组织标本采取及处理的正确方法

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组织标本的处理

组织标本的处理取材取材是制作切片程序中的首要步骤，取材不当，将直接影响病理诊断和科研工作的效果。

组织标本的选用特别重要，不能随便的切取组织来制作组织切片，否则病理检验的结果是不会令人满足的。

一、取材工具：取材刀具必需锐利。

切取标本不应当挤压和揉擦，不应使用有钩镊子或血管钳等手术器械镊取标本，以免损害组织造成人为组织变化，给诊断带来困难或导致错诊，漏诊。

二、标本的选取：应选择病变或可疑病变的组织。

必要时选取病变与正常组织交界处。

切取标本的原则是求准而不是求量多，所以切取组织宜小不宜大，以不超过24x24mm2为佳，厚度以35mm为度，过大过厚会影响对标本的固定，另方面也影响切片的制作。

特别目的者应属例外。

1.了使组织切片的结构清晰，取材要准时，组织块必需争取时间准时固定。

组织的固定以愈新奇愈好。

2.取材时对大体标本（肉眼标本）绘制图象，进行认真描述。

包括外形、大小，硬度，颜色，病灶（或可疑病变）部位等。

对所取的组织应定位编号。

3.切取各组织块时，切勿挤压损伤，对典型或具有教学和科研价值的肉眼标本，不能因取材而对标本造成人为的"病变'。

肠粘膜组织上沾有少量粪便，也不应以手拭去或以水洗去。

4.下的组织块应尽量防止其弯曲扭转，如胃肠等组织，应先平展于草纸上粘着以后，渐渐地放入固定液中（故应在动手剖验之前做好预备工作）。

固定液的量要充分，应为固定组织的10倍。

5.组织实行应在正常与病灶交界之处。

组织外形最好为方形或长方外形，这样有利于制片。

切不行以外形定位，组织厚薄要匀称。

由于组织块的厚度打算固定的速度，要充分满意它在肯定时间内全部达到相宜的固定。

如组织厚薄不均，在脱水时将会引起标本变形或曲，而影响制片。

在典型病变部位不妨多切数块，以备日后添制教学切片或讨论的需要。

6.微量标本和易碎标本，为避开破损或丢失应以纱布包裹，但包裹前纱布必需浸湿，以免标本粘附纱布上。

7.各组织块应包括各脏器的重要结构，如肾脏组织包括皮质部分和髓质部分。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

为此应正确采集各种细菌学标本。

一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。

（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。

（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。

（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。

（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。

（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。

二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前（后）上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml，注入血培养瓶内。

2、注意事项（1）骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞，因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。

老鼠组织标本石蜡切片免疫组化实验的具体步骤及方法

老鼠组织标本石蜡切片免疫组化实验的具体步骤及方法根据聚合酶技术把辣根过氧化物酶抗鼠或/和抗兔IgG分子结合在多聚酶上形成多聚物分子,其与待检的抗原特异性的结合后，加入底物显色。

1. 石蜡切片置于67℃烘箱中，烘片2小时，脱蜡至水，用pH7.4的PBS冲洗三次，每次3分钟（3×3’）。

2. 取一定量pH=6.0柠檬酸盐缓冲液，加入微波盒中，微波加热至沸腾，将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架上，放入已沸腾的缓冲液中，中档微波处理10分钟，取出微波盒流水自然泠却，从缓冲液中取出玻片，先用蒸馏水冲洗两次，之后用PBS冲洗2×3’。

（注：不是所有的抗体都需要微波修复的，视具体情况而定）3. 每张切片加1滴3%H2O2，室温下孵育10分钟，以阻断内源性过氧化物酶的活性。

PBS冲洗3×3’。

4. 除去PBS液，每张切片加1滴相应的第一抗体（相应稀释倍数），室温下孵育2小时。

5. PBS冲洗3×5’。

除去PBS液，每张切片加1滴聚合物增强剂，室温下孵育20分钟。

PBS冲洗3×3’。

6. 除去PBS液，每张切片加1滴酶标抗鼠/兔聚合物，室温下孵育30分钟。

PBS冲洗3×5’。

7. 除去PBS液，每张切片加1滴新鲜配制的DAB液（二氨基联苯胺），显微镜下观察5分钟。

8. 苏木素复染，0.1%HCl分化，自来水冲洗，蓝化，切片经梯度酒精脱水干燥，二甲苯透明，中性树胶封固，晾干后观察。

注意事项1. 在切片加上一抗后，第二抗体标记多聚螯合物酶（HRP）的复合物与一抗结合，在多聚螯合物上有大量的HRP分子，使抗原信号有显著的放大，其敏感性较SABC、SP法高。

2. 由于多聚物在体内不存在，又不使用生物素，从而避免了由于生物素引起的非特异性背景染色，背景比SABC、SP法清晰。

3. 辣根过氧化物酶与二抗结合在多聚物上，替代传统方法的二抗、三抗，减少了实验步骤，且试剂孵育时间短，只需15分钟，使得免疫组化方法更简单，实验时间比SABC、SP法大为缩短。

实验室标本采集、处置和管理操作程序【精】

实验室标本采集、处置和管理操作程序1.目的：规范实验标本的采集、运输、接收及保存，以保证原始标本在采集、运输、接收及保存过程中方法适当，原始标本中的待测成分不受影响。

2.范围：适用于科室所有标本的采集、运输、接收及保存。

3.职责：3.1 质量管理小组负责标本管理的指导和监督。

3.2 检验人员负责各自检测标本的管理和标本采集手册的编制。

4.工作程序：4.1标本采集4.1.1 由各专业实验室负责人组织实验室成员编制各自实验室的标本采集手册，标本采集手册应至少包括以下内容：患者准备；标本收集容器；标本的类型；所需标本量。

标本采集的注意事项：4.1.2 质量管理小组对标本采集手册的内容进行审查，经科主任批准后，由医院计算机中心负责将标本采集手册添加入医院系统，以便标本采集部门和各临床科室随时参阅。

4.1.3质量管理小组每年对标本采集手册进行审查，如发现不合格内容可要求实验室负责人修改。

4.1.4检验标本包括从门急诊，住院部患者和体检中心的体检人员等处采集的标本，标本由有以下资格人员采集：注册护士、执业医生、检验技术人员。

4.1.5检验申请单包括以下信息：患者姓名、性别、年龄、科室、住院号、病床号、申请医生、申请检验项目、采集标本的日期和时间、标本类型、是否需优先处理。

4.2 标本的运输4.2.1 标本应放在有盖、内有固定架的标本运输箱中运输，盒外贴上生物危害的标识，标本和检验申请单分开放置。

4.2.2 若标本运输箱被标本污染，应立即用消毒液消毒，用2000mg/L 有效氯消毒液倾入标本运输箱内，浸泡30-60分钟，再用流水冲洗。

4.3住院部标本采集和运送程序4.3.1临床医生出具检验项目申请，急诊医嘱立即通知责任护士。

4.3.2当班护士写上检验标签条码并贴于标本容器上。

4.3.3采集者在标本采集前仔细核对患者姓名、床号、检验项目、标本类型及特殊要求。

4.3.4当班护士与标本运送人员当面清点标本数量，并在登记本上签名，由后者将标本送至相关检验部门签收。

组织标本取材的一般方法和注意事项

组织标本取材的一般方法和注意事项随着科学技术的不断发展，生物学研究的范围也不断扩大，而组织标本取材作为生物学研究的重要环节，其方法和注意事项显得尤为重要。

在进行组织标本取材时，我们要注意哪些方面呢？下面我将从深度和广度两个方面进行分析和探讨。

一、组织标本取材的一般方法1.术前准备在进行组织标本取材之前，需要做好充分的术前准备工作。

首先要对要取材的组织进行详细的观察和分析，确定取材部位、数量和方法。

其次要准备好取材所需的工具和材料，包括手术刀、消毒酒精、无菌手套等。

2.取材部位的选择取材部位的选择直接影响着组织标本的质量和研究结果的准确性。

一般来说，取材部位应当处于病变的中心位置，尽量避免有坏死或者较多纤维组织的部位。

同时还要根据不同的研究目的和方法选择合适的取材部位，比如对于肿瘤组织的研究，应当选择肿瘤的边缘部位。

3.取材方法在取材的过程中要注意使用无菌工具，并且尽量避免组织的损伤和变性。

对于不同的组织和病变，取材的方法也会有所不同，比如对于软组织样本，可以选择切割或者穿刺取样，而对于骨骼组织，则需要使用骨钻或者骨锯进行取材。

4.标本的保存和处理取材完成后，应当及时将标本放置在4°C冰箱中保存，并且尽量在24小时之内进行组织学染色或者其他实验处理。

另外，在进行染色和切片前，还需要将组织标本进行固定和脱水处理，以保证标本的质量和完整性。

二、组织标本取材的注意事项1.安全第一在进行组织标本取材的过程中，首要考虑的是安全问题。

要严格遵守实验室的安全操作规程，正确使用和处理实验工具和化学试剂，确保自己和他人的人身安全。

2.注意标本的标识在取材过程中要做好标本的标识工作，包括标注标本的编号、取样部位、取样时间等信息，以便后期的追溯和分析。

3.尽量减少操作在取材的过程中要尽量减少操作，避免损伤和污染标本。

尤其是在染色和切片的过程中，要尽量避免对标本的重复操作，避免标本的损伤和质量下降。

4.遵循实验伦理原则在进行组织标本取材的过程中，要严格遵守实验伦理原则，尊重动物和人体的权益，避免不当的伦理行为和实验操作。

免疫组化组织细胞的取材、固定、切片操作方法及要点

从大体标本上切除适量的组织材料进行研究就是取材。

取材不仅在免疫组化而且在常规病理检查中也十分重要。

用于免疫组化的组织一般取材大小为1．OcmXl．OcmX0．2cra。

取材时应剔除脂肪和钙化，否则会影响切片，出现假阳性或假阴性结果。

组织标本包括动物标本、手术活检标本、尸体解剖标本及细胞标本等，有关各种标本的取材方法分述如下。

一、动物的致死法及取材(一)致死法(1)空气栓塞法向动物静脉内注入一定量的空气，使动物很快死亡。

一般适用大动物，例如兔、犬、猫等动物。

(2)麻醉法可将浸有乙醚或氯仿(三氯甲烷)的棉球连同动物一起放人密闭容器内进行麻醉，也可用4％戊巴比妥作静脉注射，或用20％氨基甲酸乙酯做腹腔注射。

适用于鼠等小动物。

(3)断头法用剪刀剪去动物的头部，待血液流出后立即取材。

适用于小动物。

(4)去头法用重物猛击头后部或将动物头后部猛撞桌沿。

(5)股动脉放血法动物麻醉后，切开股动脉放血致死。

(二)取材注意事项易变质，争取在死后半小时内取材完毕，否则免疫组化染色时会产生背景染色。

(2)切取组织使用的刀、剪要求锋利，避免来回挫动组织。

因动物组织质脆，因此夹取组织时切勿用力过重，以免挤压损伤组织。

二、尸体解剖的取材尸体解剖的取材应根据实际需要进行，一般取材部位和数量如下。

(1)心和大血管右心室一块，左心室一块，主动脉一块，取材部位可在距主动脉瓣5cm处。

(2)肺右下叶一块，切成正方形；左下叶一块，可切成长方形。

(3)肝右叶一块，切成正方形；左叶一块，切成长方形。

(3)脾一块。

(4)胰一块。

(6)肾两肾各一块，包括皮质、髓质和肾盂。

右肾一块切成正方形，左肾一块切成长(7)膀胱一块。

(8)肾上腺左、右各取一块。

(9)消化道食管一块，胃窦部一块，小肠一块，淋巴结一块，直肠一块。

(10)骨脊椎骨一块。

(11)胸腺一块。

(12)子宫宫颈和宫体数块。

(13)睾丸或卵巢各一块。

(14)脑左侧运动区一块，左侧豆状核一块，小脑一块。

标本制作的步骤与技巧

标本制作的步骤与技巧标本制作是一项复杂而重要的工作，它能够为我们提供更多的生物学知识。

进行标本制作需要掌握一定的技巧和方法。

在这篇文章中，我们将讨论标本制作的基本步骤和技巧，帮助读者能够更好地进行标本制作。

一、材料准备标本制作的第一步就是材料准备。

需要准备的材料包括：1. 标本材料：标本材料可以是动物、植物等生物体的一部分，如整只动物、树枝、叶子等。

2. 防腐剂：用于保护标本不腐烂，防止昆虫及其它动物吃掉标本。

3. 水杨酸：用于去除标本中的水分，保证标本保存时间更长。

4. 夹板：把标本夹在夹板上，以方便制作和保护标本。

5. 刀具：用于切割标本、修整和清洁标本。

6. 其他工具：如毛刷、吸管等。

二、标本处理1. 清洗：将采集的标本材料进行清洗，以去除多余的沙子、泥土和异物。

2. 处理：在标本上涂上适当的防腐剂，让它渗透进标本中，保护标本不腐烂。

需要注意的是，在涂抹防腐剂时需要均匀涂抹，不能遗漏。

3. 去水：将标本浸泡在水杨酸中，去除标本中的水分。

需要注意的是，标本不要浸泡时间过长，否则会使标本变得脆弱。

4. 固定：把标本夹在夹板上，以便进行后续处理。

需要注意的是，在夹板上夹好标本后，夹板的压力要适当，不要压坏标本。

5. 切割、修整：用刀具对标本进行切割和修整，以保证标本的外观美观和保存时间更长。

三、保存1. 包装：将标本装入封闭的容器中，以保护标本不受损。

2. 存储：将标本存放在干燥、通风、阴凉的环境中，以防止标本受潮、发霉和腐烂。

3. 标注：在标本上标注物种名称、采集地点、采集时间等信息，以便后续的研究和查询。

四、技巧分享1. 选择质量好的标本材料。

标本材料要选取新鲜、完整、无污染的生物体材料。

2. 选择适当的防腐剂。

不同的防腐剂对不同的标本材料有不同的作用，必须根据标本材料的性质选择适当的防腐剂。

3. 选择合适的刀具。

不同的标本需要使用不同的刀具，刀片要锋利，以便快速、准确地进行切割和修整。

4. 保持标本的干燥性。

标本处理操作指南

标本处理操作指南简介本操作指南旨在指导标本处理的正确方法，以确保样本的准确性和完整性。

在进行标本处理时，请务必遵循以下步骤和注意事项。

步骤1. 准备工作：准备工作：- 在进行标本处理之前，需准备好必要的工具和材料，如标本、手套、标签等。

- 确保工作区域的清洁和消毒，以防止污染标本。

2. 标本采集：标本采集：- 根据要求选择合适的标本采集方法，确保采集到代表性的样本。

- 在采集过程中，注意保持标本的无菌和无污染状态。

3. 标本存储：标本存储：- 将采集好的标本及时存放在适当的中，确保干燥、密封并注明标签。

- 若需要冷藏或冷冻保存标本，确保温度适宜，防止标本的变性或受污染。

4. 标本运输：标本运输：- 标本在运输过程中需保持稳定的温度和状态，以免影响后续处理或分析。

- 包装标本时，应使用防护措施，以防泄漏、破损或交叉污染。

5. 标本处理：标本处理：- 根据标本的特性和需求，选择适当的处理方法，如离心、分离、提取等。

- 操作时需谨慎，避免标本的损坏或污染。

6. 废物处理：废物处理：- 处理完标本后，应根据相关法规和规定，将产生的废物予以妥善处理。

- 废物包括使用过的标本、手套等，需要进行分类、封装和正确处置。

7. 记录和报告：记录和报告：- 在整个标本处理过程中，务必做好相关的记录，包括标本的信息、采集时间、处理方法等。

- 将处理完成的标本及相关记录进行归档和报告，以供后续参考和追溯。

注意事项- 每一步操作前都要确保清洁的工作环境和消毒的工具。

- 遵循标本的特性和要求，选择合适的处理方法。

- 避免标本的交叉污染，保证每个标本都有独立的和工具。

- 废物处理遵循相关法规和规定，确保环境和人员的安全。

- 对于特殊标本的处理，如有特殊要求，请参考专门的操作指南。

以上为标本处理操作指南，希望能帮助您正确处理和管理标本，保证实验和研究的准确性和可靠性。

如有任何疑问，请及时咨询相关专业人员。

手术组织标本运送流程及注意事项

手术组织标本运送流程及注意事项下载温馨提示：该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。

文档下载后可定制随意修改，请根据实际需要进行相应的调整和使用，谢谢!并且，本店铺为大家提供各种各样类型的实用资料，如教育随笔、日记赏析、句子摘抄、古诗大全、经典美文、话题作文、工作总结、词语解析、文案摘录、其他资料等等，如想了解不同资料格式和写法，敬请关注!Download tips: This document is carefully compiled by the editor. I hope that after you download them, they can help you solve practical problems. The document can be customized and modified after downloading, please adjust and use it according to actual needs, thank you!In addition, our shop provides you with various types of practical materials, such as educational essays, diary appreciation, sentence excerpts, ancient poems, classic articles, topic composition, work summary, word parsing, copy excerpts, other materials and so on, want to know different data formats and writing methods, please pay attention!手术组织标本运送在临床工作中具有重要的意义，其质量直接关系到病理诊断结果的准确性和临床治疗的有效性。

活体组织检查标本送检规范

海军总医院病理科活体组织检查标本送检规范一、标本采集和送检（常规活检、冰冻标本）（一）标本采集1、具有执业医生资格者才能采集患者的病理标本。

2、凡在本院手术切除或钳取及穿刺的组织标本，均应送病理科检查。

3、常规活检标本采集规范（包括病灶局部穿刺、咬取、切取和手术切除组织）：（1）取材应取到具有代表性的病变部位，尽量避免机械压挤，烧灼等影响诊断的操作。

（2）要保证标本的完整性：离体后的标本应全部完整送至病理科，临床医生不能在病理科发报告之前随意切取患者的病理标本。

（3）标本离体后应立即固定，从离体到固定的时间最长不易超过30分钟。

标本勿在空气中暴露，更不能在阳光下、暖气、火炉旁放置。

也不能将标本直接放在冰箱过夜或用生理盐水代替固定液。

（4）固定液为10%中性福尔马林液，用量为组织标本体积的4-5倍，确保标本全部置于固定液之中。

需要做特殊项目检查（如微生物、电镜、分子生物学等）的标本，应在取才前与病理科沟通，按以便相关的技术要求进行固定或预处理。

（5）空腔标本和大的实质性脏器临床医生必须及时切开固定，固定液一定要充分。

（6）临床医师要求照相或有其它特殊要求须在手术后立即通知病理科或在送检单上注明。

（7）用于固定标本的容器应清洁，开口宜大，避免强行塞入。

（-）病理申请单填写：1、病理申请单应填写患者姓名、性别、年龄、住院号、送检科室、送检医生、送检日期、临床诊断、病例摘要，各项特殊检查结果，治疗或用药情况（妇产科患者一定要填写相关病史、检查和治疗项目）、手术所见，标本数量、部位、名称，固定液种类。

2、如以前曾在我院做过病理检查须注明前次病理检查的病理号。

如在外院手术, 应由临床医师在术前出具证明由家属借来切片，以供参考。

3、结核、肝炎、HIV等传染性标本应注明。

4、申请单与标本必须同时送达，申请单保持清洁，勿放在标本袋中以防止污染。

5、冰冻申请单按以上要求填全后提前1天送至病理科预约次日的冰冻检查，并把相关的影像学资料提供给病理科，以便病理诊断医生提前了解病情，并做充分准备保证冰冻诊断的顺利完成。

皮肤、软组织及伤口标本采集技术规范

皮肤、软组织及伤口标本采集技术规范【名词定义】采集患者创面、伤口及脓肿感染标本进行细菌培养及药物敏感试验。

【适应证】1.怀疑皮肤及软组织感染包括烧伤创面感染、手术后切口感染、急性蜂窝织炎、外伤感染、咬伤感染及压疮感染等时采样。

具体如下(1)皮肤或皮下脓肿受累部位出现红、肿、热、痛，需手术切开引流时。

(2)深部脓肿表现为局部疼痛和触痛并伴有全身症状,发热、乏力、食欲减退等。

(3)创伤或手术部位感染。

2.烧伤患者出现发热、创面恶化时，考虑采样。

3.烧伤的组织宜做定量培养，定量检验结果2105CFU/g则可预示有可能进展为创伤相关脓毒症。

【禁忌证】1.浅表伤口标本不能进行厌氧培养。

2.烧伤患者的早期创面无菌，烧伤后12小时勿采集标本，创面的拭子标本不能用于厌氧培养。

【目的】取皮肤、软组织标本进行细菌学检测，协助诊断皮肤、软组织及伤口感染。

【制度与依据】1.本规范理论部分主要依据：中华预防医学会医院感染控制分会发表于2018年第28卷第20期中华医院感染学杂志的《临床微生物标本采集和送检指南》。

感染性疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导，而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。

因此，必须规范微生物标本的采集和运送，避免因标本的不合格，产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。

3.本规范操作部分主要依据：中华人民共和国国家卫生健康委员会2018年12月11日发布，2019年6月1日实施的《临床微生物学检验标本的采集和转运》，是中华人民共和国卫生行业标准，WS/T640—2018o本标准是按照GB/TL1—2009给出的规则起草；起草单位：北京大学人民医院、中日友好医院、安徽省立医院、首都医科大学附属北京友谊医院、北京医院、北京市垂杨柳医院。

【准备】1.用物准备：医嘱单、皮肤、软组织标本化验单或标本条形码、无菌治疗盘、75%酒精、棉签或棉球、无菌螺帽容器或棉拭子1〜2个、IOn I I注射器1〜2个、检查手套、手消液，需做厌氧菌检查者备厌氧血培养瓶1个，检查用物的有效期，物品处于备用状态。

检验科实验室标本处理流程

检验科实验室标本处理流程实验室是科研工作中不可或缺的环节，而标本的处理流程是检验科实验室中至关重要的一部分。

以下将详细介绍检验科实验室标本处理流程。

1. 标本接收在实验室中，标本接收是整个标本处理流程的第一步。

当标本送达实验室时，工作人员首先要核对标本信息，确保标本的标签完整清晰、信息准确无误。

接着，需要根据标本种类进行适当分类存放，确保标本处于适当的环境条件中。

2. 标本登记接收标本后，实验室工作人员需进行标本登记。

这一步是非常关键的，登记信息需要包括标本编号、标本类型、送检单位、采集时间等。

同时，要做好标本保存条件的记录，确保标本质量不受影响。

3. 标本处理在标本处理过程中，实验室工作人员要按照标本种类和具体检验项目的要求进行相应处理。

这涉及到标本的分装、储存、处理等方面，需要做到严格按照操作规程进行，杜绝任何错误操作。

4. 检测分析标本处理完成后，就是进行检测分析的环节。

实验室工作人员根据具体检验项目的要求，进行相应的实验操作并记录实验数据。

在操作过程中，要遵守实验操作规范，确保实验结果的准确性和可靠性。

5. 实验数据处理实验数据处理是标本处理流程中的最后一步。

实验室工作人员需将实验结果进行整理、分析和解释，形成完整的实验报告。

同时，要做好数据存档和管理，确保数据的安全可靠性。

以上就是检验科实验室标本处理流程的详细介绍。

实验室工作人员在标本处理过程中，需严格按照操作规程进行操作，确保实验数据的准确性和可靠性。

只有这样，才能为科研工作提供准确可靠的数据支持。

希望以上内容能对你有所帮助。

标本采集应急预案及处理程序

标本采集应急预案及处理程序一、应急预案编制的目的和基本原则为了提高标本采集工作的应急处理能力，制定标本采集应急预案，以确保在突发事件发生时能够迅速、高效地采取措施，最大限度地保护采集人员的安全和标本的完整性。

应急预案的基本原则包括科学性、针对性、系统性和可操作性。

二、应急预案编制的依据和范围应急预案的编制依据包括采集工作相关法律法规、行业标准、伦理规范等。

应急预案的范围主要包括突发事件的预警、采集工作的危险源识别与评估、组织应急处置措施、应急演练等。

三、突发事件的预警和应急响应1.突发事件预警的渠道和程序：（1）内部渠道：定期组织各部门召开例会，及时了解各方面的情况；（2）外部渠道：利用媒体、互联网等渠道获取突发事件信息；2.应急响应的等级和区分：（1）一级响应：突发事件对标本采集工作造成重大影响的情况；（2）二级响应：突发事件对标本采集工作造成一定影响的情况；（3）三级响应：突发事件对标本采集工作影响较小的情况。

四、危险源识别与评估1.危险源的识别和评估方法：（1）对标本采集工作现场进行全面安全检查；（2）采集工作前应评估天气、地理环境等因素对采集工作的影响；（3）根据采集工作的不同环节制定风险识别与评估表。

2.采取相应措施进行危险源的控制：（1）建立标志牌、警示标志等明显的安全提示措施；（2）指定专人负责现场安全监控；（3）加强现场安全培训，提升采集人员的安全意识。

五、组织应急处置措施1.突发事件发生时的应急指挥体系：（1）指定应急指挥部，明确指挥层级和职责；（2）建立信息报告和通报机制，确保信息的及时传达；（3）明确协调处置工作流程，加强部门之间的沟通和协作。

2.应急处置资源的调配和利用：（1）根据突发事件的不同情况合理调配人员和物资资源；（2）按照预案预先准备需求的应急物资，包括消毒液、防护服等；（3）协调相关部门提供支持，保障应急工作的顺利进行。

六、应急演练1.应急演练的目的和内容：（1）检验应急预案的有效性和可操作性；（2）提高应急处置能力和紧急应变能力；（3）熟悉应急流程和应对措施。

样本采集与处理

样本采集样本采集要注意的重点是，所采集的临床标本一定要正确和采集的时间合适，并注意采用正确的标本容器，采集的方法程序对有些临床标本非常重要。

在疾病发展过程中，标本采集过早或过晚都可能会给出假阴性结果。

尽可能在最短的时间内完成样本的采集（应该保证30min内完成，不适当的处理时间将直接影响和干扰研究的结果），应尽快降低所采集组织样本的温度。

肿瘤组织标本的采集和处理应遵循严格的生物安全处理规范，也可根据研究者所提出的特殊要求，按照对方提供的操作模式进行相关处理。

（1）患者入院后进行生物安全性检查。

检测HIV以及嗜肝病毒HBV及HCV感染情况。

HIV感染患者不列为采集对象。

HBV及HCV感染者，须在样本上明确注明。

（3）组织标本取材时间肿瘤外科手术后，标本离体30min内。

（4）标本采集每种肿瘤主要采集3 类生物样本，并要保证这些样本的质量和数量能够用于DNA、RNA 和蛋白质提取及满足相关的实验分析。

1)新鲜组织(包括手术和活检组织)实体组织样本采集包括外科手术切除的或活检和尸检得到的正常、良性和恶性肿瘤组织。

手术结束后，在临床肿瘤病理专家的指导下，在不影响病理诊断取材需要的前提下，采集组织样本。

A。

标本取材部位：肿瘤组织、癌旁组织（癌组织旁1cm）和正常组织（癌组织旁5cm 以外或最远处）。

a）临床诊断明确，未经放疗和化疗的手术切除标本，在病理医生指导下取材。

b）尽量保证癌组织没有坏死（有坏死的标本很难提取高质量的RNA 和蛋白）。

c）配对“癌旁组织”，选择距离癌灶边缘3 cm 范围内的组织样本，配对“正常组织”，要选择距癌灶边缘5 CM 以上或距离癌灶边缘最远段（或手术切缘处）取组织样本，应注明距离。

对于空腔器官，如食管、胃、肠、胆囊、膀胱等，“癌旁组织”“正常组织”应取相应部位的“粘膜组织”样本。

d）在保障病理学检测所需标本的前提下，尽量提供足量的肿瘤和癌旁正常组织，一般不少于200mg 或10E7 细胞。

组织标本采取及处理的正确方法

组织标本采取及处理的正确方法近年来从国外引进许多先进的实验室检测技术和诊断方法，但是临床病理诊断仍然是最重要的“定性诊断”方法，是临床制定治疗措施和判断预后的重要依据。

由于医学的发展使临床医生和病理医生有时对某些问题的理解有很大的差别，从而影响了对患者的治疗，甚至产生不良结果，也可因标本的采取部位和处理不当，直接影响病理医生做出准确的诊断。

1标本的固定正确的病理诊断需要有高质量的切片，正确的标本固定是制成高质量切片的第一步。

如果组织自溶、结构破坏、细胞变形，就无法诊断，而且这是无法补救的一步。

常用的固定液有10%福尔马林，80%酒精、丙酮、戊二醛、醋酸。

10%福尔马林的渗透组织能力为1 mm/h，所以一般标本均需固定数小时，较大标本(直径大于6 cm)沿最大径切开后应固定24 h，腔状器官剪开后铺平(粘膜面向上)，在大的容器内固定，表面覆以侵有固定液的湿纱布或湿棉花。

小组织(直径小于2 cm)装在小瓶内固定以防丢失，囊性标本勿剖开以防上皮脱落。

盛标本的容器口径应大于标本的直径。

固定液的体积应10倍于标本的体积。

较大标本的固定方法：消化道沿系膜和胃大弯剖开；肺沿支气管树的冠状面剖开；子宫应从前面剖开宫腔固定内膜，以最大径剖开子宫的肿物；从外缘向肾门方向剖开肾脏；肝脾可沿最长径平行切开；眼球应开窗固定，在巩膜处剪开一小口，使固定液流入眼球内。

10%福尔马林配制：市销36%福尔马林1份加9份蒸馏水。

用于分子生物学和免疫组化研究的标本应用中性福尔马林固定。

2关于快速冰冻问题2.1快速冰冻的用途决定病变的性质；确定切除肿瘤边缘是否有残留的癌组织；辨认组织；确定有无淋巴结转移。

2.2快速冰冻有下列局限性①切片质量差，准确性可达97%〔1〕。

②不适用于骨、脂肪和淋巴结非转移性病变的诊断。

前两者因为组织坚硬和难以冷冻不能切片。

淋巴瘤在石蜡切片上诊断都很困难。

③疑难病变和变界性病变在石蜡切片上都很难诊断，需借助于免疫组化和电镜来诊断，因此要延缓诊断。