石蜡制片法

石蜡制片法
石蜡制片法

石蜡制片法(用于免疫组织化学,HE染色)

发布日期:2008-10-27 热门指数:6172 收藏

石蜡制片法是将材料经固定、脱水、透明、浸蜡后包埋在石蜡里面进行切片的方法。此法适用范围,制片手段完备,能将材料切成极薄的片子(可切至2-8微米左右),并能制成连续的片子,这是其它制片法难以达到的,因此在光学显微镜的制片技术上它是最常用的一种方法。除了一些经不住石蜡切片法中所应用的各种药剂处理的材料不能应用石蜡切片以外,一般的材料都可以用此法制片,但有制作时间较长,操作过程复杂以及材料易发硬或发脆等缺点。该法多采用旋转式切片机进行切片。

石蜡制片操作程序如下:

(一)材料的采集与分割

采集材料应根据制片的目的和要求而定,材料要有代表性,无病虫害或其它损伤,如要观察病理解剖,则要取病斑、病症部位。采下的材料应立即放在标本箱或湿布包起来带回实验室进行分割固定(如有条件也可在试验地采集后进行分割固定)。为使固定液能迅速的渗透材料,材料要进行分割。分割时动作要迅速,以防材料萎蔫。分割块的大小,宜小不宜大,一般不超过1cm3,分割后立即杀死固定。

(二)杀死与固定

利用药剂迅速把细胞杀死,以保持材料本来的状态和结构。

常用的固定有F.A.A固定液、卡诺固定液等。将固定液放在具塞小瓶中,投入材料,盖好瓶盖。用F.A.A 固定液固定,时间至少24小时。F.A.A固定液既是良好的固定剂,也是保存剂,因此材料可长期保存在固定液中备用。卡诺固定液穿透力强,固定较小材料一般1~6小时即可,最多不超过24小时。因卡诺固定液不能做保存剂,所以固定后要用95%、85%酒精浸洗,每级约20min.,然后保存在70%的酒精中备用。

(三)脱水

脱水的目的是除去组织中的水分,便于透明、浸蜡、包埋等步骤的进行,因为这些程序中所用的药品都不能与水混合,所以必须脱水。常用的脱水剂为酒精。脱水过程应缓慢进行,不能操之过急或时间过长,以免组织变硬变脆或发生收缩现象。脱水采用等级脱水(系列脱水),即从较低浓度酒精开始,逐渐替换到高浓度酒精。一般为:50%→70%→80%→95%(此时可加少许番红,使组织着色便于包埋时定位)→无水酒精(两次),每级停留时间2~4小时或更长(无水酒精中时间宜短)。

用95%酒精配制各浓度酒精的方法:设原有酒精浓度为A,所需配制酒精浓度为B,则取Bml原有酒精,加上A-Bml蒸馏水,即可获得Aml的B%的究竟。例如:95%酒精配成70%的酒精,则取70ml的95%酒精,加上25ml蒸馏水,则配成了95ml的70%的酒精。

(四)透明

透明的目的是将脱水剂从材料中除去,使材料透明,增记折光系数;同时便于下步的浸蜡和包埋等程序(因

为究竟不能溶解石蜡)。透明剂是一种既能与脱水剂混合,又能与包埋剂混合的药剂。常用的透明剂为二甲苯和氯仿,适用原则也是逐级进行,可减少材料收缩。一般步骤是:2/3纯酒精+1/3二甲苯→1/2纯酒精+1/2二甲苯→1/3纯酒精+2/3二甲苯→二甲苯(两次),每级停留时间0.5~2小时或更长些。二甲苯穿透能力强,但又宜使材料收缩变脆,使用时不能在其中停留时间过长。若材料放入二甲苯中时有白色混浊现象发生,说明材料脱水不彻底,应把材料退回至纯酒精中再行脱水。

(五)浸蜡

浸蜡的目的是逐渐除去透明剂,并为包埋剂所代替。常用的包埋剂是石蜡。浸蜡过程是使石蜡慢慢溶于浸有材料的透明剂中,溶解在透明剂中的石蜡渐渐深入到材料的细胞中去,最后使透明剂完全被石蜡取代,以便切片。

一般所用的石蜡分软蜡(熔点40℃以下)和硬蜡(熔点40℃以上)。浸蜡过程一般是从低温到高温、从低熔点到高熔点逐渐进行,这一过程不能操之过急,否则浸蜡不彻底影响切片。此外,软材料可用熔点较低石蜡,较硬的材料可用熔点较高的石蜡;冬季可用熔点较低的石蜡,夏季可用熔点较高的石蜡。石蜡必须纯净,不含杂质。整个浸蜡过程需在恒温箱内进行(按需要调整温度)。材料最后一次二甲苯透明后即可浸蜡,浸蜡过程中逐渐使二甲苯挥发,并不断加入纯石蜡,直至石蜡饱和为止。浸蜡时间大约1~2天。

(六)包埋(埋蜡、沉床)

材料浸蜡后再换两次已熔融的纯蜡,然后将材料和石蜡一起倒入提前叠好的包埋纸盒中,用加热的镊子迅速将材料按一定的间隔和所需的切面摆放整齐,同时用加热的镊子赶走材料周围的气泡,待纸盒表面的石蜡凝固后将纸盒平放入冷水中,使石蜡迅速凝固。最后从纸盒中取出蜡块,以便保存。注意将样品编号封于蜡块上,以免样品混淆。

(七)修块

将已包埋好的蜡块切成小块,每一小块包含一块材料。然后按照所需的切面,用单面刀片将小蜡块切成梯形,并可粗视到材料切面。然后用烧红的蜡铲把蜡块底部牢固的粘接在载蜡器上。

(八)切片

用切片机(如旋转切片机)将蜡块切成连续的蜡带。切片时先把切片刀夹在刀架上,再把载蜡器夹在固定装置上(注意安装切刀的角度,刀口运行方向与材料切面平行),然后调整好所需厚度,一般可在7~14微米,视材料和所需观察对象而定,一般叶片、芽可厚些,胚囊和花粉粒可薄些,转动切片机切片。

(九)粘片

切下来的切片经过镜检(根据情况也可不检),将符合要求的切片粘在洁净的载玻片上。粘片时先在载玻片上滴上一小滴粘片剂(可用蛋青和甘油各50ml,加1g水杨酸混合而成),加几滴蒸馏水,然后用镊子小心把切片放在水上,在35-40℃下,用拨针将切片伸直、展平,倾斜载片,使水流去并烘干。

(十)脱蜡、染色、脱水透明和封片

粘片后要经过脱蜡、染色、再次脱水透明,然后封片永久保存。下面以植物生物学中观察组织结构最常用的番红-固绿染色法说明脱蜡、染色、脱水透明和封片的过程:

二甲苯→二甲苯(每次均10~15min.)→1/3纯酒精+2/3二甲苯(1~2min.)→1/2纯酒精+1/2二甲苯(1~2min.)→2/3纯酒精+1/3二甲苯(1~2min.)→纯酒精两次(每次1~2min.)→95%、85%、70%、50%梯度酒精复水(每级1~2min.或更长)→用1%番红配50%酒精染色1小时→50%、70%、85%、95%梯度酒精脱水(每级1~2min.或更长)→用0.1%固绿配95%酒精复染2~5秒→95%酒精脱水1~2分钟→纯酒精两次(每次1~2min.)→2/3

纯酒精+1/3二甲苯透明(1~2min.)→1/2纯酒精+1/2二甲苯透明(1~2min.)→1/3纯酒精+2/3二甲苯透明

(1~2min.)→二甲苯→二甲苯(每次均10~15min.)→加拿大树胶封片→贴标签镜检及保存。

以上是石蜡制片的一般步骤;为了获得良好的制片效果,需要制片者的大量实践并在实践中不断摸索、积累经验方可。

石蜡切片详细步骤

石蜡切片 1.仪器 石蜡切片机、烘箱、显微镜、染色缸、小培养皿、镊子、毛笔、吸水纸、纱布、载玻片、盖玻片等。 2. 试剂 FAA固定液(70%酒精90ml、冰醋酸5ml、福尔马林5ml)、10%番红水溶液、0.5%固绿(用95%的酒精配制)、酒精(100%、95%、80%、70%、50%)、二甲苯、蒸馏水、甘油、中性树胶等。 3.取材 幼嫩的油菜植株叶片和茎 4.方法与步骤(参照) 1.固定: FAA固定液固定48小时以上。 2.脱水: 50%酒精→70%酒精→83%酒精→95%酒精→100%酒精→100%酒精。每级2h。100%酒精中1.5h。其中70%酒精处可长期保存。 3.透明: 1/2二甲苯+1/2无水乙醇 (2h) →纯二甲苯(1.5h) →纯二甲苯(1.5h) 4.浸蜡: 将处理的材料置于1/2石蜡(固体粉末状)+1/2二甲苯中,40℃烘箱敞口过夜。 5.包埋: 先提升恒温箱的温度至60℃,换纯蜡3次,每次1-2h,用硬的电光纸、牛皮纸叠纸盒,置于45-60℃的烫板上,倒入材料,摆放好材料,把标签(正面向外置于底部),补足石蜡,倒好后轻轻的置于冷水盆中,注意底面要接触盆中凉水,待石蜡全部凝固后可取出晾干,也可在凉水盆中放置过夜。 6.切片 对包埋的材料进行修块、粘块、整修后,保证材料四周都有石蜡包围。但不可太多。切面的上、下边平行。用加热的解剖刀蘸取少许石蜡碎屑,并迅速将石蜡块四周的碎屑烫平,使石蜡块牢固地粘在台木上。检查切片机,安装切片刀、调整好刀的角度,调整石蜡块与刀口之间的角度与位置后开始切片。

7.粘片 将粘贴剂置簿玻片上,再取切片浮置粘片剂上,然后置烘片台上,使切片展开烫平,材料不现皱纹为度。最后将切片依次排好,用滤纸吸去多余水分,同时以记号笔在玻片上编号,放入温箱中烘干,温度30~40℃中过夜。 8.脱蜡 脱蜡用二甲苯,把烤好的载玻片放于盛二甲苯的染缸中:纯二甲苯(10-20min)→纯二甲苯(5-10min) 9.染色 将纯二甲苯脱蜡完全的材料,1/2 二甲苯十1/2纯酒精→100%酒精→95%酒精→85%酒精→70%酒精→50%酒精→1%番红染色(4h以上) →50%酒精→70%酒精→85%酒精→95%酒精→0.5%固绿(1min)→95%酒精→100%酒精→100%酒精(未注明时间各级均为3min) 10.胶封 滴加加拿大树胶封藏。 11.镜检,拍照

石蜡切片步骤

石蜡切片制作 大致步骤:取材、固定、洗涤和脱水、透明、浸蜡、包埋、切片和粘片、脱蜡、染色、脱水、透明、封片等步骤。 1、取材 植物材料选择时必须尽可能不损伤植物体或所需要的部分。 取材必须新鲜,尽可能割取所需要的组织块,并随即投入固定液。 取材时刀要锐利,避免因挤压细胞使其受到损伤。 切取的材料应该小而薄,便于固定剂迅速渗入内部。一般厚度不超过2mm,大小不超过5*5mm2。 2、固定 用适当的化学药液—固定液浸渍切成小块的新鲜材料,迅速凝固或沉淀细胞和组织中的物质成分、终止细胞的一切代谢过程、防止细胞自溶或组织变化,尽可能保持其活体时的结构。 固定液的选用:FAA固定液 FAA固定液配制:福尔马林(38%甲醛)5 ml 冰醋酸 5 ml 70%酒精 90 ml 5 ml甘油(丙三醇) 固定时间根据材料块的大小及松密程度而定。 3、洗涤与脱水 固定后的组织材料需要除去留在组织内的固定液及其结晶沉淀,否则会影响以后的染色效果。多数用流水冲洗:使用含有苦味酸的固定液固定的则需要用酒精多次浸洗;如果组织经酒精或酒精混合液固定,则不必洗涤,可直接进行脱水。 酒精为常用的脱水剂,为了减少组织材料的急剧收缩,应使用从低浓度到高浓度递增的顺序进行,通常从30%或50%酒精开始,经70%、85%、95%直至纯酒精(无水乙醇),每次时间为1-数小时,如不能及时进行脱水,材料可以放在70%酒精中保存,因高浓度酒精易使组织收缩硬化。 4、透明 选用二甲苯为酒精和石蜡的浸媒液,替换出组织内的酒精。通常组织先经过纯酒精和透明剂各半的混合液浸渍1-2小时,再转入纯透明剂中浸渍。时间根据材料块大小而定。 5、浸蜡与包埋 用石蜡取代透明剂,使石蜡浸入组织而起支持作用。通常把组织材料块放在熔化的石蜡和二甲苯的等量混合液浸渍1-2小时,再先后移入2个熔化的石蜡液中浸渍3小时左右,浸蜡应在高于石蜡熔点3℃左右的温箱中进行,以利于石蜡浸入组织内。浸蜡后的组织材料块放在装有蜡液的容器中(摆好在蜡中的位置),待蜡液表层凝固即迅速放入冷水中冷却,即做成含有组织块的蜡块。容器可用光亮且厚的纸折叠成纸盒或金属包埋框盒。如果包埋的组织块数量多,应进行编号,以免差错。石蜡熔化后应在蜡箱内过滤后使用,以免因含有杂质而影响切片质量,且可能损伤切片刀。 6、切片 包埋好的蜡块用刀片修成规整的四棱台,以少许热蜡液将其底部迅速贴附于小木块上,夹在轮转式切片机的蜡块钳内,使蜡块切面与切片刀刃平行,旋紧。切片刀的锐利与否、蜡块硬度适当都直接影响切片质量,可用热水或冷水等方法适当改变蜡块硬度。通常切片厚度为 4-7微米,切出一片接一片的蜡带,用毛笔轻托轻放在纸上。 7、贴片与烤片

21常规石蜡切片制片规范

常规石蜡切片制片规范 1.制片过程中的每一个环节,应确保切片号和蜡块号一致,自始至终不能将号码弄错,一旦发生应重新取材,以防事故发生。 2.制片完成后,应在HE切片上及时粘贴写好本病理科病理号的标签,并认真仔细地核对。 3.认真检查制片质量。切片优良率(甲、乙级片所占的比例)≥90%,优级率(甲级片所占的比例)≥35%。不合格切片应立即重做。4.制片完成后,技术人员应将所制作的切片连同相应的申请单/记录单、取材工作单等一并移交给病理医师,双方经核对无误后,办理移交签字手续。 5.制片工作一般应在取材后2个工作内完成(需要脱钙、脱脂等特殊处理的除外)。 6.制片过程中如发生意外情况,有关技术人员和技术室负责人应及时向病理科主任汇报,并积极设法予以补救。 7.具体HE切片制作技术参见《病理组织学常规制片技术》。 附: 1.取材组织取材的方法是制作切片的一个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取自人体(外科手术切除标本、活检标本、尸检标本)或动物,并确定取材的部位和方法。取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取组织作为制片材料,不然,无法达到教学、科研和临床诊断的目的,具体要求如下: (1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,应迅速固定,以保证原有的形态学结构。

(2)组织块的大小:所取组织块较理想的体积为 2.0cm×2.0cm×0.3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取0.1~0.2cm即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取0.3 ~0.5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。 (3)勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。 (4)规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。 (5)选好组织块的切面:根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。 (6)保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。 (7)保持组织的原有形态:新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。为此可将组织展平,以尽可能维持原形。 2.固定 (1)小块组织固定法:这是最常用的方法,从人体取下的小块组织,须立即置入液态固定剂中进行固定,通常,标本与固定液的比例为1:4~20,但组织块不宜过大过厚,否则固定液不能迅速渗透。故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。 (2)注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部,或需要对整个脏器或整个动物体进行固定。这时宜采用注射固定或灌注固定法。将固定液注入血管,经血管分支到达整个组织和全身,从而得到充分的固定。 最常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。

石蜡切片的制作过程(精)

石蜡切片的制作 目的要求:了解生物制片的基本原理和方法;了解石蜡切片制作的基本过程;学会制作石蜡切片。 一、生物制片的基本原理 (一生物制片的目的与发展概况 生物制片是研究生物有机体微观结构的基础方法,其目的是提供在显微镜下以适度的样品,有效地对其进行形态和功能观察研究。 (二生物制片的方法 当我们研究生物体的组织或细胞时,除了某些生物体可用相差显微镜或偏光显微镜等方法达到观察目的外,其余大部分生物体,因为组织较厚,光线不易透过内部等关系而达不到观察的要求,为了达到此目的,就必须将生物体的组织切成薄切片或不切片,经过一系列处理,使光线易于透过,即可进行观察。因此,根据标本的制作方法分为切片法和非切片法两种。这些方法,各有优缺点,应该适当的配合使用,才能获得比较理想的结果。 1.切片法 (1切片法的种类 切片法就是利用锐利的刀具,将器官组织或幼小个体分割成许多极薄的薄片,而制成切片标本的一种方法。切片法在切成薄片以前必须设法使组织内渗透某种支持物质。使组织保持一定的硬度,然后利用切片机进行切片。根据所用支持物质的不同切片法又可分为石蜡切片法、火棉胶切片法、冰冻切片法、炭蜡切片法等类型。现分述如下: ⅰ.石蜡切片法

石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法,因此用得最多,它有很多优点:比较省时间,容易操作,可切成极薄的切片(4um 以下,能制作连续切片,组织块可包埋在石蜡中永久保存。缺点是只能用于较小的组织块,较大的组织块不易切好,容易破碎,组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆。制片时间太长。 ⅱ.火棉胶切片法 火棉胶切片法是以火棉胶为支持剂进行切片的方法。此法的优点是包埋过程中不用二甲苯及石蜡,不经高温,可避免组织收缩及变脆,适于精细材料(如脑的切片,也引火棉胶有韧性切片不知有折卷或破裂,适宜于大块组织及多空洞的组织(脑、眼球,硬度较高的组织(骨、肌腱。缺点:手续麻烦、费时间,切片不能切薄,起码在10um以上,不能作连续切片,因此,在生物制片技术上已经不经常采用。 ⅲ.冰冻切片法 冰冻切片法是利用液体二氧化碳或其它药剂(如氯乙烷在变成气体时吸收大量的热使组织迅速结成冰块而后再进行切片的方法。目前国内外用半导体致冷调节器来代替二氧化碳的冰冻,冷冻速度更快更为方便。 冰冻切片法的优点是较前两种方法简便,组织不经脱水、透明、包埋等手续即可切片,因而可节省很多时间,十分钟左右即能制成切片。常用于临床病理手术诊断,银材料不经溶媒处理就可直接进行切片,材料不受试剂的激烈刺激及温度影响,所以组织没有显著的收缩,细胞形态不致有大的改变,也引冰冻切片不需有机溶剂处理,所以能保存脂肪、类脂等成分,所以冰冻切片法常用于组织化学,尤其是神经组织,临床病理学等方面的研究。 新鲜的组织或已经固定的组织,经短时间处理后即可进行切片。用任何固定及处理的材料均适合冰冻切片,但一般的经验用福尔马林固定的材料最适合冰冻切片,而用酒精、甘油保存的材料必须充分水洗后才易于冰冻,否则不易切成完整的切片

石蜡切片的制片方法

石蜡切片制作基本技术 实验器材:转动切片机、镊子、解剖刀、解剖针、玻璃缸或小塑料盆、小烧杯(50ml)、酒精灯、打火机、染色缸、吸管、温台、温箱、毛笔、纱布、双面刀片。 试剂:95%的乙醇、无水乙醇、二甲苯、甲醛、石碳酸、甘油、新鲜鸡蛋清、加拿大树胶、番红、铬绿、熔点48~50℃和56~58℃的石蜡。 其它:无水CaCl2 、铁帆、苏木精、重铬酸钾、浓硫酸 石蜡切片制作基本技术:石蜡切片法包括取材、固定、洗涤和脱水、透明、 浸蜡、包埋、切片与粘片、脱蜡、染色、脱水、透明、封片等步骤。 1.取材应根据要求选取材料来源及部位。采下的标本要注意保湿,冲洗干净后截取大小合适的样品迅速投入固定液中。(注意材料切割形状以便于包埋,尤其植物叶片横纵切面) 2.固定卡诺氏固定液(无水乙醇:冰醋酸=3:1)固定24h,70%酒精保存。固定液的用量通常为材料块的20倍左右,固定时间则根据材料块的大小及松密程度以及固定液的穿透速度而定,可以从1小时至数天,通常为数小时至24小时。 3.洗涤与脱水从50%开始→70%→85%→95%→无水乙醇(30min)(此步骤需两遍),每次时间为1~2h;如不能及时进行各级脱水,材料可以放在70%酒精中保存。脱水乙醇的用量为材料体积的3~5倍。 无水乙醇中要加入不含结晶水的CaCl2 ;用95%的乙醇配制各级脱水乙醇(原浓度95%,要配浓度y%,则取yml95%乙醇加上95-y=?ml蒸馏水即可)。 4.透明经1/2无水乙醇+1/2二甲苯(氯仿)至纯二甲苯(氯仿)两级透明,每级停留2h。在1/2无水乙醇+1/2二甲苯时加入少量番红干粉。 5.浸蜡在浸入有植物材料的透明剂中投入切成小块的低熔点石蜡,加入石蜡的量溶入透明剂的用石蜡溶液=透明剂体积为原则。用浮石蜡(石蜡放入容器中,水浴熔融,取出石蜡,冷却时不断用玻璃棒搅拌,空气进入,冷却后即为浮石蜡)。加蜡后放有材料的有盖容器放入35℃的温箱中6h或更长时间。之后调高温度至56℃,打开盖子让透明剂蒸发,2h后将石蜡溶液倾去。将植物材料移入高熔点的熔融纯石蜡小烧杯中,2~4h再换一次熔融纯石蜡,2~4h即可进行包埋。 6.包埋、切片和粘片 (1)折包埋纸盒; (2)材料包埋:熔融的石蜡到入纸盒中,用在酒精灯上烧热的镊子或解剖针将材料排好(快速,避免石蜡结晶),然后将包埋纸盒放入冷水中冷却凝固。(3)修蜡:每块拉一个材料,双面刀片切开。 (4)粘蜡快:2*2*2.5~3cm的长方形木块,长轴一端刻出网格;木块具网格一端浸入已溶化的废石蜡中,蜡块修成下宽上窄的台体,用烧热的解剖针一面贴

石蜡切片的操作流程

在显微镜下观察植物体内部的细微结构之前,必须根据植物材料的特性,采用不同的方法,对植物材料进行处理,把材料制成透明的玻片标本.根据材料的性质和制作法的不同,常用的植物显微制片技术可以分为切片法与非切片法两大类,前者常用的有徒手切片法,冰冻切片法,火棉胶切片法,石蜡切片法,冷冻切片法等,其中以石蜡切片法最为常用.后者包括整体封藏法,涂布法,压片法等. 石蜡切片法 石蜡切片法是以石蜡作包埋剂,用旋转切片机将材料切成薄片,经一系列处理制成永久制片的方法.在研究植物的细胞,组织,胚胎以及形态等方面石蜡切片法是最理想的制片方法. 石蜡切片法的一般流程为:取材→固定→抽气→洗涤→脱水→透明→浸蜡→包埋→修块→切片→粘片→染色→封片. 取材 用锋利的刀片切取新鲜的植物材料,选定适宜的材料,立即固定. 取材的注意事项如下: (1)取材料要新鲜.动作要迅速,以免挤压损坏组织;取病理材料时,应设置对照材料. (2)所取材料大小要适当:根和茎一般直径≤5mm,切取成5-10mm 小段;叶片一般取过中脉处,切成2-5mm宽,5-8mm长.在切材料时,必须注意刀片与中轴成直角,两切面平行,否则制成的切片细胞是斜的. 雌,雄蕊一般不需分割.

(3)取材时间可根据切片要求有所区别.如:在进行植物发育的研究过程时,需要找到细胞分裂相,一般在晴天的早晨9:00-10:00时取材,此时植物细胞分裂活动较明显. (4)取材不易过老,否则制片有难度(过老的材料须在滑走切片机上进行);对纵切的材料适当多取材,如根尖,茎尖等,因为切到材料正中的概率较低. (二)固定 将已切好的材料尽快地浸入相当于材料10-15倍体积的固定液中.借助固定液的作用,使细胞的新陈代谢瞬时停止,并保持细胞或组织的形态构造及其内含物的状态不发生变化.从而达到使组织变硬从而便于切片,增强内含物的折光度,令细胞易于着色的目的,同时具有防腐作用.以新鲜配制固定液效果较好.固定的时间依材料的种类,性质,大小等而定.材料固定完毕,保存于加盖的容器内,贴上标签. 良好的固定剂,应是穿透力强,使细胞立刻致死,原生质全部凝固;不发生任何变形,增强折光率,并且不妨碍染色. 常用固定液: 简单固定液以一种化学药品配制的固定液. ⑴乙醇为凝固型固定剂.常用无水乙醇或95%乙醇. ⑵甲醛为非凝固性固定剂.具强烈刺激性气味.纯净的甲醛为无色透明液体.固定用的浓度为4%-10%. ⑶醋酸为凝固型固定剂.为无色透明的液体,刺激性极强,低温

冰冻切片与石蜡切片的区别

1.冰冻切片是免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法。其最突出的优点是能够较完好地保存多种抗原的免疫活性,尤其是细胞表面抗原更应采用冰冻切片。新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片。 冰冻时,组织中水份易形成冰晶,往往影响抗原定位。一般认为冰晶少而大时,影响较小,冰晶小而多时,对组织结构损害较大,在含水量较多的组织中上述现象更易发生。冰晶的大小与其生长速率成正比,而与成核率(形成速率)成反比,即冰晶形成的数量愈多则愈小,对组织结构影响愈严重。因此,应尽量降低冰晶的数量。Fish认为冰冻开始时,冰晶成核率较慢,以后逐渐增加,其临界温度为-33。C,从-30。C降至-43。C之间,成核率急剧增加达1018,然后再减慢。基于上述理论可采取以下措施减少冰晶的形成。 (1)速冻,使组织温度骤降,缩短从-33。C43。C的时间,减少冰晶的形成。其方法有二: ①干冰-丙酮(酒精)法:将150-200ml丙酮(酒精)装入小保温杯内,逐渐加入干冰,直至饱和呈粘稠状,再加干冰不再昌泡时,温度可达-70℃C,用一小烧杯(50-100ml)内装异戊烷约50ml,再将烧杯缓慢置入干冰丙酮(纯酒精)饱和液内,至异戊烷温度达-70℃时即可使用。将组织(大小为1cm×0.8cm×0.5cm)投入异戊烷内速冻30-60s后取出,或置恒冷箱内以备切片,或置-80℃低温冰箱内贮存。 ②液氮法:将组织块平放于软塑瓶盖或特制小盒内(直径约2cm),如组织块小可适量加OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内,当盒底部接触液氮时即开始气化沸腾,此时小盒保持原位切勿浸入液氮中,大约10-20s组织即迅速冰结成块。取出组织冰块立即置入-80℃冰箱贮存备用,或置入恒冷箱切片机冰冻切片。 (2)将组织置于20%-30%蔗糖溶液1~3天,利用高渗吸收组织中水分,减少组织含水量。 影响冰冻切片的因素较多,因此,技术难度较大,选择好的冰冻切片机是保证切片质量的关键。目前冰冻切片机有两类: ①恒慢冰冻切片机(Cryastat):为较理想的冰冻切片机,型号很多,但其基本结构是将切片机置于-30℃C低温密闭室内,故切片时不受外界温度和环境影响,可连续切薄片至2-4μm,完全能满足免疫组织化学标记要求。切片时,低温室内温度以-15℃~18℃为宜,温度过低组织易破碎,抗卷板的位置及角度要适当,载玻片附贴组织切片,切勿上下移动。 ②开放式冰冻切片机:包括半导体致冷切片机和甲醇致冷切片以及老式的CO2、氯乙烷等冷冻切片机。切片时暴露空气中,温度不易控制,切片技术难度大,在高温季节,切片更加困难,且切片厚8~15μm,不易连续切片,但其优点是价廉,国内有生产。 冰冻切片后如不染色,必须吹干,贮存低温冰箱内,或进行短暂预固定后贮存冰箱保存。 2.石蜡切片其优点是组织结构保存良好,在病理和回顾性研究中有较大的实用价值,能切连续薄片,组织结构清晰,抗原定位准确。用于免疫组化技术的石蜡切片制备与常规制片略有不同:①脱水、透明等过程应在4℃。C下进行,以尽量减少组织抗原的损失。②组织块大小应限于2cm×1.5cm×0.2cm,使组织充分脱水、透明、浸蜡。③浸蜡、包埋过程中,石蜡应保持在60℃以下,以溶点低的软蜡最好(即低温石蜡包埋)。 组织块脱水、透明、浸蜡时间参考表1-3: 表 1-3 组织块处理时间表 1 70%乙醇4℃ 3~4h 2 80%乙醇 4℃3~4h 3 90%乙醇4℃2~3h 4 95%乙醇Ⅰ4℃ 2~3h 5 95%乙醇Ⅱ4℃ 1~2h 6 100%乙醇Ⅰ4℃ 1.5h

石蜡制片实验报告

篇一:石蜡切片技术实验报告 题目:石蜡切片技术实验报告 学院:农学院,专业:植物学,姓名:张永丰,学号:2011202010 目的 掌握石蜡切片技术,为以后的科研中切出合格的实验装片做准备。并观察植物叶的横切面内部结构。 材料:已经固定好的女贞叶 方法与操作步骤 一、脱水:依次使用下列浓度的乙醇脱水 50%乙醇—70%乙醇—85%乙醇—95%乙醇—100%乙醇—100%乙醇每步两个小时。 二、透明:依次通过下列试剂进行透明 1、1/2无水乙醇1/2二甲苯(加少许番红粉末,对材料进行附染)两个小时 2、二甲苯两个小时 3、二甲苯一个小时 三、浸蜡:浸蜡步骤如下 1、将材料瓶中的二甲苯取出1/2,加入剩余二甲苯的体积3/2倍的石蜡液于36℃温箱中处理35小时 2、换用纯石蜡液于60℃温箱中处理2小时,再换一次纯石蜡液处理2小时 四、包埋与切片 1、在提前准备好的纸盒中放入少量蜡液。 2、片刻后放入材料,避免形成断层还要注意材料摆放的位置和方向。 3、及时将蜡块冷却,防治形成结晶。 4、修块与粘连:将多余的石蜡切除,使蜡块成为梯形;将蜡块一正确的方向粘连在枕木上。 5、切片:利用切片机将蜡块切成薄片。切片厚度为8~10μm,以每分钟40~50转为宜。 6、粘片与展片:在载玻片上滴一滴黏贴剂和一滴蒸馏水用牙签涂匀,将蜡带光面朝下固定于载玻片上,放到展片台上经加温使其充分展开。 7、干燥:将展好的片放于36℃温箱中干燥16小时 五、脱蜡:切片分别经过下列步骤进行脱蜡 二甲苯1/2二甲苯1/2无水乙醇乙醇85%乙醇70%乙醇 5min 六、染色:染色分为番红染色和固绿染色两步 1、番红染色:将载玻片放入盛有番红染液(1%番红,70%乙醇)的染缸中染 色22小时 2、固绿复染:载玻片依次经过一下处理 固绿染液(0.1%固绿,95%乙醇)20秒 3、脱水:95% 1min 100% 1min 100%1min 4、透明:1/2二甲苯1/2无水乙醇 1min 二甲苯 1min 二甲苯 七、封片 中性树胶封片,干燥 八、镜检将封好的装片在显微镜下观察,并挑选清晰的具有叶横切面典型结构特征的部位拍照。 结果与分析 一、结果分析 二、方法分析 1、包埋是材料放置的位置不正确加之材料较大,为切片带来较大困难,以致切片效果不理想。

石蜡切片

石蜡切片 【摘要】石蜡切片组织学常规制片技术中最为广泛应用的方法。石蜡切片不仅用于观察正常细胞组织的形态结构,也是病理学和法医学等 学科用以研究、观察及判断细胞组织的形态变化的主要方法,而且也已 相当广泛地用于其他许多学科领域的研究中。活的细胞或组织多为无色 透明,各种组织间和细胞内各种结构之间均缺乏反差,在一般光镜下不 易清楚区别出;组织离开机体后很快就会死亡和产生组织腐败,失去原 有正常结构,因此,组织要经固定、石蜡包埋、切片及染色等步骤以免 细胞组织死亡,而能清晰辨认其形态结构。 【关键词】石蜡切片、组织固定、染色 石蜡切片的简要过程:石蜡切片法包括致死→取材→水洗→固定→洗涤→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→粘片→染色;染色当然简要过程:脱蜡→复水→水→苏木精→水洗浮色→酸水→水洗→兰化→伊红→脱水→伊红→95%酒精→100%酒精→?(酒精+二甲苯)→二甲苯→封片→干燥等步骤。 (一)石蜡切片流程 一、致死 需根据需要选择致死的方法 二、取材 应根据要求选取材料来源及部位;材料必须新鲜,搁臵时间过久则产生蛋白质分解变性,导致细胞自溶及细菌的滋生,而不能反映组织活体时的形态结构。 三、水洗 将选取的材料用其对应的生理盐水洗净。如洗去血液或者组织表面粘液等等。 四、固定 用适当的化学药液——固定液浸渍切成小块的新鲜材料,迅速凝固或沉淀细胞和组织中的物质成分、终止细胞的一切代谢过程、防止细胞自溶或组织变化,尽可能保持其活体时的结构。固定能使组织硬化,有利于切片的进行,而且也有媒浸作用,有利于组织着色。 五、洗涤 固定后的组织材料需除去留在组织内的固定液及其结晶沉淀,否则会影响以后的染色效果。多数用流水冲洗;使用含有苦味酸的固定液固定的则需用酒精多次浸洗;如果组织经酒精或酒精混合液固定,则不必洗涤,可直接进行脱水。

冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处

冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处是什么 1、从一抗的选择方面来看。有的一抗既能做石蜡切片又能做冰冻切片,而有的一抗只能做冰冻切片,关键取决于所要检测的抗原稳定 性,有的抗原不稳定,经过组织固定,脱水、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等一系列的做石蜡切片的步骤,所检测的抗原易被破坏,这时只能用冰冻切片来做,检测这类抗原的一抗只能做冰冻切片,而那些稳定的抗原,能经受住石蜡切片的的考验,一般来讲也可以用冰冻切片来做,总得来讲,对于既可以用冰冻切片也可以用石蜡切片检测的抗原,用石蜡切片检测的染色效果要比冰冻切片好一些。 2、从研究目的来看。石蜡切片对组织细胞的定位很准确,而长期冻存组织的冰冻切片可能因冰晶的形成破坏组织细胞形态的结构, 并造成抗原的弥散,从而定位不准确。 3、从抗原的保真性来看。冰冻切片对抗原的保真很好,而石蜡切片在组织固定,脱水、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等过程中可能会 对抗原的性质造成影响。 4、从操作步骤的繁琐程度看。染色过程冰冻切片简单,而石蜡切片要求脱蜡入水、抗原修复等过程,比较繁琐。 5、总之,石蜡切片对标本的长期保存较合适,且组织细胞形态结构保持好;而冰冻切片适合对新鲜组织的制片,然后立即固定、 染色效果较好,且免疫荧光中可以相对避免石蜡自发荧光的干扰。 冰冻切片(frozen section)是一种在低温条件下使组织快速冷却到一定硬度,然后进行切片的方法。因其制作过程较石蜡切片快捷、简便,而多应用于手术中的快速病理诊断。冰冻切片的种类较多,有低温恒冷箱冰冻切片法,二氧化碳冰冻切片法,甲醇循环制冷冰冻切片法等。这些方法,随着时代的变迁,科技的发展,许多年前被认为是非常重要的技术,现在也逐步被淘汰了。当然有些技术,如低温恒冷箱冰冻切片法,正在受到青睐。 编辑本段冰冻切片的应用 (1)在手术进行中,突然发现病人的病变与原诊断,原定手术方案不相符合,或者怀疑时,需要病理确定。 (2)了解淋巴结内是否有转移的肿瘤细胞,或者转移的程度,以利于确定是否需要彻底扫除淋巴结或者其它的治疗措施。 (3)对于已确定为恶性肿瘤的患者,则需要了解其手术范围是否足够,上下切缘是否有残存的肿瘤组织。 (4)在做剖腹探查时所发现的肿块或者异样的组织。 (5)显示组织中的脂肪和脂类物质,这常见于某些病例如脂肪瘤及肉瘤,某些科研组织等。 (6)某些酶的显示如ATP酶,琥珀酸脱氢酶等。

HE石蜡切片步骤-使用

石蜡切片制作 一、苏木精-伊红对染法 ——paraffin section 一、器材及试剂: 1. 器材: 切片刀,切片机,恒温箱,蜡杯,酒精灯,解剖刀,解剖剪,解剖盘,培养皿,镊子,单面刀片,毛笔,包埋盒,染色缸,盖玻片,载玻片,玻片盘,树胶,树胶瓶,显微镜,温度计,脸盆,水浴锅。 切片机,切片刀,温台,恒温箱,解剖刀,镊子,剪刀,解剖针,单面刀片,小台木,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,烧杯,水盆,熔蜡炉,蜡杯。 2.试剂: 中性福尔马林固定液、各种浓度的酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、苏木精染液, 1%伊红酒精溶液,1%盐酸酒精溶液,甘油蛋白粘片剂,中性树胶。 卡诺(Carnoy)固定液,埃利希苏木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸乙醇液,各级酒精(30%、50%、70%、80%、90%、95%、100%),二甲苯,甘油蛋白粘片剂,中性树胶。 3. 材料: 鼠肝、肾、心肌、骨骼肌或其他组织、大豆或小麦、绿豆、洋葱、大蒜、蚕豆的根、茎、叶等。 二、实验原理: 石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。苏木素与伊红对比染色法(简称H.E.对染法)是组织切片最常用的染色方法。这种方法适用范围广泛,对组织细胞的各种成分都可着色,便于全面观察组织构造,而且适用于各种固定液固定的材料,染色后不易褪色可长期保存。经过HE染色,细胞核被苏木素染成蓝紫色,细胞质被伊红染色呈粉红色。 三、试剂配法: 1.中性甲醛固定液: 甲醛(37%-40%,市售,本所购买即为此浓度) 100mL 磷酸氢二钠 6.5

磷酸二氢钾(钠) 4g 双蒸水 900mL 2.苏木精、伊红染色液为碧云天产品 3.1%盐酸乙醇液 盐酸 1份 70%酒精 100份 4.甘油蛋白贴片剂: 蛋白 50 ml 甘油 50 ml 水杨酸钠(防腐剂) 1g 配制时将鸡蛋一个打破入碗或杯中,去蛋黄留下蛋白,用玻棒调打成雪花状 泡沫,然后用粗纸或双层纱布过滤到量筒中,经数小时或一夜,即可滤出透明蛋 白液。此时在其中再加等量的甘油,稍稍振摇使两者混合。最后加入防腐剂(水 杨酸钠)作防腐用。可保存几个月。 四、实验步骤: 1.取材 颈椎脱臼法处死小鼠,打开腹腔,剪取肝组织(或其他组织)。 切取的组织块不宜太大,以利于固定剂穿透,通常以5mm×5mm×2mm或10 mm×10 mm×2 mm为宜。取下所需要的肝组织,切成一小块2-3mm厚。 注意事项: (1)取材动作要迅速,不宜作太久的拖延以免组织细胞的成分、结构等发生变化。 (2)切片材料应根据需要观察的部位进行选择,尽可能不要损伤所需要的部分。 2.固定 将切好的肝组织用生理盐水组织洗一下,立即投入中性福尔马林固定液中 固定,固定30-50min。 注意事项: (1)一般固定液,都以新配为好,配好后应贮存在阴凉处,不宜放在日光下,以免引起化 学变化,失去固定作用。 (2)有些混合固定液的成份之间会发生氧化还原作用,一定要在使用前才混合,如果混合 太早,固定时就没有作用了。

石蜡制片法

石蜡制片法(用于免疫组织化学,HE染色) 发布日期:2008-10-27 热门指数:6172 收藏 石蜡制片法是将材料经固定、脱水、透明、浸蜡后包埋在石蜡里面进行切片的方法。此法适用范围,制片手段完备,能将材料切成极薄的片子(可切至2-8微米左右),并能制成连续的片子,这是其它制片法难以达到的,因此在光学显微镜的制片技术上它是最常用的一种方法。除了一些经不住石蜡切片法中所应用的各种药剂处理的材料不能应用石蜡切片以外,一般的材料都可以用此法制片,但有制作时间较长,操作过程复杂以及材料易发硬或发脆等缺点。该法多采用旋转式切片机进行切片。 石蜡制片操作程序如下: (一)材料的采集与分割 采集材料应根据制片的目的和要求而定,材料要有代表性,无病虫害或其它损伤,如要观察病理解剖,则要取病斑、病症部位。采下的材料应立即放在标本箱或湿布包起来带回实验室进行分割固定(如有条件也可在试验地采集后进行分割固定)。为使固定液能迅速的渗透材料,材料要进行分割。分割时动作要迅速,以防材料萎蔫。分割块的大小,宜小不宜大,一般不超过1cm3,分割后立即杀死固定。 (二)杀死与固定 利用药剂迅速把细胞杀死,以保持材料本来的状态和结构。 常用的固定有F.A.A固定液、卡诺固定液等。将固定液放在具塞小瓶中,投入材料,盖好瓶盖。用F.A.A 固定液固定,时间至少24小时。F.A.A固定液既是良好的固定剂,也是保存剂,因此材料可长期保存在固定液中备用。卡诺固定液穿透力强,固定较小材料一般1~6小时即可,最多不超过24小时。因卡诺固定液不能做保存剂,所以固定后要用95%、85%酒精浸洗,每级约20min.,然后保存在70%的酒精中备用。 (三)脱水 脱水的目的是除去组织中的水分,便于透明、浸蜡、包埋等步骤的进行,因为这些程序中所用的药品都不能与水混合,所以必须脱水。常用的脱水剂为酒精。脱水过程应缓慢进行,不能操之过急或时间过长,以免组织变硬变脆或发生收缩现象。脱水采用等级脱水(系列脱水),即从较低浓度酒精开始,逐渐替换到高浓度酒精。一般为:50%→70%→80%→95%(此时可加少许番红,使组织着色便于包埋时定位)→无水酒精(两次),每级停留时间2~4小时或更长(无水酒精中时间宜短)。 用95%酒精配制各浓度酒精的方法:设原有酒精浓度为A,所需配制酒精浓度为B,则取Bml原有酒精,加上A-Bml蒸馏水,即可获得Aml的B%的究竟。例如:95%酒精配成70%的酒精,则取70ml的95%酒精,加上25ml蒸馏水,则配成了95ml的70%的酒精。 (四)透明 透明的目的是将脱水剂从材料中除去,使材料透明,增记折光系数;同时便于下步的浸蜡和包埋等程序(因

石蜡制片技术

石蜡制片技术[自己整理] 石蜡制片又叫永久制片,是观察植物组织构造常用的制片方法之一。其优点主要是适合各种植物组织的制片,切片的厚薄易于控制(最薄可达0.5微米),清晰度很好,亦适合作细胞学研究,并能够制成连续切片,制片易于长久保存,易于交流等。但制片周期较长,易受条件限制,制片中使用化学试剂较多,对人有一定毒害,易使材料变脆、变硬或变形,某些内含物易于消失,常使组织变小,甚至使组织扭转变形,细胞所含物质缩小而折光性增强,影响观察正确性,且制片成本较高等。虽然这样,但是石蜡制片仍不失为一种很好的制片方法,被人们常采用。 现将主要的基础理论和技术方法介绍如下:首先要明确,在这种条件下,植物的组织或部位不能直接用来切片,首先要按照该方法的要求,将材料进行程序化处理,终究要让所起填充作用的石蜡进入到材料的细胞中,然后带石蜡在切片机上进行切片,再染色、封藏。这样的程序中,中间过程是十分复杂的,往往随材料的不同,而方法有所不同,在实际工作中要不断地摸索,不断地总结,只有这样,才有可能做出好的片子。 选择切片材料是全部切片工作的第一步,如果选择的材料不适当或有错误,以后的工作将是没有意义的。选择材料时要注意具有代表性,植物的器官或器官的某一部位,其组织构造往往能够代表整个器官的基本情况,但不同部位,即便是同一器官,其组织构造,亦有一定的过渡差异,通常在选择材料时,要注意选择器官靠中间的部位作为试验材料,当然如果是作生长发育观察,则另当别论。因此选好试验材料,对于整个实验至关重要。 当选择好材料后,实验的主要过程有以下步骤: 材料的固定或软化——冲洗——脱水——透明——浸蜡——包埋——切片——贴片——烘片——脱蜡——二重染色——封片 ⒉制片程序简介: 1)材料的固定或软化:最好用新鲜的固定材料(新鲜材料要迅速杀死植物细胞,最大程度保持组织和细胞的自然状态,这就是所说的杀死和固定)。干材料可先行软化(常用温水浸泡,勤换水,勿使材料腐烂)。一种固定液兼有杀死和固定双重作用,固定液能否迅速渗透于组织中,既与固定液本身的穿透能力有关,也因组织的致密程度有关,因此要根据材料的情况选择固定液,一般的固定液中,FAA固定液的作用较快(叶类材料至少4小时,或8-24小时、木类材料3天-一周),而含有铬酸的固定液作用较慢(叶类材料至少8小时,木类材料一周以上,期间最好更换一项固定液)。组织细胞的杀死和固定是同时发生的。所谓杀死是指在很短的时间内终止细胞的生命力;固定是指在杀死的同时,保存了组织细胞的构造基本上没有改变,其目的有一下几点:①防止组织细胞中细菌和酶的活动而引起霉烂。②减少组织细胞在以后程序中的收缩和变形。③植物细胞在生活状态下,有些结构模糊不清,经固定使各部分结构清晰可辨。④经过固定的材料,组织细胞容易着色。 2)注:冲洗:若为固定的材料,制片前用流水冲洗直至固定液被彻底置换干净。水溶性固定液要用水洗,特别是含有铬酸的固定液应用流水冲洗,醇溶性固定液,应以固定液中酒精浓度相等或相近的酒精洗涤。流水冲洗时以慢速流水进行冲洗,切忌流速太快使材料上下翻飞而使材料损坏;用酒精混合固定液固定的材料,用同浓度的酒精溶液更换洗涤;固定液中含有苦味酸,无论它是水溶性还是酒精溶液,一定要用酒精溶液洗涤;含有铬酸或其它金属离子的材料可流水冲洗4-24小时,以彻底清除金属离子。 3)脱水:经过冲洗或软化的材料,因组织内含有大量的水分,在以下的步骤中会有干扰,故须将水脱干净。通常预先配制好从10%—100%的梯度酒精溶液,在一定时间范围内逐级置换(注:梯度、时间要视材料的性质而定,不能一概而论),直至到达100%的酒精两次。注:梯度酒精脱水时间可按材料的大小、质地情况而定,如较幼嫩的根及根茎、茎、叶等材料,在70%一下浓度的酒精,一般2小时更换一次,70%以上的酒精约在4小时以上更换一次。

石蜡切片的具体步骤与做法

石蜡切片的具体步骤与做法? 石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法,因此用得最多,它有很多优点:比较省时间,容易操作,可切成极薄的切片(4um以下),能制作连续切片,组织块可包埋在石蜡中永久保存。缺点是只能用于较小的组织块,较大的组织块不易切好,容易破碎,组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆。制片时间太长。 石蜡切片的制作过程 (一)材料与用具 1.材料:鱼皮肤、性腺、肠、肝胰脏等。 2.用具:溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。 (二)实验内容与步骤 1.取材及固定 取动物体上的小块组织成为组织块。组织块的大小以不超过0.5立方厘米为宜。切去组织块时动作要轻,切忌用力牵引或挟持,以免组织内部发生变化。 组织块取下后,先用先用0.85%的生理盐水漂洗以戏曲血液与污渍,如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净,可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次,使其管腔冲洗干净,切忌不可用刀或其他器具刮之。由动物身上切取的组织必须是新鲜的,材料越新鲜越好,一般不应超过死后24小时。如果是管状器官或是其中有分泌之消化液,则死后应迅速采取,以免组织自溶或上皮剥落。 材料由动物体取下后应当迅速固定,固定的目的是尽快使固定液渗入组织内部,将组织固定,以保持其原有的结构。不同的组织应选用适当的固定液。固定液的用量与组织块体积之比一般在20:1。不应使组织块贴于容器壁上,应记录固定液的名称,材料的种类,动物品种及开始固定的时间。 2.冲洗 固定后的组织块在进行脱水前必须用流水洗去固定液。组织块应用纱布包好,注名,放金属水洗网中用流水冲洗,甲醛固定液固定的组织一般水洗24小时,Bouins固定液固定的组织水洗24小时。AFA固定液则不需要水洗。 3.脱水和硬化 经过固定后的组织在水洗后要进行脱水,脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来,使组织逐渐变硬,便于油类或其他透明及浸入,为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。 常用的脱水剂是不同浓度的酒精,因为酒精与水有很大的亲和力,酒精浓度可以逐渐升高,置换出组织中的水。脱水必须充分,脱水不充分会影响透明和浸蜡。脱水过程要逐级上升,不能操之过急,跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。 脱水所用的酒精浓度及过程如下: 30%—→50%—→70%—→80%—→90%—→95%—→100%(Ⅰ)—→100%(Ⅱ) 组织块在各级较低浓酒精(小于70%)中脱水的时间应视组织块的大小而定,大小不超过0.5立方厘米的组织块脱水时间为6~12小时,在高浓度酒精中(大于70%)脱水时间为3小时左右。组织块在无水酒精中需经过两次处理,以保证脱净水分。由于无水酒精有使组织变脆的缺点,故在无水酒精中脱水的时间不宜过长,一般应在15~30分钟左右。在脱水瓶中酒精的量与组织块之比约为50:1。 简化步骤如下: 70%(一夜)——80%(1小时)——90%(30分)——95%(30分)——100%(15分)——酒精+ 二甲苯(15分)——二甲苯(3分)——石蜡+ 二甲苯(30分)——石蜡(80分)

石蜡切片具体过程及操作步骤精心整理

石蜡切片具体过程及操作步骤 固定: 组织块大小:1.5×1.5×0.2 CM 固定液>4倍组织体积 福尔马林固定 市售为40%甲醛水溶液,应放入小量碳酸钠放置一段时间 福尔马林固定液:40%甲醛溶液1份,水9份 固定数小时后用水洗24小时 优点:克服了乙醇固定的缺点 脱水(组织块) 70%乙醇片刻 80%乙醇2-4小时 95%乙醇2-4小时 95%乙醇2-4小时 100%乙醇2-4小时 100%乙醇2-4小时 注:为保证100%乙醇无水,可在容器中放入无水硫酸铜吸收水分,变蓝后更换。 最好能将100%乙醇中取出来的组织浸入香柏油后再经二甲苯后浸石蜡。 透明(组织块) 100%乙醇:二甲苯(1:1)15分钟 二甲苯15分钟 二甲苯15分钟 注意:时间太长变脆 浸蜡(组织块) 石蜡熔点52—56℃ 温箱:56℃ 二甲苯:石蜡(1:1)1-2小时 石蜡1-2小时 石蜡1-2小时 包埋 将熔化了的石蜡倾入包埋框内,随即迅速将组织块用加温了的镊子送置于框内,平置底面。注意组织切面,放入冷水,冷固后将蜡块修齐,固定于木块上。 石蜡切片 切片机:调整好。 刀:磨刀时一个方向,液体石蜡。 切下的片子,右手用弯镊子轻轻钳牢石蜡切片,左手用干燥毛笔将切片取下,放入盛温水(约

30℃)的玻璃皿内,将切片摊于温水面上,光亮的切面向下,用弯镊子细心张开皱纹。然后将水温加到40℃,使切片更平均地展开于水面上,再用弯镊子细心分开各蜡片,将涂过少许蛋白甘油的载玻片沉至切片下面,然后将切片从水面取出。最后将切片置于56℃保温箱内烘干,需时2小时。 刀的倾角:20—30° 冬天石蜡52-54℃,夏天56-58℃ HE染色法 石蜡切片 Ⅰ二甲苯2-5分钟(冬季56℃温箱) Ⅱ二甲苯2-5分钟(冬季56℃温箱) 100%乙醇1min 95%乙醇1min 80%乙醇1min 70%乙醇1min 先用自来水而后用蒸馏水洗0.5min Harris氏苏木紫液5min。苏木紫为盐基性染料可染细胞核。在冬季可预先放入保温箱内,使染剂保持在30℃左右,如此染5min即已足够。染色时间与气候和染液的浓度都有密切关系,须灵活掌握。 自来水洗2秒钟。 用1%酸性酒精(1mLHCl和99mL70%酒精混合液)分化5秒钟。 用自来水洗少许时候,而后入饱和碳酸锂水溶液中,使切片变蓝色,共需时约10秒钟。(此步后须用镜检细胞核是否适当,如细胞核过淡,可用自来水和蒸馏水洗一下,再用苏木紫重染,如细胞核过深,可用水洗一下,再在酸酒精中分化一下,其余步骤与上相同。此步骤镜检很重要,不可忽视。) 充分流动自来水冲洗2-10min,冲洗时间愈久,分化愈清楚(但不要超过12小时)。而后入80%酒精中1分钟。 入0.5%伊红酒精溶液中1-2min(伊红为酸性染色剂,可染细胞浆,100mL溶液中加入1-2滴冰醋酸,冰醋酸为促染剂,使伊红容易着色,经酒精是不易脱色)。 经Ⅰ95%乙醇脱水2min 经Ⅱ95%乙醇脱水2min 经Ⅰ100%乙醇脱水1min 经Ⅱ100%乙醇脱水1min 浸入石炭酸二甲苯混合液(1:3)透明和吸水5min。 再经Ⅰ二甲苯1min洗净石炭酸,并使其更为透明。 再经Ⅱ二甲苯1min,切片自二甲苯中取出,用干纱布揩净切片以外的二甲苯,立刻滴上一小滴加拿大树胶液,并迅速用镊子取洁净盖玻片盖上(勿留气泡)。 结果:细胞核呈蓝紫色,细胞浆呈红色。 Harris氏苏木紫染色液配制法 甲液:苏木紫1g 100%乙醇10mL (可稍加热使苏木紫溶解于酒精中)

石蜡切片技术

一、目的要求:简要介绍石蜡切片的制作和苏木精、曙红染色法(简称H E染色法),借以了解石蜡切片 制作的基本原理和一般方法。二、实验用具:解剖器一套、单面刀片、切片刀、切片机、载玻片、盖玻片、标本瓶、烧杯、量筒、漏斗、染色缸、树胶瓶、酒精灯、毛笔、绘图纸、滤纸、熔蜡箱(或恒温箱)、… 二、一、目的要求:简要介绍石蜡切片的制作和苏木精、曙红染色法(简称H.E染色 法), 借以了解石蜡切片制作的基本原理和一般方法。 二、实验用具:解剖器一套、单面刀片、切片刀、切片机、载玻片、盖玻片、标本瓶、 烧杯、量筒、漏斗、染色缸、树胶瓶、酒精灯、毛笔、绘图纸、滤纸、熔蜡箱(或恒温箱)、展片台(或烫板)、小木块、蜡带盒、烤片盒、切片托盘。 三、实验材料:蛙或小白鼠。 四、实验内容: (一)药品: 1、70%、80%、90%、95%酒精及无水酒精: 95%以下的各级浓度酒精是用95%酒精加蒸馏水稀释而成。简单的稀释方法:所需稀释的浓度是多少,就量取多少毫升原浓度的酒精,再加蒸馏水至该酒精的原浓度即可。例如,配制70%酒精,就量取70ml95%酒精,然后加入25ml蒸馏水即成。 2、固定液: 常用的固定液有10%福尔马林、Bouin氏液和Zenker氏液等。Bouin氏液在组织学切片技术方面应用甚广,配方如下: 苦味酸饱和水溶液75ml 福尔马林25ml 冰醋酸5ml 3、蛋白甘油: 蛋白甘油是粘贴蜡片用的粘片剂。配方如下:取一新鲜鸡蛋的蛋白,充分搅拌成雪花状泡沫,然后滤去泡沫,加入等量甘油,搅拌均匀,再加入一小粒麝香草酚防腐。 4、染色液: 以H.E.染色法为例,需配制苏木精染液和曙红染液。 ⑴、苏木精染液:苏木精是一种碱性染料,它可将染色质染成蓝紫色。配方有多种,现 介绍Harris氏苏木精的配制: 甲液:苏木精0.5 g 95%酒精5.0 ml 乙液:硫酸铝钾(或硫酸铝铵)10g 蒸馏水100 ml 氧化汞0.25g 冰醋酸几滴 先将甲液溶解,再将硫酸铝钾溶于蒸馏水中,并加热使溶解,然后将两液混合煮沸,离开火焰后缓缓加入氧化汞。冷却后过滤,加入几滴冰醋酸即成。 ⑵、0.5%曙红酒精溶液:即0.5g曙红溶于100ml95%酒精中。曙红是一种酸

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