宏基因组测序-高科技与产业化-陈龙-20170719

宏基因组测序-高科技与产业化-陈龙-20170719
宏基因组测序-高科技与产业化-陈龙-20170719

宏基因组测序

一、概况

宏基因组学(Metagenomics,又称元基因组学)这一概念最早在1998年由威斯康辛大学植物病理学部门的Jo Handelsman等提出,随后伯克利分校的研究人员Kevin Chen和Lior Pachter将宏基因组定义为:应用现代基因组学的技术直接研究自然状态下的微生物的有机群落,而不需要在实验室中分离单一的菌株的科学。鉴于环境中99%的微生物不可培养,宏基因组无需进行微生物分离操作的技术特点打破了传统微生物学基于纯培养研究的限制,为充分认识全球和人体范围内微生物和开发利用未培养微生物,并从完整的群落水平上研究微生物的活动和发掘潜在功能提供了可能。传统的宏基因组学研究通过直接从环境样本中提取DNA,构建DNA克隆载体的宏基因组文库,并利用基于核酸序列差异分析、克隆子的特殊代谢活性、底物诱导基因的表达和(或)稳定同位素和荧光原位杂交等技术对宏基因组文库进行筛选和分析,从而有效地利用环境中丰富的微生物资源和挖掘新的特殊功能代谢物。

在宏基因组学研究的发展前沿中,核酸测序技术测序速度和通量的增长引人注目。在下一代测序技术(NGS,又称第二代高通量测序技术)出现之前,基于宏基因组测序的核酸序列差异分析通常使用Sanger测序(主要基于双脱氧核苷酸链终止反应)方法,对宏基因组克隆文库或功能扩增子进行测序,来研究环境中微生物群落多样性及功能特征。但Sanger测序方法通量较小、测序周期较长且价格昂贵。

随着新一代测序技术的迅猛发展以及广泛应用,宏基因组测序的方法也发生了翻天覆地的变化,目前科学家们可以对环境中的微生物全部基因组进行测序,在获得海量的数据后,全面地分析微生物群落结构以及基因功能组成,了解微生物如何耐受极端环境,发觉新的生物资源并探索微生物与环境间的相互作用。下一代测序方法使用了几种不同的高通量平台,最先使用的是基于焦磷酸聚合酶乳液的Roche GS20454测序仪(又称焦磷酸测序仪)。焦磷酸测序技术继承了Sanger 测序读长较长和准确率高的优点,并且显著提高了测序的通量。虽然焦磷酸测序仪(包括GS20和GS FLX系列及其试剂)使用超过了10年(2005~2016),但它仍然存在一些缺点:测序试剂成本高、均聚物错误率高(复杂重复序列的错读)以及基于磁珠DNA分子凝集的表面区域捕获限制了测序通量和获得reads的数目。第二个出现的下一代测序仪是2006年引入的Solexa(Illumina)Genome Analyzer(GA),这种测序技术将寡核苷酸阵列的flow cell、可逆的链聚合反应和桥式PCR反应集合于一体,并且一次运行能产生超过1.8TB的数据量。Illumina 目前拥有多种技术平台,包括GA、MiSeq、HiSeq和NextSeq,并且具有多种可选择读长(100~300bp PE reads)模式和通量以应对各种实际测序需求。比如,MiSeq平台基于overlap的最长read为500~550bp,但是相较于HiSeq平台每次运行能产生数十亿reads而言,MiSeq平台通量较低。合成长读长测序技术(TruSeq synthetic long reads或Moleculo)作为一种新兴的Illumina测序技术,除了能够获得较长的read长度(超过8kb),还能够有效促进高度复杂的土壤微生物组或其它生物样本的组装。下一代测序技术的进步使得宏基因组研究中组装contigs 的长度显著增加。

包括单分子DNA测序仪在内的新兴第三代测序技术在更快速、高信息量的宏基因组研究中展示出巨大潜力。PacBio单分子实时定量(SMRT)技术目前能够提供约10~25kb的读长,每个SMRT cell能够产生约300Mb数据量。除优秀的读长和通量外,PacBio平台还能够在DNA合成过程中不进行化学修饰检测非常规或修饰碱基,如DNA甲基化等。牛津纳米孔(Oxford Nanopore)测序平台是另外一类新兴且具有潜力一种单分子测序仪。不同于目前的单分子测序平台,Oxford平台不依赖于边合成边测序(SBS)方法,而是通过纳米孔直接对核酸进行测序。与PacBio平台相似,牛津纳米孔能够检测DNA修饰,拥有1~2kb平均读长,读长最长可达90kb。牛津纳米孔测序仪最主要的益处在于其使用无线技术能够在个人笔记本电脑上实时监控测序过程。过去的5年中,PacBio平台已经成为微生物单菌株从头(De novo)测序和宏基因组拼接的强有力技术。使用PacBio平台进行文库构建时需要微生物的DNA具备较高的分子量(大于40 kb),这是PacBio使用的一个限制。牛津纳米孔为潜在的长scaffolds(大于50kb)的测序和直接从环境样本中重构基因组提供了一条廉价的途径。这些新技术的主要挑战是如何获得几百kb甚至几Mb高质量和高分子量的DNA。就大规模的研究而言,Oxford和PacBio平台通量仍然较低,但鉴于两者在测序组装方面应用的优势,使得这两种单分子测序技术为未来微生物组群落研究中前途光明。

微生物组是指特定环境中的全部微生物及其遗传物质的集合,如土壤或肠道中栖息的全部微生物。这些栖息在特定环境中的微生物组起着维持生态系统多样性和平衡的重要功能,并与人类健康、气候变化和粮食安全等诸多方面密切相关。宏基因组测序技术为研究微生物组提供了极大的便利,短短十几年来,基于宏基因组测序的微生物组研究已经渗透到各个领域,从海洋到陆地,再到空气,从白蚁到小鼠,再到人体,从发酵工艺到生物能源,再到环境治理等。

表1截止到2016年国际上构建的大型基因集汇总

项目/疾病基因数研究对象年份测序平台

MetaHIT3,299,822欧洲人群2010Illumina GA

T2D4,267,985中国人群2012Illumina

HMP5,140,472美国人群2012Illumina GAIIx

LC5,382,817中国人群2014Illumina

IGC9,879,896中、美、欧人群2014Illumina

OM-RGC40,154,822海洋2015Illumina -2,572,074中、美、欧小鼠2015Illumina HiSeq2000

-7,685,872中、欧猪群2016Illumina GAIIx、HiSeq2000

宏基因组关联分析(MWAS)作为微生物组研究的一把利器,在微生物与疾病的关系研究中真发挥越来越重要的作用。Nature于今年7月6日紧随Science 4月29日的微生物特刊,推出业内顶级专家主笔的6篇有关“肠道菌群-宿主相互作用”的重量级综述和观点透视专辑,展示了肠道菌群在多个领域的临床应用发展中的重要进展。本期专辑的推出,为肠道菌群和肠道健康的研究和转化再一次摇旗呐喊。其中Jack A.Gilbert(美国环境、医院和家庭微生物组计划发起人)介绍了有关宏基因组关联分析在疾病领域的研究进展。2010-2014年间国内外应用宏基因组测序技术对不同疾病类型,包括炎症性肠病(IBD)、结直肠癌(CRC)、

II型糖尿病(T2D)、肝硬化(LC)等人类粪便样本进行测序,并基于MWAS 研究各类疾病与肠道微生物组间的关系,筛选生物标记(Bio-marker)(表1)。未来基于MWAS技术对微生物组在相关疾病中作用的研究会越来越深入,科学家们希望能够发展一个微生物全球定位系统来对疾病人群进行分层,指导精准医疗,从而维护人类健康。

涉及微生物组的研究工作也引起了国内外的广泛关注,各个国家及其科研工作者积极参与到多个微生物组研究计划之中。

表2截止到2016年国际上启动的大型人类微生物组研究项目汇总

项目周期参与国家

人类微生物组计划(HMP)第一阶段2007-2012美国

人类肠道宏基因组(MetaHIT)2008-2012中国、丹麦、法国、德国、意大利、荷兰、西班牙、英国

加拿大人微生物组项目(CMI)2008-2012加拿大老年人宏基因组(ELDERMET)计划2008-2013爱尔兰

六国补充人类微生物组研究计划2008-2012澳大利亚、中国、法国、日本、新加

坡、韩国

国际人类微生物组联盟(IHMC)2007至今澳大利亚、加拿大、中国、法国、冈比亚、德国、哈萨克斯坦、爱尔兰、日本、韩国、西班牙、美国

人类微生物组计划(HMP)第二阶段2013至今美国

我的新肠道(MNG)计划2013-201815个国家合作

营养药学生物中心(APC)微生物组联

2013-2019爱尔兰MetaGenoPolis(MGP)计划2013-2017法国

环境,基因和慢性疾病(EGCD)计划2016至今加拿大、国际合作

自然资源与环境:部门挑战-基因组解决

方案(NRESCGS)计划

2016至今加拿大、国际合作

肠道微生物组学联合行动(JAIM)计划2016至今加拿大、国际合作人类微生物组的研究主要由美国和加拿大主导,中国也参与其中。截止到今年,国际上启动的大型人类微生物组研究项目有13项,其中有8项正在实施,另外5项已经完成。在这些大型项目中,美国、加拿大、爱尔兰和法国是主要的参与国家,也包括2项中国参与的项目,分别是人类肠道宏基因组(MetaHIT)和国际人类微生物组联盟(IHMC)。美国是绝对的引领者,其中美国独立开展2项微生物组计划,包括最早的一项—人类微生物组计划(HMP),并参与全部人体微生物组计划中的5项。加拿大后来居上,主导人类微生物组研究项目中的4项(表2)。

在人类微生物组项目中最早启动的人体微生物组计划(HMP)针对5个人体部位(胃肠道,口腔,鼻腔、女性生殖道和皮肤)的微生物组变化与疾病健

康的关系,并且人体微生物组计划被确立为美国国立卫生研究院医学研究路线图的重要组成部分,同时也为其他科学研究提供了信息和技术支称。

MetaHIT计划是由欧盟第七框架计划(FP7)资助的子项目之一,合作伙伴包括了来自中国在内的8个国家学术界和工业界的13个成员。该计划研究了人类肠道中的所有微生物群落,了解了人类肠道中细菌的物种分布,最终为后续研究肠道微生物与人类肥胖、肠炎等疾病的关系提供非常重要的理论依据。

表3截止到2016年国际上启动的大型环境微生物组研究项目汇总

环境微生物组的研究相比人体微生物组研究开展的更早,涉及的范围也更为广泛。客观上来说,微生物组研究的很多工具,方法,思路等多来自于环境微生态学领域。最初,我们只是把环境中的微生物作为生态学系统中的一部分来考虑,直到最近才将这种观念应用于人体微生物组的研究中。所以,人类微生物组研究还有很多地方需要借鉴环境微生物组的研究方法和成果。综合来看,美国在环境微生物组方面的大型研究项目占据绝对主导地位,在统计的9个环境微生物组研究中,有5个项目由美国独立实施,其余的国际项目美国多有参于(表3)。

地球微生物计划(EMP)通过对全球典型的环境样本(包括土壤、海洋、空气、淡水等生态系统)进行宏基因组测序,并全方位地分析微生物群落的多样性和功能,为后续环境微生物组研究提供了参考和依据。

2016年5月13日,白宫科技政策办公室(OSTP)在一些联邦机构(包括美国能源部、航空航天局、国立卫生研究院、美国国家科学基金会、农业部)、产业和基因会的资助下宣布了一个全国性的微生物组计划(NMI),这是奥巴马政府继脑计划、精准医学、抗癌“登月”之后推出的又一个重大国家科研计划。该计划关注的方向主要包括如下几个方面:支持跨学科领域研究,解决不同生态系统微生物的基本问题;开发平台技术,对不同生态系统中微生物组的认识以及知识的积累,并提高微生物数据的访问;通过公民科学、公众参与,扩大微生物的影响力。

整体来讲,各国都在加紧制定符合本国经济利益的微生物组项目。项目的目标设定都比较宏观和长远,国际化合作项目越来越多,并且精细化,专业化项目也越来越多。其中,在计算生物学和生物信息学、参考数据库和生物资源库、标准化的协议和工具等方面是微生物组研究的重点。纵向和功能性的微生物组研究,以及跨学科研究也越来越受欢迎。

二、市场分析

美国政府一直在微生物组研究领域进行投资。早在2007年,美国国家卫生研究院启动的人类微生物组计划(HMP)中,就累计投入资金2.15亿美元,为今天微生物组研究的迅猛发展奠定了基础。近几年,美国政府对微生物组领域的支持力度进一步增加。美国官方2015年公布的报告显示,2014年度在微生物组研究领域的联邦投资是2012年投资的3倍,最近3年间的联邦投资总额超过9. 22亿美元。2016年,美国白宫宣布启动国家微生物组计划(NMI)中,美国政府将在未来两年投入1.21亿美元联邦资金作为该计划的启动资金,除了联邦机构外,还有数十所大学和研究机构将加入“国家微生物组计划”,他们将在未来几年投入总共4亿美元的启动资金。

据不完全统计,2016年,提供宏基因组测序服务的公司在微生物业务方向的销售额超过1亿5000万元。其中上海美吉生物医药科技有限公司2016年微生物业务方向业绩达到4600万元,较2015年(3700万元)同期增长12.43%(表4)。

表42016年度国内部分测序服务公司全年测序服务业务额汇总

19壹基因0.15-

20世和基因0.1-

21菲沙基因0.1-

2016年国家自然科学基金中标项目统计结果显示,微生物组研究领域的国自然中标项目584个,累计金额2.75亿元,占国家自然科学基金总金额(183.2亿元)的1.5%。在微生物组研究领域中,肠道、土壤和水体微生物组研究方向占据微生物组研究方向总金额的58.05%。其中肠道微生物组研究方向占据首位,中标项目137个,累计金额7487万元,占微生物组研究方向总金额的27.23%,土壤微生物组和水体微生物组各占微生物组研究方向总金额的19.96%和10.86%(表5)。

表52016年度国家自然科学基金微生物组研究方向中标项目统计结果汇总

排序方向项目数量金额(万元)微生物组方向金额占比

1肠道微生物组研究方向137748727.23% 2土壤微生物组研究方向125549019.96% 3水体微生物组研究方向60298610.86%

合计3221596258.05%

三、研发动向与展望

目前宏基因组学研究中仍有许多挑战需要解决以增加我们对微生物组群落和潜在功能的深入理解。微生物群落分析最大的一个障碍是生物信息学和计算瓶颈,如构建基因集以改善reads的组装、构建特定微生物类群注释平台并开发多组学综合算法以增强对微生物组群落和潜在功能的阐释。宏基因组学研究中还需要解决的其它挑战包括:高度多样化和复杂样本类型(如土壤、沉积物和人体肠道)中DNA分子的提取,直接从复杂生态系统中组装完整基因组序列而非序列片段,满足大型宏基因组de novo组装的高计算内存需求,对TB到PB数据足够的存储和分析选择,开发统计和数学模型来整合数据并提供有生物学意义注释信息。

1.普及宏基因组测序技术,降低宏基因组学研究成本

国内宏基因组学研究仍落后于国外研究水平,其中一部分原因归结于宏基因组研究成本较高。目前国内大部分科研及医疗机构从事微生物组的研究仍然依托于扩增子测序技术(价格是宏基因组测序服务价格的十分之一),并且对宏基因组测序技术了解不够深入。相较于2015年,2016年测序成本降低至同期的四分之一,但宏基因组测序服务(测序+生物信息学分析)价格却只降低了约30%,因此我们仍需促进宏基因组学研究的普及,以提高科研及医疗机构研究人员生物信息学分析能力和水平,从而降低宏基因组学研究的服务成本。

2.控制实验成本的同时降低污染,客观还原环境微生物群落结构

针对人体、动物和植物组织等含有宿主细胞,以及粘膜、血液和牙龈等微生物含量较低的样本类型时,常规DNA提取手段仍无法有效避免宿主或环境(试

剂盒)污染。目前针对宿主的污染情况可在后续生物信息分析时通过比对宿主参考序列剔除;微生物含量较低类型样本可以通过全基因组扩增(WGA)的方法提高微生物DNA的含量,但研究成本会相应增加。因此,我们仍需要研发特殊的方法,如基于宿主与微生物DNA沉降系数不同进行梯度离心以最大程度的降低宿主DNA含量。此外,由于不同微生物(如细菌与真菌)细胞壁结构存在差异,目前市场上流通的DNA抽提试剂盒很难保证均一化抽提各类微生物的DN A。就细菌与真菌而言,我们可以基于两者细胞壁结构的不同,在进行微生物细胞裂解前加入真菌破壁酶,提高真菌DNA抽提的比率,以期最大程度客观还原环境中微生物的真实群落结构组成。

3.优化生物信息分析流程,提高数据利用率

目前微生物组研究主要集中在人体和实验室环境方向,针对极端环境领域尤其是未知的复杂微生物组样本类型的测序数据,数据拼接利用率较低(不足50%)。针对这些情况,一方面我们需要拓展对未知环境领域的微生物组研究和认识,将已有的数据整合构建参考数据库;另一方面还需要优化宏基因组数据拼接流程并开发新的算法,以尽可能提高宏基因组数据的利用率。也可以参考基因组学研究中酶切图谱技术,Hi-C(又称Meta3C)技术,三代测序数据辅助拼接,以及二代、三代数据混合拼接等方法以提高测序数据拼接效率和准确性。

4.宏基因组测序流程标准化,数据共享更具可比性

在微生物的研究中,宏基因组测序技术作为主要方法,已经并且将继续产出海量的测序数据和分析结果。在宏基因组测序中使用标准化的实验和分析流程将有助于后期数据的整理、储存和共享。此外还需要各领域研究组织和机构间相互协作,建立宏基因组数据共享平台,将测序数据以及结果信息(Metadata)以标准化的语言格式上传共享,以便于不同研究者间进行相同或不同生态系统间微生物多样性和功能的比较,以及检索特定生态系统中微生物群落和功能。

5.宏基因组测序与其它组学相结合,微生物研究更深入

近十年核酸测序和质谱(MS)技术的进步使得分析各种日益复杂的生态系统中微生物组成为可能。近十几年,国外的科研工作者采用先进的测序和质谱技术相结合对不同多样性和复杂性的微生物组(包括切页蚁群、白蚁肠道、人体肠道、沉积物、海洋水体、冻土和草原土壤等)进行了研究,然而国内的多组学研究目前仍然不够成熟。随着技术手段的不断提高,利用多组学结合技术(基因组学、转录组学、蛋白组学与代谢组学相结合)将微生物群落的新的和已有的研究结果进行整合,对于破译微生物在它们栖息地的作用和确定微生物群落成员间复杂的相互作用对生态系统持续性和健康的影响至关重要。对这些对微生物群落表型更深入的认识将便于我们更好的理解环境扰动如气候变化和疾病对微生物组功能的影响,更好的预测这些变化的影响并促进形成维持生态系统稳定性和人体健康的策略。

6.启动中国人的微生物组计划

中国人也应该尽快启动自己的微生物组计划,利用中华民族遗传背景、生活方式和养生保健经验丰富多样的优势,把大规模的样本资源和现代组学技术和大数据技术结合,建立中华民族典型人群的健康与疾病微生物组标准数据库和菌种

库;建立以微生物组结构和功能动态为核心的人体健康监测新技术;开发可以调节微生物组改善健康的药食同源食品、药品、益生元、益生菌以及可以重构健康微生物组的菌群移植等新产品和新技术;为预防疾病、改善中国民众健康、推动中国传统医药升级换代和走向世界作出独特的贡献。

宏基因组分析和诊断技术在急危重症感染应用的专家共识

宏基因组分析和诊断技术在急危重症感染应用的专家共识 感染是急危重症患者死亡的主要原因之一。近年来,随着新发病原微生物的出现、耐药病原微生物的增多以及免疫抑制宿主的增加,感染的发病率和死亡率仍居高不下,脓毒症(严重感染)患者病死率高达50%[1-3]。最新调查研究发现,中国脓毒症相关性标化死亡率为66.7例/10万人口,全国每年共有脓毒症相关性死亡病例近103万例[3]。重症感染起病急、进展快、病原体复杂,短时间内能否明确致病病原微生物至关重要。 传统的病原微生物检测方法主要包括形态学检测、培养分离、生化检测、免疫学和核酸检测。因操作简单、快速、技术要求不高,同时具有一定的诊断敏感性和特异性,目前仍在临床上广泛使用。但传统的检测方法在敏感性、特异性、时效性、信息量等方面存在局限,而且对于未知或者罕见的病原微生物,无法快速识别。 基于宏基因组新一代测序技术(metagenomics next-generation sequencing,mNGS)不依赖于传统的微生物培养,直接对临床样本中的核酸进行高通量测序,然后与数据库进行比对分析,根据比对到的序列信息来判断样本包含的病原微生物种类,能够快速、客观地检测临床样本中的较多病原微生物(包括病毒、细菌、真菌、寄生虫),且无需特异性扩增[4-8],尤其适用于急危重症和疑难感染的诊断。 为了规范运用mNGS进行病原微生物的诊断、正确解读检测结果和指导治疗,我们组织了急危重病、感染病学和病原微生物学相关领域的专家,制定了本共识。 1 mNGS分析和诊断技术是急危重症感染快速、精准诊疗的发展方向 新一代测序技术是一个开放的分析和诊断系统,目前已经纳入的病原体有8000多种,其中包括3000余种细菌、4000余种病毒、200余种真菌和140种寄生虫,为疑难危重症及罕见病原微生物感染的诊断提供了有效的技术手段。 自2008年成功应用于临床诊断新发病原体感染以来[9-10],目前mNGS技术已经逐步用于临床疑难感染诊断,如华山医院张文宏团队[11]用mNGS协助确诊猪疱疹病毒的跨物种传播,并给予针对性治疗使患者痊愈,深圳市第三人民医院用mNGS确诊了一例罕见阿米巴脑炎[11-12]。 mNGS对脓毒症、免疫抑制宿主并发严重感染、重症肺部感染等疾病具有较高的临床应用价值,能够快速、精准地找到病原体;另外对于抗菌药物治疗方案的制定和治疗效果的评估具有一定的指导作用[9-16]。Long等[17]研究发现血培养联合mNGS诊断细菌或真菌感染,阳性率较单用血培养显著升高。以健康人群为基线,建立每种微生物在正常人群中的分布情况模型,进而计算脓毒症指数来评估检出微生物的核酸数量,Crumaz等[18]发现在脓毒症患者血液标本中病原菌的脓毒症指数绝对值、丰度显著升高,而且其变化与临床治疗效

宏基因组学概述

宏基因组学概述

————————————————————————————————作者: ————————————————————————————————日期: ?

宏基因组学概述 王莹,马伊鸣 (北京交通大学土木建筑工程学院环境1402班) 摘要:随着分子生物学技术的快速发展及其在微生物生态学和环境微生物学研究中的广泛应用,促进了以环境中未培养微生物为研究对象的新兴学科——微生物环境基因组学(又叫宏基因组学、元基因组学,英文名Metagenomics)的产生和快速发展。宏基因组学通过直接从环境样品中提取全部微生物的DNA,构建宏基因组文库,利用基因组学的研究策略研究环境样品所包含的全部微生物的遗传组成及其群落功能.在短短几年内,宏基因组学研究已渗透到各个领域,包括海洋、土壤、热液口、热泉、人体口腔及胃肠道等,并在医药、替代能源、环境修复、生物技术,农业、生物防御及伦理学等各方面显示了重要的价值。本文对宏基因组学的主要研究方法、热点内容及发展趋势进行了综述 关键词:宏基因组宏基因组学环境基因组学基因文库的构建 Macro summary of Metagenomics WangYing,Ma Yi-Ming (BeijingJiaotongUniversity, Institute of civil engineering,)Key words:Metagenome; Metagenomics;The environmental genomics 宏基因组学(Metagenomics)又叫微生物环境基因组学、元基因组学。它通过直接从环境样品中提取全部微生物的DNA,构建宏基因组文库,利用基因组学的研究策略研究环境样品所包含的全部微生物的遗传组成及其群落功能。它是在微生物基因组学的基础上发展起来的一种研究微生物多样性、开发新的生理活性物质(或获得新基因)的新理念和新方法。其主要含义是:对特定环境中全部微生物的总DNA(也称宏基因组,metagenomic)进行克隆,并通过构建宏基因组文库和筛选等手段获得新的生理活性物质;或者根据rDNA数据库设计引物,通过系统学分析获得该环境中微生物的遗传多样性和分子生态学信息。 1.起源 宏基因组学这一概念最早是在1998年由威斯康辛大学植物病理学部门的Jo Handelsman等提出的,是源于将来自环境中基因集可以在某种程度上当成一个单个基因组研究分析的想法,而宏的英文是"meta-",具有更高层组织结构和动态变化的含义。后来伯克利分校的研究人员Kevin Chen和LiorPachter将宏基因组定义为"应用现代基因组学的技术直接研究自然状态下的微生物的有机群落,而不需要在实验室中分离单一的菌株"的科学。 2 研究对象 宏基因组学(Metagenomics)是将环境中全部微生物的遗传信息看作一个整体自上而下地研究微生物与自然环境或生物体之间的关系。宏基因组学不仅克服了微生物难以培养的困难, 而且还可以结合生物信息学的方法, 揭示微生物之间、微生物与环境之间相互作用的规律, 大大拓展了微生物学的研究思路与方法, 为从群落结构水平上全面认识微生物的生态特征和功能开辟了新的途径。目前, 微生物宏基因组学已经成为微生物研究的热点和前沿, 广泛应用于气候变化、水处理工程系统、极端环境、人体肠道、石油污染、生物冶金等领域, 取得了一系列引人瞩目的重要成果。 3 研究方法

宏基因组测序在感染性疾病病原学诊断中的应用

宏基因组测序在感染性疾病病原学诊断中的应用 感染性疾病一直是世界范围内疾病主要致死原因之一。WHO监测统计数据显示,在2016年全球约5690万例死亡患者中,有3项感染性疾病(下呼吸道感染、腹泻病、结核病)位列前10大死因,共造成的死亡数约占总死亡数的10%,其中下呼吸道感染造成约300万例患者死亡,腹泻病造成约140万例患者死亡,结核病造成约130万例患者死亡。感染性疾病的病原体十分复杂,包括细菌、病毒、真菌及寄生虫等,而在目前的临床微生物检测工作中,微生物实验室对病原体的诊断主要还是依赖自19世纪即开展的培养、染色镜检等传统检测方法,以及后续发展的核酸扩增检测(例如PCR)、分子免疫学检查(例如ELISA)等检测手段,这使得临床医生对感染性疾病的病原学诊断、病情评估及治疗方案制定等存在许多困难。目前仍有约60%的感染性疾病病例的病原体是诊断不明的。由于宏基因组测序(mNGS)对病原学诊断具有无偏移、全覆盖、高效率等优势,越来越多的学者尝试将其应用于临床病原学诊断之中。在此,我们回顾了近些年宏基因组测序在病原学诊断中的临床应用进展情况。 1.临床宏基因组学 宏基因组的概念最早在1998年被学者提出,指在一份独立的土壤标本中,所有微生物的基因组信息的总和,包括那些无法培养的生物体的基因组信息。后来,宏基因组的概念不仅仅局限于描述环境来源的标本,还被逐渐沿用于描述临床来源标本中的生物遗传信息特征。临床宏基因组学指为获取临床相关的微生物信息而对临床来源的标本中所有的核酸序列进行测序分析的一门学科间。宏基因组测序主要是通过以新一代测序为代表的高通量测序技术,对临床来源的标本进行宏基因组学分析,以获取病原体的物种分类、血清型、耐药性、毒力等一系列生物信息。由于宏基因组测序不依赖病原体培养结果且可以不对可疑病原体的标志核酸序列进行靶向扩增,这使得检测结果更具客观性和全面性,且更迅捷,这是对传统实验室检测手段的有效补充。《中国成人医院获得性肺炎与呼吸机相关性肺炎诊断和治疗指南(2018年版)》也指出临床宏基因组学能明显提高病原体诊断的敏感性,部分病原体检测花费的时间更短,尤其对罕见病原体的诊断具有优势,可审慎地应用于临床实践之中。正是得益于测序技术的不断进步与发展,

宏基因组学的一般研究策略

宏基因组学的一般研究策略 摘要: 宏基因组学是目前微生物基因工程的一个重要方向与热点。它把微生物的总群体特性与基因组学实验手段结合了起来,包括从环境样品中提取总DNA、再用可培养的宿主微生物建立文库及筛选目的克隆和基因。该法是研究不可培养微生物、寻找新的基因和开发新活性产物的重要新途径。它避开了微生物分离、纯化和培养的步骤,大大扩展了微生物资源的利用范围。本文旨在介绍宏基因组学的一般研究方法并结合我们的实验情况,对这一崭新领域中的最新研究策略进行了简要综述。 关键词: 宏基因组学, 不可培养微生物, 文库构建, 文库筛选,研究策略 Strategies for accessing metagenomics for desired applications Abstract: Metagenomics is a new field of microbial genetic engineering. It has the characteristics of microbial ecology and the methodology of genomics. Metagenomics includes genomic DNA isolation, library construction and screening strategies, and can be used in the discovery of new gene and biocatalysts and in the study of uncultured microorganism. Metagenomics can overcome the advantages of isolation and cultivation procedures in traditional microbial method, and thus greatly broaden the space of microbial resource utilization. In this paper, we mainly reviewed the metagenomic methodology, together with the latest advances and novel strategy in this research field. Keywords:Metagenomics; Uncultured microorganism;Library construction;Library screening Research strategies 大自然中蕴藏着无数具有重要价值的微生物及其活性产物,也是新基因及生物学资源的重要源泉,对其进行研究成为微生物学和分子生物学研究的一个重要方向。然而人们现在能够培养与利用的不到环境中总微生物的1%[1]。宏基因组学(metagenomics)是直接从环境样品中提取全部微生物的总DNA, 避开了分离、纯化和培养微生物的过程来构建宏基因组文库,用基因组学的研究策略来研究环境样品中的总微生物的组成及其在群落中的功能等。现在,宏基因组学技术方法已在微生物多样性,微生物细胞间的相互作用,新基因和新型生物催化剂的开发,新的抗生素的开发及环境生态等方面得到了广泛应用[2]。本文旨在介绍宏基因组学的一般实验方法并结合我们的研究情况,对这一崭新领域中的最新研究策略进行了简要综述。深化了我们对这一学科的认识,促进了该学科的进步。 1 宏基因组学研究策略 1.1宏基因组学概要 宏基因组学是Handelsman等于1998年提出的[3], 可见是一门很新的学科,其随着基因组实验手段,生物信息学和测序技术等的日新月异也迅猛发展了起来,这个新学科是以环境样品的总微生物基因组为实验对象,通过测序分析、文库评价、产活性物质及其基因的克隆的获取和基因功能的鉴别,对微生物种群组成与生物量、生态学关系、生物化学关系与环境关系以及功能活性进行研究[4]。其主要过程包括样品和基因的富集和提取; 宏基因组文库的构建; 目的基因的筛选; 目的基因活性产物的表达(图1)。 1.2 微生物及其基因的富集 在文库筛选过程中由于目的基因比例较小, 对环境中微生物的富集不但可提高基因总量,有利于基因的提取,还可增加目的基因的比例,如Kouker 等用橄榄油富集产脂肪酶的微生物收到了很好的效果[5 ],橄榄油不仅可作为底物,还可诱导脂肪酶的合成。目前富集技术主要分为细胞水平和基因水平。其中细胞水平主要是用选择培养基来富集某些微生物, 常

宏基因组测序技术检测方法

宏基因组测序技术检测标准 简介: 宏基因组测序介绍 宏基因组学是以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,通过现代基因组技术手段包括功能基因的筛选和测序分析,对环境中微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系以及环境之间的关系进行研究的新的微生物研究方法。随着高通量测序技术的发展,为宏基因组学研究提供了新的理想研究方法。高通量测序的方法无需分离环境中各种微生物,也无需构建克隆文库就可以直接对环境中所有微生物进行测序。可以真实客观的反映环境中微生物的多样性、种群结构、进化关系等。目前又可以分为针对16s DNA/18sDNA/ITS测序和针对宏基因组全序列的测序研究。下面就是对这两者的具体介绍。 一、16s DNA/18s DNA/ITS测序 16sDNA是最常用的微生物物种分子鉴定的标签,,通过对样品中16sDNA测序可以鉴定其中微生物物种的丰度和分布情况。目前,普遍使用Roche 454平台来对环境样品进行16s DNA测序。因为16s DNA序列比较相似,读长短的话,难以进行有效的比对,而454平台的平均读长在400bp左右,可以很好的避免此类问题。 二、宏基因组全测序 在这种测序方式中,我们可以假定一个环境中的所有微生物就是一个整体,然后对其中所有的微生物进行测序。这样我们就可以研究样品中的功能基因以及其在环境中所起的作用而不用关心其来自哪个微生物。可以发现新的基因,可以进行基因的预测,甚至有可能得到某个细菌基因组的全序列。此外,该项测序不单可以针对DNA水平,也可以针对全RNA进行基因表达水平的研究。 样品处理:

宏基因组样品收集主要有口腔,下呼吸道痰液,下呼吸道灌洗液,皮肤和粪便。样品采集遵照样品采集规范(人)所规定的操作来进行。尽量留足备份样品。核酸提取: 宏基因组核酸提取主要有两种方法:膜过滤法和直接裂解提取。对于液体样品如痰液,灌洗液两种方法都适用,对于固体样品如粪便宜采用直接裂解的方法。核酸提取后用NanoDrop ND-1000测定,260/280 = , 260/230 = ,电泳检测DNA 应是完整的一条带。 测序Sequencing 1)16S/18S测序: Sanger测序: 用于低通量的16S/18S DNA测序,提取宏基因组后,首先通过PCR将16S/18S 序列扩增出来,再将其连接到克隆载体上,导入感受态细胞,涂平板做蓝白斑筛选,选出阳性克隆提质粒,对质粒进行测序反应,测序反应后纯化后用ABI 3130或ABI 3730进行毛细管电泳测序。 由于其测序准确率比较高,而通量非常低,现通常用做二代测序结果的验证。454 Platform: 454平台主要包括两种测序系统:454 GS FLX+ System和454 GS Junior System。454 GS FLX+ System测序读长可以达到600-1000bp,通量450-700M,GS Junior System测序读长在400bp左右,通量在35M。

利用病毒宏基因组学寻找在瓜德罗普不同蚊种中稳定独特的核心真核病毒

利用病毒宏基因组学寻找在瓜德罗普不同蚊种中稳定独特的核心真核病毒 Stable distinct core eukaryotic viromes in different mosquito species from Guadeloupe, using single mosquito viral metagenomics 利用病毒宏基因组学寻找在瓜德罗普不同蚊种中稳定独特的核心真核病毒 作者:Chenyan Shi 等 期刊:Microbiome 时间:2019.8 影响因子: 10.465 DOI:10.1186/s40168-019-0734-2 一、研究背景 对人类来说,蚊子这种无脊椎动物是一种非常重要的病毒载体,近年来的研究证明其身上携带着大量未被研究的病毒。以往的研究通常对大量的蚊子进行宏基因组测序,而不评估单个蚊子的病毒多样性。为了解决这个问题,作者使用优化的病毒宏基因组学实验操作流程(NetoVIR)来比较2016年和2017年从瓜德罗普岛不同地点收集的埃及伊蚊和埃及库蚊的病毒量。(注:瓜德罗普是法国的海外省,位于加勒比海小安的列斯群岛中部。属热带雨林气候,平均气温26℃。) 二、实验结果 1.利用单只蚊子进行病毒宏基因组的可行性 作者将单只蚊子和混合蚊(5只蚊子)分别测序组装成contigs,然后比对注释分类为真核生物,细菌,古生菌,真核病毒,噬菌体,待确认噬菌体(噬菌体TBC),未归类病毒和暗物质(未被比对软件识别的contigs)共8个分类。通过比较单只蚊子与混合蚊在每个分类下reads数量占比、映射到nr contigs 数目、病毒读数比例(真核病毒、噬菌体和未分配病毒),发现单只蚊子样本的总读数和病毒读数比例与混合蚊样本相比无显著差异,证明了单只蚊子进行病毒宏基因组学研究的可行性。

宏基因组测序技术检测方法模板

宏基因组测序技术 检测方法

宏基因组测序技术检测标准 简介: 宏基因组测序介绍 宏基因组学是以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,经过现代基因组技术手段包括功能基因的筛选和测序分析,对环境中微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系以及环境之间的关系进行研究的新的微生物研究方法。随着高通量测序技术的发展,为宏基因组学研究提供了新的理想研究方法。高通量测序的方法无需分离环境中各种微生物,也无需构建克隆文库就能够直接对环境中所有微生物进行测序。能够真实客观的反映环境中微生物的多样性、种群结构、进化关系等。当前又能够分为针对16s DNA/18sDNA/ITS测序和针对宏基因组全序列的测序研究。下面就是对这两者的具体介绍。 一、16s DNA/18s DNA/ITS测序 16sDNA是最常见的微生物物种分子鉴定的标签,,经过对样品中16sDNA测序能够鉴定其中微生物物种的丰度和分布情况。当前,普遍使用Roche 454平台来对环境样品进行16s DNA测序。因为16s DNA序列比较相似,读长短的话,难以进行有效的比对,而454平台的平均读长在400bp左右,能够很好的避免此类问题。 二、宏基因组全测序

在这种测序方式中,我们能够假定一个环境中的所有微生物就是一个整体,然后对其中所有的微生物进行测序。这样我们就能够研究样品中的功能基因以及其在环境中所起的作用而不用关心其来自哪个微生物。能够发现新的基因,能够进行基因的预测,甚至有可能得到某个细菌基因组的全序列。另外,该项测序不单能够针对DNA水平,也能够针对全RNA进行基因表示水平的研究。 样品处理: 宏基因组样品收集主要有口腔,下呼吸道痰液,下呼吸道灌洗液,皮肤和粪便。样品采集遵照样品采集规范(人)所规定的操作来进行。尽量留足备份样品。 核酸提取: 宏基因组核酸提取主要有两种方法:膜过滤法和直接裂解提取。对于液体样品如痰液,灌洗液两种方法都适用,对于固体样品如粪便宜采用直接裂解的方法。核酸提取后用NanoDrop ND-1000测定,260/280 = 1.8-2.0, 260/230 = 1.8-2.0,电泳检测DNA应是完整的一条带。 测序Sequencing 1)16S/18S测序: Sanger测序: 用于低通量的16S/18S DNA测序,提取宏基因组后,首先经过PCR将16S/18S序列扩增出来,再将其连接到克隆载体上,导

病毒宏基因组学方法优缺点及意义

病毒宏基因组学方法优缺点及意义 病毒宏基因组学方法优缺点及意义 随着时代的发展和生物科学技术的进步,新兴的病毒宏基因组学为解决这些问题提供了契机,以下是一篇关于病毒宏基因组学探究的论文范文,供大家阅读参考。 病毒个体微小,多数病毒直径在100nm(20~200nm),较大的病毒直径300~450nm,较小仅为18~22nm,结构简单,不能独立复制需要依赖于宿主细胞复制繁殖,被许多生物学家认为是处于生命和非生命交叉区域的存在物。据估计目前对病毒的发掘还不到1%[1],对病毒的研究具有广阔的前景和现实意义。病毒独特的结构和特性给病毒的研究和鉴别带来许多困难,主要体现在两个方面:第一,病毒没有专门的宿主细胞系,60%以上的病毒无法成功的进行离体培养[2]或在培养中不能表达致病性;第二,病毒基因本身变异率高,通过与宿主间的相互作用进化,增加核酸多样性,产生新病毒,导致宿主范围扩大、跨物种传播[3].对细菌的研究可以通过保守的16sRNA的分析来定位分类信息、进化关系和种群多样性等。对于真菌有18sRNA及ITS序列。然而病毒不像细菌真菌,没有固定保守的进化标记基因。 所以一些传统研究方法的应用受到限制,不能完全满足病毒研究的需要。如电镜观察病毒的灵敏性不高,细胞培养病毒可能观察不到细胞病变,血清学反应中不但难以获得高价抗体而且容易出现交叉反应导致错误结果,传统PCR方法对未知序列及高变异的病毒研究难以发挥作用。加之近年来病毒流行病的频繁发生及其可怕的传染性,对人类及动植物的健康产生严重威胁,如HIV病毒、SARS病毒、禽流感病毒和在西非等地肆虐的埃博拉病毒[4]等,给人们造成了巨大的恐慌和经济损失。因此,对病毒基因组的研究、致病源的探索、病毒在生物体和环境中如何存在及传播、病毒病防治的研究已迫在眉睫。 随着时代的发展和生物科学技术的进步,新兴的病毒宏基因组学为解决这些问题提供了契机,宏基因组学(Metagenomics)的概念是1998年由Handelsman[5]首次提出,对特定环境中基因组的总和进行研究,包括培养的和未培养的.微生物。病毒宏基因组学(Viral metagenomics)就是宏基因组学在病毒领域的应用,即从环境或生物组织中浓缩病毒粒子的遗传物质进行生物学信息分析的技术。它的应用需要一些交叉学科的创新技术的支持,随机

病毒宏基因组学方法优缺点及意义【可编辑版】

病毒宏基因组学方法优缺点及意义【可编辑版】病毒宏基因组学方法优缺点及意义病毒宏基因组学方法优缺点及意义 病毒个体微小,多数病毒直径在100nm,较大的病毒直径300~450nm,较小仅为18~22nm,结构简单,不能独立复制需要依赖于宿主细胞复制繁殖,被许多生物学家认为是处于生命和非生命交叉区域的存在物。据估计目前对病毒的发掘还不到1%,对病毒的研究具有广阔的前景和现实意义。病毒独特的结构和特性给病毒的研究和鉴别带来许多困难,主要体现在两个方面: 第一,病毒没有专门的宿主细胞系,60%以上的病毒无法成功的进行离体培养或在培养中不能表达致病性;第 二,病毒基因本身变异率高,通过与宿主间的相互作用进化,增加核酸多样性,产生新病毒,导致宿主范围扩大、跨物种传播.对细菌的研究可以通过保守的16sRNA的分析来定位分类信息、进化关系和种群多样性等。对于真菌有18sRNA及ITS序列。然而病毒不像细菌真菌,没有固定保守的进化标记基因。 所以一些传统研究方法的应用受到限制,不能完全满足病毒研究的需要。如电镜观察病毒的灵敏性不高,细胞培养病毒可能观察不到细胞病变,血清学反应中不但难以获得高价抗体而且容易出现交叉反应 导致错误结果,传统PCR方法对未知序列及高变异的病毒研究难以发挥作用。加之近年来病毒流行病的频繁发生及其可怕的传染性,对人类及动植物的健康产生严重威胁,如HIV病毒、SARS病毒、禽流感病毒和在西非等地肆虐的埃博拉病毒等,给人们造成了巨大的恐慌和经济损失。因此,对病毒基因组的研究、致病源的探索、病毒在生物体和环境中如何存在及传播、病毒病防治的研究已迫在眉睫。 随着时代的发展和生物科学技术的进步,新兴的病毒宏基因组学为解决这些问题提供了契机,宏基因组学的概念是1998年由Handelsman首次提出,对特定环境

宏基因组学研究方法及应用概述

宏基因组学研究方法及应用概述彭昌文 (山东省济宁学院生物学系 273155) 颜 梅 (山东省曲阜师范大学生命科学学院 273165) 摘 要 本文简要介绍了宏基因组的概念,概述了其原理及应用。 关键词 宏基因组 宏基因组学 环境基因组学 基因文库的构建 迄今,人们对微生物世界的认识基本都来源于对占细菌总种数不到1%的微生物的单个种群的孤立研究结果。然而微生物是通过其群落而非单一种群来执行在自然界物质与能量循环中的作用的,对微生物群落作为整体的功能认识远远落后于对其个体的认识。这种状况不利于全面认识微生物在自然界所扮演的重要角色。为了获得完整的环境微生物基因表达产物,早在1978年许多学者就提出了直接从环境中提取微生物DNA的思路,1998年,AR I A D phar maceutical公司的科学家Handels man等首次提出宏基因组的概念[1]。宏基因组(the genomes of the total m icrobi ota found in nature)是指生境中全部微生物基因的总和[2]。它包含了可培养的和未培养的微生物的基因总和,微生物主要包括环境样品中的细菌和真菌。而宏基因组学就是一种以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,以功能基因筛选和测序分析为研究手段,以微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系及与环境之间的关系等为研究目的的新的微生物研究方法,也称为微生物环境基因组学、元基因组学或生态基因组学。它主要研究从环境样品获得的基因组中所包含的微生物的遗传组成及其群落功能,为充分认识和开发利用非培养微生物,并从完整的群落水平上认识微生物的活动、最大限度地挖掘微生物资源,提供了可能,已成为国际生命科学技术研究的热点和前沿。 1 宏基因组学的研究方法 宏基因组学的研究过程一般包括从环境样品中提取基因组DNA,克隆DNA到合适的载体,导入宿主菌体,筛选目的转化子等工作,可分为三个步骤。 1.1 宏基因组的提取 在宏基因组筛选过程中,目的基因是整个核苷酸链中的一部分,因此样品前期的富集能够提高筛选命中率。DNA的提取是宏基因文库构建的关键步骤。提取步骤通常需要满足两个条件:既要尽可能提取样品所有微生物的基因,又要保持片段的完整和纯度。目前所开发的DNA提取方法有两种:细胞提取法和直接裂解法。直接裂解法包括物理法(冻融法、超声法、玻璃球珠击打法、液氮碾磨法)、化学法(常用化学试剂有表面活性剂、盐类、有机溶剂等)及酶裂解法。另外,依据提取样品总DNA前是否分离细胞,可以分为原位裂解法和异位裂解法。原位裂解法可以直接破碎样品中的微生物细胞而使DNA 得以释放,由于无需对样品微生物进行复苏,且黏附颗粒上的微生物细胞亦能被裂解,所得DNA能更好地代表样品微生物的多样性。此法操作容易、成本低,DNA 提取率高,但由于机械剪切作用较强,所提取的DNA 片段小(1~50kb),通常适用于构建小片段插入文库(以质粒和λ噬菌体为载体)的DNA提取。异位裂解法则先采用物理方法将微生物从样品中分离出来,然后采用较温和的方法抽提DNA。此法条件温和,可获得大片段DNA(20~500kb),纯度高,但操作繁琐、成本高、得率低,通常适用于构建大片段插入文库(以柯斯质粒或者细菌人工染色体为载体)的DNA提取。1.2 宏基因组文库的构建 宏基因组文库的构建需适宜的克隆载体。通常用于DNA克隆的载体主要包括质粒、黏粒和细菌人工染色体等。质粒一般用于克隆小于10kb的DNA片段,适用于单基因的克隆与表达。黏粒的插入片段可达40kb左右,细菌人工染色体插入片段可达350kb,可用来制备由多基因簇调控的微生物活性物质的完整代谢途径的相关片段文库。1.3 目的基因的筛选 目的基因的筛选方法包括序列分析和功能分析两种。序列分析适用于小片段DNA文库的基因筛选;而功能分析通常适用于大片段DNA文库的筛选。序列分析筛选不依赖于重组基因在外源宿主中的表达,因为所使用的寡聚核苷酸引物是直接通过DNA序列中的保守区域设计的,反映了氨基酸序列的保守性,可获得未知序列的目的基因。该方法对DNA量的要求不高,筛选到新活性物质的可能性较大。序列分析的另一个手段是对宏基因组克隆测序,无论是全部或随机测序都是发现新基因的有效手段。 对于功能分析而言,首先需获得目的克隆,然后通过序列和生化分析对其进行表征。此法能快速鉴定出全新且有开发价值的活性物质,可用于医药、工农业等行业。由于此法检出率较低,工作量较大,且受检测手段的限制,所以常要借助于高通量筛选。 2 宏基因组学的应用 2.1 在生态学方面的应用 当今微生物生态学研究的主要目的之一是将微生物与其所在环境中的代谢过程相联系。应用16s r DNA作为系统发育锚去鉴定属于某种微生物的克隆,然后对基因进行测序,从而获得

宏基因组学概述

宏基因组学概述 王莹,马伊鸣 (北京交通大学土木建筑工程学院环境1402班) 摘要:随着分子生物学技术的快速发展及其在微生物生态学和环境微生物学研究中的广泛应用,促进了以环境中未培养微生物为研究对象的新兴学科——微生物环境基因组学(又叫宏基因组学、元基因组学,英文名Metagenomics)的产生和快速发展。宏基因组学通过直接从环境样品中提取全部微生物的DNA,构建宏基因组文库,利用基因组学的研究策略研究环境样品所包含的全部微生物的遗传组成及其群落功能.在短短几年内,宏基因组学研究已渗透到各个领域,包括海洋、土壤、热液口、热泉、人体口腔及胃肠道等,并在医药、替代能源、环境修复、生物技术,农业、生物防御及伦理学等各方面显示了重要的价值。本文对宏基因组学的主要研究方法、热点内容及发展趋势进行了综述 关键词:宏基因组宏基因组学环境基因组学基因文库的构建 Macro summary of Metagenomics Wang Ying, Ma Yi-Ming (BeijingJiaotongUniversity, Institute of civil engineering,) Key words: Metagenome; Metagenomics; The environmental genomics 宏基因组学(Metagenomics)又叫微生物环境基因组学、元基因组学。它通过直接从环境样品中提取全部微生物的DNA,构建宏基因组文库,利用基因组学的研究策略研究环境样品所包含的全部微生物的遗传组成及其群落功能。它是在微生物基因组学的基础上发展起来的一种研究微生物多样性、开发新的生理活性物质(或获得新基因)的新理念和新方法。其主要含义是:对特定环境中全部微生物的总DNA (也称宏基因组,metagenomic)进行克隆,并通过构建宏基因组文库和筛选等手段获得新的生理活性物质;或者根据rDNA数据库设计引物,通过系统学分析获得该环境中微生物的遗传多样性和分子生态学信息。 1.起源 宏基因组学这一概念最早是在1998年由威斯康辛大学植物病理学部门的Jo Handelsman等提出的,是源于将来自环境中基因集可以在某种程度上当成一个单个基因组研究分析的想法,而宏的英文是"met a-",具有更高层组织结构和动态变化的含义。后来伯克利分校的研究人员Kevin Chen和Lior Pachter 将宏基因组定义为"应用现代基因组学的技术直接研究自然状态下的微生物的有机群落,而不需要在实验室中分离单一的菌株"的科学。 2 研究对象 宏基因组学(Metagenomics)是将环境中全部微生物的遗传信息看作一个整体自上而下地研究微生 物与自然环境或生物体之间的关系。宏基因组学不仅克服了微生物难以培养的困难, 而且还可以结合生物信息学的方法, 揭示微生物之间、微生物与环境之间相互作用的规律, 大大拓展了微生物学的研究思路与方法, 为从群落结构水平上全面认识微生物的生态特征和功能开辟了新的途径。目前, 微生物宏基因组学已经成为微生物研究的热点和前沿, 广泛应用于气候变化、水处理工程系统、极端环境、人体肠道、石油污染、生物冶金等领域, 取得了一系列引人瞩目的重要成果。 3 研究方法 宏基因组学的研究过程一般包括样品和基因(组)的富集;提取特定环境中的基因组 DNA;构建宏基因组 DNA 文库;筛选目的基因;目的基因活性产物表达(图 1)五个步骤。

宏基因组测序讲解

宏基因组测序讲解

宏基因组测序 目的 研究藻类物种的分类,研究与特定环境与相关的代谢通路,以及通过不同样品的比较研究微生物内部,微生物与环境,与宿主的关系。技术简介 宏基因组( Metagenome)(也称微生物环境基因组Microbial Environmental Genome, 或元基因组) 。是由 Handelsman 等 1998 年提出的新名词,其定义为"the genomes of the total microbiota found in nature" , 即生境中全部微小生物遗传物质的总和。它包含了可培养的和未可培养的微生物的基因,目前主要指环境样品中的细菌和真菌的基因组总和。而所谓宏基因组学 (或元基因组学, metagenomics) 就是一种以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,以功能基因筛选和/或测序分析为研究手段,以微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系及与环境之间的关系为研究目的的新的微生物研究方法。一般包括从环境样品中提取基因组 DNA, 进行高通量测序分析,或克隆DNA到合适的载体,导入宿主菌体,筛选目的转化子等工作。 宏基因组( Metagenome)(也称微生物环境基因组Microbial Environmental Genome, 或元基因组) 。是由 Handelsman 等 1998 年提出的新名词,其定义为"the genomes of the total microbiota found in nature" , 即生境中全部微小生物遗传物质的总和。它包含了可培养的和未可培养的微生物的基因,目前主要指环境样品中的细菌和真菌的基因组总和。而所谓宏基因组学 (或元基因组学, metagenomics) 就是一种以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,以功能基因筛选和/或测序分析为研究手段,以微生物多样

宏基因组测序技术检测方法

宏基因组测序技术检测方法

宏基因组测序技术检测标准 简介: 宏基因组测序介绍 宏基因组学是以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,通过现代基因组技术手段包括功能基因的筛选和测序分析,对环境中微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系以及环境之间的关系进行研究的新的微生物研究方法。随着高通量测序技术的发展,为宏基因组学研究提供了新的理想研究方法。高通量测序的方法无需分离环境中各种微生物,也无需构建克隆文库就可以直接对环境中所有微生物进行测序。可以真实客观的反映环境中微生物的多样性、种群结构、进化关系等。目前又可以分为针对16s DNA/18sDNA/ITS测序和针对宏基因组全序列的测序研究。下面就是对这两者的具体介绍。 一、16s DNA/18s DNA/ITS测序 16sDNA是最常用的微生物物种分子鉴定的标签,,通过对样品中16sDNA 测序可以鉴定其中微生物物种的丰度和分布情况。目前,普遍使用Roche 454平台来对环境样品进行16s DNA测序。因为16s DNA序列比较相似,读长短的话,难以进行有效的比对,而454平台的平均读长在400bp左右,可以很好的避免此类问题。 二、宏基因组全测序 在这种测序方式中,我们可以假定一个环境中的所有微生物就是一个整体,然后对其中所有的微生物进行测序。这样我们就可以研究样品中的功能基因以及其在环境中所起的作用而不用关心其来自哪个微生物。可以发现新的基因,可以进行基因的预测,甚至有可能得到某个细菌基因组的全序列。此外,该项测序不单可以针对DNA水平,也可以针对全RNA进行基因表达水平的研究。 样品处理: 宏基因组样品收集主要有口腔,下呼吸道痰液,下呼吸道灌洗液,皮肤和粪便。样品采集遵照样品采集规范(人)所规定的操作来进行。尽量留足备份样品。

《高通量宏基因组测序技术检测病原微生物的临床应用规范化专家共识》(2020)要点

《高通量宏基因组测序技术检测病原微生物的临床应用规范化专家共识》 (2020)要点 快速准确的微生物鉴定技术始终是临床微生物关注的焦点。传统微生物检验,诸如形态学、培养、抗原抗体及靶向核酸检测等方法在解决疑难及未知病原微生物上存在局限性。新型宏基因组下一代测序(mNGS)技术直接针对样本中所有核酸进行无偏性测序,结合病原微生物数据库及特定算法,检测样本中含有的可能病原微生物序列。随着该技术的社会经济成本不断降低和技术的不断完善,已逐渐从科研走向临床应用,成为临床疑难和未知病原微生物检验的重要手段。利用mNGS技术进行病原微生物检测需经样本前处理、核酸提取、文库制备、上机测序并满足测试的质量控制要求后,采用特定算法软件与专用的病原微生物数据库进行比对,实现对病毒、细菌、真菌、寄生虫及非经典微生物等的检测。mNGS 技术不依赖培养,对常见病原微生物检验阴性、经验治疗失败、不明原因的危急重感染的病原学诊断以及新发突发传染病的病原体发现具有独特价值。 一、临床应用的基本要求 (一)适应证 基于医学决策的mNGS病原微生物检测申请,一般用于传统检验方法未

能给出明确病原学结从而影响患者准确诊疗的感染性疾病、新发突发传染病、验证常规检验结果或排除其他发热疾病。荐临床通过拟诊先行传统微生物检验及聚合酶链反应(PCR)检测拟诊疑似常见病原微生物,不盲目使用mNGS技术。在必要或紧急情况下,如危急重症、疑难感染、群体性感染事件等,可考虑作为一线检测方法。表1列出了mNGS临床应用适应性说明。临床上在选择mNGS 进行病原微生物确认时应注意如下事项。 1. mNGS 检测申请表: 2. 靶向基因测序: 3. DNA测序与RNA测序的选择: 4. mNGS 技术的局限性: (二)标本类型及采集规范 1. 血液及高凝标本: 2. 支气管肺泡灌洗液及痰液:

(完整word版)宏基因组测序讲解

宏基因组测序 目的 研究藻类物种的分类,研究与特定环境与相关的代谢通路,以及通过不同样品的比较研究微生物内部,微生物与环境,与宿主的关系。技术简介 宏基因组( Metagenome)(也称微生物环境基因组Microbial Environmental Genome, 或元基因组) 。是由 Handelsman 等 1998 年提出的新名词,其定义为"the genomes of the total microbiota found in nature" , 即生境中全部微小生物遗传物质的总和。它包含了可培养的和未可培养的微生物的基因,目前主要指环境样品中的细菌和真菌的基因组总和。而所谓宏基因组学 (或元基因组学, metagenomics) 就是一种以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,以功能基因筛选和/或测序分析为研究手段,以微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系及与环境之间的关系为研究目的的新的微生物研究方法。一般包括从环境样品中提取基因组 DNA, 进行高通量测序分析,或克隆DNA到合适的载体,导入宿主菌体,筛选目的转化子等工作。 宏基因组( Metagenome)(也称微生物环境基因组Microbial Environmental Genome, 或元基因组) 。是由 Handelsman 等 1998 年提出的新名词,其定义为"the genomes of the total microbiota found in nature" , 即生境中全部微小生物遗传物质的总和。它包含了可培养的和未可培养的微生物的基因,目前主要指环境样品中的细菌和真菌的基因组总和。而所谓宏基因组学 (或元基因组学, metagenomics) 就是一种以环境样品中的微生物群体基因组为研究对象,以功能基因筛选和/或测序分析为研究手段,以微生物多样性、种群结构、进化关系、功能活性、相互协作关系及与环境之间的关系为研究

最新 病毒宏基因组学方法优缺点及意义-精品

病毒宏基因组学方法优缺点及意义 随着时代的发展和生物科学技术的进步,新兴的病毒宏基因组学为解决这些问题提供了契机,以下是一篇关于病毒宏基因组学探究的,供大家阅读参考。 病毒个体微小,多数病毒直径在100nm(20~200nm),较大的病毒直径 300~450nm,较小仅为18~22nm,结构简单,不能独立复制需要依赖于宿主细胞复制繁殖,被许多生物学家认为是处于生命和非生命交叉区域的存在物。据估计目前对病毒的发掘还不到1%[1],对病毒的研究具有广阔的前景和现实意义。病毒独特的结构和特性给病毒的研究和鉴别带来许多困难,主要体现在两个方面:第一,病毒没有专门的宿主细胞系,60%以上的病毒无法成功的进行离体培养[2]或在培养中不能表达致病性;第二,病毒基因本身变异率高,通过与宿主间的相互作用进化,增加核酸多样性,产生新病毒,导致宿主范围扩大、跨物种传播[3].对细菌的研究可以通过保守的16sRNA的分析来定位分类信息、进化关系和种群多样性等。对于真菌有18sRNA及ITS序列。然而病毒不像细菌真菌,没有固定保守的进化标记基因。 所以一些传统研究方法的应用受到限制,不能完全满足病毒研究的需要。如电镜观察病毒的灵敏性不高,细胞培养病毒可能观察不到细胞病变,血清学反应中不但难以获得高价抗体而且容易出现交叉反应导致错误结果,传统PCR 方法对未知序列及高变异的病毒研究难以发挥作用。加之近年来病毒流行病的频繁发生及其可怕的传染性,对人类及动植物的健康产生严重威胁,如HIV病毒、SARS病毒、禽流感病毒和在西非等地肆虐的埃博拉病毒[4]等,给人们造成了巨大的恐慌和经济损失。因此,对病毒基因组的研究、致病源的探索、病毒在生物体和环境中如何存在及传播、病毒病防治的研究已迫在眉睫。 随着时代的发展和生物科学技术的进步,新兴的病毒宏基因组学为解决这些问题提供了契机,宏基因组学(Metagenomics)的概念是1998年由Handelsman[5]首次提出,对特定环境中基因组的总和进行研究,包括培养的和未培养的微生物。病毒宏基因组学(Viral metagenomics)就是宏基因组学在病毒领域的应用,即从环境或生物组织中浓缩病毒粒子的遗传物质进行生物学信息分析的技术。它的应用需要一些交叉学科的创新技术的支持,随机引物PCR 和新一代测序技术---高通量测序的应用大大提高了研究的效率和获取信息的丰度,克服大环境中病毒浓度低、易受干扰的不足,拓展了病毒宏基因组学的应用范围和现实作用,为探索未知病毒提供广阔的前景和应用空间。在人类预防疾病、开发疫苗方面具有重大贡献。 1病毒宏基因组学的研究过程 对于未知病毒的研究过程如下:SISPA方法是1991年Gregory和Jung在随机引物PCR方法的基础上创造的[6],SISPA-PCR使用含有已知片段的随机引物进行逆转录,这个已知片段在接下来的PCR反应中将作为引物[7],此方法先后经Breitbart[8]和Djikeng[9]等人的改进,在SISPA的基础上建立了

相关文档
最新文档