生理学实验报告-蛙心灌流
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3、 【实验仪器】 青蛙、 常用手术器械、蛙板(或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力 传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧 杯)、纱布、棉线、橡皮泥、任氏液。蛙心套管(斯氏套管或八木氏套 管)、套管夹、0.65%NaCl、5%NaCI、2%CaCl2、1%KCl、1:5 000 肾上腺素、1:10 000乙酰肌碱、300U/mL肝素。
3. 各种离子成分改变蛙心收缩的原理是什么?
答:由于心肌细胞生物电活动和收缩过程与离子密切相关,因此,
当液面过高时。心缩曲线幅度将降低。因为过高的液面,将使心室 前负荷超过了最适前负荷,将导致粗细肌丝过于疏远,而导致收缩的潜 力减少,心肌收缩不再增加或下降。而类似的,过高的后负荷,也使心 肌收缩的幅度和速度大大下降。而当液面过低时,心室收缩的幅度也会 减少。因为前负荷过小,将导致粗细肌丝过于接近,而导致收缩的潜力 减少,实际上,此时由于前负荷的减少导致心室收缩的效力的减少比前 负荷增加而导致的还有明显。类似的,后负荷相应的减少也会导致心室 收缩的减弱。所以,在实验中保持最适的液面高度。是取得较好实验结 果的前提。
7、 滴加1:10000乙酰胆碱溶液
分析:上图可示,蛙心收缩减弱,心率减慢,最后出现蛙心停止舒 张阶段。其机理为:乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合,一方面提高心 肌细胞膜K+通道的通透性,促使K+外流,将引起:1)窦房强细胞复极 时K+外流增多,最大复极电位绝对值增大;Ik衰减过程减弱,自动除极 速度减慢。这两方面因素导致窦房自律性降低,心率减慢。2)复极过 程中K+外流增加,动作电位2、3期缩短,Ca2+进入细胞内减少,使心肌 收缩减弱;另一方面乙酰胆碱可直接抑制Ca2+通道,减少Ca2+内流,进 而使心肌收缩减弱。
5. 实验中及时用任氏液冲洗心脏,待曲线恢复平稳后再进行下一步操 作。
6. 每次更换任氏液都必须保持灌流液液面高度恒定,以免因灌流量变化 而影响结果。
7. 严格控制每次药品加入量,先加一滴,效果不明显再加一滴。 8. 滴加药品和换取正常任氏液,须及时标记,以便观察分析。 9. 吸滴瓶中的任氏液和吸蛙心套管内溶液的吸管应区分专用,不可混淆 使用,以免影响实验结果。
待曲线 氏插管装置出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时 做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2—3次,待心搏恢复正常。注意: 换液时切勿碰套管,以免影响描记曲线的基线,同时保持灌流液面一致 (以下同)。 观察可得,NaCI溶液会阻遏心脏搏动。
(3)向套管内加2~6滴5%NaCI(较细的套管需少加)溶液,作好加药 记号,观察心搏曲线的频率及振幅变化。当曲线出现明显变化时,应立 即吸去套管中的灌流液,并做好冲洗标※记,迅速用新鲜任氏液清洗2 ~3次,待心搏恢复正常。
但是有时候蛙心插管内液面波动不明显,其主要原因是: ⑴ 插管内尖端出现血凝块。插管内液体不能顺畅的进出心室腔 内。解决方法为用长吸管将血凝块吸出,在吸出血凝块后,应立即用新 鲜任氏液换洗插管内液体几次,直至蛙心颜色变淡,插管内无血液和小 血块为止。 ⑵ 插管尖端不在心室腔内,而是在心房或者脉间结缔组织等地 方。解决方法为将插管重新插入心室,确定无误后,再结扎固定。 ⑶ 插管进入心室腔内过深,以致尖端抵住了心室壁。解决方法为 将插管稍稍外提,使插管口正好处于心室腔内,且开口正对着液体喷射 的轴流方向。 ⑷ 蛙心由于长期心肌失血,导致活力下降。解决方法为向插管内 滴加少许肾上腺素或者对其进行外加力使其起搏,使其活动增强。 ⑸ 房室传导阻滞。在插管的操作中,由于操作失误,对心脏造成 的损害过大,最后导致房室传导阻滞。由于这种伤害是不可逆转的,所 以必须改换蛙心重做实验。
表一:各测量结果比较 表 1改变灌流成分对蛙离体心脏活动的影响
实验项目
心率/ (次/min)
振幅/g
基线变化 (上移或下
移)
对照
52
1.47
0.65% 给药
51
1.47
其他 心收缩力减弱
恢复
52
对照
52
5% 给药
51
恢复
62
对照
49
2% 给药
49
恢复
50
对照
52
1% 给药
59
恢复
58
1︰ 对照
51
2. 实验过程中,为什么必须保持蛙心插管内液面高度的恒定?液 面过高或过低会产生怎样的影响?
答:在实验过程中,蛙心插管内液面高度发生变化,心脏收缩曲线
会相应发生变化。心肌缩短幅度和速度受到前负荷和后负荷的影响。插 管液面高度所产生的压力,在心室舒张期末期相当于心肌的前负荷,心 室开始收缩的时候,此液体所产生的压力又成为心肌收缩时的后负荷。 故高度的改变,进而引起的前后负荷的改变将改变心肌收缩的幅度和频 率。
(4)同法向套管内加入1~3滴2%CaCI:溶液,观察并记录心搏曲线 的变化。当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常(如果 恢复迟缓,可多次冲洗)。
(5)向套管中加1—2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线的变化。当心搏
曲线变化时,同法更换灌流液,待心搏恢复正常。 (6)同法记录套管中加入l~2滴的肾上腺素溶液(1:10 000)后心搏曲
4、 【方法与步骤】 1、斯氏蛙心插管法
(1)一只青蛙,双毁髓后背位置于蜡盘中,按前面的方法暴露心 脏。仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线,于 动脉圆锥处结扎(动物个体小时,结扎位置可靠上些)。再从左右两主动 脉下方穿一线,并打一活结备用。左手提起主动脉上的结扎线,右手用 眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。选择大小适宜 的蛙心套管,然后将盛有少量(套管内2~3 cm高度)任氏液(内加入一滴 肝素溶液)的斯氏蛙心套管,山开口处插入动脉圆锥(见右图)。当套管尖 端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部 后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插 入,但不可插得过深,以免心室壁堵住套管下口)。此时可见套管中血 液冲人套管,并使液面随心脏搏动而亡下移动,表明操作成功(否则需 退回并重新插入)。用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。稳定 住套管后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎 紧(不得漏液),再将结线固定在套管的小玻璃钩上,然后剪断结扎线上 方的血管。轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置,于静脉窦下方剪 断有牵连的组织,仅保留静脉窦与心脏的联系,使心脏离体(切勿损伤 静脉窦)。用任氏液反复冲洗心室内余血,使套管内灌流液不再有残留 血液。保持套管内液面高度一致(1.5~2 cm),即可进行实验。
3、 滴加5%NaCl溶液
分析:由于细胞外液中钠浓度差梯度的变化一般对心肌活动影响不 明显。因此上图的心率变化与图2滴加0.65%NaCl溶液里变化并不是很 大,两个不同浓度的相同溶液作用机理是一样的,在此一不作过多相同 分析。但如果实验中滴加溶液顺序不一样,若先滴加5%NaCl.再滴加 0.65%NaCl溶液,所得的心搏变化就不如图3那样明显了,收缩力仅出现 很微弱的变化。
5、 滴加1%KCl溶液
分析:滴加1%后的心搏曲线发现,曲线的频率逐渐减小,愈来愈 疏,幅度逐渐下降,最后停止在基线处,即心脏停博于舒张状态。因为 当细胞K+浓度增高时,K+与Ca2+有竞争性拮抗作用,K+抑制细胞膜对 Ca2+的转运,使进入细胞内Ca2+减少,心肌的兴奋—收缩偶联过程减 弱,心肌收缩力降低。所以心搏曲线振幅减小。
实验名称: 蛙类离体心脏灌流
课程名称: 生理学实验 指导教师: 龙天澄 张碧鱼 陈笑霞 实 验 人: 叶永锋 08344031 学 院 : 海洋学院 实验时间: 2009年12月09日离体蛙心灌流法。 2、了解心肌的生理特性。 3、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh)等对离体心脏活 动的影响。
(2)将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖 部肌肉 (不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液)。再将蛙心夹上的系线 绕过一个滑轮与张力传感器相连(如右图)。注意:勿使灌流液滴到传 感器上。调节显示器上心脏收缩曲线的幅度适中。
2、 实验观察 (1)记录正常心搏曲线 (2)改用0.65%NaCI溶液灌流,并作好加药标记,观察心搏变化。
4、 滴加2%CaCl溶液
分析:细胞外Ca2+在细胞膜上对Na+内流有竞争性抑制作用,称
为膜屏障作用。[Ca2+] 0增高时,Na+内流受抑制,细胞0期除极速度 与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低。[Ca2+] 0增高使Ca2+内流增 多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞 平台期缩短,有效不应期缩短,复极加速。Ca2+内流增多,使心肌收 缩能力增强。[Ca2+] 0降低时,所引起的变化与高钙时相反。因此加入 CaCl2后,心率减少、振幅减少,基线上移。
10000肾 给药
51
上腺素 恢复
55
1︰ 对照
46
10000乙 给药
0
酰胆碱 恢复
52
1.8 1.8 2.82 2.6 1.65
2.16
1.94 2.27 1.91 2.05 1.83 2.64 2.67 1.06 1.06 0.77
上移
心收缩力减弱
上移 上移
收缩力没有明 显增大,但基 线上移明显
【思考题】
1. 离体蛙心制备好后,有时候馆内的液面上下移动很不明显,是 何原因?如何处理?
答:离体蛙心制备好后,蛙心插管内的液体应随蛙心室的收缩和舒 张活动而上下移动。其实质是:在心室收缩时,心室容积减少,室内压 升高,将心室内的液体压入插管内,管内液面上升;在心室舒张的时 候,心室容积增大,心室内压减少,将插管内液体吸入心室,管内液面 下降。
稍上移 心收缩力减弱
心收缩力增强
上移
心收缩力减弱
6、 【注意事项】 1. 制备蛙心标本时,勿伤及静脉窦。 2 .上述各实验项目,一旦出现作用应立即用正常任氏液换洗,以免心肌 受损,而且必须待心搏恢复正常后方能进行下一步实验。
3. 复习心肌生物电的产生机制及各种离子对心脏活动的影响。 4. 尽量选用健壮、体大的雄性蟾蜍,手术过程中注意保护心脏,避免损 伤。
6、 滴加1:10000肾上腺素溶液
分析:滴加肾上腺素后,蛙心收缩增强,心脏舒张完全,描记的心 搏曲线幅度明显增大。其作用机理是,肾上腺素可与心肌细胞膜上的B 受体结合,提高心肌细胞和肌浆网膜Ca2+通透性,导致肌浆中Ca2+浓度 增高,使心肌收缩增强。另外,肾上腺素还有降低肌钙蛋白与Ca2+亲和 力,促使肌钙蛋白对Ca2+的释放速率增加,提高肌浆网膜摄取Ca2+的速 度,刺激Na+与Ca2+交换,使复极期向细胞外排出Ca2+的作用加速,这 样,将使心肌舒张速度增快,整个舒张过程明显增强。
二、【原理】
将离体蛙心(失去神经支配的蛙心)保持在适宜的环境中,在一定 的时间内仍然能够保持节律性收缩,心脏正常的节律性活动需要一个适 宜的理化环境,离体心脏也是如此,离体心脏脱离了机体的神经支配和 全身体液因素的直接影响,可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对 心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性,都与 钠、钾及钙等离子有关。血钾浓度过高时(高于7.9mmol/L),心脏兴 奋性、自律性、传导性及收缩性都下降,表现为收缩力减弱、心动过缓 和传导阻滞,严重时心脏可停搏于舒张期。血钙浓度升高时,心脏收缩 力增强,过高可使心室停搏于收缩期。血钙浓度降低,心肌收缩力减 弱。血中钠离子浓度的轻微变化,对心肌影响不明显,只有发生明显变 化时,才会影响心肌的生理特性。肾上腺素可使心率加快、传导加快及 心肌收缩力增强,乙酰胆碱则与肾上腺素的作用相反。
线的变化。 (7)同法记录套管中加入1—2滴乙酰胆碱溶液(1:10 000)后心搏曲线
的变化。 3、实验结果与分析
将记录到的各段心搏曲线附在实验报告中,计算给药前后曲线的频 率、振幅和基线变化。测量结果填入表中。
5、 【实验结果】 1、正常博击曲线图
2、滴加0.65%NaCl溶液图
分析:滴加0.65%NaCl溶液后,心跳减弱,这是由于用0.65%NaCl溶 液灌注蛙心时,由于灌注液中缺乏Ca2+,以致心肌细胞动作电位2期内 流Ca2+减少,细胞质Ca2+浓度减少,心肌的收缩活动也随之减弱。
3. 各种离子成分改变蛙心收缩的原理是什么?
答:由于心肌细胞生物电活动和收缩过程与离子密切相关,因此,
当液面过高时。心缩曲线幅度将降低。因为过高的液面,将使心室 前负荷超过了最适前负荷,将导致粗细肌丝过于疏远,而导致收缩的潜 力减少,心肌收缩不再增加或下降。而类似的,过高的后负荷,也使心 肌收缩的幅度和速度大大下降。而当液面过低时,心室收缩的幅度也会 减少。因为前负荷过小,将导致粗细肌丝过于接近,而导致收缩的潜力 减少,实际上,此时由于前负荷的减少导致心室收缩的效力的减少比前 负荷增加而导致的还有明显。类似的,后负荷相应的减少也会导致心室 收缩的减弱。所以,在实验中保持最适的液面高度。是取得较好实验结 果的前提。
7、 滴加1:10000乙酰胆碱溶液
分析:上图可示,蛙心收缩减弱,心率减慢,最后出现蛙心停止舒 张阶段。其机理为:乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合,一方面提高心 肌细胞膜K+通道的通透性,促使K+外流,将引起:1)窦房强细胞复极 时K+外流增多,最大复极电位绝对值增大;Ik衰减过程减弱,自动除极 速度减慢。这两方面因素导致窦房自律性降低,心率减慢。2)复极过 程中K+外流增加,动作电位2、3期缩短,Ca2+进入细胞内减少,使心肌 收缩减弱;另一方面乙酰胆碱可直接抑制Ca2+通道,减少Ca2+内流,进 而使心肌收缩减弱。
5. 实验中及时用任氏液冲洗心脏,待曲线恢复平稳后再进行下一步操 作。
6. 每次更换任氏液都必须保持灌流液液面高度恒定,以免因灌流量变化 而影响结果。
7. 严格控制每次药品加入量,先加一滴,效果不明显再加一滴。 8. 滴加药品和换取正常任氏液,须及时标记,以便观察分析。 9. 吸滴瓶中的任氏液和吸蛙心套管内溶液的吸管应区分专用,不可混淆 使用,以免影响实验结果。
待曲线 氏插管装置出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时 做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2—3次,待心搏恢复正常。注意: 换液时切勿碰套管,以免影响描记曲线的基线,同时保持灌流液面一致 (以下同)。 观察可得,NaCI溶液会阻遏心脏搏动。
(3)向套管内加2~6滴5%NaCI(较细的套管需少加)溶液,作好加药 记号,观察心搏曲线的频率及振幅变化。当曲线出现明显变化时,应立 即吸去套管中的灌流液,并做好冲洗标※记,迅速用新鲜任氏液清洗2 ~3次,待心搏恢复正常。
但是有时候蛙心插管内液面波动不明显,其主要原因是: ⑴ 插管内尖端出现血凝块。插管内液体不能顺畅的进出心室腔 内。解决方法为用长吸管将血凝块吸出,在吸出血凝块后,应立即用新 鲜任氏液换洗插管内液体几次,直至蛙心颜色变淡,插管内无血液和小 血块为止。 ⑵ 插管尖端不在心室腔内,而是在心房或者脉间结缔组织等地 方。解决方法为将插管重新插入心室,确定无误后,再结扎固定。 ⑶ 插管进入心室腔内过深,以致尖端抵住了心室壁。解决方法为 将插管稍稍外提,使插管口正好处于心室腔内,且开口正对着液体喷射 的轴流方向。 ⑷ 蛙心由于长期心肌失血,导致活力下降。解决方法为向插管内 滴加少许肾上腺素或者对其进行外加力使其起搏,使其活动增强。 ⑸ 房室传导阻滞。在插管的操作中,由于操作失误,对心脏造成 的损害过大,最后导致房室传导阻滞。由于这种伤害是不可逆转的,所 以必须改换蛙心重做实验。
表一:各测量结果比较 表 1改变灌流成分对蛙离体心脏活动的影响
实验项目
心率/ (次/min)
振幅/g
基线变化 (上移或下
移)
对照
52
1.47
0.65% 给药
51
1.47
其他 心收缩力减弱
恢复
52
对照
52
5% 给药
51
恢复
62
对照
49
2% 给药
49
恢复
50
对照
52
1% 给药
59
恢复
58
1︰ 对照
51
2. 实验过程中,为什么必须保持蛙心插管内液面高度的恒定?液 面过高或过低会产生怎样的影响?
答:在实验过程中,蛙心插管内液面高度发生变化,心脏收缩曲线
会相应发生变化。心肌缩短幅度和速度受到前负荷和后负荷的影响。插 管液面高度所产生的压力,在心室舒张期末期相当于心肌的前负荷,心 室开始收缩的时候,此液体所产生的压力又成为心肌收缩时的后负荷。 故高度的改变,进而引起的前后负荷的改变将改变心肌收缩的幅度和频 率。
(4)同法向套管内加入1~3滴2%CaCI:溶液,观察并记录心搏曲线 的变化。当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常(如果 恢复迟缓,可多次冲洗)。
(5)向套管中加1—2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线的变化。当心搏
曲线变化时,同法更换灌流液,待心搏恢复正常。 (6)同法记录套管中加入l~2滴的肾上腺素溶液(1:10 000)后心搏曲
4、 【方法与步骤】 1、斯氏蛙心插管法
(1)一只青蛙,双毁髓后背位置于蜡盘中,按前面的方法暴露心 脏。仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线,于 动脉圆锥处结扎(动物个体小时,结扎位置可靠上些)。再从左右两主动 脉下方穿一线,并打一活结备用。左手提起主动脉上的结扎线,右手用 眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。选择大小适宜 的蛙心套管,然后将盛有少量(套管内2~3 cm高度)任氏液(内加入一滴 肝素溶液)的斯氏蛙心套管,山开口处插入动脉圆锥(见右图)。当套管尖 端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部 后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插 入,但不可插得过深,以免心室壁堵住套管下口)。此时可见套管中血 液冲人套管,并使液面随心脏搏动而亡下移动,表明操作成功(否则需 退回并重新插入)。用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。稳定 住套管后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎 紧(不得漏液),再将结线固定在套管的小玻璃钩上,然后剪断结扎线上 方的血管。轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置,于静脉窦下方剪 断有牵连的组织,仅保留静脉窦与心脏的联系,使心脏离体(切勿损伤 静脉窦)。用任氏液反复冲洗心室内余血,使套管内灌流液不再有残留 血液。保持套管内液面高度一致(1.5~2 cm),即可进行实验。
3、 滴加5%NaCl溶液
分析:由于细胞外液中钠浓度差梯度的变化一般对心肌活动影响不 明显。因此上图的心率变化与图2滴加0.65%NaCl溶液里变化并不是很 大,两个不同浓度的相同溶液作用机理是一样的,在此一不作过多相同 分析。但如果实验中滴加溶液顺序不一样,若先滴加5%NaCl.再滴加 0.65%NaCl溶液,所得的心搏变化就不如图3那样明显了,收缩力仅出现 很微弱的变化。
5、 滴加1%KCl溶液
分析:滴加1%后的心搏曲线发现,曲线的频率逐渐减小,愈来愈 疏,幅度逐渐下降,最后停止在基线处,即心脏停博于舒张状态。因为 当细胞K+浓度增高时,K+与Ca2+有竞争性拮抗作用,K+抑制细胞膜对 Ca2+的转运,使进入细胞内Ca2+减少,心肌的兴奋—收缩偶联过程减 弱,心肌收缩力降低。所以心搏曲线振幅减小。
实验名称: 蛙类离体心脏灌流
课程名称: 生理学实验 指导教师: 龙天澄 张碧鱼 陈笑霞 实 验 人: 叶永锋 08344031 学 院 : 海洋学院 实验时间: 2009年12月09日离体蛙心灌流法。 2、了解心肌的生理特性。 3、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh)等对离体心脏活 动的影响。
(2)将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖 部肌肉 (不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液)。再将蛙心夹上的系线 绕过一个滑轮与张力传感器相连(如右图)。注意:勿使灌流液滴到传 感器上。调节显示器上心脏收缩曲线的幅度适中。
2、 实验观察 (1)记录正常心搏曲线 (2)改用0.65%NaCI溶液灌流,并作好加药标记,观察心搏变化。
4、 滴加2%CaCl溶液
分析:细胞外Ca2+在细胞膜上对Na+内流有竞争性抑制作用,称
为膜屏障作用。[Ca2+] 0增高时,Na+内流受抑制,细胞0期除极速度 与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低。[Ca2+] 0增高使Ca2+内流增 多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞 平台期缩短,有效不应期缩短,复极加速。Ca2+内流增多,使心肌收 缩能力增强。[Ca2+] 0降低时,所引起的变化与高钙时相反。因此加入 CaCl2后,心率减少、振幅减少,基线上移。
10000肾 给药
51
上腺素 恢复
55
1︰ 对照
46
10000乙 给药
0
酰胆碱 恢复
52
1.8 1.8 2.82 2.6 1.65
2.16
1.94 2.27 1.91 2.05 1.83 2.64 2.67 1.06 1.06 0.77
上移
心收缩力减弱
上移 上移
收缩力没有明 显增大,但基 线上移明显
【思考题】
1. 离体蛙心制备好后,有时候馆内的液面上下移动很不明显,是 何原因?如何处理?
答:离体蛙心制备好后,蛙心插管内的液体应随蛙心室的收缩和舒 张活动而上下移动。其实质是:在心室收缩时,心室容积减少,室内压 升高,将心室内的液体压入插管内,管内液面上升;在心室舒张的时 候,心室容积增大,心室内压减少,将插管内液体吸入心室,管内液面 下降。
稍上移 心收缩力减弱
心收缩力增强
上移
心收缩力减弱
6、 【注意事项】 1. 制备蛙心标本时,勿伤及静脉窦。 2 .上述各实验项目,一旦出现作用应立即用正常任氏液换洗,以免心肌 受损,而且必须待心搏恢复正常后方能进行下一步实验。
3. 复习心肌生物电的产生机制及各种离子对心脏活动的影响。 4. 尽量选用健壮、体大的雄性蟾蜍,手术过程中注意保护心脏,避免损 伤。
6、 滴加1:10000肾上腺素溶液
分析:滴加肾上腺素后,蛙心收缩增强,心脏舒张完全,描记的心 搏曲线幅度明显增大。其作用机理是,肾上腺素可与心肌细胞膜上的B 受体结合,提高心肌细胞和肌浆网膜Ca2+通透性,导致肌浆中Ca2+浓度 增高,使心肌收缩增强。另外,肾上腺素还有降低肌钙蛋白与Ca2+亲和 力,促使肌钙蛋白对Ca2+的释放速率增加,提高肌浆网膜摄取Ca2+的速 度,刺激Na+与Ca2+交换,使复极期向细胞外排出Ca2+的作用加速,这 样,将使心肌舒张速度增快,整个舒张过程明显增强。
二、【原理】
将离体蛙心(失去神经支配的蛙心)保持在适宜的环境中,在一定 的时间内仍然能够保持节律性收缩,心脏正常的节律性活动需要一个适 宜的理化环境,离体心脏也是如此,离体心脏脱离了机体的神经支配和 全身体液因素的直接影响,可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对 心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性,都与 钠、钾及钙等离子有关。血钾浓度过高时(高于7.9mmol/L),心脏兴 奋性、自律性、传导性及收缩性都下降,表现为收缩力减弱、心动过缓 和传导阻滞,严重时心脏可停搏于舒张期。血钙浓度升高时,心脏收缩 力增强,过高可使心室停搏于收缩期。血钙浓度降低,心肌收缩力减 弱。血中钠离子浓度的轻微变化,对心肌影响不明显,只有发生明显变 化时,才会影响心肌的生理特性。肾上腺素可使心率加快、传导加快及 心肌收缩力增强,乙酰胆碱则与肾上腺素的作用相反。
线的变化。 (7)同法记录套管中加入1—2滴乙酰胆碱溶液(1:10 000)后心搏曲线
的变化。 3、实验结果与分析
将记录到的各段心搏曲线附在实验报告中,计算给药前后曲线的频 率、振幅和基线变化。测量结果填入表中。
5、 【实验结果】 1、正常博击曲线图
2、滴加0.65%NaCl溶液图
分析:滴加0.65%NaCl溶液后,心跳减弱,这是由于用0.65%NaCl溶 液灌注蛙心时,由于灌注液中缺乏Ca2+,以致心肌细胞动作电位2期内 流Ca2+减少,细胞质Ca2+浓度减少,心肌的收缩活动也随之减弱。