目。 在保证向临床提供有效诊断信息的前提 下，尽量选择费用较低的检验项目，减 轻患者经济负担：
乙肝病毒感染普查时应选择乙肝标志物； 在进行确诊或疗效监测时可选择成本较高的乙肝标 志物定量检测或采用PCR检测乙肝病毒DNA；
不合格标本拒收标准
4.未正确使用标本采集管或标本类型错 误。 5.特殊要求采集血液标本，标本容器未 标识或标识不清，如血糖耐量实验，标 本未标识采集时间。 6.标本采集时机不正确。 7.输液同侧采集的标本或采自输液管或 留置针的标本。
不合格标本拒收标准
8.超过规定时间送检的标本（具体送检时 间详见检验周期一览表）或标本运输温度 不当的标本。 9. 血培养污染的标本。 10.非本科室检验项目的标本。
标准采集标本
1.严格查对制度 严格查对：患者姓名、科室、床号、住 院号、检查项目、标本类型、送检地点 标本类型错误情况严重： 血液≠全血≠血浆≠血清 脑脊液≠胸水≠积液
2.正确选择采血试管 每一种采血管含的 抗凝剂/促凝集成分不同， 避免选择采血管不当直接影响检验的结果。
注：标本采集顺序：
血培养瓶→蓝头管→黑头管→红 头/黄头→绿头管→紫头管→灰头 →其它（国际实验室标准推荐）
标本运送
作人员上岗前需 经生物安全知识培训并考核合格。 2. 标本转运人员上班时必须穿工作服， 戴手套，做好防护工作。 3.应将一切血液、体液等标本视为具有 潜在传染性物质对待，对特殊的高致病 性病原标本的转运按特殊标本转运要求 进行。
标本运送
4 标本收集运送过程中应防撒、防漏、 防传染。用密闭转运工具运送标本，防 止标本的溢洒；若发生标本溢洒，按标 本溢洒处理程序进行处理。 5 做好标本的签收和交接登记，防止标 本的遗漏或遗失。 6 体液、血液、培养标本分开存放，避 免交叉污染。
标本的运送
使用密闭转运箱转运 部分项目要求避光 部分项目要求温度
不合格标本拒收标准
1.标本容器标签不合格、标识信息条码器 无法读取、容器标签不完整、或没有粘 条码的标本 2.标本采血量不足于检测最小需要量的标 本或空管的标本。 3.抗凝血中有凝块，严重溶血及严重脂血 并影响检测结果的血液标本
6.熟练采血技术： 止血带捆扎时间最好在1分钟内，止血带捆扎 时间延长会导致血清各种成分发生变化，蛋 白、铁、胆红素、胆固醇、转氨酶可不同程 度的增高； 穿刺不顺利、反复拍打会激活凝血系统、激活 血小板，导致血小板结果偏低、PT、APTT时 间延长，也会导致红细胞破坏，发生溶血。
7.避免标本溶血，采血操作过程中应避免以下 情况： 引起标本溶血的因素有： 1.采血后血从注射器快速注入试管， 2.混匀含添加剂的试管时用力过猛； 3.定位不准，采血不顺； 4.止血带使用时间过长，血管内溶血；
尿常规 尿胆原 代谢物定量 aDIS计数 葡萄糖 葡萄糖
24H尿液标本的收集
①留尿之日早晨8点主动排尿,因这是8点以前产生的尿, 应弃之不要。(首日晨尿不要) ②8点以后至次晨8点, 24小时内每次的排尿量,全部保留 在干净的容器里。 ③次日8点也应主动排尿,这次尿是8点以前产生的,但必 须全部留下。（次日晨尿保留） ④将24小时的尿收集搅勾,记其总量。 ⑤将混匀后的24小时尿取其10O毫升,送化验检测。
5.血液与抗凝剂比例不当； 6.采血点，器具不洁； 7.采血过程有空气进入，产生泡沫；
8.全血放置时间太长； 9.离心力过大。。。。 10.标本存放，运送条件不当。
患者准备
患者情况和状态对其生理指标有重要影响： （1）生理性变化：情绪、生物钟周期、 年龄、性别、种族、月经周期、妊娠、 季节、海拔高度等 （2）生活习惯：饮食、饥饿、吸烟、饮 酒、喝茶或咖啡、吸毒等 （3）临床用药