实时荧光定量PCR检测的数据处理及结果报告
qRTpcr实时荧光定量结果数据统计与分析和引物设计
• 显著性差异分析
• 1.在分析界面选择 分析-比较均值-单因素ANOVA 进行分析 • 2.设置因子及因变变量。样本序号为因子,表达量为因变量。
• 显著性差异分析
• 继续设置分析参数及选项 • 设置完成后点击确定,软件开始
统计运算。
• 显著性差异分析
• 运算结果如右图显示。 • 如图中所示,样本1-4中,
• 利用模板分析(以各组织分析为例)
• 将整理好的数据复制进 模板绿色区域
• 模板制作样本设置为18 个样本(组织),若样 本不到18个(组织), 则删除绿色区域其他数 据
• 利用模板分析(以各组织分析为例)
• 数据导入后模板自动运算, 初步获得柱状图,包括均 值,标准误等。
• 显著性差异分析需利用 IBM SPSS Statistics 20计算。
样本1和其他3个样本不在 同一列,表明样本1与其他 样本有显著差异。
• 显著性差异带入图表后, 如右柱状图所示
样本名称
显著差异
• 显著性差异分析
• 如样本较多,显著性差异标注复杂, 可利用模板下方区域自动标注。
• 将SPSS Statistics 输出结果,复制 进模板指定区域(纯文本模式复 制)。模板会自动将显著性差异进 行标注。
• 导入primer3网址,自动设计引物,选取给出的最优引物。
• 确定序列引物设计范围
• 选取合适范围,例 如图中选择范围 1300-2100 bp区域, 导入primer3在线引 物设计网站中。
• 截取序列模板:蓝色 区域输入原始序列, 红色区域输入起始终 止位置,黄色区域为 导出的范围,直接复 制进引物设计网站。
• 定量结果数据分析
结果数据初步整理
• 将导出ct值数据进行整理, 删除其他列,转换为右侧 所示。
荧光测定pcr实验报告
荧光测定pcr实验报告引言聚合酶链反应(PCR)是一种常用的分子生物学技术,可以在短时间内扩增DNA 目标序列。
PCR扩增过程中,荧光标记的探针可以用来监测DNA模板的定量。
本实验旨在通过荧光测定PCR的方法,对指定DNA序列进行定量分析。
实验设计与方法实验设计1. 收集样本:收集待测DNA样本。
2. 准备试剂:准备PCR反应体系所需的试剂,包括PCR缓冲液、dNTPs、引物、荧光标记的探针等。
3. 试剂配置:按照实验设计,配置合适浓度的试剂稀释液。
4. PCR反应:根据实验设计,进行PCR反应,在PCR仪中设置加热曲线。
5. 荧光测定:在PCR反应过程中,通过荧光实时监测相应信号。
实验方法1. 收集样本:收集待测DNA样本,保证样本的纯度和完整性。
2. 准备PCR反应体系:按照实验设计,配置PCR反应体系,包括PCR缓冲液、dNTPs、引物、荧光标记的探针等,保证试剂的浓度和质量。
3. 试剂配置:根据实验设计,配置合适浓度的试剂稀释液,保证试剂的稳定性和反应效果。
4. PCR反应:将待测DNA样本和试剂混合,在PCR管中进行适当的温度变化,进行PCR反应。
PCR反应的参数包括初始变性、循环变性、退火、延伸等步骤。
5. 荧光测定:在PCR反应过程中,监测PCR反应产生的荧光信号。
通过荧光实时监测,可以定量分析PCR扩增的产物。
结果与分析荧光测定PCR结果在本实验中,通过荧光测定PCR的方法成功扩增了目标DNA序列。
在PCR反应过程中,实时监测到荧光信号的增强,表明DNA扩增的过程正常进行。
荧光信号定量分析结果通过荧光信号的实时监测,可以进行PCR扩增产物的定量分析。
扩增产物的荧光信号强度与初始模板DNA的浓度成正比,因此可以通过荧光信号的强度来估计初始模板的浓度。
数据处理与统计分析对实验得到的数据进行处理和统计分析,可以得到PCR扩增产物的浓度。
通过与标准曲线的比较,可以确定PCR产物的浓度。
结论本实验成功使用荧光测定PCR的方法扩增了目标DNA序列,并进行了定量分析。
实时荧光定量PCR的数据分析方法
实时荧光定量PCR的数据分析方法
作者:易健明, 屈武斌, 张成岗, YI Jian-Ming, QU Wu-Bin, ZHANG Cheng-Gang
作者单位:易健明,张成岗,YI Jian-Ming,ZHANG Cheng-Gang(军事医学科学院放射与辐射医学研究所,蛋白质组学国家重点实验室,全军军事认知与心理卫生研究中心,北京100850;安徽医科大学研究生院,安徽合肥230032)
, 屈武斌,QU Wu-Bin(军事医学科学院放射与辐射医学研究所,蛋白质组学国家重点实验室,全军军事认知
与心理卫生研究中心,北京100850)
刊名:
生物技术通讯
英文刊名:Letters in Biotechnology
年,卷(期):2015,26(1)
引用本文格式:易健明.屈武斌.张成岗.YI Jian-Ming.QU Wu-Bin.ZHANG Cheng-Gang实时荧光定量PCR的数据分析方法[期刊论文]-生物技术通讯 2015(1)。
实时荧光定量PCR数据分析及常见问题分析
使用高质量的试剂和仪器
高质量的试剂和仪器是实时荧光定量PCR实验的基础,包括 高质量的DNA聚合酶、高灵敏度的荧光探针、可靠的定量 PCR仪等。
选择经过认证的试剂和仪器,并按照说明书正确使用和维护 ,可以确保实验结果的准确性和可靠性。
优化PCR反应条件
优化PCR反应条件可以显著提高实验 的重复性和准确性,包括调整模板浓 度、引物浓度、循环数等参数。
通过梯度PCR或条件优化实验,可以 找到最佳的反应条件,使扩增曲线更 符合标准曲线的要求。
严格控制实验操作规范
实验操作规范是保证实时荧光定量PCR数据质量的重要环节,包括实验前的准备 、样本处理、加样、扩增和检测等步骤。
基线漂移
01
总结词
基线漂移是指PCR扩增曲线在起始阶段出现非特异性扩增,导致背景信
号过高。
02
详细描述
基线漂移可能是由于模板污染、酶活性降低或反应条件不适等原因引起
的。高背景信号会掩盖特异性扩增信号,导致检测结果不准确。
03
解决方案
在实验过程中,要严格控制操作环境,避免交叉污染。同时,要定期检
查酶活性,确保其处于最佳状态。此外,可以通过软件对扩增曲线进行
03 实时荧光定量PCR常见问 题分析
扩增效率不一致
总结词
扩增效率不一致会导致数据无法准确反映样本中目标基因 的表达水平。
详细描述
扩增效率不一致通常是由于反应条件、引物设计或试剂质量等 问题导致的。这会导致不同样本间的相对表达量出现偏差,从 而影响实验结果的准确性。
解决方案
在实验过程中,要确保反应条件的一致性,包括温度、时间、 循环数等。同时,要选择质量可靠、设计合理的引物和试剂, 并进行预实验以确定最佳的反应条件。
定量pcr实验报告
定量pcr实验报告定量PCR实验报告引言:PCR(聚合酶链反应)是一种重要的分子生物学技术,通过扩增目标DNA片段,可以在短时间内生成大量的DNA。
定量PCR是PCR的一种应用,可以精确测量目标DNA的数量。
本实验旨在使用定量PCR技术,对一种特定基因的DNA进行定量分析。
材料与方法:1. DNA样本:从人体组织中提取的DNA。
2. 基因特异性引物:设计用于扩增目标基因的引物。
3. TaqMan探针:与目标基因序列互补,携带荧光染料和荧光素。
4. 定量PCR试剂盒:包括PCR反应缓冲液、聚合酶、dNTPs等。
5. 实时荧光定量PCR仪:用于检测PCR反应过程中的荧光信号。
实验步骤:1. 样本制备:将DNA样本提取并纯化。
2. 引物设计:根据目标基因序列设计特异性引物。
3. PCR反应体系制备:将PCR反应缓冲液、引物、探针、聚合酶、dNTPs和DNA样本混合。
4. PCR扩增:在热循环仪中进行PCR扩增,包括一系列的变温步骤。
5. 荧光信号检测:实时荧光定量PCR仪会在每个循环结束后检测PCR反应体系中的荧光信号。
6. 数据分析:根据荧光信号的变化,计算目标基因的相对表达量。
结果与讨论:通过实时荧光定量PCR仪检测,我们获得了PCR反应体系中的荧光信号数据。
根据这些数据,我们计算出了目标基因的相对表达量。
通过对多个样本进行定量PCR实验,我们可以比较不同样本中目标基因的表达水平。
本实验的结果表明,在不同样本中目标基因的表达水平存在差异。
这些差异可能与个体的遗传背景、环境因素以及疾病状态等有关。
通过定量PCR技术,我们可以更加准确地研究基因表达的变化,从而深入了解相关生物学过程。
定量PCR技术的优点在于其高灵敏度和高特异性。
相比于传统的PCR技术,定量PCR可以提供更加准确的结果。
此外,定量PCR还可以同时检测多个基因的表达水平,从而为生物学研究提供更多的信息。
然而,定量PCR也存在一些局限性。
首先,PCR反应的成功与否取决于引物和探针的设计。
实时荧光定量PCR检测的数据处理及结果报告课件
基本概念
标准品(Standard) 用来构建标准曲线的已 知浓度的样本。
参比(Reference) 用于对检测结果进行标 准化的被动(Passive)或主动(Active)信 号。如内标和外标即为主动性参比的例子。主 动性参比意味着信号由PCR扩增所致,主动性 参比有其自己的引物和探针。被Байду номын сангаас性参比则为 非PCR所致,如ROX染料,可以校正荧光信号的 非PCR波动。
基本概念
扩增效率E(amplification efficiency) 扩增效率指的是一个循环后的产物增加量与这 个循环的模板量的比值,其值位于0到1之间。 在PCR的前20或30个循环中,E值比较恒定,为 指数扩增期,随后E值逐步降低,直至0,此时 PCR达到平台期,不再扩增。扩增效率的计算 可以采用系列稀释法,将稀释后浓度的对数值 与所得Ct值做图,在一定范围内应该是得到一 条直线,利用公式(1):E=10-1/K-1(K为该 直线斜率)即可计算出E值。
在扩增达到阈值线时,此时,n = Ct,于是,扩增产物的量
为:
YCt = X ( 1+E )Ct (2) YCt 为荧光信号达到阈值强度时扩增产物的量。在阈值线设 定以后,它就是一个常数。(2)式两边同时取对数,得:
Log YCt = LogX ( 1+E )Ct (3) 亦即:Log YCt = LogX +Ct×Log ( 1+E )
基本概念
绝对定量(Absolute quantitation) 绝对定量是使用一系列 稀释的已知浓度的标准品与临床标本同时进行测定,根据系列浓 度标准品的Ct值与起始模板(RNA或cDNA)量之间的线性比例关系, 绘制标准曲线。待测标本的浓度则可根据其测定的Ct值,从标准 曲线或回归方程计算得到原始模板的数量。这种方法是假定所有 的标准品和临床标本有相近的扩增效率。系列稀释标准品的浓度 应包含临床标本的浓度范围,并且在实时PCR仪及检测试剂方法的 准确度和线性范围内。
【2019年整理】实时荧光定量PCR检测的数据处理及结果报告
基本概念
内源性内标(Endogenous control) 为一个出现在每 一个实验样本中的特定RNA或DNA,通过使用内源性 内标这种主动性参比,对于加入到每一个反应中的总 RNA量的差异,其可以校正靶mRNA的定量。
外源性内标(Exogenous control) 为一个以已知浓 度加入至每个样本中的特性确定的RNA或DNA,外源 性主动性参比通常为体外构建的,可作为内阳性质控 以鉴别由PCR抑制所致的假阴性。外源性参比也可用 来校正样本提取或cDNA逆转录合成的效率。
YCt = X ( 1+E )Ct (2) YCt 为荧光信号达到阈值强度时扩增产物的量。在阈值线设 定以后,它就是一个常数。(2)式两边同时取对数,得:
Log YCt = LogX ( 1+E )Ct (3) 亦即:Log YCt = LogX +Ct×Log ( 1+E ) (4)
基本计算公式的推导
实时荧光PCR外标绝对定量的数 学模型
在实时荧光PCR 中,每个模板的 Ct值与该模板的 起始拷贝数的对 数存在线性关系, 起始拷贝数越多, Ct值越小。
实时荧光PCR外标绝对定量的数 学模型
利用已知起始拷贝 数的外部标准品可 做出标准曲线,在 现有实时荧光PCR 中,大部分以纵坐 标为Ct值,横坐标 为起始拷贝数,少 部分以纵坐标为起 始拷贝数,横坐标 为Ct值。
实时荧光定量PCR检测 的数据处理及结果报告
卫生部临床检验中心 李金明
基本概念
线性基线期 (Linear base-line phase) 为PCR扩增的四个主 要阶段之一(图)。线性基 线期为扩增最初的10~15个循 环,此时,PCR反应处于起 始阶段,扩增产物很少,所 产生的荧光信号很低,因此, 基线荧光信号可根据此阶段 产生的荧光信号来计算。
荧光定量PCR实验及数据分析
14
常用荧光定量标记方法
• 非特异性荧光标记 • SYBR Green I
• 特异性荧光标记 • TaqMan Probe
15
SYBR Green I 染料法--原理
• SYBR Green I是一种结合于所有dsDNA双螺旋小沟区域的具有 绿色激发波长的染料。
SYBR Green I
12
荧光定量PCR原理--荧光定量反应性的确认
• 线性关系、扩增效率确认
– 相关系数(R2):大于0.98 – 标准曲线斜率:-3 - -3.5 – PCR扩增效率(E):0.9-1.2
• 检测灵敏度确认
– 35Cycles内可得到好的定量结果 – 如果采用SYBR检测方法,30Cycles内无非特异性产物扩增
34
绝对定量质粒标准品的制备
目的基因
基因组DNA PCR
目的基因
目的基因克隆
目的基因 目的基因
质粒
质粒提取,OD值定量,将质粒梯度稀释作为标准品使用
35
质粒标准品稀释方法与拷贝数计算
• 倍比梯度稀释方法:
– 1v原液(标准品i) +9v稀释缓冲液,得标准品ii – 1v标准品ii+9v稀释缓冲液,得标准品iii – 1v标准品iii +9v稀释缓冲液,得标准品iv – 1v标准品iv +9v稀释缓冲液,得标准品v
22
Taqman 探针法--工作机理
探针
热变性
引物
报告基团
R
淬灭基团
引物和探针与模板退火
DNA聚合酶
R
探针
延伸反应
R
R
23
Taqman 探针法--PCR体系的建立
荧光定量PCR实验原理及数据分析
荧光定量PCR实验原理及数据分析1.前处理:首先对待测样本进行DNA提取,并且根据需要可对DNA进行适当的纯化和稀释处理。
2. 反应体系的准备:将PCR反应所需的各种试剂组装到反应管中,包括模板DNA、引物、荧光探针和PCR Master Mix等。
其中荧光探针是含有特定标记荧光分子及其互补序列的寡核苷酸。
3.反应机使用条件的设定:根据所需扩增目标的不同,设置适当的反应条件,包括温度控制、循环次数和步骤等。
4.PCR反应过程监测:在PCR反应的过程中,通过荧光信号的实时监测来定量检测目标DNA。
在扩增过程中,如果靶标DNA存在,则引物与目标DNA结合,荧光探针被引物酶切释放出来,从而增大荧光信号。
5.数据收集与分析:实时采集PCR反应过程中的荧光信号,并通过相应的软件进行数据分析。
常见的荧光曲线分析方法有阈值循环数法(Ct 法)和相对定量法(ΔCt法)等。
在数据分析方面1.Ct值分析:阈值循环数法(Ct法)是一种常用的数据分析方法。
通过设定一个荧光信号的阈值(通常为反应曲线的背景荧光信号的两倍标准差),根据荧光信号的曲线与阈值的交点来计算Ct值。
Ct值越小,说明目标DNA起始含量越多。
2.标准曲线分析:通过引入已知浓度的标准品,制作一条标准曲线。
根据标准曲线,可以推算出待测样本中的靶标DNA的含量。
3.相对定量分析:采用相对定量法(ΔCt法)来比较两个不同样本间的靶标DNA的表达量。
通过比较目标基因与内参基因(如表达稳定的参考基因)的Ct值,计算两者Ct值间的差异(ΔCt),进而得到靶标基因的表达差异。
4.绝对定量分析:通过构建外部标准曲线或使用串联基因的方法,直接定量目标DNA的浓度。
总之,荧光定量PCR技术在医学、生物学和分子生物学等领域的应用非常广泛,对荧光信号的实时监测及数据分析能够提供准确快速的定量结果,为研究者们提供了一个强大的实验工具。
荧光定量PCR实验报告
荧光定量PCR实验报告一、实验目的1、掌握荧光定量PCR技术2、学习如何制备PCR反应体系3、了解实时荧光PCR数据分析4、检测DNA含量二、实验原理荧光定量PCR技术是一种基于PCR扩增原理的DNA分析方法,可定量检测DNA的含量,广泛应用于生物学、医学等领域。
该技术主要依靠荧光标记物,结合荧光信号强度进行定量分析。
PCR反应过程中,引物与模板DNA结合后在酶的催化下形成新的DNA链,每个PCR循环会翻倍模板量。
PCR扩增的温度曲线显示,PCR反应初期呈指数上升阶段,后期呈平台期,最后呈线性上升期。
荧光定量PCR技术基于PCR反应的初期、指数上升阶段的振幅与CT值(Crossing Threshold,荧光信号的阈值值点)之间的关系,对样品中靶序列的含量进行定量分析。
三、实验步骤以10μL体积计算,将荧光定量PCR反应体系制备如下表:试剂名称一次浓度最终浓度10μL体积SYBR Green 1x 1x 1μLdNTPs 10mM 0.2mM 0.2μLMgCl2 25mM 3mM 0.3μLTaq DNA Polymerase 5u/μL 0.04u/μL 0.04μLForward Primer - 0.2μM 0.2μLReverse Primer - 0.2μM 0.2μLTemplate DNA - 1ng-100ng 1μLddH2O - - 7.24μL2、装载PCR板将PCR反应体系均匀装到PCR板中,按照如下步骤进行:① 每组实验会使用96孔PCR板;② 取出PCR板后,先用蒸馏水清洗;③ 按照实验设计,合理地将合适的试剂组合均匀装出到每个孔中;④ 采用专用移液器,能够准确的移液。
3、进行PCR扩增反应在PCR扩增反应期间,我们将执行以下操作:② 进行荧光定量PCR反应;③ 在PCR反应过程中,分别记录下样品的CT值和所测基因的拷贝数;4、数据分析① 利用荧光定量PCR仪进行CT值分析,记录下每个样品的CT值;② 利用以下公式,将CT值成功转化成所测基因的拷贝数:DNA含量(ng)=拷贝数 X DNA分子量/ 6.02 X 10^23;③ 分别计算出每个样品的DNA含量;④ 利用所得数据,绘制出荧光定量PCR的结果图,并进行结果的解释。
实时荧光定量PCR检测的数据处理及结果报告
定量测定测定的是量的“多”或“少”;定性测定则 是测定某种物质的“有”或“无”,用于未知病人的 确认诊断。 定量测定结果报告:根据所使用的测定方法的测定范 围报告结果,如样本测定结果高出此范围,则可报告 >多少,也可对样本稀释后再检测;如低于此范围, 则报告<多少,如<103拷贝数/ml,而不能报告为0拷 贝数/ml或阴性。 定性测定结果报告:报告“阳性”或“阴性”, “检出” 或“未检出”, “反应”或“未反应”
为什么要做定量测定?
定性和定量测定结果报告上的混淆。
为什么要做定量测定?
用于已知病毒感染患者抗病毒治疗效果 的动态观察及抗病毒药物的临床研究; 用于基因表达方面的研究,如特定的 mRNA的定量测定。
为什么要做定性测定?
用于未知患者的确认 用于血液筛检 突变检测
定量和定性测定的结果报告
纵坐标为Ct值横坐标为起始拷贝 数时的数学模型
此种计算模式下,斜率 A必≤-3.32。 截距B则为原始模板趋 向于0亦阴性标本检测的 Ct 值,因此,一个实时 荧光PCR,如果设定的 扩增循环数为40,则其 截距B即应≥40。
日常扩增的实时荧光曲线所蕴含 的信息
定量和定性PCR测定的临床应用及 应注意的问题
基本概念
扩增效率E(amplification efficiency) 扩增 效率指的是一个循环后的产物增加量与这个循 环的模板量的比值,其值位于0到1之间。在 PCR的前20或30个循环中,E值比较恒定,为 指数扩增期,随后E值逐步降低,直至0,此时 PCR达到平台期,不再扩增。扩增效率的计算 可以采用系列稀释法,将稀释后浓度的对数值 与所得Ct值做图,在一定范围内应该是得到一 条直线,利用公式(1):E=10-1/K-1(K为该 直线斜率)即可计算出E值。
荧光定量pcr 实验报告
荧光定量pcr 实验报告荧光定量PCR 实验报告引言:荧光定量PCR(Polymerase Chain Reaction)是一种常用的分子生物学技术,用于扩增和定量特定DNA序列。
它通过在PCR反应中引入荧光探针,可以实时监测PCR扩增过程中的DNA产物累积情况。
本实验旨在利用荧光定量PCR技术,检测目标基因在不同样本中的表达水平。
材料与方法:1. 样本准备:从不同组织中提取总RNA,并利用逆转录酶将RNA转录成cDNA。
2. PCR反应体系的配制:根据厂家提供的荧光定量PCR试剂盒说明书,配制PCR反应体系。
3. 荧光定量PCR扩增条件:预热酶解反应,然后进行PCR扩增,最后进行荧光信号检测。
4. 数据分析:利用荧光定量PCR仪器提供的软件对实验数据进行分析,计算目标基因的表达量。
结果与讨论:通过荧光定量PCR实验,我们成功检测到目标基因在不同样本中的表达水平。
实验结果显示,在肝脏组织中,目标基因的表达量最高,而在肺组织中表达量最低。
这与已有的研究结果一致,说明我们的实验结果是可靠的。
荧光定量PCR技术的优点在于其高灵敏度和高特异性。
相比传统的定量PCR技术,荧光定量PCR可以实时监测PCR反应过程中的荧光信号,从而准确测量目标基因的表达量。
此外,荧光定量PCR还可以同时检测多个基因的表达水平,提高实验效率。
然而,荧光定量PCR也存在一些限制。
首先,实验过程中需要使用荧光探针,这增加了实验的复杂性和成本。
此外,荧光定量PCR对样本的质量要求较高,如果样本中存在较多的抑制物质,可能会导致PCR扩增效率降低。
在今后的研究中,我们可以进一步探索荧光定量PCR技术的应用。
例如,可以利用这一技术研究基因表达的调控机制,或者检测特定基因在疾病发展过程中的变化。
此外,我们还可以结合其他分子生物学技术,如RNA测序和蛋白质组学,深入研究基因的功能和调控网络。
结论:荧光定量PCR是一种可靠、高效的分子生物学技术,用于检测目标基因的表达水平。
荧光定量PCR实验及数据分析
荧光定量PCR实验及数据分析一、概述荧光定量PCR(Quantitative Realtime PCR,简称qPCR)是一种结合了PCR技术的高灵敏度和荧光探针技术的实时定量特性的分子生物学分析方法。
该方法通过实时监测PCR反应过程中荧光信号的变化,对模板DNA或RNA的初始浓度进行定量分析。
荧光定量PCR技术在基因表达研究、病原体检测、基因突变分析以及药物疗效评估等领域具有广泛的应用价值。
在荧光定量PCR实验中,通常使用特异性引物和荧光探针来识别并扩增目标序列。
荧光探针的设计是关键步骤之一,它必须能够与目标序列特异性结合并在PCR过程中产生可检测的荧光信号。
实验过程中还需严格控制反应条件,包括温度、时间、引物和探针的浓度等,以确保实验的准确性和可重复性。
数据分析是荧光定量PCR实验不可或缺的一部分。
通过对实验数据的收集、整理和分析,可以获取目标序列的初始浓度信息,进而对实验结果进行解读和评估。
数据分析方法包括相对定量和绝对定量两种,前者通过比较不同样本间目标序列的相对表达量来评估差异,后者则通过标准曲线法或质粒拷贝数法等方法来确定目标序列的绝对浓度。
荧光定量PCR技术是一种高效、灵敏且特异的分子生物学分析方法,对于研究基因表达、病原体检测等领域具有重要意义。
通过不断优化实验操作和数据分析方法,可以进一步提高荧光定量PCR实验的准确性和可靠性,为科学研究和临床实践提供有力支持。
1. 荧光定量PCR技术的概述荧光定量PCR技术,是一种基于DNA聚合酶链式反应的分子生物学技术,它通过引入荧光标记,实时监测PCR过程中目标DNA片段的扩增情况,从而实现对特定基因拷贝数的精确量化。
该技术结合了PCR的高效扩增能力与荧光信号的灵敏检测,使得微量DNA分子的检测成为可能,并在遗传学、分子生物学、医学诊断等领域中发挥着重要作用。
荧光定量PCR技术主要依赖于特异性引物和探针的设计,使得PCR扩增过程具有高度的特异性。
QPCR实验报告
QPCR实验报告一、实验目的本实验旨在通过实时荧光定量聚合酶链式反应(QPCR)技术,对特定基因的表达水平进行定量分析,以探究其在不同实验条件下的变化情况。
二、实验原理QPCR 是一种基于 PCR 技术的核酸定量方法。
在 PCR 反应体系中加入荧光染料或荧光标记的探针,随着 PCR 反应的进行,荧光信号不断累积。
通过检测荧光信号的强度变化,可以实时监测 PCR 反应的进程,并根据标准曲线对未知样品中的核酸浓度进行定量。
三、实验材料与设备1、实验材料提取的总 RNA 样品反转录试剂盒特异性引物QPCR 试剂盒2、实验设备实时荧光定量 PCR 仪离心机移液器微量核酸定量仪四、实验步骤1、 RNA 提取从细胞或组织中提取总 RNA,使用微量核酸定量仪测定 RNA 的浓度和纯度。
2、 cDNA 合成以提取的 RNA 为模板,使用反转录试剂盒合成 cDNA。
3、 QPCR 反应体系配制根据试剂盒说明书,配制 QPCR 反应体系,包括引物、cDNA 模板、PCR 反应液等。
4、 QPCR 反应将配制好的反应体系加入到 PCR 反应管中,放入实时荧光定量PCR 仪中进行反应。
反应条件通常为:95°C 预变性 30s,然后进行 40个循环,每个循环包括 95°C 变性 5s,60°C 退火/延伸 30s。
5、数据分析反应结束后,使用 PCR 仪自带的软件分析荧光数据,得到 Ct 值(Cycle threshold,循环阈值)。
根据标准曲线计算样品中目的基因的相对表达量。
五、实验结果1、标准曲线以不同浓度的标准品进行 QPCR 反应,绘制标准曲线。
标准曲线的线性关系良好,R²值大于 099,表明定量结果可靠。
2、样品检测结果实验样品中目的基因的 Ct 值如表 1 所示。
|样品编号|目的基因 Ct 值|||||1|_____||2|_____||3|_____|根据标准曲线和样品的 Ct 值,计算得到目的基因在不同样品中的相对表达量,结果如表 2 所示。
实时荧光定量PCR简介、结果分析及报告
示温度的不一致性等;
试剂问题:如Taq酶和(或)反转录酶的失活、探针的纯
度及标记效率和核酸提取试剂的效率等;
广西临床检验中心
失控的一般情况
阳性质控或样本失控的预防措施
纯化核酸:但不能完全避免来自标本核酸提取过程中所混入的去垢剂、 有机溶剂的抑制作用;
重复性实验:对临床样本进行重复双份测定,避免由于操作的随机性
广西临床检验中心
对数曲线与线性曲线的转换
对数曲线
线性曲线
广西临床检验中心
数据分析一般流程
曲线分析(Amplification Plot)
检测通道的选择:该步骤主要是由于多色
荧光检测在PCR检测中的应用越来越广泛,
比如含有内标的试剂,内标的检测通道与 目的基因的检测通道不同,因此需根据需 求选择不同的通道进行结果分析。
广西临床检验中心
标准曲线分析
斜率、截距、相关性
广西临床检验中心
数据分析一般流程
标准曲线分析(Standard Curve)
Slope(斜率):理论值为-3.32。可以从两个方面来分析,首先是标准曲线 的10倍梯度关系,如果梯度正确,斜率数值会比较接近理论值;其次是试剂
的扩增效率,当梯度正确的情况下,扩增效率越高越接近理论值。
• 定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利 用荧光信号累积实时监测整个PCR进程,最 后通过Ct值和标准曲线对未知模板起始浓 度进行定量分析的方法。
广西临床检验中心
TaqMan作用机理
1. 2. 3.
forward primer
5' 3'
每产生一条DNA链,就切断一条探针 每切断一条探针,就产生一个单位信号 信号强度与结合探针的DNA分子数成正比
荧光定量pcr数据处理
荧光定量pcr数据处理荧光定量PCR数据处理一、引言荧光定量PCR(Quantitative Polymerase Chain Reaction)是一种广泛应用于分子生物学领域的技术,用于定量检测特定DNA序列的存在和数量。
在荧光定量PCR实验中,通过引物与DNA靶标的特异性结合,经过一系列的扩增步骤,最终通过荧光信号的强度来判断靶标DNA的存在和含量。
本文将介绍荧光定量PCR数据处理的相关内容。
二、荧光定量PCR数据的基本处理流程荧光定量PCR数据的处理包括以下几个主要步骤:1. 荧光曲线绘制:将实验得到的荧光信号强度与PCR循环数进行绘图,得到荧光曲线图。
荧光曲线图通常呈指数增长的形式,其中荧光信号强度与PCR循环数成正比。
2. 阈值确定:在荧光曲线图中,需要确定一个合适的阈值来判断荧光信号的阴性和阳性。
阈值通常选取在指数增长期的线性段上,使得荧光信号在此段内明显高于背景噪音。
3. CT值计算:CT值(Cycle Threshold)是指荧光曲线与阈值相交的PCR循环数。
CT值反映了样品中目标DNA的含量,通常CT值越低,目标DNA含量越高。
4. 标准曲线绘制:使用已知浓度的标准品进行荧光定量PCR实验,绘制标准曲线。
标准曲线可用于计算未知样品的目标DNA浓度。
5. 目标DNA浓度计算:通过比较未知样品的CT值与标准曲线上对应CT值,可以计算出目标DNA的浓度。
三、荧光定量PCR数据处理注意事项在进行荧光定量PCR数据处理时,需要注意以下几点:1. 样品质量控制:样品的质量对荧光定量PCR结果影响较大。
因此,在样品处理过程中需注意避免污染和降解,以保证实验结果的准确性。
2. 阈值的选择:阈值的选择对结果的准确性和可比性至关重要。
过高或过低的阈值可能导致结果的偏差,因此应根据具体实验情况选择合适的阈值。
3. CT值的解释:CT值不仅与目标DNA的含量有关,还与扩增效率和实验条件等因素有关。
因此,在比较不同样品的CT值时,需注意考虑这些因素的影响。
实时荧光定量pcr实验报告
实时荧光定量pcr实验报告篇一:实时荧光定量PCR方法简介实时荧光定量PCR方法简介一.实时荧光定量PCR的基本原理理论上,PCR过程是按照2n(n代表PCR循环的次数)指数的方式进行模板的扩增。
但在实际的PCR反应过程中,随着反应的进行由于体系中各成分的消耗(主要是由于聚合酶活力的衰减)使得靶序列并非按指数方式扩增,而是按线性的方式增长进入平台期。
因此在起始模板量与终点的荧光信号强度间没有可靠的相关性。
如采用常规的终点检测法(利用EB染色来判断扩增产物的多少,从而间接的判断起始拷贝量),即使起始模板量相同经PCR扩增、EB染色后也完全有可能得到不同的终点荧光信号强度。
为了能准确判断样品中某基因转录产物(mRNA)的起始拷贝数,实时荧光定量PCR采用新的参数——Ct值,定量的根本原理是Ct值与样品中起始模板的拷贝数的对数成线性反比关系。
Ct值是如何得到的在实时荧光定量PCR的过程中,靶序列的扩增与荧光信号的检测同时进行,定量PCR仪全程采集荧光信号,实验结束后分析软件自动按数学算法扣除荧光本底信号并设定阈值从而得到每个样品的Ct值。
Ct值的定义Ct值中的“C”代表Cycle(循环),“t”代表检测threshhold(阈值),其含义是PCR扩增过程中荧光信号强度达到阈值所需要的循环数;也可以理解为扩增曲线与阈值线交点所对应的横坐标。
Ct值与样品中模板的对应关系Ct值与样品中起始模板的拷贝数的对数成线性反比关系(y=ax+b,x代表起始模板拷贝数的对数,y代表Ct值)。
与终点法相比利用Ct值的优势由于Ct值是反映实际PCR反应过程中扩增即将进入指数期的参数,该参数几乎不受试剂消耗等因素的影响,因此利用Ct值判断的起始模板拷贝数更加精确,重复性也更好。
传统的终点检测法是在PCR扩增经历了指数扩增期进入平台期后利用EB等染料染色来判断扩增产物的多少,从而间接的判断起始拷贝量,这种方法的精确度不高、重复性也不好。
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为什么要做定性测定?
用于未知患者的确认 用于血液筛检 突变检测
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定量和定性测定的结果报告
定量测定测定的是量的“多”或“少”;定性测定则 是测定某种物质的“有”或“无”,用于未知病人的 确认诊断。
定量测定结果报告:根据所使用的测定方法的测定范 围报告结果,如样本测定结果高出此范围,则可报告 >多少,也可对样本稀释后再检测;如低于此范围, 则报告<多少,如<103拷贝数/ml,而不能报告为0拷 贝数/ml或阴性。
1/log2=-3.32
如果扩增效率为0.5(100%),则斜率A =1/log1.5=-5.68
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纵坐标为Ct值横坐标为起始拷贝 数时的数学模型
此种计算模式下,斜率 A必≤-3.32。
截距B则为原始模板趋 向于0亦阴性标本检测的 Ct 值,因此,一个实时 荧光PCR,如果设定的 扩增循环数为40,则其 截距B即应≥40。
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实时荧光PCR外标绝对定量的数 学模型
在实时荧光PCR 中,每个模板的 Ct值与该模板的 起始拷贝数的对 数存在线性关系, 起始拷贝数越多, Ct值越小。
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实时荧光PCR外标绝对定量的数 学模型
利用已知起始拷贝 数的外部标准品可 做出标准曲线,在 现有实时荧光PCR 中,大部分以纵坐 标为Ct值,横坐标 为起始拷贝数,少 部分以纵坐标为起 始拷贝数,横坐标 为Ct值。
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基本概念
Ct值(threshold cycle)或CP值(crossing point) Ct或CP值指的是实时监测扩增过程的 荧光信号达到指数扩增时的循环周期数。主要 的计算方式是以扩增过程前3到15个循环的荧 光值的10倍标准差为阈值,当荧光值超过阈值 时的循环数则为阈值循环数(Ct)。有实验证 明Ct值与样本中的原始拷贝数成正比关系。Ct 值是当前实时荧光PCR的主要定量参数。
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基本概念
扩增效率E(amplification efficiency) 扩增
效率指的是一个循环后的产物增加量与这个循 环的模板量的比值,其值位于0到1之间。在 PCR的前20或30个循环中,E值比较恒定,为 指数扩增期,随后E值逐步降低,直至0,此时 PCR达到平台期,不再扩增。扩增效率的计算
扩增效率过低。
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纵坐标为起始拷贝数对数值横坐 标为Ct值时的数学模型
重新重理(4)式
Log YCt = LogX +Ct×Log ( 1+E )
可得:
LogX = -Ct×Log ( 1+E ) +
Log YCt
(5)
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纵坐标为起始拷贝数对数值横坐 标为Ct值时的数学模型
根据Y= AX+B,(5)式中的Y = LogX,X = Ct,A = -Log ( 1+E ),B = Log YCt
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谢谢!
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在扩增达到阈值线时,此时,n = Ct,于是,扩增产物的量为: YCt = X ( 1+E )Ct (2)
YCt 为荧光信号达到阈值强度时扩增产物的量。在阈值线设 定以后,它就是一个常数。(2)式两边同时取对数,得:
Log YCt = LogX ( 1+E )Ct (3)
亦即:Log YCt = LogX +Ct×Log ( 1+E ) (4)
系列稀释的标准品最好是RNA,也可以是双链DNA片段、单链 DNA或载有靶序列的质粒。标准品必须是纯的,与RNA标准品相 比,DNA有相对较好的稳定性、重复性和敏感性,但其与逆转录 没有关系,不能反映逆转录效率。
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基本概念
相对定量(Relative quantitation) 在相对定 量中,标本中特定mRNA的测定是建立在外标 或参比样本(校准品)的基础上的。当使用校 准品的时候,定量测定结果可表示为靶RNA/ 校准品比值。有多种数学模型可用来计算相对 定量测定的平均正态化的基因表达。使用不同 的数学模型所得到的结果和标准差均会有所差 异。表5-1比较了不同的数据处理方法及其解 释。
实时荧光定量PCR检测 的数据处理及结果报告
卫生部临床检验中心 李金明
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基本概念
线性基线期 (Linear base-line phase) 为PCR扩增的四个主 要阶段之一(图)。线性基 线期为扩增最初的10~15个循 环,此时,PCR反应处于起 始阶段,扩增产物很少,所 产生的荧光信号很低,因此, 基线荧光信号可根据此阶段 产生的荧光信号来计算。
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基本概念
标准品(Standard) 用来构建标准曲线的已 知浓度的样本。
参比(Reference) 用于对检测结果进行标准 化的被动(Passive)或主动(Active)信号。 如内标和外标即为主动性参比的例子。主动性 参比意味着信号由PCR扩增所致,主动性参比 有其自己的引物和探针。被动性参比则为非 PCR所致,如ROX染料,可以校正荧光信号的 非PCR波动。
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基本概念
指数期(Exponential phase) 为PCR扩增的四 个主要阶段之一(图)。 PCR达到其最大的扩增阶 段,理想条件下,每一循 环后,PCR产物倍比增加。
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基本概念
平台期(Plateau phase) 为PCR扩增的四个主要阶 段之一(图5-1)。扩增 达到平台期,此时,荧光 信号不再随扩增循环数的 增加而增加。
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基本计算公式的推导
如果扩增效率为100%,亦即E=1,扩增反
应管中原始拷贝数为10,扩增产物达到
1000分子拷贝,则预计的Ct
=
1 log
(2 Log
1000
-Log
10)=
1 log
2
×2
=
6.64。因此,如
果已知原始模板拷贝数为1,扩增产物达
1000分子拷贝时,其Ct <6.64较多,则说明
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基本概念
指数期初期 (The beginning of exponential phase) 为 PCR扩增的四个主要阶段之 一(图)。进入扩增指数期 初期,荧光强度达到一个阈 值,该阈值通常为基线荧光 信号均值标准差的10倍。扩 增达到阈值时的循环数可称 为CT(ABI Prism有关文献) 或CP(LightCycler有关文 献)。CT或CP与原始扩增模 板数量正负相关,可通其与 原始模板的函数关系,来计 算原始模板的数量。
截 为距 Ct值B =趋L向og于Y0C时t ,的其原与始阈模值板线拷的贝选数定的直对接数相值关。,应
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纵坐标为Ct值横坐标为起始拷贝 数时的数学模型
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纵坐标为Ct值横坐标为起始拷贝 数时的数学模型
LogX = -Ct×Log ( 1+E ) + Log YCt (5) 可变换为:
Ct =( -1/log(1+E)) Log X +Log YCt / log(1+E) (7) A= -1/log(1+E), B= Log YCt / log(1+E) 如果扩增效率为1(100%),则斜率A =-
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基本概念
内源性内标(Endogenous control) 为一个出现在每 一个实验样本中的特定RNA或DNA,通过使用内源性 内标这种主动性参比,对于加入到每一个反应中的总 RNA量的差异,其可以校正靶mRNA的定量。
外源性内标(Exogenous control) 为一个以已知浓 度加入至每个样本中的特性确定的RNA或DNA,外源 性主动性参比通常为体外构建的,可作为内阳性质控 以鉴别由PCR抑制所致的假阴性。外源性参比也可用 来校正样本提取或cDNA逆转录合成的效率。
可以采用系列稀释法,将稀释后浓度的对数值 与所得Ct值做图,在一定范围内应该是得到一 条直线,利用公式(1):E=10-1/K-1(K为该 直线斜率)即可计算出E值。
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基本概念
绝对定量(Absolute quantitation) 绝对定量是使用一系列稀释 的已知浓度的标准品与临床标本同时进行测定,根据系列浓度标 准品的Ct值与起始模板(RNA或cDNA)量之间的线性比例关系, 绘制标准曲线。待测标本的浓度则可根据其测定的Ct值,从标准 曲线或回归方程计算得到原始模板的数量。这种方法是假定所有 的标准品和临床标本有相近的扩增效率。系列稀释标准品的浓度 应包含临床标本的浓度范围,并且在实时PCR仪及检测试剂方法 的准确度和线性范围内。
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实时荧光PCR外标绝对定量的数 学模型
只要获得未知标 本的Ct值,即可 从标准曲线上计 算出该标本的起 始拷贝数,这是 采用外标进行实 时荧光PCR绝对 定量的基本原理。
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基本计算公式的推导
Yn = X ( 1+E )n (1) 其中,Yn 为第n个循环后扩增产物的量,X为原模板数,E为 扩增效率,n为扩增循环数。
定性测定结果报告:报告“阳性”或“阴性”, “检出” 或“未检出”, “反应”或“未反应”
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报告中所应具备的信息
标题,例如“检测报告” 报告的唯一性标识(如序号) 检测标本的特性和状态 检测标本的接收时间和进行检测的时间 采用的检测方法 实验操作及校核人员的签字,以及签发日期 检测报告中应给出参考结果或范围
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日常扩增的实时荧光曲线所蕴含 的信息
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定量和定性PCR测定的临床应用及 应注意的问题
为什么要做定量测定?
定性和定量测定结果报告上的混淆。
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