微生物标本采集方法及注意事项——谢轶
微生物标本采集送检及处理原则
微生物标本采集送检及处理原则一、标本采集1.采集时机：采集标本应在疾病出现初期进行，避免开始使用抗生素治疗前采集。
2.采集部位选择：根据病情选择合适的部位进行采集，一般可根据症状、疾病类型和临床表现进行判断。
3.采集方法：采集标本时应采取无菌手法，使用无菌采样器材，避免污染和交叉感染。
4.标本储存条件：采集后的标本应立即送往实验室进行检测，若无法及时送达实验室，则应储存在合适的条件下，避免细菌的生长和繁殖。
二、标本送检1.标注采集信息：标本送检前应在标本瓶或容器上标注病人信息、采集时间和采集部位等必要的信息，确保标本的准确性和唯一性。
2.冷藏和运输：对于易变质的标本，如粪便、尿液等，应冷藏并尽早送达实验室；对于其他标本，应采取适当的保存和运输方式，避免温度过高或过低，影响细菌的生存和检测结果的准确性。
三、标本处理1.标本处理前的准备：在对标本进行处理前，必须进行准备工作，如标记标本编号、记录标本类型、检查标本的一致性和完整性等。
2.标本处理方法：根据标本类型的不同，采取相应的处理方法，如深部标本(如脑脊液、关节液等)应优先进行细菌涂片、培养等方法，浅部标本(如咽拭子、鼻拭子等)可直接进行细菌培养。
3.标本处理的时间：不同类型的标本处理时间有所不同，但一般应尽快进行处理，避免细菌在标本中的生长和污染。
四、标本保存1.标本封存：处理完的标本应在标本瓶或容器上进行标注，并进行封存，避免污染和交叉感染。
2.标本保存时间：保存标本的时间应根据实验室的需求和标本的特性来确定，如对于一些常见的标本，如尿液、粪便等，一般保存时间较短，而对于其他一些特殊标本，如组织标本等，可保存更长时间。
总之，微生物标本采集送检及处理原则的正确遵守可以确保实验结果的准确性和可靠性，为疾病的诊断和治疗提供有力的支持。
同时，医务人员在进行标本采集和处理过程中应加强无菌操作和个人防护，有效避免交叉感染的发生，保障自身和他人的健康安全。
微生物标本采集及保存要求
微生物标本采集及保存要求引言微生物标本的采集和保存是微生物学研究和诊断的基础。
正确的采集和保存方法能够确保标本的质量和完整性，并提供可靠的结果。
本文将介绍微生物标本采集和保存的要求，旨在帮助人们正确进行微生物标本的处理。
1. 标本采集前的准备在进行微生物标本采集之前，准备工作是至关重要的。
以下是一些需要注意的事项：•准备采集工具和材料: 预先准备好所需的采集工具和材料，如无菌容器、无菌拭子等。
•确保个人卫生: 采集标本前，采集人员应洗手，佩戴适当的个人防护设备，例如手套和口罩，以防止交叉感染。
•了解采集部位和要求: 在采集标本前，了解所要采集的部位和采集要求，以便采集人员能够正确操作。
2. 标本采集步骤下面是一些常见微生物标本的采集步骤：2.1 血液标本血液标本是常见的微生物病原体检测标本之一。
以下是血液标本的采集步骤：1.选择合适的采集部位: 常用的采集部位有静脉内和指尖采血。
根据需要选择合适的采集部位。
2.消毒采集部位: 使用适当的消毒剂对采集部位进行消毒，以减少细菌的污染。
3.利用无菌注射器或放血针采集血液: 选择合适的采血设备，按照正确的技术和步骤采集适量的血液。
4.将血液转移到无菌容器中: 将采集到的血液转移到适当的无菌容器中，如血培养瓶或离心管。
2.2 呼吸道标本呼吸道标本用于检测呼吸道感染。
以下是常见的呼吸道标本采集步骤：1.依照需要选择合适的采集方法: 常见的呼吸道标本采集方法包括咽拭子、鼻拭子、喉拭子等，根据需要选择合适的采集方法。
2.使用无菌拭子采集标本: 使用无菌拭子轻轻刮取相应部位的分泌物，注意避免刮伤黏膜。
3.将拭子转移到无菌容器中: 将采集到的标本拭子放入无菌容器中，并确保容器密封。
2.3 尿液标本尿液标本常用于病原体的检测和诊断。
以下是尿液标本的采集步骤：1.准备容器和适当的采集方法: 准备无菌容器和适当的采集方法，如尿杯或导尿管。
2.进行尿液采集: 采集尿液时应注意保持个人卫生，避免污染。
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
微生物标本采集规范(1)
微生物常见标本的采集规范一、血液、骨髓、胸腹水标本的采集1、最好用药前采集，在发热高峰前1h内或发热高峰时采血最为理想。
2、采血量在5-10ml为宜，成人必须左右手各一套瓶（需氧+厌氧）、并标明左右手，儿童左右手各一瓶需氧。
3、轻轻颠倒混匀以防凝固，立即送检（2小时之内），禁止4℃冷藏保存。
4、骨髓和胸腹水标本或其他穿刺液标本，抽取后将5-10ml直接打入一套血培养瓶内（需氧+厌氧），并注明标本种类。
二、尿液标本的采集1、清洁中段尿的采集：通常以晨起第一次尿液、未服用抗生素前送检以提高阳性率。
留取标本后尽快送检，不得超过1小时。
女性患者应用清水和肥皂或清洁剂清洗外阴，男性应清洗龟头。
排出前段尿后，打开无菌尿杯或无菌管留取中段尿。
2、插管尿的采集:直接插管或称临时插管尿标本采集：用夹子钳夹插管约30 分钟，以获取足够尿液。
乙醇消毒插管的取样端口或导尿管的适当部位后，应用注射器抽吸留取尿标本，将获取的尿标本转至带盖的无菌管中。
尿路插管不做培养，拒收！3、以下是不适于尿培养的尿标本：1）自留置导尿管内获取的尿液标本可能有定值菌的污染。
2）集导尿袋内获取的尿液标本，可能有定值菌及环境微生物的污染。
3）导管尖因为不可避免地受到尿道菌群的影响而不适合作为尿培养标本。
三、粪标本的采集：1、直肠拭子法：先将肛门周围洗净，用无菌拭子蘸生理盐水，放入直肠旋动取出放入拭子转运管送检。
2、自然排便法：清洁便盘内排便，挑取脓血或粘液部分，放入无菌粪杯送检。
四、下呼吸道标本的采集（痰、肺泡灌洗液）1、咳痰：患者清晨清水漱口3次后，深咳自下呼吸道痰液，量≥1ml，避免不合格的口水痰。
2、诱导性痰：清洁口腔后用水漱口，用喷雾器吸入约25ml 3%-10%生理盐水诱导痰。
3、气管抽吸痰：病区医生采样。
4、支气管肺泡灌洗液：（做支气管镜检查）采集量10ml。
五、上呼吸道标本的采集1、鼻：用无菌拭子生理盐水湿润后，插入鼻孔2cm，用力旋转2、鼻咽：用无菌湿润拭子经鼻腔插入鼻咽后部（约2.5cm），旋转拭子5圈或停留10秒吸收分泌物。
微生物标本的正确采集
微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤，因为只有采集到合适的标本，才能够准确、客观地检测出病原菌，为诊断和治疗提供科学依据。
以下是一些采集微生物标本的正确方法：一、注意清洁和消毒在采集标本前，必须对手部进行清洁和消毒，以减少污染的可能性。
使用肥皂和水清洁手部，或者使用酒精消毒剂消毒手部。
同时，还需要对采集标本所使用的器械进行消毒，确保无菌操作。
二、选择正确的标本类型不同的微生物感染会有不同的症状和体征，因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。
例如，对于呼吸道感染，可以使用鼻咽拭子、痰液等；对于胃肠道感染，可以使用大便标本等。
三、正确采集标本1.采集前准备：了解患者的病史和症状，确定需要采集的标本类型，准备好采集所需的器械和消毒用品。
2.采集方法：根据不同的标本类型，采用正确的采集方法。
例如，对于痰液标本，需要让患者用力咳嗽，将痰液咳出并放入收集器中；对于大便标本，需要让患者取适量的大便放入收集器中。
3.采集量：采集的标本量应该足够，以便进行实验室检测和分析。
一般来说，采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。
4.采集时间：采集标本的时间也有讲究。
例如，对于呼吸道病毒的检测，最好在患者发病的早期采集标本；对于肠道病毒的检测，最好在患者发病后一周内采集标本。
5.保存方式：采集完标本后，需要妥善保存。
一般来说，应该将标本保存在适当的介质中，如保存液或培养基中，以保持标本的活性和完整性。
同时，还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。
四、避免污染和交叉感染在采集标本的过程中，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染和交叉感染。
例如，在采集痰液标本时，应该让患者先用清水漱口，再用无菌棉签擦拭咽部，以减少口腔和咽部的细菌污染。
同时，还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作，确保实验室内的空气和环境符合要求。
五、及时送检采集完标本后，需要及时送检。
一般来说，应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。
2024年微生物标本采集
微生物标本采集微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。
本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。
一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。
2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。
3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。
4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。
5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。
二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。
2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。
3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。
4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。
5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。
6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。
7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。
三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。
2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。
3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。
4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。
5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。
四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。
一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
微生物送检标本的采集指南
微生物送检标本的采集指南微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养。
鉴定结果有十分密切的关系，对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、炭疽、肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。
（一）微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项1.标本采集1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本采集、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；2）尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检；3）标本采集应严格执行无菌操作；4）咽拭、肛拭、伤口拭等拭子标本，应插入运送培养基送检；5）痰、尿液伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。
2.标本运送1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。
3.标本验收1）实验室只能接受和处理合格标本；2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。
4.注意事项1）微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来麻烦甚至误导；2)微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。
3)某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。
室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低，不能使用冷藏的标本检验。
4)厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。
（二）微生物学检验标本采集和处理1.尿液标本采集和处理通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4～8度冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；淋球菌培养的标本不能冷藏！怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述世间此时阳性率高。
谢轶SSI标本采集ppt课件
+ 烧伤伤口 • 清创，送检组织标本 • 不能送检组织标本时，可以拭子刮取采集渗出液（往往
为血液组织液），仅作需氧培养。
外科手术部位感染标本采集方法
+ 脓疱或水疱 • 酒精消毒皮肤使之干燥，如果内容物较多，可用刺入疱
内吸取液体，按厌氧标本处理； • 如果内容物较少，则针头挑破脓疱，拭子采集脓疱液和
+ 标本的选择更大程度上依赖于感染的程度和性质而不是可疑的 病原体。
+ 开放伤口： – 对大多数开放伤口，采集前应先去除表面菌群。 – 开放脓肿处理同开放伤口。
+ 闭合伤口： – 除非有渗出物，干燥、结痂伤口一般不做培养。 – 闭合脓肿应取渗出物和脓肿壁标本。
+ 烧伤伤口应在广泛清洗和清创术后采集培养。伤口表面定量培 养不一定有意义。
及口咽部位，但不伴有明显污染。 + 污染切口：手术进入急性炎症但未化脓区域；开放性创
伤手术；胃肠道、尿路、胆道内容物及体液有大量溢出
污染；术中有明显污染（如开胸心脏按压）。 + 感染切口：有失活组织的陈旧创伤手术；已有临床感染
或脏器穿孔的手术。
+ 切口浅部组织感染 + 切口深部组织感染 + 器官/腔隙感染。
+ 未破裂脓肿： • 不能用拭子！ • 消毒覆于脓肿表面的皮肤，用注射器将脓肿内容物吸出
，注射器针头扎入无菌橡胶瓶盖（青霉素小瓶橡胶塞） 。-厌氧培养or需氧培养 • 切开脓肿、引流，拭子取部分脓肿壁送检。-需氧培养
+ 开放病灶和脓肿： • 用无菌生理盐水或70%酒精擦拭除去表面分泌物，尽量
去除表面菌群，用拭子采集病灶及底部或边缘的标本，
微生物标本采集的注意事项
微生物标本采集的注意事项
1. 你可别小瞧微生物标本采集呀！就好比做菜，材料没选好，这道菜能好吃吗？采集的时候可得找个干净的环境，不然混入些杂七杂八的东西，那后面的检测不就麻烦啦！比如在一个脏兮兮的角落采集，那能行嘛！
2. 采集工具也得选对呀！这就像战士上战场得拿对武器一样。
要是工具不合适，咋能准确采集到微生物呢？可别拿着个小勺子去舀细菌呀，哈哈！
3. 采集的手法很关键哦！不能太粗暴啦，就像对待小婴儿一样得温柔点。
太用力把微生物都弄坏了可咋办，就像你想摘朵花结果把花瓣都扯下来了。
4. 采集的时间也有讲究呀！这可不是随便啥时候都行的哟。
难道大中午太阳暴晒的时候去采集，微生物还能乖乖等你来呀？就如同钓鱼要选对时间一样。
5. 别忘了做好标记呀！不然一堆标本放那，你都不知道哪个是哪个，这不就乱套了嘛！就像一群小朋友，不写上名字你能分得清谁是谁嘛？
6. 采集完要赶紧处理呀！可不能让它们等太久呀，不然微生物们都不耐烦啦。
就好比你买了好吃的放久了会变质一个道理。
7. 一定要细心呀！这可是个精细活，一点马虎不得。
就像走钢丝一样，稍不注意就会出问题哦。
我的观点结论就是：微生物标本采集真的要特别特别小心和注意这些事项，不然会影响后续的一切工作！。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果，准确的结果可为临床诊疗提供指导，有助于科学用药、控制感染，进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用，而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。
为此，本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项，下面让我们一起来了解一下。
一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤，待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤，消毒范围至少需要3厘米，再次使用75%酒精脱碘后采集血液；对于碘过敏的患者，则采用75%酒精消毒30秒，自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。
消毒后不可用手直接触摸穿刺部位，穿刺抽吸8--10毫升成人血液（婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%），注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀，以防血液凝固，但不可剧烈震动，以防标本溶血。
值得注意的是，血液标本作培养时需格外小心，皮肤表面含有较多微生物，消毒不规范则会污染血液，故应在采血前由内至外认真消毒；血液注入培养基之前不可更换针头，以防感染；采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血，注意，不可在静脉穿刺处采集血液标本，除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血；采血量并不是越多越好，采血量太多，则会稀释培养液，营养成分不够；怀疑为菌血症的患者应尽早采血，避免延误最佳时机；怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液，除发热期以外，均应多次采血，建议24小时内采集3--4次，且要增加采血量，以10毫升左右为宜。
二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口，去除口腔内的杂菌，并用力咳嗽，以咳出肺部深处的脓痰，吐入清洁、干燥的容器中送检。
如果患者痰液量比较少，可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入，如果是患儿，则需要轻轻按压其胸骨上方的气管，在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。
微生物检验标本的正确采集方法及注意事项
56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 （河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。
血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。
（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。
在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。
（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。
（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。
注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。
患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。
（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。
如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。
（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。
除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。
（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。
（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。
（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。
痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项很多疾病都需要通过微生物检验来为医生的诊断提供有效的依据，正确的采集标本能够得到可靠的检验结果，正确的检查结果可以给临床医生提供可靠的依据，正确合理的制定治疗方案，那么在采集检验标本时，需要注意什么？怎么样来正确的采集标本，我们通过以下几个方面了解一下：1 血液标本的正确采集方法及注意事项采集方法：先用75%乙醇擦拭静脉穿刺部位皮肤，等消毒部位风干后，用碘酒对采血部位消毒，不要用手触摸采血部位，待消毒部位风干后，开始采集血液标本，采血量不能太多，也不能太少，成人在5-10毫升/瓶，婴幼儿在1-5毫升/瓶左右，采集好标本后，轻轻摇晃标本，防止凝固。
注意事项：不要剧烈摇晃标本，以免溶血，影响检验结果；对服用抗菌药物，不能停药的患者，应在用药前采血，不能在正在输液的静脉处采血，也不能在动脉或静脉导管处取血；采血后应及时送检，不能及时送检的，要根据标本情况不同合理放置。
2 痰标本的正确采集方法及注意事项采集方法：患者在早上起床后，用凉开水多次漱口，去除口腔内的杂菌，用力咳出痰液，放置容器中；少痰的患者可以用氯化钠溶液雾化，对于痰少的婴幼儿，可以压迫胸骨上方的气管，注意不要太用力，患儿咳痰后用棉棒采集痰标本；对于不能自主排痰的患者，如患者处于昏迷状态，可以用吸痰管进行吸痰；气管切开的患者可以通过透气孔吸痰；还可以用支气管镜在病变部位采集病原菌，进行化验；对于结核病人，在早上空腹时，用胃管经鼻腔送入胃中，并用注射器抽取胃液进行检验；使用无菌导管的注意事项：入气管镜内，并注入无菌蒸馏水5毫升，取出导管即可。
痰标本最好在早晨采集，采集后立即送检，不能及时送检时，应该放在4度冰箱里暂存，唾液和24小时留的痰（结核杆菌培养除外）不能作为标本。
3 鼻咽和口腔标本的采集方法及注意事项采集方法：采集鼻腔标本时，用湿拭子插入两个鼻孔内，深度在3厘米左右，并转动4-5次；采集咽喉标本时，先让患者用水漱口，用拭子在咽喉后壁反复擦拭几次即可；患者有口腔疾病或化脓性扁桃体炎时，可以用拭子在患处擦拭。
微生物标本的正确采集运送及注意事项
送检
粪便标本采集运送规范
自然排便，挑取脓血、粘液、组织碎片的粪便2-3g剩余无 菌容器
直肠拭子法
小结
➢ 无菌采集 ➢ 无菌容器 ➢ 及时采集 ➢ 及时送检
脓液、伤口分泌物采集注意事项：
1、采集的标本应立即送检，如不能立即送检，放4℃保存， 但不能超过2个小时。
2、尽可能在用药前采集标本，
脓液，伤口分泌物标本的采集运送规范
培养用的标本尽可能取自深部（指的是脓液与组织的交 界处），再用无菌拭子采取脓 液及病灶深部分泌物。
对已破溃脓肿一般以无菌棉拭子采集脓液及病灶深部的 分泌物，置入无菌试管中送检。
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
0
30
细菌浓度
体温
60（min）
有相关统计பைடு நூலகம்示血培养采血套数与细菌检出率相关 1套：73% 2套：94% 3套：97%
无菌体液采集运送规范
胆汁：1、十二指肠引流法 2、胆囊穿刺法 3、手术直接采取法
直接注入无菌瓶，2小时内送检，若不能及时送检 4℃保存
穿刺液（胸水、腹水、关节液等）：由临床医师无菌操 作穿刺抽取，尽可能留取多的标本
对于未破溃的脓肿可严格消毒后，以无菌注射器抽取脓 汁及分泌物,也可切开排脓用 无菌棉拭采取,但不能留下碘 和乙醇等消毒剂，若混入标本将影响细菌生长。
创伤出血敷有药物在2h以内及烧伤12h内均不应采集标本， 此时获得的阳性结果机会甚少。
痰标本的采集运送规范
1.推荐用晨痰——混合痰液和24h痰液有多量杂菌 2.刷牙，清水漱口三次——减少口咽部定植菌污染 3.水化，生理盐水雾化排痰——重症病人，气管抽痰 4.标本立即送检（2小时内），否则4℃存放 5.咳痰不宜做厌氧培养——口咽部大量厌氧菌
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儿童：0.5-20ml/瓶/套
体重>36.3kg的儿童=成人
《临床微生物学 检验》2015
原因：成人菌血症血液含菌量通常≤10CFU/ml，多数不到
1CFU/ml；儿童可达100~1000CFU/ml
采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床90％以上的感染为 需氧菌或兼性需氧菌感染。
血培养送检要求
需
厌
血培养查HACEK群 建议临床加注延长培养时间的提示
•Haemophilus aphrophilus 嗜沫嗜血杆菌
•Actinobacillus actinomycetemcomitans伴放线菌素放线杆菌
•Cardiobacterium hominis人心杆菌 •Eikenella corrodens 啮蚀艾肯菌 •Kingella Kingae金氏金氏杆菌
联系实验室 至关重要！
血培养查布鲁菌
延长培养时间，注意生物安全
血培养查弗朗西斯菌 延长培养时间，注意生物安全，+BCYE琼脂 血培养查分枝杆菌 需使用专用分枝杆菌培养瓶 呼吸道标本分离奴卡菌 需延长培养时间
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微生物检查的样本收集原则
应用严格的无菌技术采集真正感染的病灶处样本； 采取收集足量的样本，尽量不用棉拭子收集（喉及生殖道
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患者，女，38，尿急，尿频，尿痛，3天
留取尿液标本进行培养，后服药 1d
治疗：左氧氟沙星，0.1g bid po，疗程5d 。
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胸水，腹水，胆汁，透析液， 心包液，关节液，脑脊液标本
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临床怀疑的少见菌感染标本采集与注意事项：
下呼吸道感染是否由细菌或真菌感染所致？ 是否可以取临床指导价值更大的其他标本以明确病原诊断
（如血培养、胸水培养、呼吸道病毒检测等）？ 是否能取到合格的痰标本？（患者是否配合？）
…… 痰液不是诊断细菌性肺炎的最佳标本，血培养、支气管肺泡灌洗、 气管吸取物能够提供更可信的病原菌信息-《临床微生物标本送检指南》
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伤口分泌物、脓液标本
总的原则：尽可能出去表面污染，取深层部位之标本。 注意事项：
皮肤消毒对培养结果至关重要（生理盐水vs碘酊+酒精） 深部血性标本最佳 以针筒直接抽取，避免接触环境氧（厌氧培养） 无菌塑料容器供运送组织样本（保持潮湿） 使用抗生素或伤口局部治疗前收集样本 涂片革兰染色和标本培养对手术部位感染诊断标同样重要
需大家共同努力！
谢 谢！
储存环境 4℃ 37 ℃ 室温
标本来 源
尿液、粪便、鼻咽部标本；血清学检 查标本；所有TB检查标本，真菌培养
标本，血导管 CSF，淋病检查样本，血液培养瓶
厌氧培养标本，伤口分泌物标本，无 菌体液，血液培养瓶
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采集正确的标本和正确采集标本是提 高感染性疾病诊治水平的重要环节，
痰培养标本中病原体种类繁多而复杂使下呼 吸道感染病原诊断成为难题
a：李兰娟《感染微生态学》第二版，人民卫生出版社
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华西医院痰培养送检指证（征求意见稿） 2016
痰培养的临床指导价值小，可造成误导……在临床工作采 集和送检痰培养应非常慎重。
临床在采集痰培养之前需要思考： 有无必要取痰培养：患者是否有下呼吸道感染？如果有，其
即使严格的无菌操作采集血 Scotland：blood culture 2011
怎样判断污染？
标本也很难将污染率控制在
《血流感染实验室诊断与临 床诊治》2014
2%以下
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表皮葡萄球菌的临床意义
阳性套数
1 1 2 1 2 床意义 ％
0 2 60 0 75 100
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IDSA/ATS指南
CAP
门诊治疗者: -可不行细菌学检查 住院患者
血培养
HAP
胸腔积液培养
保护性毛刷
-应在使用抗菌素之前采集 标本
-痰涂片意义大
气管吸取物 支气管肺泡灌洗液
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咳痰途经口咽部不可避免地受到污染
请慎重考虑痰标本送检意义！！！
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不会报告病毒，
检
不会报告非典型病原体，
无法报告生长缓慢的细菌：奴卡
明显是稀便，培养结果为何正常？
常见的病毒性的 医院获得性肺炎
大便培养，通常只能鉴定志贺菌、沙门菌，
很少医院常备致病性大肠杆菌鉴定血清，霍乱弧菌血清。
很少医院能常规开展耶尔森菌、空弯菌的培养，能够做艰难梭 菌培养。
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标本采集的目的要明确！
医生开具的检查不应是盲目的
撒网式检查：不明原因发热，经验治疗无效或
取得不可复制的标本时。（强烈建议与微生物实 验室进行充分沟通后开具！）
标本的临床信息
标本性质（分泌物：渗出液？深部伤口？脓汁？坏死组 织？新鲜边界？） 采集部位（分泌物：皮肤？口腔？生殖道？肌肉层？器 官组织？）
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怀疑患者有血流感染的指征：
不明原因的发烧(＞38℃)或体温过低(＜36℃)
白细胞增多（ ＞10,000/ul），粒细胞减少（ ＜1,000ul）
休克，寒颤，僵直
严重的局部感染(脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部 术后感染，…)
心率>90次/分，呼吸加快
低血压或高血压
血培养的污染问题
污染是必然的
“即便进行严格的皮肤消毒以及在接种传代过程中严 格遵守无菌操作，仍有3-5%的血培养结果来自皮肤 或周围环境的污染菌，如芽孢杆菌、丙酸杆菌、棒 状杆菌、凝固酶阴性葡萄球菌、气球菌、微球菌。”
污染率至少应控制在3%以下
CLSI M47-A NHS quality improvement
除外）； 采集后应立即送至试验室，床旁接种可提高检出率； 在感染的急性期、使用抗生素治疗前收集； 培养的样本应同时制作直接涂片染色，以便镜检； 样本采集、运送及保存过程中，注意“双向”生物安全； 提供足够的有关临床资料
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样本储存
标本在未进行检验或及时送检时，必须储存在适当的环境下，以 防止病原菌死亡或因共生菌滋生过多，使病原分离不出来。
尿标本培养
标本采集：清洁中段尿：培养前最好停用抗生素48-72 小时, 尿液标本最好为晨尿。采集标本前，至少清洁尿 道口三次。弃去前段尿，留取中段尿于专用培养杯中 ，盖严培养杯，2小时内送检。
尿标本的最大问题：
标本污染！ 抗生素使用！
污染的 尿标本
污染的尿标本
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合格的尿标本
皮肤粘膜出血 多器官衰竭 肝脾肿大
发热要做血培养！
关节疼痛
CRP、PCT升高
……
CLSI M47-A
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血流感染时血培养采血时机
细菌浓度
0
30
尽可能在寒战或开始发热时； 尽可能在接受抗生素治疗前； 尽可能在下一次用药前
体温
60 时间 (min)
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社区获得泌尿系感染
可行性
初诊，症状轻微 不必进行尿培养
重症或经验治疗无效 必须进行尿培养
满足前两项条件，但现实 不可行，则只能等待时机
细菌性中枢神经系统 感染，提示需CSF培 养，但颅内高压。
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社区获得性肺炎 病原谱：
病毒
细菌
真菌
医生
全面考虑 病人病原
痰标本进行细菌性检查： 漏
污染可能 无法确认
％
％
97
3
95
3
3 37
100
0
0 25
0
0
采集1套无法判 断是病原菌还
是污染菌
2-3套血培养，有助于污染的判断
Tokars, JI. Clin Infect Dis 2004; 39:333
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标本须间隔多久采集?
研究较少
“通常的操作是同时或短时间内采集2-3套血培养”
氧
氧
瓶
瓶
避免污染
2-3套
8-10ml/瓶
不冷藏不冷冻
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以下情况可接收，但 需要告知医师： 采血量不足 套数或瓶数不够
拒收： 标识错误 损坏 凝血
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“口腔中定植菌包括21个属200种以上的微生物…a”
棒杆菌属 / 艾肯菌属 / 埃希菌属 -大肠 埃希菌/ 嗜血菌属 - 流感嗜血杆菌 / 奈 瑟菌属-卡他布兰汉氏菌 / 消化链球菌 属 / 变形杆菌属 / 葡萄球菌属 - 金黄 色葡萄球菌/ 链球菌属 - 肺炎链球菌 / 念珠菌属 - 白色念珠菌
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微生物标本采集方法及注意事项
谢 轶 副主任技师 四川大学 华西医院 实验医学科
四川大学华西医院·实验医学科
微生物检验标本采集的基本原则
适应证 必要性
没有某项检测的适 应证，不必检测
1社区患者无泌尿系统感染 表现，则不必进行尿培养
2血导管，不怀疑导管相关 感染，不必进行导管培养
在同一时间抽取血培 养时，每次抽取均应 完成采血的所有步骤
一般是指<10min
通常情况下，完成2-3套血培养后，2-5天不必重复进行血培养
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采血量?
采血量是影响灵敏度最关键因素，抽足量的血标本比抽血 时机更重要。
成人：一套标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8-10ml， 共20ml；要求至少采两套标本，即40ml。