实验一 植物组织自由水和束缚水含量的测定
植物组织中自由水和束缚水含量测定方法的改进
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植物生理学实验
• 四、实验步骤：
• 称量瓶洗净烘干备用 土豆洗净打孔切片称重(连 瓶，两份) 一号瓶 105℃烘干直至恒重； • 二号瓶加入浓度65％-75 ％蔗糖溶液 放置1-2小 时，中间经常摇动 阿贝折射仪测量蔗糖溶液浓 度。 • 五、计算：自由水含量=？ • 束缚水含量=？ • 组织含水量=？
E2.植物组织渗透势的测定
（2）酶促反应 A 向A各三角瓶加入磷酸缓冲液混合液5ml，KNO3 5ml。 B 向B三角瓶加入磷酸缓冲液混合液5ml，蒸馏水 5ml。 然后将所有试管置真空干燥器中接真空泵抽 气，直至叶片沉在瓶底。将各三角瓶置30℃下 于黑暗处保温30min，准确记录反应时间。
（3）比色 • 将各三角瓶取出静置2min，吸取上清液1ml 加入另一组试管，按标准曲线做法进行显色 测定，从标准曲线查出或回归方程计算出其 亚硝态氮含量（处理减对照），计算酶活性 （Nμg· ﹣1· ﹣1）。 g h •
• 1.外界溶液的配制与渗透作用 • ①配制 0．1～0．7 mol/L 7个梯度的蔗糖溶液各 10ml，注入7只试管中，并分别编号，作为对照组。 • ②将7只试管编号，分别从对照组中相同编号的试 管中取蔗糖溶液4ml注人各管作为实验组。 • ③用打孔器将马铃薯块茎或玉米等植物的叶片剪成 大小相同（约0．5cm）的小块，切成薄片，每管 中投人约占1/4溶液体积的样品，放置 30 min。在 此期间摇动试管数次。 • ④用针尖或牙签尖端挑取少许甲烯蓝粉末加入上述 ③各试管中，摇匀，此时溶液为浅蓝色。
量大会影响溶液浓度， 能够显色即可
• 2．等渗溶液确定
• ①用胶头细玻璃弯管从各小瓶中 依次吸取少量的浅蓝色溶液，并 用吸水纸吸掉胶头弯管外壁上的 过快会影响上 浮或下沉的观 溶液，然后将弯管伸入相同编号 察效果 的对照组试管液体中部，缓慢放 出溶液一滴，观察蓝色液滴的移 动方向（见图）。 • ②若有色液滴向上移动，表明组 织失水，使蔗糖溶液浓度降低、 比重减小；若有色液滴向下移动， 表明组织吸水，使蔗糖溶液浓度 升高、比重增大；如果有色液滴 静止不动，则表明蔗糖溶液与植 物组织水势相等，记录该蔗糖溶 液的浓度。
植物生理学复习资料
植物生理学名词解释：水势：每偏摩尔体积水的化学势差。
渗透势：由于溶质颗粒的存在，降低了水的自由能，因而其水势低于纯水的水势。
根压：靠根部水势梯度使水沿导管上升的动力。
水分临界期：植物对水分不足特别敏感的时期。
渗透作用：水分从水势高的系统通过半透膜向水势低的系统移动的现象。
矿质营养：植物对矿物质的吸收、转运、和同化。
胞饮作用：细胞通过膜的内陷从外界直接摄取物质进入细胞的过程。
生物固氮：某些微生物把空气中的游离氮固定转化为含氮化合物的过程。
诱导酶：指植物本来不含某种酶，但在特定外来物质的诱导下，可以生成这种酶。
营养元素临界含量：作物获得最高产量的最低养分含量。
光合作用：绿色植物吸收阳光的能量，同化二氧化碳和水，制造有机物质并释放氧气的过程。
吸收光谱：反映某种物质吸收光波的光谱。
增益效应：两种波长的光协同作用而增加光和效率的现象。
希尔反应：离体叶绿体在光下进行水解并放出氧的反应。
反应中心：是光能转变化学能的膜蛋白复合体，包含参与能量转换的特殊叶绿素a.聚光色素：聚光复合物中的色素（没有光化学活性，只有吸收和传递光能的作用）。
Co2补偿点:当光合吸收的co2量等于呼吸放出的co2量，这个时候外界的co2含量就叫做co2补偿点。
呼吸作用：指活细胞内的有机物，再酶的参与下逐步氧化分解并释放能量的过程。
糖酵解：细胞质基质中的己糖经过一系列酶促反应步骤分解成丙酮酸的过程。
呼吸商：植物在一定的时间内，放出二氧化碳的物质的量与吸收氧气的物质的量的比率。
巴斯的效应：氧可以降低糖类的分解代谢和减少糖酵解产物的积累的现象。
能荷：A TP-ADP-AMP系统中可利用的高能磷酸键的度量。
代谢源：能够制造并输出同化物的组织，器官或部位。
代谢库：指消耗或贮藏同化物的组织，器官或部位。
库强度：等于库容量和库活力的乘积。
植物生长物质：一些调节植物生长发育的物质。
生长素的极性运输：指生长素只能从植物体的形态学上端向下端运输。
三重反应：乙烯抑制伸长生长，促进横向生长，地上部分失去负向重力性生长。
植物组织中自由水和束缚水含量的测定
植物组织中自由水和束缚水含量的测定（一）目的植物组织中水份以两种不同状态存在：一种是和原生策胶体结合紧密的束缚水，它不参与代谢作用；另一种是与原生质胶体结合得不紧密，可自由移动的自由水，它参与种种代谢作用。
自由水/束缚水比率的大小，标志着植物代谢活性及抗逆性和强弱。
因此研究作物生理状态常要测定作物的自由水与束缚水的含量。
（二）原理把一已知重量的植物组织放入已知重量的高浓度的蔗糖溶液中，那么植物组织的自由水便会扩散到糖液中去，而束缚水是原生质胶本昆密结合在一起，不会扩散到糖液中去。
由于植物组织中的自由水扩散到糖液中去，这样降低了糖液的浓度。
因糖液的重理及原来的浓度是已知的。
根据糖液浓度降低的数值可计算出植物组织中自由水（即扩散到糖液中去的水）的含量。
另外，再测定同样植物组织中的总含水量，并由总含水量减去其中自由水的含量，这就是植物组织中束缚水的含量。
（三）材料及设备（1）待测的植物组织（最好是叶片），（2）公析天平，（3）折光仪，（4）注射器（10毫升），（5）称时瓶，（6）打孔器，（7）烘箱，（8）干燥器，（9）90%蔗糖溶液，（10）小橡皮塞（塞注射器小口用）。
（四）实验步骤1. 测定植物组织中总含水量选取一定部位及一定叶龄的叶片，用打孔器钻小圆片（避开粗的叶脉）50片，立即装入称好重（Wo）的称量瓶内精确地称重W1（克），置90℃烘臬至恒重（大约烘5小时），置干燥器中冷却后称重W2（克）。
按下列公式计算含水量（%）：式中：W0—称量瓶重W1—称量瓶+鲜叶重W2—称量瓶+干叶重2. 测定植物组织中自由水含量（1）取1支干净的注射器在连接针头的口上塞上小橡皮塞（或用细橡皮管制一帽状小套也很好用），一起放在分析天平上称期重G2（克）。
（2）选取一定部位及一定叶龄的叶片，用打孔器钻取小圆片（避开粗大的叶脉）50片，立即装入注射器内，连同注射器带叶圆片一起在天平上称重量G2（克）。
（3）用折光仪精确地测出60%蔗糖溶液的（G1），然后用注射器吸取已知浓度的糖液5毫升左右。
本科课件-植物生理学实验(完整)
放蓝色液流时，不可震动小瓶。
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根系活力的测定(TTC法)
植物生理生化教研室 曾汉来 2012.03.12
一、实验目的 • 理解植物根系活力的内涵 • 掌握TTC法测根系活力的原理与方法
提供合成所需能量; 合成氨基酸和植物激素 （ABA、CTK、GA等）
H2O 无机盐
硫酸，其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线， TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 （mg/g(根鲜重)/h）
＝
四氮唑还原量（mg） [根重（g）×时间(h)]
(5)手持测糖仪4 分别测定蔗糖原液浓度（C ）
四、结果计算 自由水的含量(%)=
植物组织中束缚水的含量(%) = 组织总含水量 － 组织中自由水含量
5
注意事项： 1. 清洗植物组织后应注意用
吸水纸擦干其表面的游离水分。 2. 植物组织与外部溶液之间
达到充分平衡。
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实验01-2 植物组织水势的测定 （小液流法）
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长 测定根系活力，为植物生长状况、营养供应研究提供依据。
二、验原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）的标准氧化电位为80mV的氧化还 原物质，获得H的能力强。溶于水为无色溶液，还原后即生成 红色而不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
—
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，可用 分光光度法定量测定。
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
实验一 植物组织自由水和束缚水含量的测定
中 国 海 洋 大 学 实 验 报 告2016年10月24日姓名 专业年级 学号 同组者题目 植物组织自由水和束缚水含量的测定 授课老师 一、 实验目的学会植物组织含水量、自由水和束缚水含量的测定方法，学会电子天平和阿贝氏折射以等仪器的使用方法。
二、 实验原理植物组织中水分有自由水和束缚水两种存在状态，自由水易于流动和蒸发，可以做溶剂，而束缚水与此相反难以蒸发，也不可以做溶剂。
根据这两种水的性质不同讲他们分离，然后再测定其含量。
分离的方法是将待测的植物组织放入浓度很高的蔗糖溶液中脱水，如果蔗糖溶液的浓度足够高，体积足够大，那么在达到平衡是组织绝大部分的自由水将进入蔗糖溶液，根据蔗糖溶液浓度的变化，重量以及植物组织的鲜重可以求出植物组织中自由水含量，同时用烘干的方法测定出植物组织的含水量，束缚水含量等于植物组织含水量与自由水含量的差。
设：A 为植物组织中自由水的质量（g ），W 为蔗糖溶液的质量（g ）；C1为处理前蔗糖溶液浓度（%）；C2为处理后蔗糖溶液浓度（%）；W y 为植物组织鲜重（g ）。
则A=(W+A)(1-c 2)-W(1-c 2)即A=yW C C W )(21-自由水含量（%）=%100)(%100221⨯-=⨯yy W C C C W W A三、 仪器试剂1.仪器及器皿阿贝氏折射仪，超级恒温水浴，1/1000电子天平，吸管，烘箱，扁型称量瓶，剪刀，5ml 移液管，滤纸，吸水纸。
2.试剂65%一70%蔗糖溶液(W/V)。
四、 实验材料新鲜白菜叶五、 实验步骤(1) 取称量瓶4个，编号、洗净、烘干，用电子天平称量、记录。
(2) 取待测的植物样品4份，每份在1g 左右(0. 900一1. 100 g )，用剪刀剪成1~2mm 长的小段，放人称量瓶中，盖上盖子，称量、记录。
(3) 其中两瓶用来测含水量。
将盖子打开，放入100℃~105℃的烘箱中烘至恒重，称量，记录，代人公式计算植物组织含水量。
植物组织自由水和束缚水含量测定
其中：
ψw 为组织的水势，MPa；
R 为气体常数=0.0083L·MPa /mol.K T 为绝对温度，K, 即 273℃+t℃ I 为解离系数，NaCl 的 i 值是 1.8 C 为等渗溶液的摩尔浓度。
所以，ψw = -RTiC=-0.0083*（273+16）*1.8*0.3=-1.295MPa≈-1.3MPa
五、实验结果：
1 号小瓶中，蓝色液滴下沉。 现象：出现蓝色线条。 2 号小瓶中，蓝色液滴下沉。 现象：蓝色液滴下沉速度较 1 号慢。 3 号小瓶中，蓝色液滴基本静止。现象：基本不动，有下降趋势。 4 号小瓶中，蓝色液滴向上升。 现象：向上浮动，速率较 3 快，较 2 慢。 综上，取试验溶液的浓度=3 号对照溶液浓度。
题目：实验一 植物组织自由水和束缚水含量测定 实验二 植物组织水势的测定
实验一 植物组织自由水和束缚水含量测定
一、实验目的：
1、学会植物组织含水量、自由水和束缚水含量的测定方法。 2、学会电子天平和阿贝氏折射仪等仪器的使用方法。
二、实验原理：
如图： W：蔗糖溶液重量 C1：处理前蔗糖溶液浓度（%） C2：处理后蔗糖溶液浓度（%） Wy：植物组织鲜重
4、3，4 号瓶各加入蔗糖溶液 5mL，盖上瓶盖，称重，放在实验台上进行水分交换约 2~3 小时，
其间不时摇动，用阿贝氏折射仪分别测定处理前后蔗糖的重量百分比浓度。
5、将阿贝氏折射仪的进样旋钮打开，用吸管吸取待测蔗糖溶液 1~2 滴，加入到射仪进样棱镜 的磨沙表面上，将棱镜关闭，调节色散旋钮至色散消失，调节读数旋钮，将黑白分界线调 到望远镜筒的十字交叉点上，然后在读数镜筒中读出蔗糖的重量百分浓度。
自由水和束缚水测定
植物组织中自由水和束缚水含量的测定植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。
自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。
自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。
因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、原理自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。
束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。
基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。
自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。
测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。
用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量，即为植物组织中的自由水的重量（即扩散到高浓度糖液中的水的重量）。
最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
二、试剂与仪器设备（一）材料白菜叶片（二）试剂重量百分浓度为60 ％～65 ％的蔗糖溶液：用托盘天平称取蔗糖60 ～65 g ，置于烧杯中，加蒸馏水40 ～35 g ，使溶液总重量为100 g ，溶解后备用。
（三）仪器设备测糖仪，分析天平或电子天平（感量0.1 mg ），注射器，打孔器（直径0.5 cm 2 左右），烧杯（200ml），量筒。
三、实验步骤1. 植物组织中自由水含量的测定（ 1 ）注射器称重W 1。
（ 2 ）选取部位、长势、叶龄一致有代表性的叶片数片，用打孔器打取小圆片50 片（注意避开粗大的叶脉），装到注射器中，盖紧并精确称重W 2。
（ 3 ）加入60 ％～65 ％的蔗糖溶液5 mL 左右，再分别准确称重W 3。
生理实验0102-自由水及水势的测定
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（二）植物组织中自由水含量的测定
(1) 取带密封皮头的干燥注射器于电子天平上准 确称质量：W1。
(2) 用打孔器打取小叶圆片50片(植物材料的选取 同上)，装入注射器中，带皮头称质量为W2。
2. 甲烯蓝粉末。
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四、实验步骤
1. 甲、乙小瓶溶液准备
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四、实验步骤
2. 用打孔器打取小圆片约50片，混合均匀。 分别夹入5-8个小圆片到蓝色的糖液瓶中(甲组)。 盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。放置 约20-30min，应经常摇动小瓶。
1.判断和计算等渗溶液的浓度 2. 将求得的等渗浓度值代入如下公式：
ψw＝ ψπ = -iCRT
七、分析讨论
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注意事项： 1. 叶片表面不能有游离水分。 2. 植物组织与外液之间达到平衡。 3. 往甲组溶液中释放蓝色液流时，不可震动
小瓶。
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三、材料、设备与试剂
（一 ）实验材料 小白菜
（二）设备 打孔器；注射器；手持测糖仪等。
（三）试剂 蔗糖溶液（≥60g/100g）
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四、实验步骤
（一）植物组织总含水量的测定
小白菜叶片的总含水量：87.00%（已由实验 员提前完成）。
(3) 用注射器吸入约5mL蔗糖溶液，带上密封皮 头再准确称质量为W3。
实验一植物组织含水量及水势的测定
自然含水量（WC）=（Wf-Wd）/Wf × 100% 相对含水量（RWC）=（Wf-Wd）/(Wfs-Wd) × 100% 水分饱和亏（WSD）=1-RWC
六、结果与计算
2、植物组织水势
等势点的渗透势即为叶片组织水势。
Ψw=-iCRT
i：解离系数，蔗糖为1； C：溶液的摩尔浓度； R：摩尔气体常数，R=0.0083 L·Mpa·mol-1·K-1 T：热力学温度K，即273 + t，t为实验温度，单位为℃。 (水势单位换算：1 atm=1.013 bar=101 kPa，1 Mpa=10 bar)
五、实验步骤
（二）植物组织水势的测定
1、用1M蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液 （0.05、0.1、 0.2、 0.3、0.4、0.5、0.6M）。 2、取7支试管编号，分别加入适量不同浓度的蔗糖溶 液；同时取7个青霉素瓶，编号后分别加入2ml不同浓 度的蔗糖溶液。 3、用打孔器在叶片打孔取叶圆片（避开中脉），随机 取样，向每青霉素瓶放入相等数目（10~20片）的叶 圆片，加塞，放置30min，期间摇动数次。到时间后， 用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，充分 混匀。 4、用毛细滴管从试验组的各瓶中依次吸取液体少许， 伸入对照组同样浓度溶液的中部，缓慢从毛细管尖端 横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液 滴的移动方向。
相对含水量（Relative Water Content， RWC）
实际含水量 RWC = ×100％ 饱和含水量
水势的测定方法
液相平衡法:小液流法、质壁分离法 压力平衡法:压力室法 气相平衡法:热电偶湿度计法、露点法等
实验一、植物组织含水量及水势的测定
（示范：吐水及小孔的扩散现象）
反映植物水分状况的指标
绝对含水量 相对含水量 水势 渗透势
一、实验目的
1、掌握植物含水量的表示及测定方法； 2、熟悉植物水势的测定原理及方法。
二、 实验原理
植物组织含水量的指标
鲜重− 干重 自然含水量= 100％ 自然含水量 ×100％ 鲜重
小液流法测定水势的原理
水总是从水势高处流向低处。 当植物组织放在外界溶液中，如植物组 织的水势小于溶液的渗透势，组织吸水， 外界溶液变浓，比重变大；如植物组织 水势大于溶液的渗透势，则反之；如二 者相等，则外界溶液的比重不变。
三、实验材料 实验材料
忍冬科金银木枝条
2%NaCl 4h 0.2%NaCl 4h 蒸馏水 4h
相对含水量（ 相对含水量（Relative Water Content， RWC） ， ）
实际含水量 RWC = 100％ ×100％ 饱和含水量
水势的测定方法
液相平衡法:小液流法、 液相平衡法 小液流法、质壁分离法 小液流法 压力平衡法:压力室法 压力平衡法 压力室法 气相平衡法:热电偶湿度计法 热电偶湿度计法、 气相平衡法 热电偶湿度计法、露点法等
i：解离系数，蔗糖为1； i 1 C：溶液的摩尔浓度； R：摩尔气体常数，R=0.0083 L·Mpa·mol-1·K-1 T：热力学温度K，即273 + t，t为实验温度，单位为℃。 (水势单位换算：1 atm=1.013 bar=101 kPa，1 Mpa=10 bar)
七、演示实验
吐水及小孔扩散现象观察
五、实验步骤
（二）植物组织水势的测定
1、用1M蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液 （0.05、0.1、 0.2、 0.3、0.4、0.5、0.6M）。 2、取7支试管编号，分别加入适量不同浓度的蔗糖溶 液；同时取7个青霉素瓶，编号后分别加入2ml不同浓 度的蔗糖溶液。 3、用打孔器在叶片打孔取叶圆片（避开中脉），随机 取样，向每青霉素瓶放入相等数目（10~20片）的叶 圆片，加塞，放置30min，期间摇动数次。到时间后， 用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，充分 混匀。 4、用毛细滴管从试验组的各瓶中依次吸取液体少许， 伸入对照组同样浓度溶液的中部，缓慢从毛细管尖端 横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液 滴的移动方向。
植物组织自由水实验
中国xx 大学实验报告2017年10月25日姓名xxx系年级2016 专业生物技术同组者科目植物生理学实验题目植物组织自由水和束缚水含量的测定及植物水势的测定植物组织自由水和束缚水含量的测定一、实验目的学会植物组织含水量、自由水和束缚水的测定方法，学会电子天平和阿贝氏折射仪等仪器的使用方法。
二、实验原理自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。
束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。
基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。
自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。
测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。
用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量即为植物组织中的自由水的量（即扩散到高浓度糖液中的水的量）。
最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
三、仪器药品阿贝氏折射仪1/1000电子天平吸管烘箱称量瓶（4个）剪刀5ml移液管滤纸吸水纸65-70蔗糖溶液（W/V）四、实验材料白菜Brassica rapa pekinensis五、实验步骤1、取称量瓶4个，编号、洗净、烘干，用电子天平称重2、取待测的植物样品4份，每份在1g左右，用剪刀剪成1~2mm 长的小段，放人称量瓶中，盖上盖子，称量、记录。
3、其中两瓶用来测含水量。
将盖子打开，放入100℃~105℃的烘箱中烘至恒重，称量，记录，代人公式计算植物组织含水量。
4、另外两瓶分别加人蔗糖溶液5 mL，盖上瓶盖，称量、记录，放在实脸台上进行水分交换2~3 小时，其间不时摇动。
用阿贝氏折射仪分别测定处理前、后的重量百分比浓度。
5、将阿贝氏折射仪的进样旋钮打开，用吸管吸取待测蔗糖溶液1~2 滴加人折射仪进样棱镜的磨砂表面上，将棱镜关闭，调节色散旋钮至色散消失调节读数旋钮，将黑白分界线调到望远镜筒的十字交叉点上，然后在读数镜筒中读出蔗糖的质量百分浓度。
植物水分关系测定
（理论部分之一）
植物水分关系测定法
几种常用水分指标的测定
植物组织含水量的测定
植物组织中自由水和束缚水含量的测定
植物组织水势的测定
植物组织渗透势的测定
植物细胞压力势的测定
第一节
植物组织含水量测定
一、植物组织含水量的测定
测定原理：
水分遇热蒸发，可用加热烘干的方法测定。
表示指标：
（一）质壁分离法测定细胞基态渗透势
基本原理（续）：
实际测定时，由于临界质壁分离状态难以在显 微镜下直接观察到，故通常以初始质壁分离作为 判断等渗浓度的标准。 处于初始质壁分离状态的细胞体积比吸水饱和时 略小，故细胞液浓缩，而渗透势略低于吸水饱和时 的渗透势，此种状态下的渗透势称基态渗透势。
（二）冰点下降法测定组织汁液渗透势
将植物组织浸在不同浓度（渗透势）的溶液中， 达到水分平衡后，根据组织重量和外液浓度的变化 情况，即可确定与植物组织等水势的溶液浓度。然 后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的 水势。
溶液渗透势的计算：
ψS=-iCRT
式中：ψS —溶液的渗透势，以MPa为单位； R —气体常数，为0.008314MPa· L· mol-1· K-1； T —绝对温度。即273+t℃； C —溶液的质量摩尔浓度，以mol· kg–1· H2O为单位， 用m表示； i－为溶液的等渗系数，如CaCl2可用2.6。
当边界退回到毛细管尖端，并且保持稳定后， 细胞的原始体积恢复，细胞内部的压力正好平衡 毛细管的压力。 这种压力通过压力检测探头检测，这样直接测定 单个细胞的静水压力。
压力探针法测定细胞的压力势
这种方法可以用于检测各种植物的离体和连 体组织的压力势以及多种水分参数。 这一方法的限制因素是：（1）一些细胞太小 不容易检测。（2）另外，一些细胞在毛细管穿刺 后发生渗漏，还有的发生毛细管尖端的阻塞，影 响正常测定。（3）但是，关键的技术问题的气穴 现象限制负压力势的测定。
实验 植物组织中自由水和束缚水含量的测定
实验1 植物组织中自由水和束缚水含量的测定植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。
自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。
自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。
因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、实验目的1、了解和掌握自由水和束缚水测定的原理和意义及测定的方法2、熟悉阿贝折射仪的使用二、原理:自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。
束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。
基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。
自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。
测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。
用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量即为植物组织中的自由水的量（即扩散到高浓度糖液中的水的量）。
最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
三、材料、仪器设备及试剂1、材料：新鲜的植物叶片2、仪器设备：1.阿贝折射仪；2.分析天平或电子顶载天平（感量0.1mg）；3.烘箱；4.干燥器；5.称量瓶；6.打孔器（面积0.5cm2左右）；7.烧杯；8.瓷盘；9.托盘天平（1/100g）；10.量筒。
3、试剂：重量百分浓度为60％的蔗糖溶液：用托盘天平称取蔗糖60g，置烧杯中，加蒸馏水40g，使溶液总重量为100g，溶解后备用。
四、实验步骤（一）阿贝折射仪法1.植物组织中总含水量的测定（1）取称量瓶1只。
（2）在田间选取生长一致的待测的植物数株，各选部位、长势、叶龄一致的有代表性叶子数片。
吸附水的测定实验报告
吸附水的测定实验报告吸附水(Absorption Water)即结合水或束缚水。
测定初水后的饲料、经自然风干的饲料或谷物饲料（一般含14%左右的吸附水），放入称量皿中，在100-105℃烘箱内烘干2――3小时后取出，放入干燥器中冷却30分钟，再重复烘干1小时，待两次称重小于0.002g时，即为恒重，失去的重量为吸附水。
另一解释：一部分存在于木纤维中,称为吸附水.当木纤维吸附水达到饱和后,再多余的水就存在于细胞腔中，这种水称自由水。
当吸附水刚刚达到饱和,而无自由水时,木材的含水率称为临界含水率。
重量法方法提要试样在110℃烘干至恒量。
吸附水量的测定范围为w(H2O-)=1%～30%。
分析步骤将洗干净的称量瓶半开盖置于110℃的烘箱中干燥1h，打开烘箱门，盖好瓶盖，取出，放入干燥器内，冷却40min，称量。
同样操作将称量瓶置于烘箱中再烘30min。
取出，放入干燥器内，冷却40min，称量，直至恒量。
称取0.5g(精确至0.0001g)空气干燥试样，置于已恒量的称量瓶中，轻轻晃动，使试样均匀地平铺于底部，半开瓶盖，置于110℃的烘箱中干燥5h。
打开烘箱门，盖好瓶盖，取出，放入干燥器内，冷却40min，称量。
同样操作将称量瓶置于烘箱中再烘1h。
取出，放入干燥器内，冷却40min，称量，直至恒量。
按下式计算吸附水的含量:岩石矿物分析第四分册资源与环境调查分析技术式中:w(H2O-)为吸附水的质量分数，%;m1为干燥前试样与称量瓶质量之和，g;m2为干燥后试样与称量瓶质量之和，g;m为称取试样的质量，g。
注意事项1)X射线衍射分析表明，大洋多金属结核所含的大量吸附水，不是一般薄膜水或毛细管水，而是胶体水。
它的脱水需要较高的温度，一般为100～250℃，而在133℃有一个很大的吸热峰。
考虑到在矿产资源评价和数据对比上，避免与国内外发生系统偏差，吸附水测定温度定为110℃。
2)1g、3g试样在110℃分别烘5h、8h时，失水开始趋于稳定，所以初烘时间定为5h。
植物组织含水量的测定实验报告.doc
植物组织含水量的测定实验报告09生科XX 一、实验原理1．反映植物水分状况的一个重要指标；2．直接影响植物的生长、气孔状况，光合功能及作物产量；3．环境胁迫下，反映植物受胁迫程度的重要指标之一；4．水分含量测定也是农作物产品的品质检定和判断其是否适于贮藏的重要标准；5．所以，植物组织含水量的测定在植物生理学研究及农业生产中具有重要的理论和实践意义。
6．植物组织含水量的表示方法，常以鲜重、干重、相对含水量(或称饱和含水量)来表示。
7．相对含水量可作为比较植物保水能力及推算需水程度的指标。
二、实验目的测定植物的组织含水量，以检测植物体内的水分情况，并对不同植物的含水量进行对比三、实验材料鹅绒藤、培养皿、镊子、吸水纸、烘箱、玻璃杯、蒸馏水四、实验步骤1．将新采的植物叶片，称取6 份0.5 g （Wf）迅速剪成小块。
2．3份分别于120℃烘箱中烘考1~1.5 h，然后称此时的干重（Wd）3．3份分别放入蒸馏水中浸泡70 min，当达到恒重时称此时的重量（Wt）4．根据公式分别计算出植物的鲜重含水量、干重含水量、相对含水量五、实验结果植物生理实验（上午）组（十五）小组( 鹅绒藤叶含水量) 数据由上图数据得：鲜重含水量=81% 干重含水量=419% 相对含水量=94.2%六、讨论以下抽取了其他各组的实验数据做成表格，以进行对比从上表中可以看出：不同植物之间的鲜重含水量和饱和含水量的差异并不大，而干重含水量的差异十分明显，说明不同植物的储水能力有较大差距，同时储水能力还受到环境、器官组织的差异、植物种类等各方面的影响。
2015平面设计实习报告范文3000字学生姓名：专业班级：模具设计与制造实践地点： xxxxxx公司指导教师：编写日期：2015.3.133年大学生活转瞬即使。
2015，当我们还站在大三憧憬时，便被时间和现实狠狠的一把推向社会。
作为2015年的毕业生，今年正是我们实习的时间，当我拿着一纸介绍信去实习单位报道时，我知道这意味着什么，在学校里的那些小情绪小困扰小挑战，都已经成为微不足道，纸上谈兵的过去。
实验一植物组织含水量及水势的测定
六、结果与计算
1、植物组织含水量及水分饱和亏
自然含水量（WC）=（Wf-Wd）/Wf × 100% 相对含水量（RWC）=（Wf-Wd）/(Wfs-Wd)
小液流法测定水势的原理
水总是从水势高处流向低处。 当植物组织放在外界溶液中，如植物组
织的水势小于溶液的渗透势，组织吸水， 外界溶液变浓，比重变大；如植物组织 水势大于溶液的渗透势，则反之；如二 者相等，则外界溶液的比重不变。
三、实验材料
忍冬科金蒸馏水 4h
四、仪器和试剂
电子天平、烘箱、剪刀、镊子、培养皿、 信封、吸水纸、离心管、移液管、移液 管、毛细滴管、解剖针、直径0.5cm 打 孔器、白色硬纸片
1M蔗糖溶液、甲烯蓝
五、实验步骤
（一）植物含水量的测定 1、取成熟植物叶片，剪成适当大小，迅速称量鲜重Wf
（~1g）。 2、将植物材料浸入蒸馏水并置于4℃冰箱中数小时至
实验一 植物组织含水量及水势的测定
（示范：吐水及小孔的扩散现象）
反映植物水分状况的指标
绝对含水量 相对含水量 水势 渗透势
一、实验目的
1、掌握植物含水量的表示及测定方法； 2、熟悉植物水势的测定原理及方法。
水势的测定方法
液相平衡法:小液流法、质壁分离法 压力平衡法:压力室法 气相平衡法:热电偶湿度计法、露点法等
2、取7支试管编号，分别加入适量不同浓度的蔗糖溶 液；同时取7个青霉素瓶，编号后分别加入2ml不同浓 度的蔗糖溶液。
3、用打孔器在叶片打孔取叶圆片（避开中脉），随机 取样，向每青霉素瓶放入相等数目（10~20片）的叶 圆片，加塞，放置30min，期间摇动数次。到时间后， 用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，充分 混匀。
实验 植物组织中自由水和束缚水含量的测定
实验1 植物组织中自由水和束缚水含量的测定植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。
自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。
自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。
因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、实验目的1、了解和掌握自由水和束缚水测定的原理和意义及测定的方法2、熟悉阿贝折射仪的使用二、原理:自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。
束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。
基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。
自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。
测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。
用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量即为植物组织中的自由水的量（即扩散到高浓度糖液中的水的量）。
最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
三、材料、仪器设备及试剂1、材料：新鲜的植物叶片2、仪器设备：1.阿贝折射仪；2.分析天平或电子顶载天平（感量0.1mg）；3.烘箱；4.干燥器；5.称量瓶；6.打孔器（面积0.5cm2左右）；7.烧杯；8.瓷盘；9.托盘天平（1/100g）；10.量筒。
3、试剂：重量百分浓度为60％的蔗糖溶液：用托盘天平称取蔗糖60g，置烧杯中，加蒸馏水40g，使溶液总重量为100g，溶解后备用。
四、实验步骤（一）阿贝折射仪法1.植物组织中总含水量的测定（1）取称量瓶1只。
（2）在田间选取生长一致的待测的植物数株，各选部位、长势、叶龄一致的有代表性叶子数片。
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中 国 海 洋 大 学 实 验 报 告
2016年10月24日
姓名 专业年级 学号 同组者
题目 植物组织自由水和束缚水含量的测定 授课老师 一、 实验目的
学会植物组织含水量、自由水和束缚水含量的测定方法，学会电子天平和阿贝氏折射以等仪器的使用方法。
二、 实验原理
植物组织中水分有自由水和束缚水两种存在状态，自由水易于流动和蒸发，可以做溶剂，而束缚水与此相反难以蒸发，也不可以做溶剂。
根据这两种水的性质不同讲他们分离，然后再测定其含量。
分离的方法是将待测的植物组织放入浓度很高的蔗糖溶液中脱水，如果蔗糖溶液的浓度足够高，体积足够大，那么在达到平衡是组织绝大部分的自由水将进入蔗糖溶液，根据蔗糖溶液浓度的变化，重量以及植物组织的鲜重可以求出植物组织中自由水含量，同时用烘干的方法测定出植物组织的含水量，束缚水含量等于植物组织含水量与自由水含量的差。
设：A 为植物组织中自由水的质量（g ），W 为蔗糖溶液的质量（g ）；C1为处理前蔗糖溶液浓度（%）；C2为处理后蔗糖溶液浓度（%）；W y 为植物组织鲜重（g ）。
则
A=(W+A)(1-c 2)-W(1-c 2)
即
A=
y
W C C W )
(21-
自由水含量（%）=
%100)(%100221⨯-=⨯y
y W C C C W W A
三、 仪器试剂
1.仪器及器皿
阿贝氏折射仪，超级恒温水浴，1/1000电子天平，吸管，烘箱，扁型称量瓶，剪刀，5ml 移液管，滤纸，吸水纸。
2.试剂
65%一70%蔗糖溶液(W/V)。
四、 实验材料
新鲜白菜叶
五、 实验步骤
(1) 取称量瓶4个，编号、洗净、烘干，用电子天平称量、记录。
(2) 取待测的植物样品4份，每份在1g 左右(0. 900一1. 100 g )，用剪刀剪成1~2mm 长的小段，放人称量瓶中，盖上盖子，称量、记录。
(3) 其中两瓶用来测含水量。
将盖子打开，放入100℃~105℃的烘箱中烘至恒重，称量，记录，代人公式计算植物组织含水量。
(4) 另外两瓶分别加人蔗糖溶液5 mL ，盖上瓶盖，称量、记录，放在实脸台上进行水分交换2~3小时，其间不时摇动。
用阿贝氏折射仪分别测定处理前、后的重量百分比浓度。
(5) 将阿贝氏折射仪的进样旋钮打开，用吸管吸取待测蔗糖溶液1~2滴加人折射仪进样棱镜的磨砂表面上，将棱镜关闭，调节色散旋钮至色散消失调节读数旋钮，将黑白分界线调到望远镜筒的十字交叉点上，然后在读数镜筒中读出蔗糖的质量百分浓度。
六、 计算
样品含水量（%）=
%100-⨯鲜重
干重
鲜重
样品自由水含量（%）=
%100)(%100221⨯-=⨯y
y W C C C W W A
式中，
W——蔗糖溶液质量（g）
C1——处理前蔗糖溶液浓度（%）
C2——处理后蔗糖溶液浓度（%）
W y——植物组织鲜重（g）。
样品束缚水含量（%）=样品含水量（%）样品自由水含量（%）
数据记录表（室温19.4℃）
样品含水量测定结果表
样品自由水含量测定结果表
3号白菜叶的鲜重Wy=1.07g 3号瓶蔗糖质量W=6.84g 3号白菜叶自由水的含量=%100)(%100221⨯-=⨯y
y W C C C W W A =60.3%
4号白菜叶的鲜重Wy=1.02g 4号瓶蔗糖质量W=6.66g 4号白菜叶自由水的含量=%100)(%100221⨯-=⨯y y W C C C W W A =69.4% 由以上结果可得：
样品白菜总含水量=94.5%，自由水含量=64.9%，结合水含量=29.2%。
七、误差分析
植物细胞的含水量在70～90%左右，在不同的组织、同一组织的不同部位，植物的含水量也会有所差异，白菜叶的上部和下部含水量有差别。
另外本次试验不是十分精细，故在误差允许的范围内，可认为植物组织的含水量测定准确。
但是，植物自由水的含量与理论值（占含水量的95%）相比偏差较大，原因可能在于：
1）称量过程有误差
2）在切片过程中有水分损失，且对于实验材料的处理时间比较长。
3）因时间限制，烘干和交换等过程进行时间均较要求的时间有所缩减，均为十五分钟左右。
4）自由水的测量时所加的蔗糖溶液尚不足以盖过所有的植物叶片，因此自由水的测量误差可能较大。