酵母菌生长曲线的测定及不同生长时间麦芽汁糖度的变化
微生物生长曲线的测定
微生物生長曲線的測定一.實驗目的1.瞭解典型微生物生長曲線的四個時期所代表的意義。
2.學習分光光度計的測定原理和實驗步驟。
3.了解微生物生長情形，生理特性與培養特徵。
二.器材和儀器1.錐形瓶2.量筒3.玻棒4.定量玻璃吸管5.不鏽鋼吸管筒6.酒精燈7.取藥杓8.秤藥紙9.燒杯 10.電子天瓶 11.分光光度計 12.恆溫水浴振盪器 13.比色管 14.標籤 15.電子天平三.試劑及材料1.酒精2.酵母菌粉3.葡萄糖粉四.微生物之生長曲線以菌數和時間作圖在批次培養情形下，可以菌數和時間作圖，得生長曲線。
實驗以批次培養方式進行•遲滯期(lag phase): 微生物正適應新環境，吸收養份以合成新細胞，細胞雖變大，但仍未分裂，故細胞數目無明顯增加。
•對數期(logarithmic phase): 細胞呈幾何級數增加，菌之生理較一致，為微生物實驗最佳時期。
•穩定期(stationary phase): 微生物代謝，消耗養分、同時產生代謝毒物，造成新分裂與死亡之菌數約略相等，因此菌數沒太大改變。
•死滅期(death phase): 養分已漸消耗完畢，而代謝毒物累積更多，造成新生菌數遠小於死亡菌數，因此菌數遞減。
五.步驟1.先紀錄微生物種類含來源2.酵母菌液的配置;取0.5g酵母菌粉和1g葡萄糖一起加入50ml的培養液搖均勻3.取部份菌液加入比色管(8分滿),用分光光度計測其吸光質,波長用595nm。
→為了要做基準線的校正4.將菌液瓶放在37°c的培養箱振盪培養,每15分鐘取出瓶子,取部份菌液重複做5次下列的事情:(1)加入比色管(8分滿),用分光光度計測其吸光質,波長用595nm。
(2) 用塗碟法測菌數,要先做10倍稀釋至少4次,最後取0.1ml的菌液滴在培養基的正中央,用滅菌的三角彎棒均勻塗抹。
注意:菌液要先適當稀釋後才塗碟,事後再推算回去。
5.把每個培養皿放進振盪器,隔天觀察並計算培養基菌數(個/ml) 數據有六次。
酵母菌生长曲线的测定及其转葡萄芪合酶基因重组菌遗传稳定性的检测
酵母菌生长曲线的测定及其转葡萄芪合酶基因重组菌遗传稳定性的检测郭春叶1,龚月生1*,刘林丽2,曹雨莉1(1.西北农林科技大学动物科技学院,陕西杨凌712100;2.西北农林科技大学生命科学学院,陕西杨凌712100)摘要采用分光光度计比浊法测定酿酒酵母IN V S c1的生长曲线,确定菌体生长规律;并以此为依据,制备酿酒酵母感受态细胞,进行葡萄芪合酶基因酿酒酵母重组质粒的转化;采用菌落P CR法快速鉴定阳性重组子,并进一步检测重组质粒在重组菌中的稳定性。
结果表明,于酵母菌对数生长中期(OD600为0.8时)进行重组质粒的转化,可以得到较高的转化效率;在0～72h发酵培养过程中重组质粒在宿主菌中的稳定性达到100%。
这为后续工作开展葡萄芪合酶基因在酿酒酵母中的诱导表达研究奠定了技术基础。
关键词酿酒酵母;生长曲线;稳定性;芪合酶中图分类号Q933文献标识码 A 文章编号0517-6611(2007)07-01909-02M e a su rem e n t o f Y e a s t G row th C urv e an d G en e t ic S tab ility E x am in a tio n o f R e c om b in an t Ye a s t T ran s fe rre d G ra pe S t ilb e n e Sy n th a s e(STS) GUO Ch u n-y e e t a l(C o llege o f A n i m a l S cien ce an d T ech n o log y,N or thw e st A&F U n iv ers ity,Y an g lin g,S h aan x i712100)A b s tra c t Y e ast g row i n g ru le w as con firm ed by m e asu r i n g th e g row th cu rv e o f I N V S c1by spectro-ph o tom e te r tu rb id ity.A cco rd in g to th is g row in g cu rve,ye as t com pe ten t ce lls w e re m ade u p an d w e re tran sfo rm ed by th e yea st reco m b in an t plasm id con ta in in g stilben e syn th a se gen e der ivedfromg rape.T h e po si-tiv e reco m b in an t vector w as rap id ly iden tified by u sin g co lon y P CR.T h en,th e s tability o f recom b in an t ve cto r i nrecom b i n an t yea st w as ex am in ed.T h e re-su lts sta ted,a t th e m id-log a rithm ic ph a se(OD600o f0.8)th e tran s fo rm a tion o f re com b in an t p lasm id w as h igh-e fficien t,and du rin g0～72hcu ltiv a tion pe-r iod th e stab ility ra te o f th e re com b in an t p la sm id in y eas t rea ch ed100%.I t m ay lay th e tech n ica l fou n da tion fo r th e f u r th e r in du cible e xpress ion o f ST S gen e in S.cerev isiae.K e y w o rd s Sacchar om y ces cerev isiae;G row th cu rve;S tab ility;S tilben e syn th ase芪合酶是存在于葡萄、花生、松树等少数种子植物中用于合成白藜芦醇等芪类次生代谢物的关键酶。
酵母菌生长曲线的测定及不同生长时间麦芽汁糖度的变化
在培养好的试管中加入无菌液体培养基， 用无 菌接种环将斜面上的菌落剥离， 摇匀， 制成菌悬液， 接种到无菌的容量为 １ Ｌ 并装有 ３００ ｍＬ 液体培养 基的锥形瓶中， 在 ３０ ℃恒温 １８０ ｒ／ｍｉｎ 振荡培养 ２０ ｈ， 此时培养液浑浊。 ２．３ 生长曲线的测定
关键词 酵母菌 生长曲线 培养液 糖度 中图分类号： Ｓ８１６．７９ 文献标识码： Ｂ 文章编号： １００７－ ９１５７（ ２００６） ０１－ ０００８－ ０２
酵母是一类单细胞微生物，其结构简单， 属于真 菌类［１］。目前已知的酵母菌有 ４９０ 余种。由于酵母具 有个体大、蛋白质含量高、杂食 性 强 、易 分 离 、易 培 养、代谢产物多、综合利用广等特 点 ［２］， 在 现 代 工 业 中 除 了 用 于 酿 酒 外 ， 还 用 于 甘 油 、食 用 酵 母 、有 机 酸 、酶 制 剂 以 及 饲 料 等 的 生 产 ［ ３］ 。随 着 科 技 的 发 展 和 人们对养殖业要求的不断提高及酵母菌具有的众 多生理功能， 酵母在饲料工业中得到了广泛应用。 因此， 了解酵母菌的生长周期， 掌握其最佳生长阶 段， 以更好地生产酵母类产品就显得至关重要。 １ 试验材料 １．１ 菌种
参照食品科学糖度的测定， 采用波美比重计对 酵母菌培养液不同培养时间进行糖度测定。 ３ 试验结果
酵母菌生长曲线见图 １。培养液糖度的变化曲 线见图 ２。
４ 结论 本实验采用光电比浊法， 以热带假丝酵母和酿
微生物的生长曲线
微生物生长曲线的应用
• 在污水处理中的应用：在废水处理中，用初期 培养的活性污泥处理废水时，宜接入对数期的 微生物：在常规活性污泥法和生物膜法的运行 系统，宜接入稳定期的微生物；高负荷活性污 泥法处理废水时，宜用对数期和稳定期微生物； 对有机含量低BOD5/COD《0.3、可生化性差的 废水，即用衰亡期微生物处理；对间歇排放的 废水可采用衰亡期微生物的间歇爆气法处理。
衰亡期
• 特点：
1 R为负值 2 细胞的形态发生变化，出现不规则的衰退形 3 释放次生代谢产物，芽孢等 4 菌体开始自溶
• 产生原因：
生长条件的进一步恶化，使细胞内的分解代谢大大超 过合成代谢，继而导致菌体的死亡
微生物生长的各个阶段
生长阶段 特 征 细胞不分裂（不生长），但细胞变大，细胞内RNA含量增 高，原生质呈碱性，合成代谢活跃，易合成新的诱导酶， 对外界环境变化敏感。接种物中死细胞较多或培养基不丰 富时延滞期较长。 细胞分裂（生长）最快，细胞进行平衡生长，酶系活跃， 代谢旺盛。生长速率由营养成分和培养条件决定。 新繁殖的细胞与死亡细胞数目相等，菌体产量达到最高， 细胞开始储藏糖原、脂肪等储藏物，产芽孢的开始形成芽 孢，开始合成次生代谢产物。可能由于营养物的消耗或抑 制生长的代谢产物积累，细胞停止增殖，但仍存活。 死亡细胞数目超过新生细胞，细胞形态多样，细胞开始自 溶，开始释放次生代谢产物。
微生物生长曲线
目录
微生物的曲线 微生物的生长时期 微生物的生长各个阶段特征总结 总结
微生物的生长曲线
延滞期的特点
• 生长速度为零 • 细胞体积急剧增大 • 细胞内的RNA尤其是rRNA含量增高，细 胞呈嗜碱性 • 合成代谢活跃，易产生诱导酶 • 对外界不良环境条件敏感
酵母菌种群数量增长曲线测定
探究酵母菌种群大小的动态变化研究目的：分别说明种群个体数量的增长规律以及种群外部环境因素和种群内部因素对种群个体数量的制约。
实验过程：1、每八个同学分一组，全班分为7大组。
每组取一个锥形瓶，量取50ml已经配好的酵母菌培养液，至于锥形瓶中。
2、写好标签纸，贴在锥形瓶上。
标签纸格式如下3、每人取一块血球计数板，对本组瓶内酵母菌数量进行计数。
血球计数板的使用方法血球计数板用于在显微镜下直接计数单位容积内分散的单个菌体。
如细菌、酵母菌或霉菌的孢子的数量。
但由于血球计数板本身较厚，不能用油镜观察，仅适用于在干系统物镜下可见的个体较大的微生物的计数一、血球计数板的构造血球计数板是一块特制厚玻片。
玻片上由四道槽构成三个平台，中间的平台分成两半，其上各刻一个相同而有一定面积的小方格网。
方格的刻度有两种规格。
一种是分为25大格，每大格又分为16小格；另一种是分16大格，每大格分为25小格。
总数都是400小格（如图所示）。
每小格边长为0.05毫米，其面积为0.0025立方毫米，深度为0.1毫米，故每小格容积为0.00025立方毫米，即1/4×106毫升。
可由每小格中的菌数换算出每毫升菌液中的数量。
二、血球计数板的使用方法（一）取清洁干燥的血球计数板，加盖玻片盖住网格和两边的槽。
（二）将待测菌液充分摇匀后，用无菌吸管吸少许，由盖玻片边缘或槽内加入计数板来回推压盖玻片，使其紧贴在计数板上，计数室内不能有气泡。
静置5-10分钟。
（三）在低倍镜下找到小方格网后更换高倍镜观察计数，上下调动细螺旋，以便看到小室内不同深度的菌体。
位于分格线上的菌体，只数两条边上的，其余两边不计数。
如数上线就不数下线，数左边线就不数右边线。
（四）计数时若使用刻度为16×25（大格）的计数板，则数四角的4个大格（即100小格）内的菌数。
如用刻度为25×16（大格）的计数板，除数四角的4个大格外，还需数中央1个大格的菌数（即80小格）。
1、试写出用紫外线诱变选育高产酒精啤酒酵母茵株的操作过程
1、试写出用紫外线诱变选育高产酒精啤酒酵母茵株的操作过程一、材料①菌种酵母菌(A4)为本实验室保藏菌种。
②麦芽汁液体培养基：将麦芽汁糖度滤后121℃灭菌20min。
③YPD培养基(g/L):液体培养基：酵母提取物10，蛋白胨20，葡萄糖20。
固体培养基:在YPD液体培养基中加入琼脂20,NaOH0.1Pl。
④原生质体再生培养基：在YPD固体培养基中分别添加KCl至0.7mo1九L,山梨醇至ZBZ:0.8mσ1/L,甘露醇至0.8mo1/L,17%的蔗糖。
以上培养基于115℃灭菌20min。
TTC上层培养基(g/L)：TTC(三苯基四氮唑盐酸盐)0.5，葡萄糖5，琼脂15。
TTC下层培养基(g∠L)：葡萄糖10，蛋白胨2，酵母膏1.5，KHPO,1，MgSO·7HO4，琼脂20,pl5.5。
⑤缓冲液：pH6.8的柠檬酸磷酸缓冲液。
⑥预处理剂:0.1%β-巯基乙醇，其中含0.1mol/L的EDTA-Nag⑦稳渗剂：KCI高渗缓冲液：缓冲液中添加KCl至0.7mo1/L；山梨醇⑧高渗缓冲液：缓冲液中添加山梨醇至0.8mo1九L；甘露醇高渗缓冲液：缓冲液中添加甘露醇至0.8mol∠L；蔗糖高渗缓冲液：缓冲液中加入17%的蔗糖。
⑨酶液：分别将1%,1.5%,2%,2.5%的蜗牛酶和0.4%蜗牛酶+0.4%纤维素酶溶于高渗缓冲液中，微孔滤膜过滤除菌，制备成不同浓度的酶液。
二、方法1、出发菌株生长曲线的测定挑取斜面菌株1~2环接种于50mLYPD液体培养基中,28℃,200r/min摇床培养24h后分别以1:100的量接种于装有1OmLYPD液体培养基的大试管中,28℃,200r/min摇床培养，每隔2h 取出一支试管，测定其OD值，绘制其生长曲线。
2、出发菌株原生质体制备与再生将活化好的菌种接种于盛有50mLYPD液体休培养基的锥形瓶中,28℃,200r/min摇床培养，当其进入对数生长期时，取5mL菌液3500r/min离心5min，用磷酸柠檬酸缓冲液洗2次，无菌加入0.1邹巯基乙醇,28℃静置10min，用高渗缓冲液洗涤3次，取1mL用无菌水稀释到10，取100μl涂YPD平板得“总菌落数(A)"，再取lml 菌液离心弃上清液，加入酶液,30℃水浴,2000r/min离心10min，高渗缓冲液洗涤2次后稀释至10°，分别取100μL涂YPD平板和原生质休再生平板得“未形成原生质体的菌落数(B)”和“酶处理后未形成原生质体的菌落数和原生质体再生的菌落数之和(C)"。
微生物实验报告：测定细菌生长曲线
测定细菌生长曲线一、实验目的1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2．学习液体培养基的配制以及接种方法；3．反复练习无菌操作技术；4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法；二、实验原理将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。
单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。
生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。
不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。
本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。
将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。
从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为：G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2]式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。
三、实验器材大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计；四、实验步骤1．活化菌种将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块；2．接种6人大组分为3个小组，按表1接种。
高中生物“探究酵母菌种群数量的变化”实验方案改进
基础学科Basic Disciplines高中生物“探究酵母菌种群数量的变化”实验方案改进杜静U1吕乐[2]([1]首都师范大学附属育新学校北京100096:[2]北京科技大学化学与生物工程学院北京100083)摘要酵母菌的种群数量增长实验是高中生物教学中的一个综合性探究实验，是课程标准要求中的重要部分。
本文 对课程要求实验方法进行丰富和改进，以自制果酒分离获得的酵母菌株为实验材料，进行18S rDNA分子鉴定。
在预 实验的基础上，对酵母菌进行液体培养，利用分光光度计測定种群数量动态变化并绘制其生长曲线，分析酿酒酵母的生 长特性及影响因素。
关键词酿酒酵母种群数量生长曲线中图分类号:G424 文献标识码:A DOI:10.16400/ki.kjdkx.2020.07.071Improvement on the Senior School Biological Experiment of Changingof Yeast Population Quantity in the WineDU Jing[", LV Le121([1] Yuxin School Affiliated to Capital Normal University, Beijing 100096;[2] School of Chemical and Biological Engineering, University of Science and Technology Beijing, Beijing 100083)Abstract The population growth experiment of Saccharomyces cerevisiae is a comprehensive exploration experiment in biology teaching of senior school.It is an important part of the curriculum standard.In this paper,the experimental methods required by the course were enriched and improved.Yeast strains isolated from fruit wine were used as experimental materials for18S rDNA molecular identification.On the basis of the pre-experiment,the yeast was cultured in liquid medium,the population dynamic change was measured by spectrophotometer and its growth curve was drawn,and the growth characteristics and influencing factors of Saccharomyces cerevisiae were analyzed.Keywords Saccharomyces cerevisiae;population quantity;growth curve酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)作为一种微小的单细 胞真菌，在食品发酵方面己有十分悠久的使用历史，其兼性厌 氧特性和产酸产气能力被利用作为食品发酵剂。
酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定
酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定1 目的要求（1）了解酵母菌、细菌等单细胞微生物生长曲线的特点及测定原理；（2）学习用血球计数板计数法和比浊法分别测定酵母和细菌的生长曲线。
2 基本原理细菌群体的生长繁殖可分为四期：1)．迟缓期（Lag phase）:细菌接种至培养基后，对新环境有一个短暂适应过程（不适应者可因转种而死亡）。
此期曲线平坦稳定，因为细菌繁殖极少。
迟缓期长短因素种、接种菌量、菌龄以及营养物质等不同而异，一般为1～4小时。
此期中细菌体积增大，代谢活跃，为细菌的分裂增殖合成、储备充足的酶、能量及中间代谢产物。
2).对数期(Logarithmic phase):又称指数期(Exponential phage)。
此期生长曲线上活菌数直线上升。
细菌以稳定的几何级数极快增长，可持续几小时至几天不等（视培养条件及细菌代时而异）。
此期细菌形态、染色、生物活性都很典型，对外界环境因素的作用敏感，因此研究细菌性状以此期细菌最好。
抗生素作用，对该时期的细菌效果最佳。
3)．稳定期（Stationary phase）:该期的生长菌群总数处于平坦阶段，但细菌群体活力变化较大。
由于培养基中营养物质消耗、毒性产物（有机酸、H2O2等）积累PH下降等不利因素的影响，细菌繁殖速度渐趋下降，相对细菌死亡数开始逐渐增加，此期细菌增殖数与死亡数渐趋平衡。
细菌形态、染色、生物活性可出现改变，并产生相应的代谢产物如外毒素、内毒素、抗生素、以及芽胞等。
4)．衰亡期（Decline phase）:随着稳定期发展，细菌繁殖越来越慢，死亡菌数明显增多。
活菌数与培养时间呈反比关系，此期细菌变长肿胀或畸形衰变，甚至菌体自溶，难以辩认其形。
生理代谢活动趋于停滞。
故陈旧培养物上难以鉴别细菌。
体内及自然界细菌的生长繁殖受机体免疫因素和环境因素的多方面影响，不会出现象培养基中那样典型的生长曲线。
掌握细菌生长规律，可有目的地研究控制病原菌的生长，发现和培养对人类有用的细菌。
酵母生长周期实验报告
一、实验目的1. 了解酵母菌的生长周期及生长规律。
2. 掌握酵母菌在不同环境条件下的生长特点。
3. 培养实验操作技能和数据分析能力。
二、实验原理酵母菌是一种单细胞真菌，其生长周期分为繁殖阶段、平衡阶段和衰减阶段。
在适宜的条件下，酵母菌生长迅速，繁殖能力极强。
本实验通过观察酵母菌在不同环境条件下的生长情况，了解其生长周期及生长规律。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：啤酒酵母、麦芽汁、葡萄糖、酵母提取物、琼脂、无菌水、无菌棉签、酒精灯、试管、培养皿、温度计、显微镜等。
2. 实验试剂：1.0M NaOH、1.0M HCl、0.9% NaCl、0.1M Tris-HCl、0.1M CaCl2等。
四、实验步骤1. 酵母菌活化：将啤酒酵母接种于含有麦芽汁的试管中，置于37℃恒温培养箱中培养24小时，得到活化酵母菌。
2. 配制培养基：根据实验需求，分别配制含有不同碳源、氮源、无机盐的培养基。
3. 接种：将活化酵母菌用无菌棉签接种于不同培养基中，每个培养基接种3个平行样。
4. 培养与观察：将接种后的培养基置于37℃恒温培养箱中培养，每隔一定时间观察酵母菌的生长情况，记录酵母菌的形态、数量、颜色等特征。
5. 数据处理：对观察到的数据进行分析，绘制酵母菌生长曲线，计算生长速度、生长周期等指标。
6. 结果分析：分析酵母菌在不同环境条件下的生长特点，总结酵母菌的生长规律。
五、实验结果与分析1. 酵母菌在不同碳源条件下的生长情况实验结果表明，酵母菌在葡萄糖、麦芽汁等碳源条件下生长良好，菌落呈白色、圆形、湿润，边缘整齐。
在无碳源条件下，酵母菌基本不生长。
2. 酵母菌在不同氮源条件下的生长情况实验结果表明，酵母菌在酵母提取物、蛋白胨等氮源条件下生长良好，菌落呈白色、圆形、湿润，边缘整齐。
在无氮源条件下，酵母菌生长缓慢，菌落较小。
3. 酵母菌在不同无机盐条件下的生长情况实验结果表明，酵母菌在含有适量无机盐的培养基中生长良好，菌落呈白色、圆形、湿润，边缘整齐。
微生物生理生化和酵母细胞大小的测定
酵母细胞的大小还可能在其他工业应用中发挥潜在价值，如食品添加 剂、酶的生产等。
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详细描述
图像分析法是一种基于计算机视觉技术的测量 方法，通过图像处理软件对酵母细 胞图像进行分析和测量。该方法具有自动化、高效率的优点，但需要特定的软件 支持，且对图像质量要求较高。
03
酵母细胞生长的生理生化变化
酵母细胞生长过程中的代谢变化
糖酵解
在酵母细胞生长过程中，糖酵解 是主要的能量来源。糖酵解过程 中，葡萄糖被分解为丙酮酸，并
释放能量供细胞使用。
乙醇发酵
当氧气供应不足时，酵母细胞会进 行乙醇发酵，将丙酮酸转化为乙醇 和二氧化碳。
脂肪酸合成
在某些条件下，酵母细胞可以合成 脂肪酸，作为储存能量的形式。
酵母细胞生长过程中的细胞器变化
线粒体
高尔基体
随着酵母细胞的生长，线粒体的数量 和大小也会增加，以满足细胞对能量 的需求。
高尔基体在酵母细胞的分泌活动中起 重要作用，随着细胞的生长，高尔基 体的数量和形态也会发生变化。
05
酵母细胞大小与工业应用
酵母细胞大小对酒精发酵的影响
1 2
酒精发酵效率
较大的酵母细胞通常具有更高的发酵效率，因为 它们具有更大的体积和更多的酶，能够更快地分 解糖分。
产物浓度
酵母细胞的大小会影响酒精的产量和浓度，因为 较大的细胞内有更多的酶，可以产生更多的酒精。
3
发酵周期
较小的酵母细胞可能需要更长的发酵周期，因为 它们内部的酶较少，分解糖分速度较慢。
营养条件
营养物质的供应对酵母细胞大小有显著影响。在营养充足的 环境下，细胞生长迅速，体积较大；而在营养受限的环境中 ，细胞生长速度减慢，体积相对较小。
微生物生长曲线
微生物生长曲线生长量测定法体积测量法：又称测菌丝浓度法。
通过测定一定体积培养液中所含菌丝的量来反映微生物的生长状况。
方法是，取一定量的待测培养液（如10毫升）放在有刻度的离心管中，设定一定的离心时间（如5分钟）和转速（如5000 rpm），离心后，倒出上清夜，测出上清夜体积为v，则菌丝浓度为（10-v）/10。
菌丝浓度测定法是大规模工业发酵生产上微生物生长的一个重要监测指标。
这种方法比较粗放，简便，快速，但需要设定一致的处理条件，否则偏差很大，由于离心沉淀物中夹杂有一些固体营养物，结果会有一定偏差。
称干重法：可用离心或过滤法测定。
一般干重为湿重的10-20%。
在离心法中，将一定体积待测培养液倒入离心管中，设定一定的离心时间和转速，进行离心，并用清水离心洗涤1-5次，进行干燥。
干燥可用烘箱在105 ℃或100℃下烘干，或采用红外线烘干，也可在80℃或40℃下真空干燥，干燥后称重。
如用过滤法，丝状真菌可用滤纸过滤，细菌可用醋酸纤维膜等滤膜过滤，过滤后用少量水洗涤，在40C下进行真空干燥。
称干重发法较为烦琐，通常获取的微生物产品为菌体时，常采用这种方法，如活性干酵母（activity dry yeast, ADY）,一些以微生物菌体为活性物质的饲料和肥料。
比浊法：微生物的生长引起培养物混浊度的增高。
通过紫外分光光度计测定一定波长下的吸光值，判断微生物的生长状况。
对某一培养物内的菌体生长作定时跟踪时，可采用一种特制的有侧臂的三角烧瓶。
将侧臂插入光电比色计的比色座孔中，即可随时测定其生长情况，而不必取菌液。
该法主要用于发酵工业菌体生长监测。
如我所使用UNICO公司的紫外-可见分光光度计，在波长600nm 处用比色管定时测定发酵液的吸光光度值OD600，以此监控的生长及诱导时间。
菌丝长度测量法：对于丝状真菌和一些放线菌，可以在培养基上测定一定时间内菌丝生长的长度，或是利用一只一端开口并带有刻度的细玻璃管，到入合适的培养基，卧放，在开口的一端接种微生物，一段时间后记录其菌丝生长长度，借此衡量丝状微生物的生长。
微生物生长曲线
微生物生长曲线微生物生长曲线把一定微生物接种到一定的液体培养基中后，在一定条件下培养，定时取样测定活菌数，以活菌数的对数值为纵坐标，以培养时间为横坐标，就可以画出一条有规律的曲线，这就是微生物的典型生长曲线。
根据微生物在不同时期内生长繁殖的特点不同。
一般把典型生氏曲线划分为适应期、对数增长期(指数期）、稳定期和衰亡期等4个时期.该生长曲线只适用于单细胞微生物，包括细菌和酵母菌。
(一)适应期适应期又称停滞期、调整期。
指少量微生物接种到新培养液中后，在开始培养的一段时间内细胞数目不增加或增加非常缓慢的时期。
该时期有几个特点：1.生长繁殖的速度几乎等于零。
2.细胞形态增大，杆菌的长度增加。
例如，巨大芽孢杆菌在位种的当时，细胞长为3.4um，培养至3.5h，其长为9.1um，至5.5h时，竟可达到19.8um。
3.细胞内RNA尤其是rRNA含量增高，原生质呈嗜碱性。
4.合成代谢活跃，核糖体．酶类和ATP的合成加快，易产生诱导酶。
5.对外界不良条件例如NaCl溶液浓度．温度和抗生素等化学药物的反应敏感。
影响适应期长短的因素很多．除菌种外，主要有三：（1）菌种的菌龄：菌龄即“种子”的群体生长年龄．亦即它处在生长曲线上的哪一个阶段。
这是一种生理年龄．实验证明，如果以对数期的“种子”接种，则子代培养的适应期就短，如果以稳定期的”种子”接种．则适应期就相对较长。
（2）接种量：接种最的大小明显影响适应期的长短。
一般说来，接种量大，则适应期短，反之则长。
因此在发酵工业上，为缩短不利于提高发酵效率的适应期，一般采用1/10的接种量．（3）培养基成分：接种到营养丰富的天然培养基中的微生物要比接种到营养单调的合成培养基中的适应期短。
新接种的培养基与菌种的原培养基越接近，适J；z期就越短。
所以，在发酵生产中，常使发酵培养基的成分与种子培养基的成分尽量接近。
适应期的出现，可能是因为在接种到新鲜培养液的细胞中，一时还缺乏分解或催化有关底物的酶，或是缺乏亢足的中间代谢物。
不同果汁发酵液中酵母菌生长曲线的测定及ph值的变化
不同果汁发酵液中酵母菌生长曲线的测定及
ph值的变化
实验概述：
在此次实验中，我们将探究不同果汁发酵液中酵母菌生长曲线的测定及PH值的变化。
使用相同的培养基和条件，但分别添加不同果汁，以观察果汁类型对生长曲线和PH值的影响。
实验步骤：
1. 首先准备培养基：混合15克酵母营养粉和1000毫升水，加入适量的果汁调节PH值。
2. 将培养基均匀地倒入不同的培养皿中，同时添加对应的果汁：苹果汁、葡萄汁、橙汁和番茄汁。
3. 向每个培养皿中加入4克干酵母。
4. 将培养皿放在恒温器中，在相同的温度和光照条件下进行培养。
5. 每隔一段时间记录酵母菌生长情况和PH值变化。
实验结果：
1. 生长曲线测定
在不同果汁发酵液中，酵母菌的生长曲线存在明显差异。
以苹果汁为例，菌落数量在最初的24小时内增长较为缓慢，随后逐渐加速，直至到达峰值。
而在其他果汁中，菌落数量增长较为迅速，但大部分都在培养后24小时达到峰值。
2. PH值变化
在所有培养皿中，PH值都呈现出先酸化后碱化的变化趋势。
但不同果汁类型的变化程度不同，其中以番茄汁的PH值变化幅度最大，而以苹果汁的PH值变化较为缓慢。
实验结论：
1. 不同果汁发酵液中对酵母菌的生长曲线存在差异，其中番茄汁的增长速度最快。
2. 无论何种果汁，发酵过程中其PH值都会发生变化，不过不同果汁类型的变化速度和幅度存在差异。
3. 实验结果表明，在使用果汁作为发酵液时，需要根据果汁类型和发酵时长调节其PH值，以保证最佳的酵母菌生长繁殖效果。
酵母生长曲线实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解酵母菌在不同环境条件下的生长规律。
2. 掌握酵母菌生长曲线的基本特征，包括滞期、对数生长期、平衡期和衰老死亡期。
3. 分析环境因素（如温度、pH值、营养物质等）对酵母菌生长的影响。
二、实验原理酵母菌是一种单细胞真菌，其生长过程可分为四个阶段：滞期、对数生长期、平衡期和衰老死亡期。
在这四个阶段中，酵母菌的生长速度和代谢活动都有明显的差异。
通过观察酵母菌在不同环境条件下的生长曲线，可以了解酵母菌的生长规律，并分析环境因素对酵母菌生长的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 酵母菌（啤酒酵母）- 葡萄糖- 氮源（如酵母提取物）- 无机盐- pH值调节剂- 温度控制器2. 实验仪器：- 恒温培养箱- 移液器- 光学显微镜- 计数板- 记录纸四、实验方法1. 配制酵母菌培养液：将葡萄糖、氮源、无机盐和pH值调节剂按比例混合，制备成酵母菌培养液。
2. 设置实验组：将酵母菌培养液分为若干组，分别设置不同的实验条件，如温度、pH值、营养物质等。
3. 接种酵母菌：将酵母菌接种到各个实验组的培养液中，置于恒温培养箱中培养。
4. 观察与记录：定期观察酵母菌的生长情况，记录酵母菌数量、形态等特征。
5. 数据处理：利用光学显微镜和计数板对酵母菌数量进行计数，绘制酵母菌生长曲线。
五、实验结果与分析1. 酵母菌生长曲线：- 滞期：酵母菌进入新环境后，需要一定时间适应环境，此时酵母菌数量基本不变。
- 对数生长期：酵母菌适应环境后开始大量繁殖，繁殖速度最快，酵母菌数量呈指数增长。
- 平衡期：酵母菌繁殖速度逐渐减慢，死亡数量与增殖数量基本持平，酵母菌数量达到峰值。
- 衰老死亡期：酵母菌繁殖速度进一步减慢，死亡数量大于增殖数量，酵母菌数量逐渐减少。
2. 环境因素对酵母菌生长的影响：- 温度：适宜的温度有利于酵母菌的生长繁殖，过高或过低的温度都会抑制酵母菌的生长。
- pH值：酵母菌对pH值的要求较为严格，最适pH值一般在4.5-5.5之间。
解脂耶氏酵母生长曲线
解脂耶氏酵母生长曲线
脂耶氏酵母（Saccharomyces cerevisiae）是一种常用于酿酒和
发酵食品的酵母菌。
它的生长曲线通常可以划分为四个阶段。
1. 潜伏期（lag phase）：在此阶段，菌落适应生长环境，并进
行一些基本的生物合成活动。
菌落的大小几乎没有变化，而且生长速度非常缓慢。
2. 指数增长期（exponential growth phase）：在此阶段，菌落
开始快速增长，并呈指数增加。
菌落的大小迅速增加，细胞数量迅速增多。
这个阶段通常是生物繁殖最活跃的阶段。
3. 平稳增长期（stationary growth phase）：在指数增长期后，
菌落的增长速度开始减缓，并趋于平稳。
菌落的大小仍然保持在一个相对稳定的水平，细胞数量几乎不再增加。
在这个阶段，菌落中可能会发生细胞死亡和细胞分裂率相等的现象。
4. 衰退期（death phase）：在菌落达到最大密度后，菌落开始
逐渐衰退。
细胞数量逐渐减少，菌落的大小也逐渐缩小。
这个阶段通常由于资源枯竭、废弃物累积或其他不利因素导致。
脂耶氏酵母的生长曲线可以根据以上四个阶段绘制，不同的生长环境和培养条件可能会导致曲线的形状和时间长度有所变化。
酵母出芽率实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解酵母菌的生物学特性，特别是其出芽生殖方式。
2. 掌握酵母出芽率的测定方法。
3. 分析不同条件下酵母出芽率的变化，探讨影响酵母出芽率的因素。
二、实验材料与仪器1. 实验材料：- 啤酒酵母- 蒸馏水- 酵母培养皿- 精制葡萄糖- 磷酸氢二钠- 磷酸二氢钠- pH试纸- 电子天平- 移液管- 移液器- 显微镜2. 实验仪器：- 高压蒸汽灭菌器- 灭菌操作台- 培养箱- 烧杯- 玻璃棒- 移液管三、实验方法与步骤1. 酵母菌活化：- 将啤酒酵母接种于无菌蒸馏水中，37℃培养箱中培养24小时。
2. 配制培养基：- 称取精制葡萄糖10g，磷酸氢二钠1.5g，磷酸二氢钠0.5g，加入适量蒸馏水，溶解后定容至1000ml。
3. 接种与培养：- 将活化后的酵母菌以1%的接种量接种于培养基中，37℃培养箱中培养24小时。
4. 观察与记录：- 在显微镜下观察酵母菌的出芽情况，记录每个视野中酵母菌的数量和出芽数量。
5. 计算出芽率：- 出芽率 = (视野中出芽酵母菌数量 / 视野中酵母菌总数) × 100%6. 重复实验：- 重复以上实验步骤，共进行三次，取平均值作为实验结果。
四、实验结果与分析1. 酵母菌出芽情况：- 观察到酵母菌呈球形或卵圆形，部分酵母菌出现出芽现象，芽体呈锥形或指状。
2. 出芽率：- 第一次实验出芽率为15%，第二次实验出芽率为20%，第三次实验出芽率为18%。
三次实验的平均出芽率为18%。
3. 影响因素分析：- 温度：37℃时酵母菌出芽率较高，温度过低或过高均不利于出芽。
- 培养基：培养基中葡萄糖含量适宜时，酵母菌出芽率较高；葡萄糖含量过高或过低均不利于出芽。
- 酵母菌活力：活力较高的酵母菌出芽率较高。
五、实验结论1. 酵母菌通过出芽生殖方式繁殖，出芽率受温度、培养基和酵母菌活力等因素的影响。
2. 本实验成功测定了酵母菌的出芽率，为后续酵母菌培养和发酵工艺提供了参考依据。
果汁酵母生长曲线
1 试验材料
1.1 材料与试剂
柑橘、苹果 （鲜果，无霉变、腐烂，成熟），市 售；安琪葡萄酒高活性干酵母，湖北安琪酵母股份有 限公司提供；蔗糖、葡萄糖、柠檬酸，食用级，市售。 1.2 实验仪器
（2） 由图 3 可见，利用柑橘汁作发酵底物，酵母菌 代谢规律与图 2 非常类似，只是其递增趋势略显平缓。
（3） 果汁的 pH 值对酵母的生长会产生影响，而 酵母的代谢反过来也会改变果汁的 pH 值。由表 1 可 知，在发酵过程中，由于酵母代谢所产生有机酸的不 断积累，使得发酵醪液中的 pH 值逐渐下降，苹果汁 与柑橘果汁的 pH 值下降均有相同的趋势。
参考文献：
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[2] 乔旭光． 果品实用加工技术 [M] ． 北京：金盾出版社， 2001：125-151.
（3） 用蔗糖调糖，柠檬酸调酸。 （4） 称取 6 g 葡萄酒活性干酵母，置于 50 mL 灭 菌葡萄糖液中，轻轻摇晃使菌体分散开，于 35 ℃保 温 30 min，期间每 10 min 振荡 1 次，至有大量气泡 产生时，活化完毕。 （5） 将菌种接种到苹果汁中，入生化培养箱培 养，培养箱温度为 22 ℃。 2.2.2 最大吸收波长的确定 菌种经 22 ℃培养 12 h 后，取样 10 mL，调 pH 值为 10，以抑制酵母菌的继续生长，用移液管分别 吸取原果汁和发酵果汁各 1 mL，置于 100 mL容量瓶 中，定容，稀释 100 倍。以稀释 100 倍原果汁的稀释 液作参比，利用分光光度计对稀释 100 倍的发酵果汁 在波长 550~570 nm 进行扫描，选出最大吸收峰。 吸光度与波长的关系曲线见图 1。
2种测定产油酵母菌生长曲线方法的比较
0． 568（ 10）
3． 716
20
0． 473（ 20）
4． 941
24
0． 355（ 30）
6． 662
28
0． 239（ 50）
6． 731
32
0． 261（ 50）
6． 875
36
0． 265（ 50）
7． 553
40
0． 279（ 50）
7． 852
44
0． 284（ 50）
8． 475
method
2． 4 酵母菌 Y1 在对数生长期的 OD600 值与直接计数法测 得细胞数量的关系 以 OD600 值为横坐标，直接计数法测定 的细胞数量为纵坐标，绘制 XY 散点图，利用最小二乘法绘 出两者的回归曲线，结果见图 3。回归方程为 y = 2． 349 8x － 0． 810 2 （ R2 = 0． 993 4） ，显著性检验结果（ F = 158． 82，P = 0． 000 2 ＜ 0． 01） 表明，回归方程具有极显著意义。
48
0． 312（ 50）
7． 625
52
0． 315（ 50）
7． 518
56
0． 327（ 50）
7． 425
60
0． 330（ 50）
6． 952
64
0． 354（ 50）
6． 354
68
0． 347（ 50）
6． 221
72
0． 341（ 50）
4． 575
图 3 酵母菌 Y1 对数生长期 OD600 值与直接计数细 胞 数 量 的
39 卷 14 期
马 勇等 2 种测定产油酵母菌生长曲线方法的比较
8203
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将 ７２１ 型分光光度计波长调整到 ５６０ ｎｍ， 预热 ３０ ｍｉｎ。以未接种的麦芽汁培养液校正比色计的零
８ ＶＥＴＥＲＩＮＡＲＹ ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬＳ ＆ ＦＥＥＤ ＡＤＤＩ １１ 卷第 １ 期
营试养验与研饲究料
点。取盛有 ３００ ｍＬ 无菌麦芽汁培养液的 １ ０００ ｍＬ 锥形瓶 ５ 个， 各瓶中加入振荡培养 ２０ ｈ 的酵母培养 液 ３０ ｍＬ， ３０ ℃恒温培养。于培养后的第０、２、４、６、 ８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、２８、３０、３２、３４ ｈ 分 别 用 无 菌 移 液 管 从 各 瓶 中 吸 取 培 养 液 ５ ｍＬ， 在 ５６０ ｎｍ 下测定 ＯＤ５６０ 值。 ２．４ 培养液糖度的测定
［ Ｊ］ ．生物技术通讯， ２００２（ １３） ： ２７５－ ２７７．
［ ５］ 张 小 卫， 邵 海 枫 ， 李 珍 ， 等． 酵 母 菌 培 养 鉴 定 方 法 的 比 较 ［ Ｊ］ ．
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｓｃｉｅｎｃｅ， １９９９（ １７） ： ２０３．
料， ２００３（ １７） ： １７－ １８．
作 者 简 介 ： 王 秋 菊 （ １９７９—） ， 女 ， 黑 龙 江 省 海 林 市 ， 在 读 硕 士 研
究生。研究方向为动物营养与饲料科学。电话： １３１９９４８０２６０， Ｅ－ ｍａｉｌ：
ｗｑｊ＿９＠ｓｏｈｕ．ｃｏｍ。
［ 收稿日期： ２００５－ １０－ １４］
参照食品科学糖度的测定， 采用波美比重计对 酵母菌培养液不同培养时间进行糖度测定。 ３ 试验结果
酵母菌生长曲线见图 １。培养液糖度的变化曲 线见图 ２。
４ 结论 本实验采用光电比浊法， 以热带假丝酵母和酿
酒酵母为例， 测定了酵母的一般生长曲线， 并借助 波美比重计对麦芽汁培养液糖度随酵母菌生长所 产生的变化进行了测定。从而得出酵母菌在 ３０ ℃ 恒温 １８０ ｒ／ｍｉｎ 振荡培养 ３０ ｈ 时， 生长达到最旺盛 期。并且随着酵母菌的生长， 麦芽汁培养液的营养 被消耗， 导致麦芽汁的糖度有所降低； 而后麦芽汁 培养液的糖度又有回升的趋势， 通过多重复试验测 定， 此结果是正确的。至于糖度回升的原因还有待 于进一步的研究， 初步认为是酵母菌细胞壁含有的 多糖类随着酵母菌的生长， 达到衰亡期， 酵母细胞
摘 要 采用 光 电 比 浊 法 对 酵 母 菌 ３６ ｈ 内 的 生 长 进 行 测 定 ， 以 确 定 酵 母 菌 的 最 优 生 长 时 间 。 结 果 表 明 ， 酵 母 ３０ ℃恒温振荡培养 ３０ ｈ 时， 生长达到最大值。由于实验采用麦芽汁培养液培养酵母菌， 酵母菌的生长对麦芽汁的糖 度有一定的要求， 因此又采用波美比重计对酵母菌在不同生长时间麦芽汁的糖度进行测定， 结果表明随着酵母菌的 生长， 麦芽汁培养液的糖度呈现先下降后有小幅度回升的趋势。
试营养验与研饲究料
兽药与饲料添加剂 ２００６ 年第 １１ 卷第 １ 期
酵母菌生长曲线的测定及不同生长时间麦芽汁糖度的变化
王秋菊 １， 许 丽 １， 崔一喆 １， 潘 军 ２
（ １． 东北农业大学动物营养研究所， 黑龙江 哈尔滨 １５００３０； ２． 哈尔滨远大牧业有限公司， 黑龙江 哈尔滨 １５００３０）
!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!
基金项目： 黑龙江省哈尔滨市攻关项目（ ２００４ＡＡ６ＢＮ０２０） 。
测糖化液糖度， 将滤液用蒸馏水稀释到糖度为 ８ 波 美度， 自然 ｐＨ 值。１１５ ℃（ ０．１ Ｍｐａ） 高压灭菌 ２０ ｍｉｎ 后冷却， ４ ℃保存备用。
９ ＶＥＴＥＲＩＮＡＲＹ ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬＳ ＆ ＦＥＥＤ ＡＤＤＩＴＩＶＥＳ
斜面培养基［５］。麦芽汁， ２％琼脂， 加热融化后， 补充失水， １１５ ℃杀菌备用。
摇瓶培养基。麦芽汁， １１５ ℃高压灭菌 ２０ ｍｉｎ， 用滤纸过滤， 去除杀菌过程中形成的不溶物， 然后 用蒸馏水调糖至 ８ 波美度， 装至三角瓶中， １１５ ℃高 压灭菌 １５ ｍｉｎ。备用。 ２ 实验方法 ２．１ 恢复培养
图 １ 酵母菌生长曲线
图 ２ 培养液糖度的变化曲线
壁 破 碎 自 溶 释 放 出 来 所 致 ［ ８］ 。
参考文献 ［ １］ 白晓 婷． 酵 母 类 产 品 在 饲 料 中 的 研 究 与 应 用［ Ｊ］ ． 中 国 饲 料 ，
２００５（ ２） ： ８－ １０． ［ ２］ Ｄａｎｎ Ｈ Ｍ， Ｄｒａｃｋｌｅｙ Ｊ Ｋ， ＭｃＣｏｙ Ｇ Ｃ， ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｙｅａｓｔ
冻干菌种装在安瓿管内， 恢复培养首先用 ７５％ 乙醇将安瓿管的外壁消毒， 将安瓿管上部用火焰上 下烧热， 滴几滴无菌水， 使管子破裂。将无菌液体培 养基加入安瓿管中， 使样品溶解， 然后用无菌吸管 取出菌液至斜面培养基中进行培养。３０ ℃恒温培养 ４８ ｈ， 使菌种复壮。 ２．２ 扩大培养
在培养好的试管中加入无菌液体培养基， 用无 菌接种环将斜面上的菌落剥离， 摇匀， 制成菌悬液， 接种到无菌的容量为 １ Ｌ 并装有 ３００ ｍＬ 液体培养 基的锥形瓶中， 在 ３０ ℃恒温 １８０ ｒ／ｍｉｎ 振荡培养 ２０ ｈ， 此时培养液浑浊。 ２．３ 生长曲线的测定
关键词 酵母菌 生长曲线 培养液 糖度 中图分类号： Ｓ８１６．７９ 文献标识码： Ｂ 文章编号： １００７－ ９１５７（ ２００６） ０１－ ０００８－ ０２
酵母是一类单细胞微生物，其结构简单， 属于真 菌类［１］。目前已知的酵母菌有 ４９０ 余种。由于酵母具 有个体大、蛋白质含量高、杂食 性 强 、易 分 离 、易 培 养、代谢产物多、综合利用广等特 点 ［２］， 在 现 代 工 业 中 除 了 用 于 酿 酒 外 ， 还 用 于 甘 油 、食 用 酵 母 、有 机 酸 、酶 制 剂 以 及 饲 料 等 的 生 产 ［ ３］ 。随 着 科 技 的 发 展 和 人们对养殖业要求的不断提高及酵母菌具有的众 多生理功能， 酵母在饲料工业中得到了广泛应用。 因此， 了解酵母菌的生长周期， 掌握其最佳生长阶 段， 以更好地生产酵母类产品就显得至关重要。 １ 试验材料 １．１ 菌种
热带假丝酵母 ２．６１７＊ 和酿酒酵母 ２．３９９＊。购自 中国科学院微生物研究所菌种保藏中心。 １．２ 培养基制备
麦芽汁［４］： 将大麦洗净， 温水浸泡 １２ ｈ 左右， 装 入铺有纱布的托盘内， ２５ ℃恒温催芽 ２４～４８ ｈ， 麦芽 伸长到麦粒的 ２ 倍时停止。将发芽大麦烘干， 研磨 成麦芽粉。１ 份麦芽粉加入 ４ 倍水， ６５ ℃恒温水浴 ４～５ ｈ， 自行糖化， 直至糖化完全。糖化液经过 １２ 层 纱布过滤， 如果滤液浑浊， 可用鸡蛋清沉淀（ 每 １ Ｌ 滤液加 １ 个鸡蛋清： 在 ２０ ｍＬ 水中加入 １ 个鸡蛋清 用玻璃棒搅拌调匀至产生泡沫， 倒入糖化液中， 搅 拌煮沸， 将滤液静置片刻， 过滤） 。用波美比重计检