第1讲细胞因子与细胞粘附因子的测定(精)
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第一讲 细胞因子与细胞粘 附因子的测定
任春锋
第一节 生物学测定方法 一、促进细胞增殖和抑制细胞增殖测定法 二、细胞毒活性测定法 三、抗病毒活性测定法 四、趋化活性测定法 五、生物学活性测定方法学评价
第二节 免疫测定方法 一、ELISA方法 二、流式细胞分析法 三、酶联免疫斑点试验 四、免疫学测定方法学评价
一、促进细胞增殖和增殖抑制测定法
是最常用的细胞因子生物活性测定方法：以细胞因 子依赖性细胞株为靶向，通过观察特定的 细胞因子刺激或抑制依赖性细胞株增殖来 评估细胞因子的活性水平。
细胞增殖检测方法分类
直接计数法 简便、直观,但费时、主观因素影响大、难
以标准化和自动化，不适用大量标本检测，因此 常用其他间接指示细胞增殖的方法检测 细胞代谢活性测定方法
细胞粘附因子
是介导细胞间及细胞与细胞外基质间粘附作用 的分子，其化学本质为糖蛋白，可以细胞膜表面表 达和可溶性两种形式存在。
细胞因子的主要生物学作用
1、抗感染和抗肿瘤 2、免疫调节作用 3、刺激造血细胞增殖分化 4、参与和调节炎症反应 5、其它
细胞因子以生物学作用进行划分的分类
白细胞介素（Interleukin）—— IL-1、IL-2、…… IL-18 干扰素（Interferon）—— IFN-、IFN-、IFN- 肿瘤坏死因子（Tumor necrosis factor）—— TNF- 、 TNF- 集落刺激因子（Colony-stimulating factor）—— M-CSF、G-CSF 转化生长因子（Transforming growth factor）—— TGF- 趋化因子（Chemokine）—— IL-8、GROs、MCP-1 生长因子（Growth factor）—— EGF、FGF、IGF、PDGF
原 殖或抑制方法一样，以已知活性的细胞因子标准品为对照。死、活细胞情况可用
理 同位素51Cr释放法判断，或应用台盼兰染色死细胞后直接计数。也可通过结晶紫、
萘酚蓝黑、MTT、NBB等着染活细胞，再用脱色液脱出染料后酶标仪比色测定吸光
值。死细胞数、51Cr释放量越高或比色测定的吸光值越低，表明待测细胞因子的细
胞毒活性则越高。应用系列稀释的细胞因子标准品，制作其活性与剂量关系的标
准曲线，以此作为待测品活性的定量测定的基础。
本法常用于TNF等的测定
三、抗病毒活性测定法
常用于检测抗病毒活性的细胞株 Wish、Hep2/c 人干扰素
L929
小鼠干扰素
Ratec
大鼠干扰素
A549
MDBK 多种族的IFN-α和IFN-γ
第三节 分子生物学检测方法 一、Northern和Southern Blot 二、PCR和RT-PCR 三、原位杂交、原位PCR和原位RT-PCR
第四节 细胞因子与细胞粘附分子测定的临床应用 一、临床应用原则 二、特定疾病诊断的辅助指标 三、评估机体的免疫状态、判断治疗效果及预后
细胞因子
是由活化的免疫细胞及某些基质细胞表达并分泌 的活性物质，其主要生物学功能是介导和调节免疫 应答及炎症反应，其化学本质是蛋白质或多肽。
细胞因子的作用特点
1、分泌特点：自分泌、旁分泌、内分泌性 2、多源与同源性 3、高效性 4、多效性（pleiotropy） 5、重叠性（redundancy） 6、协同性 7、拮抗性 8、网络性
细
胞
作用于分泌细胞
因
自身
子 分
自分泌 autocrine
泌
的
方
式
旁分泌 paracrine
作用于比邻 细胞
B B细胞
B
更有效地诱导IgE 类别转换
IFN- 阻断IL-4诱 导类别转化的作用， IL-4抑制IFN-
细胞因子检测的方法
免疫学检测方法——抗原性检测 细胞生物学检测方法——生物活性检测 分子生物学检测方法——基因表达检测
粘附因子以结构特点进行划分的分类
1、粘蛋白样家族（integrin family） 2、免疫球蛋白超家族（immunoglobulin superfamily,IgSF) 3、选择素家族（selectin family） 4、整合素家族（Integrin family） 5、钙离子依赖性家族（简称钙粘素Cadherin） 6、其它未归类的粘附分子如CD36、CD44、CD45等
加入MTT前温育时间（h） 96/48 96 96 72
120 72
44
56 22-24
72
检测细胞因子 IL-6 IL-11 IL-13
TGF-β TNF
TNF IL-2 IL-3
二、细胞毒活性测定法
基 本
对指示细胞具有破坏作用的细胞因子，若与细胞共育将会导致细胞死亡。因 此，待测细胞因子作一系列稀释后加至指示细胞培养体系，以检测培养细胞的死 细胞数作为判断指标，死细胞数量与细胞因子的活性呈正比。试验时，与细胞增
3H-TdR、125I-UdR掺入法或MTT等比色法 细胞代谢产物测定法
代谢产物荧光强度测定法和指示细胞表面标 记或可溶性分子测定法
(1) 放射性核素掺入法
原理：通过检测细胞DNA合成的增加或减少来判断细胞增殖的方 法。在细胞的增殖过程中，DNA合成的增加使得指示细胞对核苷或碱 基的需求增多，若将核苷标记上可以示踪的同位素（3H/125I ），通 过检测细胞内的同位素含量，则可反映细胞增殖的程度。
பைடு நூலகம்2) MTT 比色法
特点：不使用放射性核素， 以细胞代谢变化为增殖指征 指示细胞的增殖情况与线粒体代谢活性相关
与同位素掺入法相比
测定步骤类似
掺入物：MTT而非3H-TdR； 反应条件：选用的细胞及其浓度、 培养时间不同
细胞增殖或抑制活性检测的MTT比色法常用靶细胞
细胞株/原代细胞 B9，MH60,BSF2,TTD1
UT-7
CCL-64* DA3.15, IF M14/NES60.4
所需浓度（细胞数/ml）
2×105 2×105
105 5×104
105 5×103 5×104 1×105
105 105 3×104 105
1.5×105
5×108 5×104 5×104
3H-TdR前培养时间
48 56 24 24 24 48 36 24 72 24 66 72
细胞病变程度分为5个等 级，即：
“0”，表示无明显CPE； “1+”，CPE≤25％； “2+”，CPE为25～50％； “3+”，CPE为50～75％； “4+”，CPE为75～100％。 根据病变程度找出CPEI50的标 本稀释范围，并以此计算出距 离比例和确定IFN效价。
该法操作复杂、影响因素较 多，在试验前应对所用的病毒 进行滴定。
• 粘附因子功能及应用：主要功能是调节细胞与 细胞、细胞与间质之间的相互作用。病理情况 下，由于粘附因子在细胞表面或血循环中的数 量和质量有所改变，进而影响原有细胞与细胞、 细胞与间质之间的平衡，因此，细胞内外粘附 因子的测定对于某些疾病的发生发展机制探讨、 辅助诊断、治疗监控及预后方面有重要应用价 值。
第一节 生物学测定方法
生物活性测定法原理
根据细胞因子特定的生物学活性,应用相应的靶细胞 指示系统,同时与标准品对比测定,从而得知样品中 细胞因子的活性水平,一般以活性单位(U/ml)表示
有助于细胞因子 检测的活性作用
刺激细胞增殖或集落形成的活性 维持细胞生长和存活的特性 抑制细胞生长或破坏细胞的效应 促进细胞趋化或抗病毒作用
细胞病变抑制法结果判断举例*
标本稀释度 log4 3 4 5 6 7 8
两孔平均 CPE 0 0 0
1.5 2.5 0
细胞病变 抑制程度
4 4 4 2.5 1.5 0
细胞病变 抑制积累
16 12 8 4 1.5 0
细胞病变 积累
0 0 0 1.5 4 8
细胞病变 抑制率
16/16 (100%)
12/12 (100%)
B9-11 B9-1-3 KYM-1D4
MV-3D9 WEHI-164/clone13
32D/Mp110S
L929 CTLL-2 小鼠基质细胞, 32DCL-27
细胞终浓度（细胞数/ml） 5×104/2×105 5×104 5×104
2×103
5×103 2×103
1×103
2×105 105
1.5×105
4-8
M-CSF/G-CSF
(2) MTT 比色法
原理：一种不使用放射性核素，以细胞代谢作为 细胞增殖指示物的细胞因子生物活性间接测定方法。
MTT在活细胞线粒体中的在脱氢酶的作用下，被还 原成不溶于水的蓝紫色产物（formazan)，其量与细胞 增殖的程度呈正比。二甲亚砜（DMSO）能溶解沉积 在细胞中蓝紫色结晶物，溶液颜色深浅与所含的 formazan量成正比。再用酶标仪测定OD值。
8/8 (100%)
4/5.5 (73%)
1.5/5.5 (27%)
0/8(0%)
*结果：CPEI50稀释度介于4-6-4-7之间，距离比例为(73-50)/(73-27)
=0.50，效价为46.5；同法计算IFN标准品的CPEI50稀释度，将IFN效价 换算成国际单位，IFN国际单位=样品CPEL50的稀释度/标准品CPEI50稀 释度×标准品的单位。
72
72 24 24
3H-TdR后培养时间 检测细胞因子
18-20 16 4-6 4-8 4-6 6 12 12 6 4-6 6 6
6
8 4-8
IL-1 IL-1 IL-2 IL-3 IL-4 IL-5 IL-5 IL-5 IL-5 IL-7 IL-9 IL-11 SCF （干细胞因子） TGF-β GM-CSF
靶细胞
趋化因子
滤膜：计数受趋化细胞
趋化试验原理示意
各类细胞因子检测的常用靶细胞-1
细胞因子 IL-1
IL-2 IL-3
实验系统 D10（M）增殖法 EL-4（M）增殖法 A352（H）增殖抑制法 CTLL（M）增殖法 KG-1（H）增殖法 TF-1（H）增殖法
IL-4
CTLL（M）增殖法
IL-5
血液循环
内分泌 endocrine
远距离作用
多效性 IL-4 pleiotropy
活化、
B
增殖、
分化
胸腺细胞
增殖
肥大细胞
增殖
重叠性
IL-2、
redundancy IL-4、
IL-5
均有刺激B细胞
B
增殖的功能
协同性 synergy
IL-4 + IL-5
拮抗性 antagonism
IL-4 IFN-
Clone-IXN/2b（M）增殖法
中性粒细胞（M、H）趋化法
TF-1（H）增殖法
IL-3、IL-5
IL-6、IL-5
L929 （M、H）细胞毒法
wish（H）病变保护法
IFN- 、 IFN-
L929（M）病变保护法
IFN- 、 IFN-
五、生物学活性测定方法学评价
优点 • 生物学活性的测定 • 灵敏度高 缺点 • 特异性差 • 操作繁琐 • 易受干扰
常用于攻击细胞的病毒 VSV、EMCV及Sindbis virus等
检测抗病毒活性的方法 抑制病毒的致细胞病变效应(CPE)、
抑制病毒蚀斑形成或抑制病毒的产量
本法常用于IFN测定，IFN可诱导细胞产生抑制病毒RNA和DNA合成的酶，保护细 胞不受病毒感染，抑制病毒产生细胞病变效应（CPE）。细胞因子样品处理易感细 胞，使细胞建立抗病毒状态，然后用适量病毒攻击细胞，评价病毒的复制量或病毒 引起细胞病变被抑制的程度，即可判断样品中细胞因子的生物活性。
BCL-1（M）增殖法
干扰因素 IL-2、IL-4 IL-4
IL-4
GN-CSF、IL-5 IL-6、EPO IL-2 IL-4
各类细胞因子检测的常用靶细胞-2
细胞因子 IL-6
IL-7 IL-8 GM-CSF
TNF/ IFN
实验系统
干扰因素
B9（M）增殖法
IL-4、IL-11
BM60（H）增殖法
四、趋化活性测定法
趋化因子诱导细胞移动的方式
本法主要用于测定趋化因子和IL-8的生物活性测定。
趋化性(chemotaxis)：
诱导细胞向由趋化因子低浓度出向趋化因子高浓度处作定向 移动的特性,可采用琼脂糖和微孔小室趋化试验。
化学增活性(chemokinesis)：
细胞因子增强细胞的随机运动能力的特性,可采用琼脂糖 小滴化学动力学试验检测。
结果客观易于自动化； 适用于大标本量的测定
方法的特异性受依赖细胞 株影响；放射性污染
常见细胞因子3H-TdR掺入检测法所需细胞及参考试验条件
细胞株
D10G4.1 L929 CTLL-2
FDC-P1,32DCL-27
CT.4S CH12 B13 T88-M BCL1
Clone-K,I×N/2bx
TS1 T10
任春锋
第一节 生物学测定方法 一、促进细胞增殖和抑制细胞增殖测定法 二、细胞毒活性测定法 三、抗病毒活性测定法 四、趋化活性测定法 五、生物学活性测定方法学评价
第二节 免疫测定方法 一、ELISA方法 二、流式细胞分析法 三、酶联免疫斑点试验 四、免疫学测定方法学评价
一、促进细胞增殖和增殖抑制测定法
是最常用的细胞因子生物活性测定方法：以细胞因 子依赖性细胞株为靶向，通过观察特定的 细胞因子刺激或抑制依赖性细胞株增殖来 评估细胞因子的活性水平。
细胞增殖检测方法分类
直接计数法 简便、直观,但费时、主观因素影响大、难
以标准化和自动化，不适用大量标本检测，因此 常用其他间接指示细胞增殖的方法检测 细胞代谢活性测定方法
细胞粘附因子
是介导细胞间及细胞与细胞外基质间粘附作用 的分子，其化学本质为糖蛋白，可以细胞膜表面表 达和可溶性两种形式存在。
细胞因子的主要生物学作用
1、抗感染和抗肿瘤 2、免疫调节作用 3、刺激造血细胞增殖分化 4、参与和调节炎症反应 5、其它
细胞因子以生物学作用进行划分的分类
白细胞介素（Interleukin）—— IL-1、IL-2、…… IL-18 干扰素（Interferon）—— IFN-、IFN-、IFN- 肿瘤坏死因子（Tumor necrosis factor）—— TNF- 、 TNF- 集落刺激因子（Colony-stimulating factor）—— M-CSF、G-CSF 转化生长因子（Transforming growth factor）—— TGF- 趋化因子（Chemokine）—— IL-8、GROs、MCP-1 生长因子（Growth factor）—— EGF、FGF、IGF、PDGF
原 殖或抑制方法一样，以已知活性的细胞因子标准品为对照。死、活细胞情况可用
理 同位素51Cr释放法判断，或应用台盼兰染色死细胞后直接计数。也可通过结晶紫、
萘酚蓝黑、MTT、NBB等着染活细胞，再用脱色液脱出染料后酶标仪比色测定吸光
值。死细胞数、51Cr释放量越高或比色测定的吸光值越低，表明待测细胞因子的细
胞毒活性则越高。应用系列稀释的细胞因子标准品，制作其活性与剂量关系的标
准曲线，以此作为待测品活性的定量测定的基础。
本法常用于TNF等的测定
三、抗病毒活性测定法
常用于检测抗病毒活性的细胞株 Wish、Hep2/c 人干扰素
L929
小鼠干扰素
Ratec
大鼠干扰素
A549
MDBK 多种族的IFN-α和IFN-γ
第三节 分子生物学检测方法 一、Northern和Southern Blot 二、PCR和RT-PCR 三、原位杂交、原位PCR和原位RT-PCR
第四节 细胞因子与细胞粘附分子测定的临床应用 一、临床应用原则 二、特定疾病诊断的辅助指标 三、评估机体的免疫状态、判断治疗效果及预后
细胞因子
是由活化的免疫细胞及某些基质细胞表达并分泌 的活性物质，其主要生物学功能是介导和调节免疫 应答及炎症反应，其化学本质是蛋白质或多肽。
细胞因子的作用特点
1、分泌特点：自分泌、旁分泌、内分泌性 2、多源与同源性 3、高效性 4、多效性（pleiotropy） 5、重叠性（redundancy） 6、协同性 7、拮抗性 8、网络性
细
胞
作用于分泌细胞
因
自身
子 分
自分泌 autocrine
泌
的
方
式
旁分泌 paracrine
作用于比邻 细胞
B B细胞
B
更有效地诱导IgE 类别转换
IFN- 阻断IL-4诱 导类别转化的作用， IL-4抑制IFN-
细胞因子检测的方法
免疫学检测方法——抗原性检测 细胞生物学检测方法——生物活性检测 分子生物学检测方法——基因表达检测
粘附因子以结构特点进行划分的分类
1、粘蛋白样家族（integrin family） 2、免疫球蛋白超家族（immunoglobulin superfamily,IgSF) 3、选择素家族（selectin family） 4、整合素家族（Integrin family） 5、钙离子依赖性家族（简称钙粘素Cadherin） 6、其它未归类的粘附分子如CD36、CD44、CD45等
加入MTT前温育时间（h） 96/48 96 96 72
120 72
44
56 22-24
72
检测细胞因子 IL-6 IL-11 IL-13
TGF-β TNF
TNF IL-2 IL-3
二、细胞毒活性测定法
基 本
对指示细胞具有破坏作用的细胞因子，若与细胞共育将会导致细胞死亡。因 此，待测细胞因子作一系列稀释后加至指示细胞培养体系，以检测培养细胞的死 细胞数作为判断指标，死细胞数量与细胞因子的活性呈正比。试验时，与细胞增
3H-TdR、125I-UdR掺入法或MTT等比色法 细胞代谢产物测定法
代谢产物荧光强度测定法和指示细胞表面标 记或可溶性分子测定法
(1) 放射性核素掺入法
原理：通过检测细胞DNA合成的增加或减少来判断细胞增殖的方 法。在细胞的增殖过程中，DNA合成的增加使得指示细胞对核苷或碱 基的需求增多，若将核苷标记上可以示踪的同位素（3H/125I ），通 过检测细胞内的同位素含量，则可反映细胞增殖的程度。
பைடு நூலகம்2) MTT 比色法
特点：不使用放射性核素， 以细胞代谢变化为增殖指征 指示细胞的增殖情况与线粒体代谢活性相关
与同位素掺入法相比
测定步骤类似
掺入物：MTT而非3H-TdR； 反应条件：选用的细胞及其浓度、 培养时间不同
细胞增殖或抑制活性检测的MTT比色法常用靶细胞
细胞株/原代细胞 B9，MH60,BSF2,TTD1
UT-7
CCL-64* DA3.15, IF M14/NES60.4
所需浓度（细胞数/ml）
2×105 2×105
105 5×104
105 5×103 5×104 1×105
105 105 3×104 105
1.5×105
5×108 5×104 5×104
3H-TdR前培养时间
48 56 24 24 24 48 36 24 72 24 66 72
细胞病变程度分为5个等 级，即：
“0”，表示无明显CPE； “1+”，CPE≤25％； “2+”，CPE为25～50％； “3+”，CPE为50～75％； “4+”，CPE为75～100％。 根据病变程度找出CPEI50的标 本稀释范围，并以此计算出距 离比例和确定IFN效价。
该法操作复杂、影响因素较 多，在试验前应对所用的病毒 进行滴定。
• 粘附因子功能及应用：主要功能是调节细胞与 细胞、细胞与间质之间的相互作用。病理情况 下，由于粘附因子在细胞表面或血循环中的数 量和质量有所改变，进而影响原有细胞与细胞、 细胞与间质之间的平衡，因此，细胞内外粘附 因子的测定对于某些疾病的发生发展机制探讨、 辅助诊断、治疗监控及预后方面有重要应用价 值。
第一节 生物学测定方法
生物活性测定法原理
根据细胞因子特定的生物学活性,应用相应的靶细胞 指示系统,同时与标准品对比测定,从而得知样品中 细胞因子的活性水平,一般以活性单位(U/ml)表示
有助于细胞因子 检测的活性作用
刺激细胞增殖或集落形成的活性 维持细胞生长和存活的特性 抑制细胞生长或破坏细胞的效应 促进细胞趋化或抗病毒作用
细胞病变抑制法结果判断举例*
标本稀释度 log4 3 4 5 6 7 8
两孔平均 CPE 0 0 0
1.5 2.5 0
细胞病变 抑制程度
4 4 4 2.5 1.5 0
细胞病变 抑制积累
16 12 8 4 1.5 0
细胞病变 积累
0 0 0 1.5 4 8
细胞病变 抑制率
16/16 (100%)
12/12 (100%)
B9-11 B9-1-3 KYM-1D4
MV-3D9 WEHI-164/clone13
32D/Mp110S
L929 CTLL-2 小鼠基质细胞, 32DCL-27
细胞终浓度（细胞数/ml） 5×104/2×105 5×104 5×104
2×103
5×103 2×103
1×103
2×105 105
1.5×105
4-8
M-CSF/G-CSF
(2) MTT 比色法
原理：一种不使用放射性核素，以细胞代谢作为 细胞增殖指示物的细胞因子生物活性间接测定方法。
MTT在活细胞线粒体中的在脱氢酶的作用下，被还 原成不溶于水的蓝紫色产物（formazan)，其量与细胞 增殖的程度呈正比。二甲亚砜（DMSO）能溶解沉积 在细胞中蓝紫色结晶物，溶液颜色深浅与所含的 formazan量成正比。再用酶标仪测定OD值。
8/8 (100%)
4/5.5 (73%)
1.5/5.5 (27%)
0/8(0%)
*结果：CPEI50稀释度介于4-6-4-7之间，距离比例为(73-50)/(73-27)
=0.50，效价为46.5；同法计算IFN标准品的CPEI50稀释度，将IFN效价 换算成国际单位，IFN国际单位=样品CPEL50的稀释度/标准品CPEI50稀 释度×标准品的单位。
72
72 24 24
3H-TdR后培养时间 检测细胞因子
18-20 16 4-6 4-8 4-6 6 12 12 6 4-6 6 6
6
8 4-8
IL-1 IL-1 IL-2 IL-3 IL-4 IL-5 IL-5 IL-5 IL-5 IL-7 IL-9 IL-11 SCF （干细胞因子） TGF-β GM-CSF
靶细胞
趋化因子
滤膜：计数受趋化细胞
趋化试验原理示意
各类细胞因子检测的常用靶细胞-1
细胞因子 IL-1
IL-2 IL-3
实验系统 D10（M）增殖法 EL-4（M）增殖法 A352（H）增殖抑制法 CTLL（M）增殖法 KG-1（H）增殖法 TF-1（H）增殖法
IL-4
CTLL（M）增殖法
IL-5
血液循环
内分泌 endocrine
远距离作用
多效性 IL-4 pleiotropy
活化、
B
增殖、
分化
胸腺细胞
增殖
肥大细胞
增殖
重叠性
IL-2、
redundancy IL-4、
IL-5
均有刺激B细胞
B
增殖的功能
协同性 synergy
IL-4 + IL-5
拮抗性 antagonism
IL-4 IFN-
Clone-IXN/2b（M）增殖法
中性粒细胞（M、H）趋化法
TF-1（H）增殖法
IL-3、IL-5
IL-6、IL-5
L929 （M、H）细胞毒法
wish（H）病变保护法
IFN- 、 IFN-
L929（M）病变保护法
IFN- 、 IFN-
五、生物学活性测定方法学评价
优点 • 生物学活性的测定 • 灵敏度高 缺点 • 特异性差 • 操作繁琐 • 易受干扰
常用于攻击细胞的病毒 VSV、EMCV及Sindbis virus等
检测抗病毒活性的方法 抑制病毒的致细胞病变效应(CPE)、
抑制病毒蚀斑形成或抑制病毒的产量
本法常用于IFN测定，IFN可诱导细胞产生抑制病毒RNA和DNA合成的酶，保护细 胞不受病毒感染，抑制病毒产生细胞病变效应（CPE）。细胞因子样品处理易感细 胞，使细胞建立抗病毒状态，然后用适量病毒攻击细胞，评价病毒的复制量或病毒 引起细胞病变被抑制的程度，即可判断样品中细胞因子的生物活性。
BCL-1（M）增殖法
干扰因素 IL-2、IL-4 IL-4
IL-4
GN-CSF、IL-5 IL-6、EPO IL-2 IL-4
各类细胞因子检测的常用靶细胞-2
细胞因子 IL-6
IL-7 IL-8 GM-CSF
TNF/ IFN
实验系统
干扰因素
B9（M）增殖法
IL-4、IL-11
BM60（H）增殖法
四、趋化活性测定法
趋化因子诱导细胞移动的方式
本法主要用于测定趋化因子和IL-8的生物活性测定。
趋化性(chemotaxis)：
诱导细胞向由趋化因子低浓度出向趋化因子高浓度处作定向 移动的特性,可采用琼脂糖和微孔小室趋化试验。
化学增活性(chemokinesis)：
细胞因子增强细胞的随机运动能力的特性,可采用琼脂糖 小滴化学动力学试验检测。
结果客观易于自动化； 适用于大标本量的测定
方法的特异性受依赖细胞 株影响；放射性污染
常见细胞因子3H-TdR掺入检测法所需细胞及参考试验条件
细胞株
D10G4.1 L929 CTLL-2
FDC-P1,32DCL-27
CT.4S CH12 B13 T88-M BCL1
Clone-K,I×N/2bx
TS1 T10