水中大肠菌群的测定上课讲义
实验十一 多管发酵法测定水中大肠菌群PPT教学课件
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Байду номын сангаас
三、实验材料
1、培养基： 乳糖蛋白胨发酵管（内有倒置小套管），三倍
浓缩乳糖蛋白胨发酵管（瓶）（内有倒置小套 管），伊红美蓝琼脂平板，灭菌水。 2、仪器或其他用具：
载玻片，灭菌带玻璃塞空瓶，灭菌吸管，灭 菌试管等。
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四、操作步骤
1．水样的采取 实验室提供水样 2．河水的检查 （1）初（步）发酵实验
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二、实验原理
发酵法： 又称多管发酵法或三步发酵法
1) 初发酵（推测试验）： 将不同稀释度的水样，分别接种于含有乳
糖等糖类的培养液中（3倍或1倍乳糖液），经 37 ºC培养24 h，观察产酸产气情况，培养基内 加有溴甲酚紫作为PH指示剂，细菌产酸后， 培养基即由原来的紫色变为黄色，以初步判 断是否有大肠菌群存在。
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2）平皿分离（证实试验）
水中除大肠菌群外，尚有其它细菌可能引 起糖类发酵，因此需要进一步证实。
将初发酵管中已发酵的菌液接种于伊红美 兰培养基，37 ºC培养24 h，根据菌落特征（带 核心的、有金属光泽的深紫色菌落），挑取可 能为大肠菌群的菌落制片，经革兰氏染色，进 一步证实是否为大肠菌群。
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10ml×100 1ml×100 1ml×10-1 1ml×10-2
3×
1×
1支
1×
1×
各3支
图1 2020/12/10 多管发酵测定水中大肠菌群的操作步骤和结果解释 11
PPT教学课件
谢谢观看
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水样的稀释： 10-1与10-2
水中大肠菌群的测定
实验水中大肠菌群的测定及结果分析一、目的要求1、学习测定水中大肠菌群检测程序、方法.2、掌握大肠菌群检测结果的报告方式.二、实验原理大肠菌群是评价水质好坏的一个重要的卫生指标,也是反映水体被生活无水污染的一项重要监测项目。
大肠菌群是一群以大肠埃希氏菌为主的需氧及兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌,在37℃生长时，能在48小时发酵乳糖并产酸才产气。
食品中大肠菌群数是以每100mL（g)检样内大肠菌群最近似数(The most probable number，简称MPN）表示。
据此含义，所有食品卫生标准中所规定的大肠菌群均以100mL(g）食品内允许含有大肠菌群的实际数值为报告标准。
检查大肠菌群数,一方面能表明食品中有无粪便污染，另一方面还可以根据数量的多少，判定食品受污染的程度。
我国生活饮用水卫生标准中规定一升水样中总大肠菌群数不超过3个。
多管发酵法包括初发酵试验、平板分离和复发酵试验三个部分。
发酵管内装有乳糖蛋白胨液体培养基，并倒置一德汉氏小套管.乳糖能起选择作用，因为很多细菌不能发酵乳糖，而大肠菌群能发酵乳糖而产酸产气。
三、实验器材1、培养基：乳糖胆盐发酵管、伊红美蓝琼脂、乳糖发酵管2、器皿：1ml吸管、10ml吸管、试管（15×150）、三角锥瓶500ml、三角锥瓶500ml（内装蒸馏水250ml）3、其他：酒精灯，牛皮纸或报纸,棉花，高压蒸汽菌锅，水浴锅，显微镜，香柏油，二甲苯等四、操作方法1、水样的采取池水、河水或湖水应取距水面10—15㎝的深层水样，先将灭菌的带玻璃塞瓶，瓶口向下浸入水中,然后翻转过来,除去玻璃塞，水即流入瓶中,盛满后,将瓶塞盖好，再从水中取出，最好立即检查,否则需放入冰箱中保存.2、检样稀释（1)以无菌操作，将检样25mL放于含有225mL灭菌蒸馏水水的三角锥瓶中，摇匀,做成1：10的均匀稀释液。
(2）取一支lmL吸管插入吸取1∶10稀释液1mL注入含有9mL灭菌水的试管内，振摇试管,混合均匀，做成1∶100稀释液。
实验九水中总大肠菌群的测定ppt课件
采用PP管及配件：根据给水设计图配 置好PP管及配 件，用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ，边剪 边旋转 ，以保 证切口 面的圆 度，保 持熔接 部位干 净无污 物
◆包扎
1．培养皿：以旧报纸密密包紧，一般以6套做一包，待灭菌。 2．吸管：在距其粗头顶端约0.5cm处，塞一小段1.5cm长的棉花。棉 花要塞得松紧恰当（过紧，吹吸液体太费劲；过松，吹气时棉花会 下滑），然后分别将每支吸管尖端斜放在旧报纸条的的近左端，与 报纸约呈60º角，并将右端多余的报纸打一小结。 3．三角玻扒：跟包扎吸管相似，将三角部分斜放在报纸条的近左端， 与报纸约呈45º角，并将右端多余的报纸打一小结。 4. 玻璃器皿、金属器械包扎完毕后置干燥箱160－170℃灭菌2 h.
采用PP管及配件：根据给水设计图配 置好PP管及配 件，用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ，边剪 边旋转 ，以保 证切口 面的圆 度，保 持熔接 部位干 净无污 物
◆灭菌
1.灭菌器内加入一定量的水，将用防水纸包扎好的物品放入其中。
2.接通电源，进行加热。
3. 排
除高压锅内的冷空气，可将排气阀打开，待排出大气后关闭排气阀；或关闭
平板划线分离操作法示意图
采用PP管及配件：根据给水设计图配 置好PP管及配 件，用 管件在 管材垂 直角切 断管材 ，边剪 边旋转 ，以保 证切口 面的圆 度，保 持熔接 部位干 净无污 物
5 复发酵试验 上述涂片镜检的菌落如为革兰氏阴性无芽孢的杆菌，则挑选该菌落的另
一部分接种于装有普通浓度乳糖蛋白胨培养液的试管中（内有倒置管），每 管可接种分离自同一初发酵管的最典型菌落1～3个，然后置于37℃恒温箱中 培养24h，有产酸、产气者，即证实有大肠菌群存在。根据证实有大肠菌群 存在的阳性管（瓶）数查附表1“大肠菌群检数表”，报告每升水样中的大肠 菌群数。
水中大肠菌群的含量测定PPT课件
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一、目的要求
1、掌握测定水中大肠菌群数量的多管发酵法的原理、 操作步骤及方法；
2、掌握划线分离法； 3、了解水质评价的微生物学卫生标准，明白其应用的
重要性。
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二、基本原理
总大肠菌群（coliform group，total coliforms） 总大肠菌群指数高，表示水源被粪便污染，则有可
2）池水、河水或湖水 应取距水面10~15cm的深层水 样，先将灭菌的带玻璃塞瓶，瓶口向下浸入水中，然后翻 转过来，除去玻璃塞，水即流入瓶中，盛满后，将瓶塞盖 好，再从水中取出。最好立即检查，否则需放入冰箱充分 冷却。
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1、初发酵试验：（自来水检查为例）
在2个含有50mL 3倍浓缩的乳糖蛋白胨发酵烧瓶中， 各加入100mL水样。在10支含有5mL3倍浓缩的乳糖蛋白 胨发酵管中，各加入10mL水样。混匀后，37℃培养24h， 24h未产气的继续培养至48h；
基，3倍浓缩乳糖蛋白胨发酵管（内有倒置小套管）培养 基，伊红美蓝琼脂平板。 3、溶液和试剂：革兰氏染液、无菌水等。 4、仪器和其他用品：显微镜、载玻片、无菌培养皿、灭 菌吸管、灭菌试管、镊子、烧杯、温箱等。
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四、操作步骤
水样的采取
1）自来水 先将自来水龙头用火焰烧灼3min灭菌，再开 放水龙头使水流5min后，以灭菌三角烧瓶接取水样，以 待分析。
2、平板分离：
将24h培养后产酸产气和48h培养后产酸产气的发酵管， 分别划线接种于伊红美蓝琼脂平板上，再于37℃下培养18～ 24h，将符合下列特征菌落：深紫黑色，有金属光泽；紫黑 色，不带或略带金属光泽；淡紫红色，中心颜色较深，挑取 其中的一小部分，进行涂片，革兰氏染色，镜检；
水质粪大肠菌群的测定讲课文档
7 适用范围
• 本标准适用于地表水，地下水及 废水中粪大肠菌群的测定。
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8 原理
• 多管发酵法是以最可能数（most probable number），简称MPN 来表示试验结果的。实际上 它是根据统计学理论，估计水体中的大肠杆菌密度 和卫生质量的一种方法。如果从理论上考虑，并且 进行大量的重复检定，可以发现这种估计有大于实 际数字的倾向。不过只要每一稀释度试管重复数目 增加，这种差异便会减少，对于细菌含量的估计值， 大部分取决于那些既显示阳性又显示阴性的稀释度。 因此在实验设计上，水样检验所要求重复的数目， 要根据所要求数据的准确度而定。
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25 注意事项
• 灭菌 • 初发酵后以有阴、有阳稀释效果最好。 • 水样一定要摇均。 • 每个稀释倍数要求做5管。 • 接种环要求用酒精灯灼烧消毒，复发酵接
种时每一管都要在酒精灯上灼烧消毒。
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26 思考题
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举例：
• 某水样接种10mL 的5 管均为阳性；接种 1mL 的5 管中有2 管为阳性；接种1：10 的 水样1mL 的5 管均为阴性。从最可能数 （MPN）表中查检验结果5-2-0，得知 100mL 水样中的总大肠菌群数为49 个，故 1L 水样中的总大肠菌群数为49×10=490 个。
20 结果的计算
• 根据不同接种量的发酵管所出现阳性结果 的数目，从表2或表3中查得每升水样中的 粪大肠菌群。
• 接种水样为100ml 2份，10ml 10份，总量 300ml 时，查表2可得每升水样中粪大肠菌 群；
任务二水中大肠菌群数的测定精
项目九 综合实训---水中总大肠菌群的测定
四、结果报告
• 观察乳糖发酵管产气情况
– 产酸产气者，即证实有总大肠菌群存在
• 查MPN 检索表
– 根据证实为总大肠菌群阳性的管数
• 报告每100ml水样中的总大肠菌群最可能 数（MPN）
项目九 综合实训---水中总大肠菌群的测定
四、结果报告
• 5管法结果见表1，15管法结果见表2
检验程序
生活饮用水 接种
水源水稀释与 接种
乳糖发 酵试验
分离培 养
证实试 验
结果报 告
项目九 综合实训---水中总大肠菌群的测定
一、乳糖发酵（初发酵）试验
• 自来水
– 直接接种10mL水样于双料培养基，每个水 样共接种5管
• 水源水
– 加大稀释度，每个稀释度接种5管，每个 水样共接种15管
项目九 综合实训---水中总大肠菌群的测定
项目九 综合实训---水中总大肠菌群的测定
习题作业
1.判断食品是否被肠道致病菌所污染及其污染 程度时，常用总大肠菌群作为指示菌来表示， 该指示菌应具备的条件有哪些。 2.总大肠菌群和粪大肠菌群有什么区别？如何 区分粪大肠菌群和非粪大肠菌群。
项目九 综合实训---水中总大肠菌群的测定
习题作业
3.检样从开始稀释到接种所用时间不宜超过 15min，为什么？ 4.单料和双料培养基有什么区别？什么时候使 用双料培养基？ 5.生活饮用水的菌落总数、总大肠菌群标准是 多少？畜禽饮用水总大肠菌群标准是多少？
实验器材
• 其他
– 无菌工作台、酒精灯、稀释液、灭菌吸管、 灭菌试管、小倒管、试管架、接种环、恒 温培养箱、高压蒸汽灭菌器、载玻片、香 柏油、平皿、天平、电炉等
大肠菌群计数检验重点课件
大肠菌群最初被称为“大肠菌群 ”或“大肠型菌群”，它们与肠 道正常菌群不同，会对肠道产生 不良影响。
大肠菌群的培养特性及分类
培养特性
大肠菌群是人体肠道内正常菌群，它 们在肠道内生长繁育，对营养物质有 很强的利用能力。
分类
大肠菌群主要包括大肠杆菌、肠球菌 、肠链球菌等，其中大肠杆菌是最常 见的一种。
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大肠菌群计数检验的应 用与展望
大肠菌群计数检验的应用范围
环境保护
大肠菌群计数检验可以用于检测水体、土壤等环境中的大肠菌群数 量，评估环境污染程度，为环境保护提供根据。
食品安全
大肠菌群计数检验可以用于检测食品中的大肠菌群数量，评估食品 的卫生质量，保证食品安全。
临床医学
大肠菌群计数检验可以用于辅助诊断肠道疾病，如细菌性痢疾、伤寒 等，以及评估肠道菌群平衡情况，为临床治疗提供参考。
仪器设备问题及解决方案
仪器设备误差
仪器设备在使用过程中可能会出现误差，如读数不准确、重复性差等。解决方 案是对仪器设备进行定期维护和校准，确保设备的准确性和稳定性。
仪器设备故障
仪器设备在使用过程中可能会出现故障，如无法启动、显示特殊等。解决方案 是及时联系维修人员进行检查和维修，确保设备的正常运行。
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挑战
随着检测方法的改进和技术的升级，大肠菌群计数检验的准确性和灵敏度将不断提高，但同时也面临 着新的挑战，如如何标准化和规范化检测方法、如何提高检测的特异性等。
机遇
随着人们对肠道菌群的认识越来越深入，大肠菌群计数检验将在更多领域得到应用。同时，随着技术 的发展，大肠菌群计数检验也将不断拓展其应用范围，为人类健康和生活质量提供更多保证。
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水中大肠菌群的测定水中大肠菌群的测定报告题目水中大肠菌群的测定作者姓名班级生科1104班指导教师完成时间2013年6月生物学实验教学中心目录引言 (2)1 实验材料 (2)2 实验步骤 (2)2.1 (3)2.2 (4)2.3 (4)2.4 (5)2.5数据分析与结果处理 ...................................... 错误!未定义书签。
3 结果与分析 (5)3.1图片.................................................................. 错误!未定义书签。
3.2........................................................................... 错误!未定义书签。
总结 .. (6)参考文献 (10)水中大肠菌群的测定（指导老师：）（湖北师范学院生命科学学院生物技术1104班湖北黄石 435002）摘要：测定青山湖水中的大肠菌群的含量。
将待测水分别稀释10倍、100倍、1000倍3种梯度在三倍浓缩培养基 37℃培养24h后挑选出产酸或产气的菌画线接种到伊红美蓝平板中37℃培养24h，将培养基中表现为阳性的菌落做革兰氏染色镜检为阴性的菌种接种到乳糖蛋白胨培养基中37℃培养24h,挑选大肠杆菌阳性菌。
结果稀释10倍的水有3管大肠杆菌阳性菌，稀释100倍的水有3管，稀释1000倍的有2管，即青山湖水中大肠杆菌的含量为MPN=11000.关键词：大肠杆菌、多管发酵法青山湖水水中大肠菌群的测定（指导老师：）（湖北师范学院生命科学学院生物技术1104班湖北黄石 435002）引言水对我们的生命起着重要的作用，它是生命的源泉，是人类赖以生存与发展的不可缺少的最重要的物质资源之一。
人的生命一刻也离不开水，水是人生命需要最主要的物质。
水也是大肠菌群的天然环境，一般地面水比地下水含菌数量多，并易被病原菌污染。
人饮用后引发疾病。
水质细菌学检验是培水与污水水质分析工作中的一项重要指标。
水的微生物学的检验，特别是肠道细菌的检验，在保证饮水安全和控制传染病上有着重要意义，同时也是评价水质状况的重要指标。
国家饮用水标准规定，饮用水中大肠菌群数每升中不超过3个，细菌总数每毫升不超过100个。
1 实验材料药品：蛋白胨，牛肉膏，乳糖，蒸馏水，1.6%溴甲酚紫乙醇溶液，2%伊红（曙红）水溶液，0.5%美蓝（亚甲蓝）水溶液，氢氧化钠水溶液。
工业酒精、草酸铵结晶紫染液、卢戈氏碘液，番红复染液，香柏油，二甲苯。
仪器(生产厂家)：显微镜，天平，培养箱，水浴锅，平皿，德氏管，刻度吸管，洗耳球，无菌涂布棒，量筒，灭菌锅，酒精灯，接种环，棉花，棉线，报纸。
菌种：青山湖水中大肠杆菌2实验步骤（参照实验书）：2.1 配制培养基及灭菌1.乳糖蛋白胨培养基的配制（供多管发酵法的复发酵用）2、三倍浓缩乳糖培养基3.灭菌●移液管的包装：将移液管的尖端，放在4-5cm宽的长纸条的一端，移液管与纸条约成30°夹角，折叠包装纸包住移液管尖端，用左手将移液管压紧，在桌面上向前搓转，纸条螺旋式地包在移液管外面，余下的纸折叠打结。
多支包装，待灭菌。
●培养皿的包装：培养皿由一底一盖组成一套，用报纸将10套培养皿（皿底朝里，皿盖朝外，5套、5套相对而放）包好。
●棉塞的制作：按试管口或锥形瓶口大小估计用棉量，将棉花铺成中间厚、周围逐渐变薄的近正方形，折一个角后（成五角形）卷成卷，一手握粗端，将细端塞入试管或锥形瓶的口内，棉塞不宜过紧或过松用手提棉塞，以管、瓶不掉下为宜。
棉塞四周应紧贴管壁或瓶壁不能有褶皱，以防空气微生物沿棉塞皱折侵入。
棉塞的直径和长度视试管和锥形瓶的大小而定，一般约3/5塞入管内。
必须做到松紧合适，紧贴管壁，拔出时不松散、不变形。
●将所有准备待灭菌物品，包扎好后置于高压蒸汽灭菌锅中，121℃高压蒸汽灭菌20min。
●将上述灭菌物品贮存于冷暗处备用。
1.2初发酵实验。
配制350ml三倍的乳糖蛋白胨培养液（每组取45ml），分装到9支试管中，每支试管内加入一个倒放的布氏小管，保证小管内无气泡。
取水样并作梯度稀释，分别稀释出10倍，100倍，1000倍，在培养基中加入3中浓度的菌液10ml，每个稀释浓度各重复3个，混匀37度培养24h。
2.3平板分离。
培养后产酸，产气或仅产酸的发酵管为阳性反应，否则为阴性。
配制伊红美蓝培养液1200ml（每组取200ml），然后倒12个平板，分别将9支试管中的菌用画线法接种到培养基上，。
再随机从3种浓度的菌液中随机取一管进行接种。
37度培养24h。
将培养基中的菌种挑取少许进行革兰氏染色，再做镜检。
革兰氏染色：将带有上述典型特征的菌落（在伊红美蓝平板上大肠杆菌群的典型菌落为深紫黑色，具有金属光泽；或者为紫黑色，不带或略带金属光泽；或者为紫红色、中心较深的菌落）做革兰氏镜检：将大肠杆菌菌落涂片，干燥，固定。
然后加草酸铵结晶紫一滴，染色1分钟后倾去染液，水洗至流出水为无色。
用卢戈氏碘液覆盖1分钟，倾去碘液，水洗至流出水为无色。
再用滤纸吸去玻片上的残水，将玻片倾斜，并衬以白纸背景，用95%乙醇滴洗至刚刚无紫色为止，25S，然后立即用水冲去乙醇。
将玻片上残留的水用吸水纸吸去，用番红复染液染色2分钟，水洗，吸去残水，晾干。
干燥后，油镜观察。
以分开的细菌颜色为准，革兰氏阳性菌呈紫色。
阴性菌呈红色。
2.4 复发酵。
配制100ml乳糖蛋白胨培养基，分装10管（每管均加入布氏小管），高温灭菌。
将镜检结果为阴性的菌种对应的培养基上的菌种接种到乳糖蛋白胨培养基上，37度培养24h，仍产酸，产气的是大肠菌群阳性。
2.5结果计算。
根据三个稀释度中的阳性管数组成的一个数量指标，查表计算结果。
3 结果与分析1.大肠杆菌初发酵后的实验现象：2. 伊红美蓝培养基的筛选后的实验现象：3.大肠杆菌复发酵的实验现象：实验分析：大肠杆菌是一大类群的总称并不是哪一种的种名，这一类群中包括好多种，这些种中有的仅产酸有的既产酸又产气。
大肠杆菌在伊红美蓝中菌落具有典型的特征，依据菌落的特征可以进行筛选再由革兰氏染色进行确认。
本次实验中初发酵中现象均为阳性，在进行筛选中有6个培养皿中镜检为阴性，但镜检中发现大肠杆菌的密度很低。
在复发酵的实验结果中培养一天各管并未产气且仅有一管产酸，可能是复发酵挑选的菌中大部分不是大肠杆菌，也有可能是菌浓度过低，还有可能是在挑菌是挑的太少或是在操作时不规范如在灼烧接种环时未待冷却使菌受到损伤或直接烧死了，这些均会是结果不理想。
总结释10倍的水有3管大肠杆菌阳性菌，稀释100倍的水有3管，稀释1000倍的有2管即青山湖水中大肠杆菌的含量为MPN=11000.实验内容与安排的建议、实验感受、实验改进想法等操作分析1、培养基的配制灭菌1）在培养基分装过程中注意乳糖培养基与三倍乳糖培养基的量，其中三倍乳糖培养基是每管10ml,乳糖培养基每管5ml。
2）杜氏小管在倾斜的放入装有培养基的试管内出现了气泡，将试管倒立使气泡排空后再正放即可排除气泡。
3）在整理所需灭菌物品时，由于训练不足整体上还是有点混乱，不过能及时解决。
4）培养基的配制仪器的包扎与包装比较熟练，未出现问题。
2、水样采集及稀释，初发酵实验1）用移液管移取菌液时，单手操作能力还是欠缺，总习惯性的把试管塞放到桌面上。
在微生物实验过程中，最重要的就是要时刻保持无菌条件，因此一些试管塞应该放到手上而不是桌上。
在打开每一个试管塞时应该将试管口在火焰上灼烧，操作时尽量距离酒精灯近一些。
2）移液管依然是用吸耳球吸取液体，由于无菌操作台的玻璃门开启幅度不能过高，以不超过下巴为宜，因此双手在操作台里操作很僵硬，受到限制，移取液体很不方便；多熟悉在无菌操作台条件下进行实验的环境并且要培养自己单手操作的能力，在无菌操作台里尽量避免用吸耳球辅助移液管移取液体，而是训练用口操作。
3）还是准备的不充足，在无菌操作台里需要提前把实验过程中需要用到的一些仪器与试剂等放到里面提前灭菌消毒二十分钟，考虑不全面总会时不时突然想到还有什么东西没拿进来灭菌消毒，于是在这个地方耽误了很长时间。
因此每次用无菌操作台之前，应该在实验室里将所需物品准备齐全，最好能考虑周到，可以小组互相讨论，将遗漏的物品补齐。
4）初发酵将稀释好的样液倒入试管中应注意将样液缓缓地倒入以免倒入过猛而导致气泡进入杜氏小管，或导致培养基的飞溅。
5）在加入样液前未做好标记，增添了实验的复杂度，应注意实验前应贴好标签以使实验过程更清晰。
3、平板分离1）倒平板时培养基的量倒的过多，导致培养皿的培养基层过厚；倒平板时，右手持装有培养基的三角瓶，左手将瓶入培养基约15ml，量不能过多，然后盖上盖子，轻轻晃动培养皿，使培养基均匀分布在培养皿底部，最后平置于桌面上，冷却凝固。
2）划线分离时划线的方式有误，如接种环在酒精灯灼烧后未完全冷却就立即划线，可能会引起某些菌由于局部过热而丧失生命活性；划线太过密集，稀释次数少，可能无法形成单菌落。
平板划线分离：a.接种环蘸取菌液的度是菌液在接种环上形成一个可见的水液面b.划线时,培养皿在左手,接种环在右手,皿盖打开的范围足够接种环伸进去划线c.划线时先将接种环在酒精灯上灼烧,然后放在培养皿中间的培养基上轻轻划动冷却接种环,然后蘸取少量菌液在培养基上划线d.划线的力度要控制好,第一次三条线将接种环倾斜一点平划,是环上菌液落入培养基表面,再转动培养皿,用同样的方法划线,重复此类操作三至四次.4、革兰氏染色、复发酵实验1）革兰氏染色，五个装片做了两次才成功，可能原因是：a.涂片时菌液过少,在显微镜下观察时,一个视野类的菌太少,很难判定革兰氏染色的结果是阴性菌还是阳性菌b脱色时间不够,紫色未完全褪去c.番红复染时间不够,视野里的菌大部分未被上色,对判断是阴性菌还是阳性菌有干扰;d.菌液在载玻片上分布不均匀。
解决的方案：(1)可以重复涂片几次,但避免涂片过厚,导致视野里菌过多；(2)用乙醇脱色的标准是乙醇滴洗至刚刚无紫色为止,为了便于分辨颜色可以在玻片下垫一张白纸；(3)番红染色的时间最终是控制在4min左右,尽量控制染色时间适宜；(4)虽然复发酵实验在操作上没有什么问题,但我们根据实际情况对书上的一些操作进行了调整,在将革兰氏染色镜检为阴性无芽孢杆菌的菌落按无菌操作接种到装有乳糖蛋白胨培养基的试管中时,由于一次挑取的菌种比较少,因此每个试管都各自接种了三次,保证每个试管里都有足够的大肠杆菌进行复发酵实验。
实验感受：经过我们小组各成员的积极配合、共同努力，我们的实验得到了圆满结束。
在实验过程中，我们也遇到了不少困难，但大家齐心协力，一起讨论问题的解决方法，才使的这两个实验都顺利地完成。