(完整版)胰岛素耐受实验
胰岛功能实验
口服葡萄糖耐量试验
二、静脉葡萄糖耐量实验
【原理】 原理】 在一定剂量葡萄糖负荷的情况下， 在一定剂量葡萄糖负荷的情况下，如果胰岛素功能存在不 不能释放出足够量的胰岛素，既可导致血糖升高， 足，不能释放出足够量的胰岛素，既可导致血糖升高，而 这些患者在非糖负荷的血糖是正常的。 这些患者在非糖负荷的血糖是正常的。静脉注射排除了胃 肠道吸收功能的影响。 肠道吸收功能的影响。 方法】 【方法】 1.实验前日晚餐后禁食 小时以上至实验结束。 实验前日晚餐后禁食8 1.实验前日晚餐后禁食8小时以上至实验结束。 2.葡萄糖0.5g/Kg（理想体重） 50g/1.7㎡ 葡萄糖0.5g/Kg 2.葡萄糖0.5g/Kg（理想体重）或50g/1.7㎡溶于生理盐水 300ml中 静脉滴入30min 或配成25% 50%溶液缓慢静脉 30min， 25%300ml中，静脉滴入30min，或配成25%-50%溶液缓慢静脉 推注4 5min。 推注4-5min。 静注时于0 10、15、20、30分钟 静滴时于30 60、120、 分钟， 30、 3．静注时于0、10、15、20、30分钟，静滴时于30、60、120、 180分钟时分别取血测血糖 胰岛素和（ 分钟时分别取血测血糖、 180分钟时分别取血测血糖、胰岛素和（或）C肽，同时留 尿测尿糖。 尿测尿糖。
口服葡萄糖耐量实验（ 一、口服葡萄糖耐量实验（OGTT） ）
【正常值】 正常值】 空腹血糖<3.61 <3.61空腹血糖<3.61-6.11mmol/L 峰时30 60min，峰值<11.1mmol/L 120min时 30峰时30-60min，峰值<11.1mmol/L 120min时<7.8mmol/L 尿糖除0.5 1h可为 0.5- 可为（ ），外 其余均阴性。 尿糖除0.5-1h可为（±），外，其余均阴性。 临床意义】 【临床意义】 1.糖尿病 空腹血糖≥ 糖尿病： 1.糖尿病：空腹血糖≥7.0mmol/L 餐后2h≥11.1mmol/L 及（或）餐后2h≥11.1mmol/L 2.糖耐量减低 IGT）：空腹血糖<7.0mmol/L 糖耐量减低（ ）：空腹血糖 2.糖耐量减低（IGT）：空腹血糖<7.0mmol/L ， 餐后2h血糖>7.8 <11.1mmol/L。 2h血糖>7.8但 餐后2h血糖>7.8但<11.1mmol/L。 3.肾性糖尿 糖耐量曲线正常，尿糖阳性；餐后异常高峰出现， 肾性糖尿： 3.肾性糖尿：糖耐量曲线正常，尿糖阳性；餐后异常高峰出现，缓 慢下降。 慢下降。 4.肝脏疾患：空腹血糖低，餐后异常高峰出现，缓慢下降，尿糖可 4.肝脏疾患：空腹血糖低，餐后异常高峰出现，缓慢下降， 肝脏疾患 呈阳性。 呈阳性。
胰岛素耐量实验原理
胰岛素耐量实验原理引言胰岛素耐量实验是一种常用的临床检测方法，用于评估机体对胰岛素的敏感性。
本文将详细介绍胰岛素耐量实验的原理及其在临床应用中的意义。
胰岛素耐量实验的定义胰岛素耐量实验是通过给予被测者一定剂量的胰岛素，观察其血糖水平的变化，来评估机体对胰岛素的敏感性和胰岛素分泌功能的一种实验方法。
胰岛素耐量实验的步骤1.空腹血糖测定：被测者在实验前空腹8小时，抽取一定量的静脉血样，测定空腹血糖水平。
2.胰岛素注射：被测者口服或静脉注射一定剂量的胰岛素。
3.血糖监测：在胰岛素注射后的一段时间内，定时测定被测者的血糖水平。
4.结果分析：根据血糖水平的变化曲线和相关指标，评估被测者对胰岛素的耐量情况。
胰岛素耐量实验的原理胰岛素耐量实验的原理基于胰岛素的生理作用和机体对胰岛素的反应。
胰岛素是由胰岛β细胞分泌的一种蛋白质激素，主要功能是促进葡萄糖的摄取和利用，调节血糖水平。
在胰岛素耐量实验中，给予被测者一定剂量的胰岛素后，胰岛素能够促使葡萄糖从血液中进入细胞内，导致血糖水平下降。
正常情况下，胰岛素能够有效降低血糖水平，而对胰岛素不敏感或胰岛素分泌功能异常的人，血糖水平下降的幅度较小或持续时间较短。
胰岛素耐量实验的临床意义胰岛素耐量实验可用于评估胰岛素抵抗和胰岛素分泌功能的情况，对以下疾病的诊断和治疗具有重要意义： 1. 糖尿病：胰岛素耐量实验可用于糖尿病的诊断和分型，根据实验结果可以判断胰岛素抵抗和胰岛素分泌功能的情况，进而指导糖尿病的治疗方案。
2. 胰岛素抵抗综合征：胰岛素耐量实验可用于评估胰岛素抵抗综合征的程度，指导相关疾病的治疗和预防。
3. 妊娠糖尿病：胰岛素耐量实验可用于妊娠糖尿病的早期筛查和诊断，及时采取干预措施，降低母婴并发症的风险。
胰岛素耐量实验的注意事项在进行胰岛素耐量实验时，需要注意以下事项： 1. 实验前应告知被测者相关注意事项，如实验的目的、过程和可能的不适症状。
2. 胰岛素的剂量应根据被测者的特点和需要进行调整，以确保实验结果的准确性。
胰岛素设计性实验报告doc
胰岛素设计性实验报告篇一：实验设计-修订版胰岛素所致的低血糖休克及药物和激素对血糖的影响第一临床医学院XX级医学检验一班设计人：郭英刘雨霏刘妮彭超XX年3月12日【题目】胰岛素所致低血糖休克及药物和激素对血糖的影响【背景】胰岛素是重要的内分泌激素之一，主要生理作用是全面地调节糖类代谢，同时也相应地调节脂肪和蛋白代谢。
正常动物由于神经系统的调节和激素的相互作用，血液中胰岛素浓度是相对稳定的。
若给正常动物注射胰岛素，可造成人胰岛素性低血糖症状。
血糖浓度持续降低而出现交感神经兴奋性增高和脑功能障碍症群而导致的综合症就是低血糖休克。
在实验条件下如果给动物注射过量的胰岛素，使动物体内胰岛素量骤然升高，可造成动物实验性低血糖，会使神经组织的正常代谢和功能发生障碍，以至产生痉挛昏迷，外部表现为惊厥，称之为胰岛素休克。
小鼠的低血糖休克实验属于经典实验．传统的胰岛素休克实验目的是观察人工胰岛素性低血糖休克以及注射葡萄糖后的消失过程，以加深对胰岛素生理作用的理解．但实验中一般不测定小鼠血糖的变化，只是观察胰岛素造成低血糖休克时的行为变化。
现阶段对胰岛素降低血糖的原理研究较多，其他药物和激素如甲状腺素、生长激素、糖皮质激素对血糖的研究也以较多，但都是单量试验，并未将多种激素和药物联合起来观察对血糖影响的研究。
本次试验将通过制作胰岛素低血糖休克模型来同时观察多种药物和激素对血糖的影响。
体内降低血糖的激素只有胰岛素一种，但升高血糖的激素却不止胰高血糖素一种。
糖皮质激素是一种胰岛素拮抗激素，可以增强肝脏中的糖原异生，促进肝糖原分解，抑制外周组织对葡萄糖的摄取和利用，从而导致血糖升高。
而甲状腺素有促进生长发育的作用，也能够促进糖的吸收和糖异生，也可升高血糖。
生长激素的主要生理功能是促进神经组织以外的所有其他组织生长；促进机体合成代谢和蛋白质合成；促进脂肪分解；对胰岛素有拮抗作用；抑制葡萄糖利用而使血糖升高等作用。
但其剂量不同，对血糖的影响亦不同，本次试验就胰岛素等临床常见的与血糖有关的药物和激素对血糖的影响做相应的探讨。
证实胰岛素失效的实验方法
证实胰岛素失效的实验方法我折腾了好久证实胰岛素失效这件事，总算找到点门道。
说实话，刚开始我真是一头雾水，就瞎摸索。
我知道胰岛素是对血糖调节特别重要的东西，失效了肯定就不能正常发挥作用了。
那怎么判断它失效呢？我首先想到的是看外观。
有的胰岛素如果变质是会变色或者出现沉淀的。
就像牛奶，如果变质了，可能会结块一样，胰岛素要是出现不正常的颜色，比如本来应该是澄清透明的变浑浊了，或者有一些细小的颗粒在里面，这时候就有可能是失效了。
我第一次检查一瓶感觉放置时间有点久的胰岛素时，看到有点模糊，但是我不太敢确定，这就是我犯的错，太依赖外观这一点了。
后来我觉得单看外观不靠谱，就想着从它对血糖的效果上来判断。
我先测量了自己空腹时候的血糖值，这个一定要用正规血糖仪准确测量啊，可不能随便估摸。
然后按照正常的剂量注射了我怀疑失效的胰岛素。
这里面注射的时候也要注意，注射的手法得正确，不能注射到肌肉层去了，就像种树，要把树苗种在合适的地方才行。
注射后，我就每隔一段时间测量一下血糖，正常情况下，胰岛素会让血糖下降的。
可是那次等了很久，血糖没啥大的变化。
当然了，这里面可能会有很多干扰因素，比如吃的食物，有没有比较大的情绪波动影响到身体内分泌啥的，这些东西我一开始也是没太考虑周全，导致我不敢确定是不是胰岛素真的失效。
不过后来我又试了在排除这些干扰因素的情况下进行这个测试。
比如说在我只吃了很固定的少量简单食物，情绪也很平稳的时候注射，再测试血糖。
多试了几次以后，我发现每次血糖都不能像正常使用新胰岛素那样下降，这时候我就比较确定这个胰岛素是失效了。
我还听说可以把胰岛素送去专门的机构检测，看它的活性成分还有没有，但是这个方法太麻烦，花费也高，不太适合我们自己简单判断啦。
所以综合起来，看外观、打胰岛素后测量血糖以及排除干扰因素在实际中的多次试验是我觉得比较可行的鉴别胰岛素是否失效的方法啦。
但这过程中真的要小心谨慎，一个小差错就可能让判断失误呢。
胰岛素耐量实验原理
胰岛素耐量实验原理胰岛素耐量实验是一种常用的临床检测方法，用于评估人体对胰岛素的敏感性及胰岛素分泌功能是否正常。
通过该实验可以帮助医生诊断和监测糖尿病、胰岛素抵抗等疾病。
实验原理如下：1. 实验前准备在进行胰岛素耐量实验前，患者需要进行一定的准备工作。
首先，患者需要空腹至少8个小时，以保证血糖水平基线稳定。
其次，需要停止使用任何影响胰岛素分泌和血糖水平的药物，如胰岛素、降糖药等。
2. 实验步骤胰岛素耐量实验一般分为口服和静脉两种方式。
（1）口服方式：患者在空腹状态下饮服一定剂量的葡萄糖溶液，通常为75g。
然后，在特定时间点（通常为0、30、60、90、120分钟）测量患者的血糖水平，常用的测量方法是指尖采血法。
（2）静脉方式：患者在空腹状态下，通过静脉注射一定剂量的葡萄糖溶液，通常为0.5g/kg体重。
然后，在特定时间点（通常为0、1、2、3、4分钟）测量患者的血糖水平。
3. 结果分析根据实验结果，可以评估患者对胰岛素的敏感性及胰岛素分泌功能是否正常。
在正常情况下，血糖水平在饮食后会升高，胰岛素的分泌也会相应增加，从而维持血糖水平的稳定。
而胰岛素耐量实验可以检测到胰岛素分泌功能异常或胰岛素抵抗的情况。
如果实验结果显示血糖水平升高较快并持续时间较长，可能表明胰岛素分泌不足或胰岛素抵抗。
而如果血糖水平升高缓慢或在一定时间内不能恢复到正常水平，可能表明胰岛素敏感性降低。
4. 注意事项胰岛素耐量实验需要在医生的指导下进行，并且需要严格控制实验条件，以保证结果的准确性。
此外，患者在实验过程中需要密切观察自身的身体状况，如出现头晕、恶心、呕吐等不适症状应及时告知医生。
总结起来，胰岛素耐量实验是一种评估胰岛素敏感性和胰岛素分泌功能的重要方法。
通过该实验可以帮助医生了解患者的血糖调节机制，及时发现并诊断糖尿病、胰岛素抵抗等疾病。
但需要注意的是，该实验需要在医生指导下进行，并且需要严格控制实验条件和观察患者的身体状况，以保证实验结果的准确性。
甘精胰岛素临床实验
甘精胰岛素临床实验甘精胰岛素是一种新型胰岛素制剂，通过改进传统胰岛素的生物学活性及药物动力学特性，可更好地满足糖尿病患者的治疗需求。
为了验证甘精胰岛素的临床疗效和安全性，进行了一系列临床实验。
本文将就甘精胰岛素的临床实验进行介绍和讨论。
一、研究目的和方法甘精胰岛素的临床实验旨在评估其降低血糖水平和控制糖尿病的效果，并研究其安全性和耐受性。
实验采用了双盲随机对照的方法进行，将糖尿病患者随机分为实验组和对照组。
实验组患者接受甘精胰岛素治疗，对照组患者接受常规胰岛素治疗。
通过一定时间内的观察，比较两组患者的糖尿病控制情况和不良反应发生率。
二、结果及讨论甘精胰岛素临床实验的结果显示，实验组患者的血糖控制情况较好，与对照组相比具有显著差异。
实验组患者在用药一段时间后，空腹血糖水平显著下降，餐后血糖峰值也得到有效控制。
而对照组患者的血糖控制效果相对较差。
此外，甘精胰岛素治疗组的患者在整体生活质量、胰岛素使用方便性等方面也表现出优势。
相较于传统胰岛素，甘精胰岛素具有更短的作用时间和更快的药效起效时间，使得糖尿病患者能够更灵活地控制血糖水平。
关于甘精胰岛素的安全性和耐受性，临床实验结果显示，甘精胰岛素的不良反应较轻微且罕见。
部分患者在使用甘精胰岛素治疗过程中出现了注射部位的疼痛或红肿等局部反应，但这些不良反应均为临时性且可接受的。
整体而言，甘精胰岛素具有较好的安全性和耐受性。
三、结论甘精胰岛素经过临床实验的验证，显示出良好的疗效和安全性。
相较于传统胰岛素制剂，甘精胰岛素在血糖控制、生活质量以及药物的安全性方面都具有优势。
然而，为了进一步确保甘精胰岛素的临床应用价值，还需要进行更大规模的多中心临床实验，并结合长期随访观察，以评估其在长期治疗过程中的效果和安全性。
总而言之，甘精胰岛素的临床实验结果显示其在糖尿病治疗中具有潜力。
它为糖尿病患者提供了一种更有效和便利的治疗选择。
随着进一步研究的深入，相信甘精胰岛素将逐渐成为糖尿病治疗中的重要药物，并为糖尿病患者带来更好的生活质量。
(完整)胰岛素(Insulin)作业指导书
(完整)胰岛素(Insulin)作业指导书胰岛素(Insulin)1.分析原理采用双抗体夹心法原理，整个过程18分钟完成。
·第1步:20µl标本、生物素化的抗胰岛素单克隆抗体和钌（Ru)标记的抗胰岛素单克隆抗体混匀，形成夹心复合物。
·第2步：加入链霉亲和素包被的微粒，让上述形成的复合物通过生物素与链霉亲和素间的反应结合到微粒上。
·第3步:反应混和液吸到测量池中，微粒通过磁铁吸附到电极上，未结合的物质被清洗液洗去，电极加电压后产生化学发光，通过光电倍增管进行测定。
检测结果由机器自动从标准曲线上查出。
此曲线由仪器通过2点定标校正，由从试剂条形码扫入仪器的原版标准曲线而得。
2.标本要求血清：按标准常规方法采集。
血浆:肝素锂、EDTA-K3或柠檬酸钠抗凝.溶血有干扰，因为红细胞释放可降解胰岛素的肽酶。
标本在15－25度可稳定4小时,2－8度可稳定24小时，-20℃可稳定6个月。
只可冻融1次.含沉淀的标本使用前需离心.不要使用加热灭活的标本。
标本和质控品禁用叠氮钠防腐.标本、定标液和质控品在测定前应预温到室温；放入仪器后应在2小时内测定以避免蒸发的影响。
3.试剂、校准品、质控品和其他所需材料采用罗氏原装配套试剂。
试剂：M：链霉亲和素包被的微粒（透明瓶盖），1瓶，6。
5ml。
粒子浓度0。
72mg/ml，生物素结合能力： 470ng生物素/mg粒子。
含防腐剂。
R1：生物素化的抗胰岛素单克隆抗体（灰盖），1瓶，10ml，浓度高于1。
0mg/l，MES缓冲液0。
05mol/l，pH6。
0，含防腐剂。
R2：Ru(bpy)32+标记的抗胰岛素单克隆抗体(黑盖)，1瓶，10ml。
浓度1。
75mg/l，MES缓冲液0.05mol/l，pH 6.0含防腐剂.校准品(货号12017504)：Cal 1 低值定标液(白盖）,2瓶，1.0ml/瓶，胰岛素浓度约为5μU/ml，人血清,含防腐剂Cal 2 高值定标液(黑盖），2瓶，1.0ml/瓶，胰岛素浓度约为300μU/ml，人血清，含防腐剂质控品：Elecsys 通用质控品（PreciContorl Universal）1和2 ,货号11731416其他所需材料:Elecsys 2010、E170、E601或 E411分析仪Elecsys 2010和 E411分析仪需要：Elecsys 系统缓冲液（ProCell)货号11662988Elecsys测量池清洗液（CleanCell）货号11662970Elecsys 添加剂液（SysWash）货号11930346Elecsys 系统清洗液（SysClean）货号11298500Elecsys E170和 E601分析仪需要：Elecsys 系统缓冲液（ProCell）货号12135019Elecsys测量池清洗液(CleanCell）货号12135027Elecsys 系统清洗液（SysClean）货号112985004.仪器和校准使用仪器：瑞士罗氏诊断公司生产Elecsys 2010/E 170/E 601/E 411全自动电化学发光免疫自动分析仪仪器校准：每批Insulin试剂盒必须用新鲜试剂和Insulin Cal 1,Cal 2定标一次.另外，以下情况需要再次定标：Elecsys2010/E 170/E601/E 411：·一个月(同一批号试剂）· 7天（放置仪器上的同一试剂盒)各种分析仪均适用的情况：根据要求进行定标；如质控结果超出范围时；根据规定进行定标.5.操作步骤(以E 170为例）5。
胰岛素抵抗评估方法
胰岛素抵抗评估方法1 、高胰岛素正葡萄糖钳夹：是评价机体胰岛素对葡萄糖作用的“金标准”，即在胰岛素- 葡萄糖代谢平衡状态下精确测定组织对胰岛素的敏感性。
方法:(1)建立静脉输液通道及采血通道：在前臂静脉或正中静脉穿刺并留置导管建立输液通道，用于输入胰岛素和葡萄糖溶液。
葡萄糖和胰岛素输注通道经三通管与静脉通道联接。
采血通道由输液器、三通管、带延长的三通管、静脉留置针依次串连在一起，2个三通管的侧孔分别接上注射器，并保持管道通畅。
(2) 钳夹实验：测定受试者基础血糖值，设为钳夹目标。
用加热型护手袋包裹采血的手臂，使静脉血动脉化。
钳夹实验开始，前10 min 内给予受试者1个胰岛素负荷剂量，快速升高血浆胰岛素水平以抑制体内肝糖输出和内源性胰岛素的分泌。
然后以某一固定速率持续输注，获得一个稳定的高浓度血浆胰岛素水平。
在此期间，每隔5 min 测定1次血糖值，根据De Fronzo 经验公式调节葡萄糖输注率，维持血糖于目标水平，血糖趋于稳定状态时即钳夹形成.(3)正糖钳技术指标:① 钳夹稳定状态下血糖(SSPG): SSPG需控制在正常空腹血糖士10 %范围内。
胰岛素分泌呈脉冲模式，从而引起其浓度在外周血象中的波动。
血糖稳定表明内源性胰岛素及葡萄糖被抑制，是钳夹建立成功与否最直观的评判指标。
② 钳夹稳定状态下胰岛素(SSINS):较高的血浆外源性胰岛素水平才能抑制内源性肝糖及胰岛素的生成，满足实验要求。
③ 血糖变异系数(CVBG):钳夹实验期问CVBG可反映钳夹技术的稳定性与准确性。
④稳态葡萄糖输注速率(SSGIR): SSGIR等于外周组织的葡萄糖利用率，可用来评价外周组织(主要是肌肉组织)胰岛素作用，反映机体组织的胰岛素敏感性。
⑤内源性胰岛素分泌：C肽水平可评估内源性胰岛素分泌，粗略判断内源性胰岛素分泌的抑制程度。
2 、扩展葡萄糖钳夹技术(Extensions to the glucose clamp) ：此是在葡萄糖钳夹技术的基础上，依据研究目的，结合其他方法以更全面了解胰岛素敏感性的技术。
(完整版)胰岛素耐受实验
1、胰岛素耐受实验（ITT）
胰岛素用量根据小鼠的年龄和性别来决定，一般理想用量是使葡萄糖水平在注射30min 后下降至注射前的40%左右。
小鼠胰岛素耐受实验的胰岛素用量一般为0.5-1.2U/kg，胰岛素用生理盐水稀释，如用量0.5U/kg，配制浓度0.5U/ml。
0.75U/kg，0、15、30、60min测血糖；0.027U/10g=2.7U/kg
上午禁食4小时，正常饮水。
下午试验，称体重，标记序号，注射胰岛素前测血糖，胰岛素按体重计算注射量，在15min、30min、45min、60min分别测血糖，实验完毕，每笼补充上饲料。
2、葡萄糖耐受实验（GTT）
小鼠葡萄糖耐受实验的葡萄糖用量一般为1.5-2g/kg，如葡萄糖2 g/kg，用生理盐水配制20%葡萄糖溶液。
1g/kg，0、15、45、75、105min测血糖，10%葡萄糖注射液，注射量0.1mg/10g体重。
前一天下午5点禁食，16h即次日上午9点，饮水正常。
注射前测血糖，腹腔注射葡萄糖，每g注射0.01ml，每只间隔1min，在15min、30min、60min、90min、120min分别测血糖，实验完毕，每笼补充上饲料。
胰岛素释放C肽释放和糖耐量实验
C肽释放试验C肽就是胰岛β细胞的分泌产物,它与胰岛素有一个共同的前体——胰岛素原。
一个分子的胰岛素原在特殊的作用下,裂解成一个分子的胰岛素与一个分子的C肽,因此在理论上C肽与胰岛素就是等同分泌的,血中游离的C肽生理功能尚不很清楚,但C肽不被肝脏破坏,半衰期较胰岛素明显为长,故测定C肽水平更能反应β细胞合成与释放胰岛素功能。
对已经用胰岛素治疗的病人,体内产生的胰岛素抗体可干扰胰岛素测定;同时现在采用的放免法测定胰岛素,也分辨不出就是内生的还就是外源性胰岛素,给了解β细胞的功能带来困难,而C肽与胰岛素之间有相当稳定的比例关系,且不受胰岛素抗体的干扰,注射的外源性胰岛素又不含C肽,所以测定血中C肽水平,可以反应内生胰岛素的水平,既可了解β细胞的功能。
1、C肽释放试验的做法与注意事项与葡萄糖耐量试验,胰岛素释放试验相同,它的临床意义就是:(1)测定C肽,有助于糖尿病的临床分型,有助于了解患者的胰岛功能。
(2)因为C肽不受胰岛素抗体干扰,对接受胰岛素治疗的患者,可直接测定C肽浓度,以判定患者的胰岛β细胞功能。
(3)可鉴别低血糖的原因。
若C肽超过正常,可认为就是胰岛素手泌过多所致,如C肽低于正常,则为其它原因所致。
(4)C肽测定有助于胰岛细胞瘤的诊断及判断胰岛素瘤手术效果,胰岛素瘤血中C肽水平偏高,若手术后血中C肽水平仍高,说明有残留的瘤组织,若随访中C肽水平不断上升,揭示肿瘤有复发或转移的可能。
空腹1h 2h 3h正常 0、38±0、15 1、38±0、47 1、06±0、58 0、52±0、251型DM 0、06±0、04 0、13±0、11 0、18±0、23 0、09±0、112型DM 0、62±0、35 1、11±0、77 1、33±0、79 1、08±0、81胰岛素释放试验(Ins)就就是令病人口服葡萄糖或用馒头来刺激胰岛β细胞释放胰岛素,通过测定空腹及服糖后1小时、2小时、3小时的血浆胰岛素水平,来了解胰β细胞的储备功能, 也有助于糖尿病的分型及指导治疗。
胰岛素过量反应及解救实验报告结果
胰岛素过量反应及解救实验报告结果胰岛素是一种能够下调血糖的激素，但在某些情况下，人会出现胰岛素过量反应，如糖尿病患者误注胰岛素、儿童偶然口服、超量注射胰岛素等。
胰岛素过量反应会造成低血糖，若不及时救治，可导致昏迷、甚至死亡。
本实验旨在探究胰岛素引起的低血糖症状以及解救方法。
实验设计：
将小鼠随机分为胰岛素组和生理盐水组，胰岛素组小鼠腹腔注射胰岛素(2 IU/kg)后建立模型。
两组小鼠在注射后分别12、24、48、72h时取血检测空腹血糖(FBG)、胰岛素浓度和肝、肌肉、脑组织内糖原含量，观察小鼠运动活力和体重等指标。
实验结果：
注射胰岛素后12h，胰岛素组小鼠FBG显著降低(P<0.05)，与生理盐水组差异有统计学意义。
注射后24、48、72h，胰岛素组小鼠FBG与生理盐水组无显著性差异(P>0.05)。
注射后12h，胰岛素组小鼠血清胰岛素浓度显著升高(P<0.01)，注射后24、48、72h，与生理盐水组无明显差异(P>0.05)。
胰岛素组小鼠肝、肌肉、脑组织内的糖原含量显著降低
(P<0.01)，注射后24、48、72h，与生理盐水组无明显差异(P>0.05)。
胰岛素组小鼠显著减少了运动活力和体重。
实验结论：
本实验模拟小鼠胰岛素过量反应，发现注射后12h小鼠出现低血糖症状，血糖水平下降明显；血清胰岛素浓度显著升高，并且组织内糖原含量降低。
注射后24、48、72h，以上指标与生理盐水组差异不显著。
此外，
小鼠在注射胰岛素后运动活力和体重显著减少。
因此，在胰岛素过量反应时，应尽快补充葡萄糖或给予稳定剂等解救措施。
胰岛素实验报告
胰岛素实验报告
胰岛素是一种重要的激素，它在调节血糖水平方面起着至关重要的作用。
本实
验旨在研究胰岛素对血糖水平的影响，以及了解其在调节血糖方面的作用机制。
实验方法：
首先，我们准备了一组小鼠作为实验对象，分为实验组和对照组。
然后，我们
测定了它们的空腹血糖水平作为基准值。
接着，我们给实验组的小鼠注射了一定剂量的胰岛素，而对照组则注射了生理盐水作为对照。
随后，我们在不同时间点测定了它们的血糖水平，并记录下实验数据。
实验结果：
经过一系列的测定和记录，我们得出了以下实验结果，在注射胰岛素后，实验
组小鼠的血糖水平明显下降，而对照组的血糖水平基本保持不变。
这表明胰岛素能够有效降低血糖水平。
同时，我们观察到实验组小鼠在注射胰岛素后出现了一些低血糖症状，如乏力、出汗等，但这些症状在一段时间后逐渐消失。
实验结论：
通过本实验，我们可以得出以下结论，胰岛素能够显著降低血糖水平，从而起
到调节血糖的作用。
然而，过量的胰岛素会导致低血糖症状的出现，因此在临床应用中需要谨慎使用。
此外，我们还需要进一步研究胰岛素的作用机制，以便更好地应用于临床实践中。
总结：
本实验为我们提供了关于胰岛素调节血糖的重要信息，同时也为我们提供了进
一步研究的方向。
胰岛素作为一种重要的激素，在糖尿病等疾病的治疗中起着至关重要的作用，因此对其作用机制的深入了解将有助于我们更好地应用于临床实践中。
通过本次实验，我们对胰岛素的作用有了更深入的了解，也为我们未来的研究提供了重要的参考。
希望我们能够通过不懈的努力，为人类健康事业做出更大的贡献。
胰岛素耐量实验原理
胰岛素耐量实验原理胰岛素耐量实验是一种常用的临床检测手段，用来评估机体对胰岛素的敏感性和胰岛素分泌功能。
该实验可以帮助医生判断患者是否存在胰岛素抵抗或胰岛素分泌不足的问题，进而指导治疗方案的制定。
本文将详细介绍胰岛素耐量实验的原理和相关知识。
胰岛素耐量实验的原理是通过给予患者一定剂量的胰岛素，观察血糖水平的变化来评估机体对胰岛素的反应。
一般来说，该实验包括两个步骤：1) 空腹血糖测定和2) 胰岛素注射后血糖测定。
在空腹状态下，患者需要在早上饭前至少8个小时不进食。
医生会在空腹时测量患者的血糖水平，以作为基础值。
然后，医生会给患者注射一定剂量的胰岛素，通常是0.1单位/千克体重。
胰岛素注射后，医生会定时测量患者的血糖水平，通常是在注射后30分钟、60分钟、90分钟和120分钟进行测定。
通过对比胰岛素注射前后的血糖水平变化，医生可以判断机体对胰岛素的反应情况。
如果血糖水平在注射胰岛素后迅速下降，并在注射后的时间段内保持较低水平，表明机体对胰岛素的敏感性较好。
反之，如果血糖水平下降缓慢或者下降幅度较小，表明机体对胰岛素的反应较差，可能存在胰岛素抵抗或胰岛素分泌不足的问题。
胰岛素耐量实验的原理基于胰岛素在调节血糖水平中的重要作用。
胰岛素是由胰岛β细胞分泌的一种激素，它能够促进葡萄糖的摄取和利用，降低血糖水平。
胰岛素还能够抑制肝脏的糖原分解和新陈代谢产物的合成，从而进一步降低血糖水平。
如果机体对胰岛素的反应正常，胰岛素能够有效地调节血糖水平，使其维持在正常范围内。
反之，如果机体对胰岛素的反应异常，血糖水平就会升高，导致高血糖和糖尿病等问题的发生。
胰岛素耐量实验的结果可以帮助医生判断患者的胰岛素敏感性和胰岛素分泌功能是否正常。
正常人在空腹状态下，胰岛素注射后血糖水平会迅速下降，并在注射后的时间段内保持较低水平。
而胰岛素抵抗患者的血糖水平下降较慢或下降幅度较小，胰岛素分泌不足患者的血糖水平则会持续较高。
胰岛素耐量实验在临床上具有重要的意义。
胰岛素释放C肽释放和糖耐量实验
胰岛素释放C肽释放和糖耐量实验Safety is the first principle of investment. December 21, 2020C肽释放试验C肽是胰岛β细胞的分泌产物,它与胰岛素有一个共同的前体——胰岛素原;一个分子的胰岛素原在特殊的作用下,裂解成一个分子的胰岛素和一个分子的C肽,因此在理论上C肽和胰岛素是等同分泌的,血中游离的C肽生理功能尚不很清楚,但C肽不被肝脏破坏,半衰期较胰岛素明显为长,故测定C肽水平更能反应β细胞合成与释放胰岛素功能;对已经用胰岛素治疗的病人,体内产生的胰岛素抗体可干扰胰岛素测定；同时现在采用的放免法测定胰岛素,也分辨不出是内生的还是外源性胰岛素,给了解β细胞的功能带来困难,而C肽与胰岛素之间有相当稳定的比例关系,且不受胰岛素抗体的干扰,注射的外源性胰岛素又不含C肽,所以测定血中C肽水平,可以反应内生胰岛素的水平,既可了解β细胞的功能;1、C肽释放试验的做法与注意事项与葡萄糖耐量试验,胰岛素释放试验相同,它的临床意义是：1测定C肽,有助于糖尿病的临床分型,有助于了解患者的胰岛功能;2因为C肽不受胰岛素抗体干扰,对接受胰岛素治疗的患者,可直接测定C肽浓度,以判定患者的胰岛β细胞功能;3可鉴别低血糖的原因;若C肽超过正常,可认为是胰岛素手泌过多所致,如C肽低于正常,则为其它原因所致;4C肽测定有助于胰岛细胞瘤的诊断及判断胰岛素瘤手术效果,胰岛素瘤血中C肽水平偏高,若手术后血中C肽水平仍高,说明有残留的瘤组织,若随访中C肽水平不断上升,揭示肿瘤有复发或转移的可能;空腹1h2h3h正常 0.38±0.15 1.38±0.47 1.06±0.58 0.52±0.25 1型DM 0.06±0.04 0.13±0.11 0.18±0.23 0.09±0.11 2型DM 0.62±0.35 1.11±0.77 1.33±0.79 1.08±0.81胰岛素释放试验Ins就是令病人口服葡萄糖或用馒头来刺激胰岛β细胞释放胰岛素,通过测定空腹及服糖后1小时、2小时、3小时的血浆胰岛素水平,来了解胰β细胞的储备功能,也有助于糖尿病的分型及指导治疗;本试验做法与注意事项均与葡萄糖耐量试验相同;已确诊为糖尿病可吃含面粉100克的馒头,未确诊者用75克葡萄糖;正常人口服葡萄糖后,随血糖的上升,血浆胰岛素水平也迅速上升,高峰一般在服糖后1小时出现且为空腹值的5－10倍,然后逐渐下降,至3小时应接近空腹水平,即胰岛素释放试验与糖耐量试验同步;1、糖尿病病人的胰岛素释放试验曲线可分三种类型：（1）胰岛素分泌减少型;患者空腹血浆胰岛素水平很低,口服100克馒头后,仍然很低,无高峰出现,说时患者胰岛素分泌绝对不足,β细胞的功能衰竭,见于胰岛素2型糖尿病病人或2型糖尿病病人的晚期,提示必需采用胰岛素治疗; （2）（3）（4）胰岛素分泌增多型;患者空腹血浆胰岛素水平正常或高于正常,刺激后曲线上升迟缓,高峰在2小时或3小时,其峰值高于正常但仍低于无糖尿病而体重相似的单纯肥胖者,提示患者胰岛素相对不足,多见于非胰岛素依赖型的肥胖者,应严格控制饮食,增加运动,积极减轻体重;（5）胰岛素释放障碍型;患者空腹血浆胰岛素可高可低,但刺激后曲线上升延缓,且峰值低于正常人,此型应用磺脲类药物治疗有效;2、参与正常值及参考病理值x±SDμu/ml3、空腹1h2h3h正常 12.7±7.1 71.6±33.8 46.9±26.7 14.9±9.91型DM 6.5±2.6 16.1±5.3 13.2±5.2 8.3±3.42型DM 16.9±6.6 43.5±27.6 40.3±21.9 21.4±0.9胰岛素释放和糖耐量的区别糖耐量异常IGT1、糖耐量通常的试验方法是先测定检查者早晨空腹血糖的含量,接着让患者在空腹情况下口服75克葡萄糖,然后隔半小时、1小时、2小时及3小时分别测定血糖含量,并以时间为横坐标,血糖浓度为纵坐标,绘成曲线,称为耐糖曲线;2、糖耐量异常IGT是指OGTT试验2小时后的血糖水平升高,超过正常的7.8mmol/L,但仍未达到11.1mmol/L的糖尿病诊断标准;这些患者称为葡萄糖耐量异常;3、糖耐量异常是一种正常人向糖尿病的过度状态,这部分人虽然现在还不是糖尿病,但是将来发生2型糖尿病危险性非常高;胰岛素释放实验：1、胰岛素释放试验主要是通过口服葡萄糖后刺激胰岛B细胞的分泌,在不同的时间检查血中胰岛素的浓度,来确定胰岛B细胞的功能;2、1型糖尿病人胰岛素分泌严重缺乏,餐后胰岛素值分泌也无明显增加；2型糖尿病人早期空腹胰岛素水平可略高或正常,晚期则往往减低,餐后胰岛素分泌高峰多延迟在2-3小时出现;3、C肽释放试验意义与胰岛素释放试验性同;糖耐量试验OGTT试验是一种口服葡萄糖负荷试验,用以了解人体对进食葡萄糖后的血糖调节能力;通过OGTT试验,可以早期发现糖代谢异常,早期诊断糖尿病; 1.做OGTT试验前3天,不应该控制饮食,每天饮食中碳水化合物含量不应低于150克,并且维持正常活动; 2.影响本试验的药物引起血糖升高或降低的药物应停用;3.试验前病人应10～14个小时不进食;4.试验当日早晨空腹静脉取血后在5分钟之内饮入300毫升含75克葡萄糖的糖水,喝糖水后30分钟、1小时、2小时分别静脉取血一次,并留取尿液做尿糖定性试验;整个试验中不可吸烟、喝咖啡、喝茶或进食,应安静地坐在椅子上试验结果判定1.当静脉空腹血糖＜6.1mmol／L,OGTT 两小时血糖＜7.8mmol／L,说明人体对进食葡萄糖后的血糖调节能力正常,为糖耐量正常;2.当静脉空腹血糖≥7.0mmol ／L或OGTT两小时血糖≥11.1mmol／L,尿糖＋～＋＋＋＋,说明人体处理进食后葡萄糖的能力明显降低,已达到糖尿病的诊断标准;3.当静脉空腹血糖＜7.0mmol／L并且OGTT两小时血糖介于7.8～11.1mmol／L之间,说明人体对葡萄糖的调节能力轻度下降,已达到糖耐量低减的诊断标准;4.当静脉空腹血糖介于6.1～7.0mmol／L之间,且OGTT两小时血糖≤7.8mmol／L,说明人体对进食葡萄糖后的血糖调节能力尚好,但对空腹血糖调节能力轻度减退,已达到空腹血糖受损的诊断标准;。
胰岛素抵抗的实验研究
本工作根据Ｓ自０ｒｌｉｅｎ ＬＨ的配方制作高脂饲料（ｈｉ曲ｆａｔ ｄｉｅｔ，ｍ酗ＬＴ），分别喂饲正
常成年ｓＤ大鼠３０天和６０天，用Ｋ瑚ｇｅｎ Ｅｗ方法建立正糖钳技术评估瓜，以葡
萄糖输注率（西ｕｃ０∞ｉｎ向ｓｉｏｎ Ｌａｔｅ，ＧＩＲ）反映ＩＲ，观察ｍ形成和发展过程中禁食期 血糖，血脂，血清胰岛素，脂肪细胞大小和相关脂肪细胞源性因子ｌｅｐ血（瘦素）及 肿瘤坏死因子ａ（ｔＩ蛐ｏｒ ｎｅｃｍｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ。ａｌｐｈａ，１ＮＦ ｄ）的改变。对大鼠附睾脂肪垫脂 肪细胞进行体外培养。
论文题目
中国汕和医科大学硕士学位论文
胰岛素抵抗的实验研究
研究生：张荣 导 师：许荣煜研究员 学 科：生理学 研究方向：脂肪细胞源性因子与胰岛素抵抗 所在院所：北京协和医科大学
中国医学科学院基础医学研究所
２００３年６月
中国协和医科大学硕士学位论文
论文：胰岛素抵抗的实验研究
英文缩略语表
缩语
英文原文
ＩＲ
ｇｌｕｃｏｓｅ ｉＩｌ】融ｓｉｏｎ ｒａｔｅ Ⅱｏｎｅｓｔｅｒｉ丘ｃｄ ｆａｔＩｙ∞ｉｄ ｆｋｅｆＩａｔａｃｉｄ
ＴＧ ＣＨ０ ＲＩＡ ＥＬＩＳＡ ＡＴ．１ＮＦ ＧＬＵＴ－４ ＬＰＬ ＢＡＴ
ｔｒｉ９１ｙｃ嘶ｄｅｓ
ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ
ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｅ嬲ｓａｙ
ｃｎ巧ｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍ啪ｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ ａｄｉｐｏｓｅ ｔｉｓ锄ｅ ｉｓ ｓｏｌｌｒｅ ｏｆ耵吓
胰岛素抵抗的检验方法
胰岛素抵抗的检验方法胰岛素抵抗的检测方法很多，按设计原理大致分为三类：1.开环法：即阻断内源性葡萄糖与胰岛素反馈环法，如正常葡萄糖高胰岛素钳夹技术、胰岛素抑制试验。
2.闭环法：即激发葡萄糖与胰岛素反馈环法，如最小模型技术、口服葡萄糖耐量试验、胰岛素耐量试验、胰高血糖素试验和持续输注葡萄糖模型分析法 3.基础状态法：用基础状态下的空腹血糖（FPG）和空腹胰岛素浓度（FBI）两个指标评估胰岛素抵抗，如FBG/FBI，1/FBG×FBI和稳态模型评价（HOMA）等。
正常血糖高胰岛素钳夹技术（EICT）被公认为评价胰岛素的金标准；最小模型法与EICT相关性好，被认为是准确性较高的检测方法但两种方法操作繁琐，不适合大样本人群胰岛素抵抗的普查。
胰岛素敏感指数、稳态模型法以及空腹胰岛素水平等方法简便易行，以被广泛应用于胰岛素抵抗的普查。
3.1正常血糖胰岛素钳夹技术（EICT）EICT是目前公认的检测胰岛素抵抗的方法，被认为是IR检测的金标准。
本方法是测定组织对外源性胰岛素敏感性的方法，快速连续胰岛素灌注使血浆胰岛素浓度迅速升高并维持在一定水平，改变葡萄糖灌注率使血糖稳定在基线水平。
在这种水平下可通过抑制肝糖输出和内源性胰岛素的分泌，即阻断内源性葡萄糖－胰岛素反馈，这时葡萄糖灌注率等于外源性胰岛素介导的机体葡萄糖代谢率。
具体方法为：空腹12h，抽血测基础血糖、胰岛素的值，静滴胰岛素 1.5mU/kg.min,使血胰岛素维持在100mU/L，保持此速率不变，然后静滴2％葡萄糖（2mg/kg.min）,每隔5min监测血糖一次，并用Harvard 泵调整葡萄糖的输注速率（GIR），以外源性胰岛素钳制血糖于正常水平（5.2+_0.1mmol/L）持续60min。
血胰岛素浓度在50mU/L以上能抑制90％肝脏内源性葡萄糖生成，因此外源注入葡萄糖量减去机体所有组织摄取量，即为胰岛素介导的葡萄糖代谢率和单位胰岛素所代谢葡萄糖量，这就是胰岛素敏感性指标，应用较普遍。
胰岛素耐糖实验报告
一、实验目的1. 了解胰岛素对血糖浓度的影响；2. 掌握胰岛素耐糖实验的操作方法；3. 分析胰岛素耐糖实验的结果，评估受试者的胰岛素敏感性。
二、实验原理胰岛素是一种由胰岛β细胞分泌的激素，具有降低血糖的作用。
胰岛素耐糖实验是通过观察受试者在给予葡萄糖负荷后血糖的变化，以及胰岛素分泌的情况，来评估受试者的胰岛素敏感性。
三、实验材料1. 受试者：年龄、性别、体重、身高等基本资料；2. 仪器：血糖仪、胰岛素测定仪、葡萄糖粉、注射器等；3. 药品：胰岛素；4. 其他：记录表、计算器等。
四、实验方法1. 受试者空腹8-12小时，采集空腹血糖和胰岛素；2. 受试者口服葡萄糖粉（75g），并在服用前、服用后30分钟、1小时、2小时、3小时分别采集血糖和胰岛素；3. 比较空腹和负荷后各时间点的血糖和胰岛素水平，计算胰岛素敏感性指数（ISI）。
五、实验结果1. 空腹血糖：受试者空腹血糖水平为（4.2±0.6）mmol/L；2. 空腹胰岛素：受试者空腹胰岛素水平为（8.5±2.1）μU/ml；3. 负荷后血糖和胰岛素水平：- 30分钟：血糖（6.8±1.2）mmol/L，胰岛素（12.3±3.5）μU/ml；- 1小时：血糖（8.5±1.5）mmol/L，胰岛素（20.6±4.8）μU/ml；- 2小时：血糖（6.2±1.1）mmol/L，胰岛素（15.2±3.9）μU/ml；- 3小时：血糖（5.0±0.9）mmol/L，胰岛素（10.4±2.6）μU/ml；4. 胰岛素敏感性指数（ISI）：受试者ISI为（5.4±1.2）。
六、实验分析1. 受试者空腹血糖和胰岛素水平正常；2. 负荷后血糖和胰岛素水平在1小时内达到峰值，2小时后逐渐下降，3小时恢复至空腹水平；3. 受试者ISI处于正常范围，表明受试者胰岛素敏感性良好。
胰岛素抵抗诊断方法
HOMA-IR难以观察到这一类病人： 空腹胰岛素、空腹血糖正常， 在30min-1h没有达峰 Max超过了是基础值的5-10倍 3h未回落 也就是胰岛素的分泌曲线与正常有差别，出
现延迟或者峰值过高—OGTT的优势
如果想明确一个人是否有IR，先确定他是否 有代谢综合征，若有IR，它的糖代谢脂质代 谢都会紊乱继而有代谢综合征，反之亦然。
2.胰岛素的测定方法不同，所得的数值不同，比 如化学发光法测定值低于放免测定值” 因此， 一致的测定药盒和质量控制及一致的测定方法对 胰岛素测定的标准化无疑是重要的。
1.采用CLAMP，MMT准确率高，难以实施， 仅小适合于大样本研究。
2.胰岛素释放及Homa-IR是用于评估胰岛素 抵抗的简易指标。在非糖尿病或轻度I
， 10000（Go ×Io）1/2（Gmean×Imean） ½
加入了OGTT中平均胰岛素和平均血糖，与 金标准的相关性优于HOMAIR，原理同 HOMA，计算稍复杂。
胰岛素释放曲线下面积AUC= 0．5x(空腹值+】80 min值)+60 min值+120
min值]。现少用，
FINS(μU/L)×FPG(mmol/L)÷22.5 ＜2.69 即： 空腹血糖 × 空腹胰岛素＜60 正常人（3.9-6.1）× （小于10）＜60 血糖6.1-6.9即是糖耐量受损，是DM前期
胰岛素相对不足 刺激胰岛分泌胰岛素 高胰岛素血症 胰岛素抵抗
正常血糖高胰岛素钳技术（CLAMP） 最小模型法（MMM）
HOMA-IR稳态模型胰岛素抵抗指数 胰岛素释放试验
原理：利用负反馈原理调节血糖
方法：快速连续胰岛素灌注使血浆胰岛素浓 度迅速升高并维持在一定水平，改变葡萄糖 灌注率使血糖稳定在基线水平。在这种水平 下可通过抑制肝糖输出和内源性胰岛素的分 泌，即阻断内源性葡萄糖－胰岛素反馈，这 时葡萄糖灌注率等于外源性胰岛素介导的机 体葡萄糖代谢率。
糖耐量胰岛素释放试验【优质最全版】
• 1型糖尿病释放曲线低平；2型糖尿病血清胰岛素(C-肽)可正常、稍高或减低 、释放曲线高峰后移。
1.正常人的OGTT
分析：血糖高峰在1小时
2.高危人群
分析：血糖高峰在1小时 服糖后1小时血糖＞应按糖尿病高危患者对待，应进一
步测胰岛素释放曲线，是否有胰岛分泌高峰延迟。 肾糖阈为左右。
分析：血糖高峰在1小时 空腹血糖已达糖尿病诊断标准，虽然服糖后2小时血糖正常也应诊断 糖尿病，但需复查OGTT，2次以上同样结果方能诊断。尿糖无梯度无 法确定肾糖阈。
分析：血糖高峰在1小时 虽然空腹血糖正常，但服糖后2小时血糖为仍然应诊断糖尿病，但需 复查OGTT，2次以上同样结果方能诊断。肾糖阈应在左右。
0.3-1.3
胰岛素 实测值 mU/L 参考值
10-20 5-20
峰值为空腹胰岛素的 ＜30
5-10倍
10-20
说明1
尿糖无梯• 度无O法GT确T定参肾糖考阈。值：口服葡萄糖后30分钟-1小时，血糖达高峰（一般为，峰值＜）.2小时
4高、峰2后型移糖。尿病血患糖者（空腹2h胰P岛G）素水＜平恢可复正常至，空或腹稍低水于平正。常，5.但各往检往测高峰时出间现点的时的间尿延糖迟，均如为在阴服糖性后。2小时或3小时出现，呈分泌延迟 虽然空腹• 血糖临正床常上，但有服以糖下后2条小时件血者糖，为仍即然可应诊诊断断糖糖尿尿病，病但需复查OGTT，2次以上同样结果方能诊断。 (及22型)高从糖胰胰尿岛••岛病素素血血看（、清症，胰1，0）岛点胰素具超岛(过C有素-正肽早糖常)期可尿值分正，病泌常服减、症糖少稍状后，高1，且或/2分小减FP泌时低G高胰、、峰岛释后素放移分曲，泌线是减高2少峰型，后糖其移尿他。病各的点特水征平。都很高，但不能很好地控制血糖，更证明胰岛素抵抗 (1)从血•糖看，(可3诊) 断具糖有耐量临低床减症。 状，随机血糖，且伴有尿糖阳性者。 ((31))空腹具•血有糖临及临床服症床糖状症后，2状随小机不时血血典糖糖型，都且者达伴到，有糖需尿尿糖要病阳诊另性断一者标。天准。重复检测确诊，但一般不主张做第3次OGTT.
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1、胰岛素耐受实验（ITT）
胰岛素用量根据小鼠的年龄和性别来决定，一般理想用量是使葡萄糖水平在注射30min 后下降至注射前的40%左右。
小鼠胰岛素耐受实验的胰岛素用量一般为0.5-1.2U/kg，胰岛素用生理盐水稀释，如用量0.5U/kg，配制浓度0.5U/ml。
0.75U/kg，0、15、30、60min测血糖；0.027U/10g=2.7U/kg
上午禁食4小时，正常饮水。
下午试验，称体重，标记序号，注射胰岛素前测血糖，胰岛素按体重计算注射量，在15min、30min、45min、60min分别测血糖，实验完毕，每笼补充上饲料。
2、葡萄糖耐受实验（GTT）
小鼠葡萄糖耐受实验的葡萄糖用量一般为1.5-2g/kg，如葡萄糖2 g/kg，用生理盐水配制20%葡萄糖溶液。
1g/kg，0、15、45、75、105min测血糖，10%葡萄糖注射液，注射量0.1mg/10g体重。
前一天下午5点禁食，16h即次日上午9点，饮水正常。
注射前测血糖，腹腔注射葡萄糖，每g注射0.01ml，每只间隔1min，在15min、30min、60min、90min、120min分别测血糖，实验完毕，每笼补充上饲料。