神经干动作电位电生理实验
神经干动作电位的引导实验报告
神经干动作电位的引导实验报告神经干动作电位的引导实验报告引言：神经干动作电位（N1）是一种被广泛应用于神经科学研究中的电生理信号。
它是大脑对外界刺激做出反应时产生的一种特殊电位，能够提供关于感知、认知和运动等神经活动的重要信息。
本实验旨在通过对被试者进行视觉刺激，观察和记录N1的变化，来探讨神经活动与认知过程之间的关系。
实验设计：本实验采用单盲、交叉设计，共招募了20名健康成年被试者（10男性，10女性）。
被试者在实验前接受了详细的说明和知情同意，并被告知实验的目的和过程。
实验材料：实验中使用的材料包括：电脑、视觉刺激软件、脑电图（EEG）采集设备、触发器和眼动仪。
实验过程：每位被试者均被要求坐在舒适的座椅上，头部被固定在脑电图采集设备上。
实验开始前，被试者进行了简单的眼动校准。
实验过程中，被试者需要盯着电脑屏幕上的十字标记，同时观看一系列视觉刺激。
这些刺激包括不同颜色和形状的图案，以及一些文字和数字。
每个刺激呈现时间为200毫秒，间隔时间为500毫秒。
数据采集与分析：实验过程中，我们使用脑电图采集设备记录被试者的脑电信号。
同时，我们还使用眼动仪记录被试者的眼动轨迹。
脑电信号和眼动数据被实时传输到计算机上进行存储和分析。
数据分析的主要方法包括：1. 神经干动作电位（N1）的提取：通过对脑电信号进行滤波和平均化，我们可以提取出N1的波形特征。
2. 眼动数据的分析：通过分析眼动数据，我们可以了解被试者在不同刺激条件下的注意力分配和眼球运动情况。
3. 统计分析：通过使用统计学方法，我们可以比较不同刺激条件下的N1幅值和潜伏期，并探讨其与认知过程的关系。
结果与讨论：经过数据分析，我们观察到在不同刺激条件下，被试者的N1幅值和潜伏期存在显著差异。
例如，当被试者观看红色图案时，N1幅值较大，潜伏期较短；而在观看蓝色图案时，N1幅值较小，潜伏期较长。
这表明神经活动与颜色刺激之间存在一定的关联性。
此外，眼动数据的分析结果显示，被试者在观看不同刺激条件下的眼球运动模式也存在差异。
实验8神经干动作电位
兴奋性和动作电位的传导。
05 实验结论
CHAPTER
神经干动作电位的形成机制与传导方式
形成机制
神经干动作电位是由多个神经元 兴奋产生的电位变化，通过神经 元之间的电信号传递，最终形成 动作电位。
传导方式
神经干动作电位通过神经元之间 的突触连接传递，通过电信号的 传递，使兴奋在神经元之间传递 ，最终传导至整个神经干。
学习神经干动作电位的实验方法
01
学习如何使用电生理仪器记录神经干动作电位，包 括电极放置、信号放大、滤波等操作。
02
学习如何处理实验数据，包括数据采集、整理、分 析和解释等步骤。
03
了解实验过程中的注意事项和操作规范，以保证实 验结果的准确性和可靠性。
分析神经干动作电位的特点
01 分析神经干动作电位的波形特征，包括幅度、时 程、阈值等参数。
VS
影响因素
神经干动作电位的传导速度受到多种因素 的影响，包括神经元的直径、髓鞘的完整 性、温度等。这些因素通过影响神经元的 电导性和兴奋性来影响动作电位的传导速 度。
神经干动作电位的影响因素分析
01
刺激强度和频率
实验结果表明，神经干动作电位的产生和传导受到刺激强度和频率的影
响。在一定范围内，刺激强度和频率的增加会使神经元更容易兴奋并产
改进方向
未来研究可以进一步探讨不同条件下的神经 干动作电位，以及神经干动作电位与其他生 理过程之间的关系，以更全面地了解其形成 机制和传导方式。
谢谢
THANKS
数据处理与分析
对记录的神经干动作电位数据进行处理，如滤波、降噪等。
分析处理后的数据，如测量峰电位、阈电位等参数，并计算神经干的动作 电位传导速度。
根据实验结果，得出结论并分析可能的原因。
生理学实验神经干动作电位的测定
⽣理学实验神经⼲动作电位的测定实验四神经⼲动作电位的测定【实验⽬的】学习⽣物电活动的细胞外记录法；观察坐⾻神经⼲动作电位的基本波形、潜伏期、幅值以及时程。
【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产⽣动作电位，即当受到有效刺激时，膜电位在静息电位的基础上将发⽣⼀系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。
动作电位可以沿着神经纤维传导。
在神经细胞外表⾯，已兴奋的部位带负电，未兴奋的部位带正电。
采⽤电⽣理学实验⽅法可以引导出此电位差或电位变化，根据引导的⽅式不同，所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。
由于坐⾻神经⼲是由许多神经纤维组成的，所以其产⽣的动作电位是众多神经纤维动作电位的叠加，即为⼀个复合动作电位。
这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在⼀定范围内增⼤刺激强度可以使电位幅度增⼤。
这和单⼀细胞产⽣的动作电位是有区别的。
本实验所引导出的动作电位即为坐⾻神经⼲的复合动作电位。
【实验对象】蛙或蟾蜍。
【实验材料】两栖类⼿术器械 1 套、滴管、BL-410⽣物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接收电极、任⽒液。
【实验步骤】1．制备坐⾻神经⼲标本坐⾻神经⼲标本的制备⽅法与制备坐⾻神经-腓肠肌标本相似。
⾸先按照制备坐⾻神经- 腓肠肌标本的⽅法分离坐⾻神经，当游离⾄膝关节处时，在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经，任选其⼀剪断，然后分离留下的⼀⽀直⾄⾜趾并剪断。
保留与坐⾻神经相连的⼀⼩段脊柱，其余组织均剪除。
此时，即制成了坐⾻神经⼲标本。
将标本浸于任⽒液中，待其兴奋性稳定后开始实验。
2．接标本与实验仪器1）棉球沾任⽒液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。
2）取出 BL-410 ⽣物机能实验系统专⽤刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插⼝中，另⼀端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接⼝上。
红⾊接正极，⿊⾊接负极。
实验神经干动作电位
在神经系统疾病诊断中的应用
神经传导速度测定
通过测定神经传导速度，可以判 断神经传导是否正常，从而辅助
诊断神经系统疾病。
神经肌肉功能评估
神经干动作电位可以反映神经肌肉 功能状态，对于评估神经系统疾病 患者的肌肉功能具有重要意义。
鉴别诊断
通过神经干动作电位的测定，可以 鉴别不同类型的神经系统疾病，如 多发性硬化、脊髓灰质炎等。
神经干的生理状态对动作电位也有影 响。例如，神经干的兴奋性和传导性 能可能会受到温度、离子浓度、神经 调节物质等因素的影响。
04
实验神经干动作电位分析方法
阈值确定与幅度测量
阈值确定
阈值是指引发动作电位的最小刺 激强度。在实验中，通过逐步降 低刺激强度并观察是否引发动作 电位来确定阈值。
幅度测量
幅度是指动作电位的最大值。在 实验中，通过观察动作电位的波 峰与波谷来确定幅度。
神经传导
神经干动作电位是神经传导的基 础，它使得神经冲动能够沿着神 经纤维迅速传递到目的地。
肌肉收缩
神经干动作电位通过影响肌肉细 胞的兴奋性和收缩性，使得肌肉 能够产生收缩和舒张运动。
感觉传递
神经干动作电位还参与感觉传递 过程，它使得感觉信号能够沿着 神经纤维传递到大脑，从而产生 相应的感觉体验。
02
康复评估
01
神经干动作电位可以用于评估患者的康复程度，为制定康复计
划提供依据。
康复治疗指导
02
根据神经干动作电位的测定结果，可以指导康复治疗师制定针
对性的康复治疗方案。
预防并发症
03
通过定期监测神经干动作电位，可以及时发现并预防因神经系
统疾病引起的并发症。
THANKS
谢谢您的观看
实验神经干动作电位
02
实验材料与方法
实验材料准备
01
02
03
04
神经干标本
选择新鲜、无损伤的神经干标 本，如蛙坐骨神经或哺乳动物
的腓肠神经等。
任氏液
用于保持神经干标本的生理活 性，需预先配置并充氧。
电极与刺激器
选择适当类型和规格的电极与 刺激器，用于记录动作电位和
施加刺激。
显微镜与成像系统
用于观察神经干标本的状态和 记录实验过程。
保电极与神经干紧密接触。
刺激参数设置
02
根据实验需求设置刺激参数，如刺激强度、频率和持续时间等
。
动作电位记录
03
在施加刺激的同时记录神经干的动作电位，观察其波形、幅度
和传播速度等指标。
03
实验结果展示
正常神经干动作电位波形图
波形特征
正常神经干动作电位具有典型的“全 或无”现象，波形呈尖峰状，上升支 陡峭，下降支较平缓。
实验动物选择及处理
01
02
03
动物种类选择
根据实验需求选择合适的 动物种类，如蛙、小鼠等 。
动物麻醉与固定
采用适当的麻醉方法和固 定装置，确保动物在实验 过程中保持静止并减轻其 痛苦。
动物手术操作
进行必要的手术操作，如 分离坐骨神经或腓肠神经 等，以获取神经干标本。
记录方法与步骤
电极放置
01
将记录电极和刺激电极分别放置在神经干标本的适当位置，确
04
数据处理与统计分析
数据处理方法介绍
01
02
03
04
数据清洗
去除异常值、平滑处理、 填补缺失值等操作，以提 高数据质量。
特征提取
提取与神经干动作电位相 关的特征参数，如峰值、 潜伏期、动作电位时长等 。
神经干研究实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点；2. 掌握神经干动作电位实验方法；3. 观察神经干动作电位波形，分析其传导特点；4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
二、实验原理神经干是由神经纤维组成的，具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。
神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。
本实验通过观察神经干动作电位波形，分析其传导特点，研究神经干损伤对动作电位传导的影响。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验药品：任氏液、2%普鲁卡因；3. 实验器材：神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。
四、实验方法1. 捣毁脑脊髓：将蟾蜍置于蛙板上，用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤，暴露出脑和脊髓，用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓；2. 分离坐骨神经：将蟾蜍的四肢剪去，用眼科剪剪断坐骨神经，用眼科镊分离出坐骨神经干；3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经干的一端，另一端与BL-420N系统连接；4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经干的另一端，另一端与BL-420N系统连接；5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数，启动实验；6. 观察记录：观察神经干动作电位波形，记录波形特点；7. 实验分组：将实验分为正常组、损伤组、局麻药组；8. 损伤组：用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口，造成神经损伤；9. 局麻药组：在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因，观察局麻药对神经干动作电位传导的影响；10. 观察记录：观察各组神经干动作电位波形，分析其传导特点。
五、实验结果1. 正常组：神经干动作电位波形呈双相，传导速度约为10m/s；2. 损伤组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低；3. 局麻药组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低。
六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相，表明神经干由两种类型的神经纤维组成，即A类和C类纤维；2. 损伤组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍；3. 局麻药组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。
实验生理科学：实验二 神经干动作电位的引导、阈强度及动作电位传导速度的测定
结论 ：简明扼要
例如： 1. 对神经干予以适度刺激，可引发双向动
作电位。 2. 本次实验所得神经干动作电位的阈刺激
为0.25V。 3. 神经干动作电位的传导速度为30m/s。
思考题
1. 如何区分刺激伪迹与动作电位？
2. 为何描记的动作电位是双相的？用细胞外记录法记录 神经干动作电位的原理？怎样可以描记出单相动作电 位？
注意：1、保证神经足够长度 2、注意不要损伤神经，保持神经湿润 3、尽量分离干净
二、实验装置连接
1、放置神经干：方向、水平、悬空 2、连接电极
三、实验观察与记录
1、双向动作电位的引导 2 、神经干阈强度测定 3、神经动作电位传导速度测定 4、相对不应期和绝对不应期测定
1、动作电位的引导
-实验项目 -肌肉神经实验 -神经干动作电位的引导
1
2
B
A
C
E
D
当电极2处的膜复极化时，电极2处的膜 电位逐渐恢复至电极1处电位水平，此 电位变化过程即双向动作电位波形的 DE段。
阈强度
在刺激时间不变的情况下，刚能引起兴奋的 刺激强度称为阈刺激或阈强度，简称阈值。
全或无：AP要么不产生要产生就是最大幅度 问题3：为何神经干动作电位动作幅度在一定范 围内随刺激强度的增大而增大 ？
双相动作电位 (Biphasic Action Potential)
（引导电极距离大于动作电位波长）
细胞外引导电极
检流计
兴奋区
双相动作电位( Biphasic Action Potential)
（引导电极距离小于动作电位波长）
检流计
细胞外引导电极
兴奋区
检流计
B
细胞外引导电极
神经干动作实验报告
一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。
二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。
当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。
本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。
四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。
五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。
六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。
实验7神经干动作电位的测定
•5．调节刺激器“强度”旋钮，使其从0逐渐增 加。当强度达到一定数值时，即可出现双相动作 电位（图2-15）。仔细观察其波形，并测量其阈 刺激、阈上刺激和最大刺激强度的幅值以及最大 刺激强度时整个动作电位的持续时间及幅度。 •6．倒换神经干的放置方向，动作电位有无变化。
•7．调正神经干的放置方向，用手术镊将两记录 电极之间的神经夹伤，或用一小块浸3mol/LKCl 溶液的滤纸片贴附在引导电极处的神经干上。观 察动作电位的波形有何变化，并1．说明单相和双相动作电位的产生原理。 2．解释在一定范围内神经干动作电位的振幅 随刺激强度而改变，是否与单个神经纤维动作 电位的“全或无”定律相矛盾。 4．改变神经干的方向后，动作电位的波形发 生了什么变化，为什么？
实验7 实验7 神经干动作电位的测定
【目的要求】
1．学习电生理仪的使用方法。 2．观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本 波 形，并了解其产生的基本原理。
【基本原理】 基本原理】
神经或肌肉发生兴奋时，兴奋部位发生电位变 化，这种可扩布性的电位变化即为动作电位。 神经的动作电位是神经兴奋的客观指标。 如将两个引导电极分别置于正常完整的神经干 表面，动作电位先后通过两个引导电极，可引 导出两个方向相反的电位偏转，称为双相动作 电位。如将两引导电极之间的神经麻醉或损伤， 动作电位只通过第一个电极引导出来，它只有 一个方向的电位偏转，称为单相动作电位。
【动物与器材】 动物与器材】
蟾蜍或蛙、常用手术器械，SBR-1型双线 示波器、电子刺激器、刺激隔离器、神 经屏蔽盒、滤纸片、锌铜弓、任氏液、 3mol/LKCl溶液。
【方法与步骤】 方法与步骤】
1．制备蟾蜍坐骨神经干标本按实验6剥制坐 骨神经干标本，但神经干尽可能分离得长些， 要求上自脊髓附近的主干，下沿腓总神经与 胫神经一直分离至踝关节附近。在制备过程 中，要把神经周围的结缔组织分离干净，但 勿损伤神经标本。 2．连接实验装置按图2-14连接电子刺激器、 刺激隔离器、神经屏蔽盒和示波器。注意： 各仪器应妥善接地，各仪器的连接应接触良 好。
生理学实验 神经干动作电位的测定
实验四 神经干动作电位的测定【实验目的】学习生物电活动的细胞外记录法；观察坐骨神经干动作电位的基本波形、潜伏期、幅值 以及时程。
【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产生动作电位，即当受到有效刺激时， 膜电位在静息电位的基础上将发生一系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。
动作电位可以沿着神经纤维传导。
在神经细胞外表面，已兴奋的部位带负电，未兴奋的 部位带正电。
采用电生理学实验方法可以引导出此电位差或电位变化， 根据引导的方式不同， 所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。
由于坐骨神经干是由许多神经纤维组成的， 所以其产生的动作电位是众多神经纤维动作 电位的叠加，即为一个复合动作电位。
这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在一定范围内 增大刺激强度可以使电位幅度增大。
这和单一细胞产生的动作电位是有区别的。
本实验所引 导出的动作电位即为坐骨神经干的复合动作电位。
【实验对象】蛙或蟾蜍。
【实验材料】两栖类手术器械 1 套、滴管、BL410生物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接 收电极、任氏液。
【实验步骤】1． 制备坐骨神经干标本坐骨神经干标本的制备方法与制备坐骨神经腓肠肌标本相似。
首先按照制备坐骨神经 腓肠肌标本的方法分离坐骨神经， 当游离至膝关节处时， 在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经， 任选其一剪断，然后分离留下的一支直至足趾并剪断。
保留与坐骨神经相连的一小段脊柱， 其余组织均剪除。
此时，即制成了坐骨神经干标本。
将标本浸于任氏液中，待其兴奋性稳定 后开始实验。
2．接标本与实验仪器1）棉球沾任氏液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。
2）取出 BL410 生物机能实验系统专用刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插口 中， 另一端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接口上。
生理实验报告神经干复合动作电位
人体解剖及动物生理学实验报告实验名称神经干复合动作电位姓名学号系别组别同组姓名实验室温度20℃实验日期2015年4月24日一、实验题目蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定二、实验目的确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的（1）临界值和最大值（2）传导速度（3）不应期（相对不应期、绝对不应期）三、实验原理神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号，多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经有外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。
坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。
如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。
一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。
刺激强度越爱，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP 的幅度也就越大。
与胞内引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。
阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。
在一定范围内增加刺激强度，CAP幅度相应增大。
最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。
动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。
它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。
神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。
兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。
绝对不应期内，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期内，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。
绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。
动作电位实验报告
动作电位实验报告实验二：神经干动作电位的测定一、实验目的1、学习神经干标本的制备2、学习电生理实验的操作方法3、观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形，并了解其产生的基本原理二、实验原理神经干在受到有效刺激后，可以产生相应的动作电位，这标志着神经发生了兴奋。
如果在神经干的另一端引导传来的兴奋冲动，可以产生双相动作电位；如果在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相动作电位。
神经细胞的动作电位是以“全或无”的方式产生的。
蛙的坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的，因此神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定的刺激强度下是随着刺激强度的变化而变化的。
三、实验材料和器械青蛙；常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、固定针、蜡盘、培养皿、污物缸、棉线、纱布、滴、任式液管。
四、实验方法和步骤1．制备蟾蜍坐骨神经干标本（1）毁脑脊髓和下肢标本制备。
（2）剥皮的下肢标本俯卧于蛙板上，用尖头镊子夹住骶骨尾端稍向上提，使骶部向上隆起，用粗剪刀水平位剪除骶骨。
（3）标本仰卧置于蛙板上，用玻璃分针分离脊柱两侧的坐骨神经，穿线，紧靠脊柱根部结扎，近中枢端剪断神经干，用尖头镊子夹结扎线将神经干从骶部剪口处穿出。
（4）标本俯卧位置于蛙板上，使其充分伸展呈人字形，用三根大头针将标本钉在蛙板上。
然后再用玻璃分针循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟，纵向分离暴露坐骨神经大腿部分，直至分离至腘窝胫腓神经分叉处，用玻璃分针将腓浅神经、胫神经与腓肠肌和胫骨前肌分离，将腓肠肌剪除。
（5）用手轻提一侧结扎神经的线头，辨清坐骨神经走向，置剪刀于神经与组织之间，剪刀与下肢成30°角，紧贴股骨，腘窝，顺神经走向，剪切直至跟腱并剪断跟腱和神经。
（6）用手捏住结扎神经的线头，用镊子剥离附着在神经干的组织，将剥离出来的坐骨神经干标本浸入盛有任氏液培养皿中待用。
2．系统连接和仪器参数设置（1）系统连接：连接生物信号采集处理系统和神经屏蔽盒，须避免连接错误或连接不良。
实验一：神经干动作电位
实验一：神经干动作电位一、实验目的：1.学会利用刺激器诱发组织兴奋的方法；掌握设定刺激参数的方法。
2.通过记录神经干的复合动作电位，掌握生物电记录的一般原则和方法。
3.学习分析辨别动作电位，了解其产生的基本原理，加强对兴奋性和阈强度的了解。
二、实验材料动物：蟾蜍器械：常用手术器械、蛙板、铜锌弓电极、毁髓针、玻璃解剖针、神经屏蔽盒、大头针、任氏液、烧杯、培养皿。
RM6240B生理信号记录仪。
三、操作过程1.骨神经干的制备双毁髓；制备下肢标本；制备坐骨神经标本；2.连接实验装置红黑绿红红绿3.1 动作电位的引导 进入实验模块：“实验” → 肌肉神经→神经干动作电位→ 弹出刺激器对话框，并处于示波状态 →在刺激器对话框中选择同步触发。
点击“开始刺激”键 ，屏幕上出现一屏“动作电位”波形，以后每点击“开始刺激”键一次，波形即刷新一次。
根据波形幅度可调节位于屏幕上显示通道右侧的灵敏度。
参数调节后，应再次点击“开始刺激”键，以刷新波形。
可用“PgUp ”与“PgDn ”翻页查找波形。
选择理想的波形用“保存当前画面”命令将其保存为正式文件。
当然也可用保存命令将全部临时文件保存为正式文件。
测量坐骨神经干的阈强度、最适刺激强度：调整刺激强度从0V 递增，测量复合动作电位幅度，求得阈强度、最适刺激强度。
在最适刺激强度下，观察动作电位形状，测量其时程及幅度（正向波及负向波幅度）。
3.2 神经损伤对复合动作电位的影响在记录电极间用镊子夹伤神经干，记录动作电位。
观察复合动作电位有何变化。
四、注意事项1.制作标本过程中应尽量减少对神经的牵拉，以免损伤神经。
2.实验过程中，要经常保持标本湿润。
3.神经干应与每个使用的电极密切接触。
4.实验结束后，神经屏蔽盒应清洗、擦干，以防止残留的盐液常腐蚀电极。
刺激通道2 通道1六、实验结果分析与讨论：1、实验结果：2、实验分析：（1）、神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导，神经干在收到有效刺激后可以产生动作电位。
生理实验报告神经干复合动作电位
生理实验报告神经干复合动作电位实验目的：1.了解神经干复合动作电位的形成和传导。
2.掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法。
3.观察和分析神经干复合动作电位在不同刺激条件下的变化。
实验原理:神经干是指神经纤维在离开整个神经系统后，在肌骨、脏器等部位的展开。
神经干复合动作电位（CNAPs）是指由神经干上的多个神经元细胞同时参与形成的电信号，它是神经干传导时产生的电生理事件。
通常情况下，神经干复合动作电位由4个不同的组分组成，依次是起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射。
这些组分的形成和传导过程会受到不同因素的影响，如刺激的强度、频率和持续时间等。
实验设备：1个主机1台示波器1个刺激电极2个测量电极1箱生理盐水1张生理实验纸实验步骤：1.将示波器的探头分别连接到刺激电极和测量电极上，探头的地线连接到主机上的地线端。
2.将测量电极分别放置在神经干上和离神经干较远的位置上，测量电极间距应足够大，以避免电信号重叠。
3.用生理盐水湿润纸片，将刺激电极夹在纸片中央的合适位置上。
4.调整示波器的放大倍数和时间基准以获得清晰的信号波形。
5.将主机上的刺激按钮设置为适当的参数，并按下开始按钮开始记录信号。
6.根据实验要求分别改变刺激电流的强度、频率和持续时间，并记录相应的信号波形。
7.重复实验步骤4-6，直到完成所有实验要求。
实验结果分析：1.观察到的信号波形应包含起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射这四个组分，根据波形的形态和振幅变化可以分析神经传导的速度和强度。
2.改变刺激条件后，观察信号波形的变化，记录并分析不同刺激条件下的神经传导特点如传导速度、传导延迟、反射强度等。
实验结论：1.神经干复合动作电位是由神经干上的多个神经元细胞参与形成的电信号。
2.神经干复合动作电位的形成和传导受到多种因素的影响，包括刺激强度、频率和持续时间等。
3.改变刺激条件可以观察到神经干复合动作电位的变化，进而分析神经传导的特点。
4.通过实验可以掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法，并获得相关实验结果。
实验七神经干动作电位动物学实验
实验材料： 实验材料：
1.青蛙 1.青蛙 2.任氏液 2.任氏液 3.蛙类手术器械 3.蛙类手术器械 4.生物机能实验系统 4.生物机能实验系统
神 经 干 动 作 电 位
实验方法与步骤: 实验方法与步骤
1.制备蛙坐骨神经腓神经标本 1.制备蛙坐骨神经腓神经标本 2.标本放置于神经标本盒中 2.标本放置于神经标本盒中 3.选用实验模块中动作电位项目开始实验 3.选用实验模块中动作电位项目开始实验 选用实验模块中动作电位 4.按实验指导完成各项目 4.按实验指导完成各项目
神 经 干 动 作 电 位
神经干
许多神经纤维
由许多兴奋阈值、传导速度和幅度不同的 由许多兴奋阈值、传导速度和幅度不同的 兴奋阈值 神经纤维组成的神经干所产生的动作电位， 神经纤维组成的神经干所产生的动作电位，称 为神经干动作电位， 为神经干动作电位，其电位幅度在一定范围内 可随刺激强度的变化而变化。 可随刺激强度的变化而变化。
神 经 干 动 作 电 位
如果将两引导电极置于正常完 整的神经干表面， 整的神经干表面，当神经干一端兴 奋后， 奋后，兴奋波先后通过两个引导电 极，可记录到两个方向相反的电位 偏转波形，称为双相动作电位 双相动作电位。 偏转波形，称为双相动作电位。
神 经 干 动 作 电 位
神 经 干 动 作 电 位
神 经 干 动 作 电 位
注意事项: 注意事项
1.小心分离神经 1.小心分离神经 2.标本盒中任氏液不可过多 2.标本盒中任氏液不可过多
*静பைடு நூலகம்电位的概念 静息电位的概念 细胞未受刺激时存在于细胞膜内外 两侧的电位差。 两侧的电位差。
动作电位及其产生机理 神 经 干 动 作 电 位
*动作电位的特点： 动作电位的特点： 动作电位的特点 ①“全或无 全或无” ①“全或无”现象 ②可传播
最新神经干动作电位电生理综合实验(2013-10)-药学医学精品资料
观察项目
1、引导神经干动作电位
点击“神经干 动作电位的引 导”，引导出 一个双相动作 电位。
1、在电脑上引导出双相动作电位。
2神经冲动的传导速度的测定：
（1）、测量从刺激伪迹至两个动作电位起始点之间的时间差 （t），此即为神经冲动从第一对引导电极传导到第二对引导电 极所需要的时间。 （2）、测量神经屏蔽盒内两对电极之间的距离（s）（应测两 对电极中第一个电极或第二个电极之间的距离）。 （3）、按公式v=s/t(m/s）计算神经冲动传导的速度。
度之间的关系。
3.掌握神经动作电位的传导速度的测定。
实验原理
蛙类的一些基本生命活动和生理功能与 恒温动物相似，若将蛙的神经标本放在任氏 液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。 若给神经一次适宜刺激，可在神经上产生一 个动作电位。制备坐骨神经标本是生理学实 验的一项基本操作技术。
实验原理
神经纤维兴奋部位的膜外电位负于静息 部位。当神经冲动通过后，该部位的膜外电 位又恢复到静息电位水平。神经干兴奋过程 所发生的膜电位变化称神经干动作电位。 神经纤维的动作电位是神经兴奋的客观 标志。神经干由很多兴奋性不同的神经纤维 组成。神经干动作电位是由许多这种兴奋性 不同的单根神经纤维的动作电位综合成的复 合性电位变化。因此，不同于单根神经纤维 的动作电位，神经干动作电位的电位幅度在 一定范围内可随刺激强度的增加而加大。
实验原理
如果两个引导电极置于正常完整的神经 干表面，当神经干一端兴奋后，兴奋波先后通 过两个引导电极处，可记录到两个方向相反的 电位偏转波形，称为双相动作电位。如果两个 引导电极之间的神经组织有损伤，兴奋波只通 过第一个引导电极，不能传导至第二个引导电 极，则只能记录到一个方向的电位偏转波形， 称为单相动作电位。
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刺激强度1=0.6V, 脉冲宽度=0.1ms, 前延时
（2）测定神经干动作电位的不应期（正常情况）
刺激强度1=刺激强度2，脉冲宽度=0.1ms, 脉冲间隔从10ms开始逐渐减小至2左右
（3）绘制刺激强度—时间曲线
脉冲宽度从0.1开始逐渐增大，刺激强度1逐渐减小
（4）给药：
2%普鲁卡因→动作电位传导速度 利多卡因→动作电位不应期
（4至5对刺激参数，一个刺激，一对引导电极）
I T1 = 0.1ms, I1 = T2 = 0.2ms, I2 = mV mV
T3 = 0.3ms, I3 =
mV
mV mV
T4 = 0.4ms, I4 = T5 = 0.6ms, I4
T
步骤
1、制备蟾蜍坐骨神经、腓神经标本。 2、观察项目。 （1）测定神经干动作电位的传导速度（正常情况）
功能学科教学实验
张 威
东1-103 54237310 wzhang@
神经干动作电位电生理实验
[原理] （一）神经干动作电位的特点
1. 复合电位，细胞外记录 2. 不完全符合“全”或“无”原则 3. 双向电位
（二）神经干动作电位记录方法
接地
刺激 引导 引导 1 2
（三） 神经干动作电位传导速度的测定
(一个刺激，两对引导电极) L (m/s) V= T2-T1
L
T1 T2 刺激伪迹
（四）神经干AP不应期的测定
（前后两个刺激，一对引导电极）
逐渐缩小两个刺激间的脉冲间隔
图2 神经干动作电位不应期测定
由图可测得 绝对不应期（ARP）＝2ms， 相对不应期（RRP）＝3ms ARP RRP
（四）绘制刺激时间－强度曲线
实验结果的书写
V=20m/s
图1 神经干动作电位传导速度的测定 由图测得动作电位传导速度为20m/s
注意事项
标本尽可能游离得长些 分离神经时避免牵拉、损伤和干燥 神经毋倒置、扭曲，松紧适中 防短路（标本盒内不加任氏液，用棉球给药时溶液 量要少） 标本盒屏蔽，抗干扰（盖上盖子） 观察时间不宜过长（以免兴奋性发生改变） 刺激的波宽设置不宜过大（避免刺激伪迹过大）