感受态细胞制备的几种方法

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大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法

关于感受态细胞(Competent cells)

常态的细胞不能摄入外部溶液中的DNA,,所以要转化质粒DNA进入大肠杆菌必须首先制备感受态的大肠杆菌细胞。受体细胞经过一些特殊方法(如:CaCl,RuCl等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生变化,成为能容许多有外源DNA的载体分子通过的感受态细胞(competent cell) 。

转化,是将异源DNA分子引入一细胞株系,使受体细胞获得新的遗传性状的一种手段,是基因工程等研究领域的基本实验技术。进入细胞的DNA分子通过复制表达,才能实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。转化过程所用的受体细胞一般是限制-修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株。

α-互补现象:因为许多载体都带有一个LacZ基因的调控序列和头146个氨基酸的编码信息,编码α-互补肽,该肽段能与宿主编码的缺陷型β-半乳糖苷酶实现基因内互补(α-互补)。当这种载体转入可编码?-半乳糖苷酶C端部分序列的宿主细胞中时,在异丙基-?-D 硫代半乳糖苷(IPTG)的诱导下,宿主可同时合成这两种肽段,虽然它们各自都没有酶活性,但它们可以融为一体形成具有酶活性的蛋白质。所以称这种现象为α-互补现象。由互补产生的α-半乳糖苷酶(LacZ)能够作用于生色底物5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-gal)而产生蓝色的菌落,所以利用这个特点,在载体的该基因编码序列之间人工放入一个多克隆位点,当插入一个外源DNA片段时,会造成LacZ(α)基因的失活,破坏α-互补作用,就不能产生具有活性的酶。所以,有重组质粒的菌落为白色,而没有重组质粒的菌落为蓝色。

大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法

方法一:

细菌转化的方法多以Mendel和Higa(1970)的发现为基础,其基本方法是用冰预冷的CaCl2或多种2价阳离子等处理细菌,使之进入感受态得以转化。

用CaCl2制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞,常用于成批制备感受态细菌。本法适用于大多数大肠杆菌菌株,且迅速、重复性好。操作过程简述如下。

1.从37℃培养16~20h的新鲜平板中挑取一个单菌落(如大肠杆菌DH52),或1ml

新鲜的16~20h过夜培养物,转到一个含有100mlLB培养基的1L或500ml烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养约2~3h(旋转摇床200~300r/min),每隔20~30min测量OD600值≈0.4。

2.在无菌条件下将细菌转移到一个,用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中,在冰上放置10~20min。

3.于4℃用SorvallGS2转头(或与其离心管相配的转头)以4000r/min离心10min,以回收细胞。

4.倒数培养液,将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。

5.以10ml用冰预冷的0.1mMCaCl2重悬每份沉淀,放于冰上。

6.于4℃用SorvallGS3转头(或与其相应的转头)以4000r/min离心10min,以回收细胞。

7.倒出培养液,将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。

8.每50ml初始培养物用2ml冰预冷的0.1M CaCl2重悬每份沉定,此时,可以迅速将细胞分装成小份,液氮中冰冻,-70℃贮存备用。

9.用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200μl转移到无菌的微量离心管中,每管加DNA或连接反应混合物(体积≤10μl,DNA≤50ng),轻轻旋转以混匀内容物,在冰中放置30min。

10.将离心管放到预加温到40℃的循环水浴中的试管架上,放置90s~2min,不要摇动试管。

11.快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却1~2min。

12.每离心管加800μlSOC培养基,用水浴将培养基加温到37℃,然后将管转移到37℃摇床上,温育45min使细菌复苏,并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。

13.将适当体积(每个90mm平板可达200μl)已转化的感受态细胞转移到含200mmol/l MgSO4和相应抗生素的SOB培养基上。

14.将平板置于室温至液体被吸收。

15.倒置平皿,于37℃培养,12~16h后可出现菌落。

方法二:

CASsuper One-Step Competent Cell Preps Kit 采用一种简单便捷的方法处理大肠杆菌,使其成为感受态细胞,便于质粒DNA的转化,可满足一般实验的要求。与CaCl2法相比具有多种优点:使用方便,只需一步即可完成感受态细胞的制备;转化效率略高于CaCl2法,一般可达106-108cfu/μg,满足一般实验需要;感受态细胞制成后即可保存于-70℃,无须加入甘油,并且经长期保存活力无明显下降。

准备工作:

1.从液氮或低温冰箱中取出的大肠杆菌冻存菌,在LB平板上划线,37度过夜至长

出单菌落。挑形态饱满的单菌落2个,分别接种5ml LB培养基中,37℃,250rpm,

过夜培养。

2.次日从5ml LB培养物吸取200μl转入50ml LB培养基中(250ml 锥形瓶),37 ℃,250rpm培养2小时,此时OD600约0.4—0.5。

感受态细胞的制备:

3.吸取1ml菌液到1.5ml离心管里,5000rpm离心5分钟,弃去上清。

4.加入100μl预冷的Solution A,悬浮菌体,冰浴30分钟。

5.此时感受态细胞已经制成可立即使用或-70℃保存。

细胞转化:

6.在感受态细胞中加入100pg-10ngDNA,混匀,冰浴30分钟,然后42℃ 1分钟热

击,再次冰浴2 分钟。加入0.9ml LB 培养基,20μl Solution B,37℃,振荡

培养1小时。

7.取适当菌液(100-200μl)涂布相应抗性的平板。

8.过夜培养约16个小时,数菌落数,计算转化率。

补充说明:

1.所用器具一定要清洁;

2.操作步骤2 中培养基的装量也是很重要的,建议装量不要高于此值:500ml 锥形瓶装100ml培养基,250ml锥形瓶装50ml培养基;

3.在收获菌体前半小时还可以在培养基中加入20mM的MgCl2 ,效果会更好一些;

4.为保证细胞处于对数生长期,培养后的菌体的OD值不要高于0.6;

5.制备感受态细胞时所有操作尽量保证在冰上操作;

6.细胞转化操作步骤6中也可以不必进行热击,冰浴后直接加入新鲜LB,简化操作

步骤,但转化效率低于热击方法,适用于对转化率要求不高的实验。

方法三:

1、取1%大肠杆菌E.coli接种于含2ml LB培养基的试管中,37℃振荡培养过夜

2、取0.1ml过夜培养物转种于含10ml LB培养基的三角瓶中,37℃振荡培养3h至OD600=0.3

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