乙型肝炎病毒(HBV)核酸定量检测标准操作规程
乙型肝炎病毒(HBV)实时荧光定量PCR
乙型肝炎病毒（HBV）实时荧光定量PCR[目的要求]掌握血清中HBV-DNA的提取方法及原理；HBV-DNA实时荧光定量PCR的测定原理；HBV-DNA实时荧光定量PCR实验操作及结果分析了解核酸测定引物设计原理；实时荧光定量PCR仪的工作原理及操作。
[教学时数]讲授2学时，实验6学时。
[讲授内容]血清中病毒DNA的提取方法和原理；实时荧光定量PCR的测定原理；核酸测定引物设计原理；HBV-DNA测定引物设计思路；HBV-DNA荧光定量PCR试剂组成、相应作用及反应混合液配制；实时荧光定量PCR仪的工作原理及操作[实验内容]分组提取血清中HBV-DNA；配制反应液并上机操作，实时观察，结果分析；实验结果讨论；实验总结[自学内容]“感染性疾病的分子诊断”实验指导（自编）实验乙型肝炎病毒（HBV）实时荧光定量PCR【原理】Real time PCR 是普通PCR 的一项改进，使用了针对扩增DNA 的荧光物质，使得DNA 的数量与检测到的荧光强度成线性关系，大致得到DNA 的扩增曲线，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
即对DNA靶分子的起始拷贝数进行定量的核酸检测。
该方法精确、灵敏、特异性强、污染途径小、自动化程度高、操作简单。
是国际公认的核酸分子定量的标准方法。
它已逐渐代替了Northern blotting 以及semi RT-PCR技术。
本实验从HBV携带者或者乙型肝炎患者血清中抽提HBV基因组DNA，采用核酸扩增结合TaqMan荧光探针技术, 利用一对乙肝病毒特异性引物和一特异性结合于扩增区另一位点的TaqMan探针, 实现对乙肝病毒模板的扩增和检测。
使用商品化试剂盒：HBV实时荧光定量试剂盒，深圳匹基公司（PG，Biotech.）。
针对表面抗原S基因，设计一对引物和一个探针。
TaqMan荧光探针技术中，两个荧光染料标记在探针上，一个叫报告基团（R），一个叫淬灭基团（Q）。
当两个荧光基团都连在探针上时，报告基团的荧光被淬灭基团抑制。
乙型肝炎dna定量标准
乙型肝炎dna定量标准乙型肝炎（HBV）是一种由乙型肝炎病毒（HBV）引起的肝炎。
HBV是一种DNA病毒，它的基因组由约3.2 kb的DNA组成。
乙型肝炎dna定量标准是用来测定HBV DNA的数量。
这个标准通常用于确定患者是否感染了HBV，以及患者在治疗过程中的病毒负荷。
HBV DNA定量是通过PCR（聚合酶链式反应）技术来实现的。
PCR是一种在实验室中复制DNA序列的技术。
在PCR反应中，DNA模板被加入到PCR反应混合物中，该混合物包括引物、酶和核苷酸。
引物是一种特殊的DNA片段，它们会结合到DNA模板的两端，并指示酶从这些端开始复制DNA。
酶会将核苷酸添加到新合成的DNA链上，直到整个DNA序列被复制完毕。
通过PCR，可以将少量的DNA扩增成大量的DNA，从而使得HBV DNA定量成为可能。
乙型肝炎dna定量标准通常使用国际单位（IU）或拷贝数（cp/mL）来表示HBV DNA的数量。
IU是一种标准化单位，它可以用于比较不同实验室之间的结果。
拷贝数是指HBV DNA在样本中的实际数量。
根据世界卫生组织（WHO）的建议，对于HBV DNA定量，应该使用IU/mL来表示结果。
此外，WHO还建议使用标准化的HBV DNA定量试剂盒进行测试，以确保结果的准确性和可比性。
根据乙型肝炎dna定量标准，对于患者而言，一般认为HBV DNA水平在2000 IU/mL以下是低病毒载量，而2000 IU/mL 以上则是高病毒载量。
在治疗过程中，目标是将患者的HBV DNA水平降至低于检测限度（通常为20 IU/mL以下）。
这通常需要使用抗病毒药物进行长期治疗。
总之，乙型肝炎dna定量标准是用来测定HBV DNA数量的重要工具。
它可以帮助医生确定患者是否感染了HBV，并监测患者在治疗过程中的病毒负荷。
对于患者来说，了解自己的HBV DNA水平可以帮助他们更好地管理自己的健康，并更好地控制乙型肝炎的发展。
乙肝病毒核酸定量SOP
1、目的采用PCR技术、实时荧光探针技术，用于临床血清或血浆标本中的乙型肝炎病毒核酸的定量检测，或用于乙型肝炎的辅助诊断和抗病毒药物治疗中的疗效观察。
2、原理本试剂盒采用乙型肝炎病毒(HBV)-核酸释放剂快速裂解、释放血清或血浆样本中的乙型肝炎病毒(HBV)DNA,利用针对乙型肝炎病毒(HBV)核酸保守区设计的一对特异性引物、一条特异荧光探针，配以PCR反应液，在荧光定量PCR仪上，应用实时荧光定量PCR检测技术，通过荧光信号的变化实现乙型肝炎病毒(HBV) DNA的定量检测。
整个试验过程无须单独提取样本中的DNA，只需将血清或血浆样本直接加入PCR反应管中与乙型肝炎病毒(HBV) -核酸释放剂充分混合即可作为PCR扩增的模板，避免了常规样本核酸提取过程中的环境污染。
PCR检测体系含有UNG酶+dUTP防污染措施，将可能的产物污染充分降解，避免假阳性结果。
PCR检测体系含有阳性内对照（乙型肝炎病毒（HBV）内标），通过检测内标是否正常来监测待测样本中是否具有PCR抑制物，避免PCR假阴性。
PCR检测体系含有内参比荧光ROX，用于校正加样误差和管间差异，便于仪器自动分析报告荧光与内参比荧光ROX的比值，使定量更准确。
3、试剂保存及有效期试剂应避光密闭保存于-20±5℃。
试剂盒有效期为12个月，避免反复冻融。
采用泡沫加冰运输5天不会影响产品效期。
4、样本要求4.1. 适用样本类型:血清或血浆样本。
4.2. 样本采集:4.2.1 血清样本采集:用无菌注射器抽取受检者静脉血2ml, 注入无菌收集管，室温不超过4小时，待样本自行析出血清，或直接室温1600rpm离心5分钟分离出血清，转移到1.5ml灭菌离心管中备用；4.2.2血浆样本采集:用无菌注射器抽取受检者静脉血2ml,注入含有EDTA或枸橼酸钠抗凝剂的无菌收集管，立即轻轻颠倒混匀，室温不超过4小时，待样本自行析出血浆，或直接1600pm离心5分钟分离出血浆，转移到1.5ml灭菌离心管中备用。
HBVDNA核酸扩增及产物分析标准操作程序
HBV-DNA核酸扩增及产物分析标准操作程序一、目的：规范实验室操作，正确使用ABI-5700荧光定量PCR仪进行HBV-DNA扩增分析，以保证实验结果的准确性。
二、适用范围：乙型肝炎病毒(HBV)核酸扩增(PCR)荧光检测试剂盒、ABI-5700荧光定量PCR仪。
三、职责：由临床基因扩增检验实验室专业技术人员制定程序文件，实验室负责人审核，科室主任批准实施。
四、程序：1、PCR扩增1）打开稳压器电源，再打开计算机电源。
2）打开扩增仪电源，按仪器操作规程进入扩增循环条件设定。
3）将循环条件设定为4）检查反应管是否盖紧，以免荧光物质泄漏污染仪器。
5）将待反应的PCR反应管放入扩增仪中，并根据实际情况和仪器操作规程在程序中设定好反应孔位置。
6）关闭扩增仪盖，按仪器操作规程开始循环。
7）扩增结束后先保存结果，再关闭扩增仪电源，取出PCR 反应管，密封放入垃圾桶。
2、产物分析1）基线的确定：取3～8个循环的荧光信号。
2）阈值的设定：原则以基线刚好超过正常阴性对照扩增曲线的最高点。
3）对照标准：阳性对照参控品的Ct值应小于28，标准曲线的拟和度应大于等于0.990，否则视为定量结果无效；阴性、空白对照的扩增曲线应平坦，Ct值等于30或0，否则结果无效。
4）结果判断：检测样本中核酸阳性时，按实际结果报告；对可疑结果应复查，需要时与临床联系。
5）填写检验记录，关闭计算机。
此标准操作变更程序：如果本操作程序使用者在实际工作中发现其存在问题，则应向科室负责人提出，科室负责人则召集所有与本程序有关的人员讨论，以决定是否需要变更本程序。
乙型病毒性肝炎检验诊断报告模式
三、乙肝检验诊断报告的模式
(二) 检测结果
与乙肝相关检测项目包括但不限于以下内容：
(1)乙肝血清标志物检测：包含乙肝病毒表面抗原(HBsAg)、乙肝病毒表 面抗体(抗－HBs)、乙肝病毒e抗原(HBeAg)、乙肝病毒e抗体(抗－HBe)、 乙肝病毒核心抗体(抗－HBc)和乙肝病毒核心抗体－IgM(抗－HBc－IgM)。 每项应报告确切的阴性或阳性结果，使用定量方法进行检测的还应报告 具体的检测数值，以及参考范围。检测HBsAg定量的应报告滴度，检测 抗－HBc－IgM应报告阴阳性结果和(或)滴度。
(三) 检验诊断/结论
1. 急性乙肝： 指近期感染乙肝病毒，引起机体免疫应答肝组织发炎的病变。同时符合
以下诊断标准中的(1)和(3)，或同时符合(2)和(3)可诊断为疑似急性乙肝。 确诊急性乙肝病例需满足：疑似病例同时符合(4)，或疑似病例同时符合 (5)，或疑似病例同时符合(6)，或疑似病例同时符合(7)。
三、乙肝检验诊断报告的模式
(一) 检验信息
2. 检测信息： (1)样本：编号、收样时间、检测时间和报告时间； (2)检测方法：如化学发光免疫分析法、聚合酶链式反应(PCR)法、生化法
等； (3)检验者和审核者； (4)检测实验室名称、地址、电话等。
三、乙肝检验诊断报告的模式
(二) 检测结果
一、概述
准确了解体内HBV的复制水平、患者的免疫状态、肝脏损伤程度，对患 者疾病的诊断、病情的评估以及指导临床用药具有重要的临床意义。
HBV感染常见4个时期，即免疫耐受期、免疫清除期、非活动或低 (非) 复ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ期和再活动期，不同时期血清HBV标志物和病毒复制水平有一定的 区别又有交叉，靠单一化验指标很难界定。
乙肝病毒核酸检测标本采集、送检、处理流程
乙肝病毒核酸检测标本采集、送检、处理流程一、引言乙肝病毒核酸检测是一种重要的手段，用于乙肝病毒感染的早期诊断和监测治疗效果。
本文档旨在描述乙肝病毒核酸检测的标本采集、送检和处理流程，以确保流程规范和结果准确性。
二、标本采集1. 标本选择：乙肝病毒核酸检测的标本可使用血清、血浆或乙肝病毒DNA提取物。
根据实验室提供的要求和使用的方法，正确选择合适的标本进行采集。
2. 采集器具：使用无菌器具进行标本采集，如无菌收集管、无菌采血针等。
3. 采集流程：- 患者应事先了解采集流程与注意事项，并保持合作配合。
- 消毒部位：消毒患者采血部位，通常选择肘弯处的静脉。
- 采血：按照相应的方法采集合适数量的血液样本。
注意血液采集的整洁和标本不得受到污染。
4. 采集注意事项：- 采血前需要对采血设备进行消毒处理。
- 采血时要避免对血液标本造成不必要的污染，防止样本交叉感染。
- 采血后进行适当的处理，确保采血点不出现血肿或其他并发症。
三、标本送检1. 样本存放：采集的标本应放入防漏、密封良好的中。
若需要长期保存，应在-80℃低温条件下保存，以防止DNA的降解。
2. 标本信息：在标本上标注清楚患者信息，如姓名、年龄、性别等。
确保标本信息准确，以避免混淆和误诊。
3. 快递选择：选择快递公司进行标本运输，确保安全、快捷的送达实验室。
在包装标记时，应注明标本的特殊性质，以提醒运输人员注意。
四、标本处理1. 样本分装：实验室收到标本后，根据实验要求进行样本分装。
如分装到提取试剂盒、酶解管中，标注清楚样本编号，确保实验过程的可追溯性。
2. 提取和纯化：根据实验方法进行标本的提取和纯化操作。
确保提取和纯化过程的洁净，避免外源性核酸污染。
3. PCR扩增：将提取纯化后的样本进行PCR扩增反应。
注意PCR操作条件的准确性，避免扩增过程中的交叉污染。
4. 结果分析：根据PCR扩增结果，通过相关分析方法，如凝胶电泳、定量PCR等，对乙肝病毒核酸进行检测和分析。
乙型肝炎病毒核酸定量检测操作程序
乙型肝炎病毒核酸定量检测操作程序
标本编号：操作时间：操作者：
1、将浓缩液及样品从-20℃取出，平衡至室温（ - ）。
2、用移液器加（）ul血清到（）ul浓缩液，振荡混匀。
3、将混匀好的标本放入高速冷冻离心机（）转离心（）分钟。
4、弃上清，沉淀中加入（）ul DNA提取液混匀。
5、（）℃恒温（）分钟（10±1分钟）。
6、（）转离心（）分钟，备用。
7、吸取（）ul上清到反应管，瞬时离心（）秒。
8、将反应管通过传递窗到产物扩增区准备扩增。
9、用ABI 7500扩增仪进行扩增.
【下载本文档，可以自由复制内容或自由编辑修改内容，更多精彩文章，期待你的好评和关注，我将一如既往为您服务】
精品文档交流。
乙肝hbv-dna病毒数量标准
乙肝hbv-dna病毒数量标准乙肝(HBV)是由乙型肝炎病毒(HBV)感染引起的一种肝炎疾病。
HBV-DNA是HBV病毒所含的一种核酸，HBV-DNA病毒数量标准是可以评估乙肝患者病情严重程度的指标之一。
本篇文章将重点阐述乙肝HBV-DNA病毒数量标准、治疗方法以及注意事项。
一、乙肝HBV-DNA病毒数量标准HBV-DNA病毒数量可以通过PCR扩增技术测定，计量单位为“国际单位/ml”(IU/ml)，也可以用“拷贝数/ml”(cp/ml)表示。
目前，国内外对于HBV-DNA病毒数量的划分标准不尽相同。
根据中国抗病毒治疗指南2019年版，“HBV-DNA<500IU/ml”被认为是阴性，”HBV-DNA≥500IU/ml“被认为是阳性。
根据美国国立卫生研究院(NIH)建议标准，“HBV-DNA≥2000IU/ml”属于阳性。
HBV病毒的复制速度与其病毒数量呈正比关系。
一般来说，患者血清中HBV-DNA病毒数量越高，说明患者的乙肝病情越严重，肝细胞受损的程度也就越明显。
因此，通过测定HBV-DNA病毒数量的高低，可以评估乙肝的病程严重程度，以指导下一步的治疗方案。
二、乙肝HBV-DNA阳性的治疗方法1. 治疗目标乙肝的治疗旨在抑制HBV病毒复制，降低肝炎的病情恶化，减少肝损伤，同时通过肝功能的改善，提高患者的生活质量，降低肝癌的发生率。
2. 抗病毒治疗目前临床应用的抗病毒药物有拉米夫定、恩替卡韦、阿德福韦等，这些药物都可以有效地抑制HBV病毒的复制。
因此，高病毒载量的乙肝患者，可以选用抗病毒药物进行治疗，以取得抑制病毒复制的效果。
拉米夫定: 口服适用，不良反应小，临床应用最广泛，能有效控制HBV病毒复制，是治疗乙肝的一线药物。
恩替卡韦: 口服适用，单次日剂量可减轻。
一般耐药率较低。
适用于HBV 基因突变的患者以及对拉米夫定耐药的患者。
阿德福韦: 是治疗慢性乙肝的一线药物，纯量形式为口服胶囊，也可以采用注射方式应用。
实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸的检测及临床意义
实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸的检测及临床意义摘要】目的:探讨乙型肝炎患者体内乙型肝炎病毒(HBV)的实时荧光PCR定量方法及临床意义。
方法：对60例临床血清标本用荧光PCR定量检测的操作方法及临床意义。
结果：乙型肝炎大三阳患者血清HBV DNA检出率为100% ,HBV DNA的对数值为7.2±1.8;小三阳患者血清HBV DNA检出率为64.5% , HBV DNA的对数值为4.9±1.3。
结论：HBV DNA是HBV感染后病毒血症最直接的标志，是判断病毒复制最灵敏的指标，同时也是判断慢性乙型肝炎是否具有活动性的重要指标。
【关键词】实时荧光PCR定量检测；乙型肝炎；病毒脱氧核糖核酸；临床意义【中图分类号】R51 【文献标识码】A 【文章编号】1007-8231（2017）28-0171-02实时荧光PCR定量检测乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸(HBV DNA)通常分为二步：首先从标本中提取HBV DNA，然后采用实时荧光PCR扩增 HBV DNA。
目前荧光定量聚合酶链反应(FQ-PCR)检测技术逐渐应用于临床实验诊断[1]。
本实验采用实时荧光定量PCR方法(PCR FQ-PCR)测试了60份临床血清标本结果进行分析。
1.材料与方法1.1 标本来源收集本院住院及门诊收治的乙肝患者血清60份，健康体检者血清60分，其中男40例，女20例，年龄7～80岁。
1.2 标本采集、保存与运送无菌采集静脉血3ml，收集于无菌离心管中(不抗凝或采用EDTA、枸橼酸钠抗凝)，室温放置不超过2h，1 600g离心20min，分离血清或血浆，转入无菌离心管中备用。
分离的血浆或血清在4℃保存不应超过24h；-20℃保存不超过3个月；-70℃以下长期保存。
应避免反复冻融。
采用冰壶加冰或泡沫箱加冰密封进行运输。
1.3 方法主反应混合物的配制，从试剂盒中取出HBV PCR反应液、 Taq/UNG酶、HBV荧光探针和MgCl2，室温融化并振荡混匀后，2000r/min离心10s。
乙肝dna检测规程模板
乙型肝炎病毒核酸扩增荧光定量检测标准操作程序1.目的：明确乙肝病毒核酸定量检测的操作规程，指导检验人员正确进行乙肝病毒核酸定量的检测。
2.适用范围：2.1适用于进行乙肝病毒核酸定量检测的检验人员。
2.2适合仪器：LightCycler型核酸扩增荧光检测仪2.3方法原理：采用PCR方法结合荧光探针的扩增技术2.4样品要求：血清3.职责：实验操作人员应严格按操作规程进行实验。
4.试剂来源：中山大学达安基因股份有限公司HBV DNA荧光PCR检测试剂盒。
5.质控物：阴性、阳性对照及阳性参控品系列均来源于试剂盒6.标准操作：6.1 试剂准备（在试剂准备区操作）6.1.1将试剂盒及其它所需试剂置室温解冻（Taq酶为液态试剂，临用前取出，用后立即放回冰格），完全融解后混匀。
6.1.2根据当次实验标本量，取出相应试剂总的需求量于一管中（其余随即放回原温度保存），如所需要的管数为n (n=标本数+1管阴性对照+1管阳性对照+1管临界阳性对照+4管阳性参控品)（定性检测无需做阳性参控品），取PCR反应管，转移至样本制备区。
6.2 样本制备及加样（在标本制备区操作）6.2.1 取血清标本40ul，或阴阳性对照标准品各10ul（强阳性标准品使用前加入稀释液90ul 混匀），加等量DNA提取液打匀，（提取液内含不溶于水的物质，取样时需用加样器充分混匀后吸取。
如出现因吸头嘴部太细不能吸取或取样后填满吸头的现象，可先用洁净无污染的剪刀将吸头嘴部剪去一截）。
沸水浴10分钟，转至4℃静置8-12小时以保证病毒颗粒充分裂解。
6.2.2 10000rpm离心5分钟，取上清液2ul直接加入到PCR反应管中，6000rpm离心数秒。
6.2.3 将各反应管带入PCR仪。
6.3 PCR扩增（在扩增区操作）按仪器使用说明或标准操作程序操作。
扩增条件如下：93℃→2分钟预变性93℃30秒→55℃60秒（40个循环）6.4 结果判断：6.4.1 2个阴性对照的Ct值应无数值，1个强阳性对照的Ct值应小于等于30，1个临界阳性对照的Ct值应大于阳性对照的Ct值，并小于等于38，否则实验视为无效。
乙型肝炎病毒(HBV)核酸定量检测标准操作规程
乙型肝炎病毒（HBV）核酸定量检测标准操作规程（PCR-荧光探针法）1.目的: 规范乙型肝炎病毒（HBV）核酸定量检测操作流程，保证检测结果的准确性。
2.应用范围: HBV DNA 荧光定量检测。
3.职责:3.1 文件编写：实验室技术员。
3.2 文件审核：实验室主管。
3.3 文件审批：实验室主任。
3.4 执行：PCR实验室所有工作人员。
4. 参考文献：4.1 中山大学达安基因股份有限公司乙型肝炎病毒（HBV）核酸定量检测试剂盒（PCR-荧光探针法）说明书。
4.2 中山大学达安基因股份有限公司核酸扩增荧光检测系统DA7600型使用说明书。
5. 内容：5.1 检测方法：PCR-荧光探针法。
5.2 实验原理：用一对乙型肝炎病毒特异性引物和一条乙型肝炎病毒特异性荧光探针，配以PCR反应液、耐热DNA聚合酶（Taq酶）、核苷酸单体（dNTPs）等成分，通过PCR体外扩增法，即高温变性、低温退火、适温延伸进行DNA扩增，并对PCR全过程进行实时监测，从而定量检测乙型肝炎病毒DNA。
5.3 性能参数：5.3.1 精密度：检测下限为5.0x102IU/ml。
5.3.2 线性范围：1.0x103～1.0x108IU/ml。
5.4 标本采集：由合作单位按照以下要求进行采集5.4.1 标本类型：血清。
5.4.2 标本采集：用一次性无菌注射器抽取受检者静脉血2毫升，注入无菌的干燥玻璃管，室温（22～25℃）放置30～60 min，全血标本可自发完全凝集析出血清，或直接使用水平离心机，1500 rpm离心5min；吸取上层血清，转移至1.5ml灭菌离心管。
5.4.3 标本保存：标本可立即用于测试，也可以保存于-20℃待测，保存期为6个月，应避免反复冻融。
5.4.4 运送条件：标本运送采用0℃冰壶。
5.4.5 标本拒收标准：污染、严重溶血、脂血类或肝素抗凝剂标本。
5.5 设备和试剂：5.5.1 设备： DA7600荧光定量PCR仪、低速水平离心机、生物安全柜、台式高速离心机、移液器、混匀器、恒温水浴箱/干式恒温器、冰箱（4℃、-20℃）、移动/固定紫外灯、冷冻离心机。
乙型肝炎病毒核酸定量检测试剂盒(PCR-荧光探针法)操作说明
1 弱阳性血清对照 100μl/管 0 1 定量校准品 1 号 15μl/管 7 1 （7.5×10 IU/ml） 1 定量校准品 2 号 15μl/管 6 2 （7.5×10 IU/ml） 1 定量校准品 3 号 15μl/管 5 3 （7.5×10 IU/ml） 1 定量校准品 4 号 15μl/管 4 4 （7.5×10 IU/ml） 1 定量校准品 5 号 15μl/管 3 5 （7.5×10 IU/ml） 注：不同批号试剂盒中各组份不能互换。 自备实验耗材：适用规格的离心管、微量移液器等。
乙型肝通用名称：乙型肝炎病毒核酸定量检测试剂盒(PCR-荧光探针法) 英文名称：Diagnostic Kit for Quantification of Hepatitis B Virus DNA (PCR-Fluorescence Probing) 【包装规格】 32 人份/盒 【预期用途】 乙型肝炎病毒是乙型病毒性肝炎的病原体，具有较强传染性，传播途径复杂，流行面广，发病率高等特点，可导 致急慢性乙型肝炎，淤胆型肝炎，严重的可导致急性肝衰竭，临床上主要表现为肝功能损害，部分患者可有黄疸。隐形感 染较为常见。 目前临床上常用的 HBV 检测方法主要有酶免疫法、化学发光法检测 HBV 标志物和核酸检测 HBV DNA 方法。本试剂 盒定量检测人血清和血浆样本中的乙型肝炎病毒 DNA，主要是通过对乙肝患者血中 HBV DNA 基线水平和变化情况的监测， 用于评估抗病毒治疗的应答和治疗效果监测。检测结果仅供临床参考，不能作为患者病情单独的评价指标，必须结合临床 表现和其他实验室检测指标对患者病情进行评价，亦不能作为血液筛查 HBV 病毒的筛查试剂使用。 【检验原理】 本品基于 TaqMan 探针实时荧光 PCR 技术。在 PCR 反应过程中，同时利用 Taq 酶的 5’→3’聚合酶活性和核酸外 切酶活性， 使得 TaqMan 探针降解， 荧光报告基团和淬灭基团分离使得荧光信号发射， FAM 荧光检测乙型肝炎病毒， JOE/RED 610 nm 波长通道检测内参。 本品使用外源性内参，可以监控和避免由于样本中的 PCR 抑制物或操作不当引起的“假阴性”结果。 【主要组成成份】 每个反应 组份名称 装量 主要成份 中的用量 1 2 3 4 5 6 7 8 9 核酸提取液 A 核酸提取液 B 内参 MgCl2 PCR缓冲液A Taq酶 HBV引物探针 阴性对照 阳性血清对照 3×1.1ml/管 2×1ml/管 160μl/管 450μl/管 480μl/管 160μl/管 320μl/管 100μl/管 100μl/管 100μl 50μl 3μl 13μl 15μl 5μl 10μl － － － 7 μl 7 μl 7 μl 7 μl 7 μl 聚 乙 二 醇 、 NaCl NaOH、SDS、Tween-20、 Chelex-100 合成病毒 MgCl2 Buffer、dNTPs Taq酶、UNG酶 HBV 引物和探针，内参 引物和探针 HBV 阴性血清 HBV 阳性血清 HBV 阳性血清 寡核苷酸片段 寡核苷酸片段 寡核苷酸片段 寡核苷酸片段 寡核苷酸片段 【储存条件及有效期】-20℃保存12个月。探针若单独储存，应注意避光。 【适用仪器】 本品适用于 AB 7300/7500/Mx3000P/LightCycler 480/SLAN 实时荧光定量 PCR 仪。 【样本要求】 用一次性的针筒抽取病人静脉血 1ml，置于灭菌的一次性试管中室温自然凝固或 800～1600g 离心 20 分钟，取分离出的 血清 0.2ml 左右送检。血清标本 2～8℃可放置 72 小时，-70℃可长期保存，标本不宜反复冻融。 【检验方法】 1. 试剂配制 按样本数（样本数＝待检血清样本数＋血清对照品 3 个＋定量校准品 5 个）n 配制反应液： 取 PCR 缓冲液 A n×15μl、HBV 引物探针 n×10μl、Taq 酶 n×5μl、MgCl2 n×13μl 至于一离心管中混匀；低速离
乙肝脱氧核糖核酸标准
乙肝脱氧核糖核酸标准
乙肝脱氧核糖核酸（HBV DNA）是乙型肝炎病毒的核酸，其检测是乙肝诊断和治疗监测的主要手段之一。
HBV DNA检测可通过各大医院的检验科室进行，其标准一般如下：
1. 采用定量PCR检测技术，测量阳性标准物质，得出样本中的病毒载量。
2. 一般检测限为10至100 IU/mL，也有的检测限为20至200 IU/mL。
3. 对于表面抗原（HBsAg）阳性的患者，建议每3至6个月进行一次HBV DNA检测。
4. 对于慢性乙肝患者，建议随诊期间每3至6个月进行一次HBV DNA检测。
5. 对于接受治疗的乙肝患者，建议在治疗前、治疗12周内（进行治疗1至2次）、治疗24周内（进行治疗3至4次）和治疗结束后进行HBV DNA检测。
6. 治疗结束后，应每3至6个月进行一次HBV DNA检测，以确
保病毒的持续性逆转录酶抑制。
总之，HBV DNA检测是判断乙肝病情和治疗效果的主要指标之一，其标准应根据临床情况和医生建议进行检测。
乙肝dna检测的操作规程
乙肝dna检测的操作规程
乙肝DNA检测的操作规程主要包括以下步骤：
1. 采集血液样本：通过抽取受检者的静脉血液来获取样本。
建议在空腹状态下进行抽血，以提高检测的准确性。
2. 提取DNA片段：利用特定的设备和技术，如EV卸电泳、PCR等，从血液样本中提取出乙肝病毒的DNA片段。
这一步骤是检测的关键环节，需要使用精密的仪器和专业的操作。
3. 比对和分析：将提取出的DNA片段与标准样本进行比对，通过特定的检测方法，如荧光定量PCR、基因测序等，分析DNA片段的特性和序列，以确定乙肝病毒的种类和复制程度。
4. 得出检测结果：根据比对和分析的结果，得出乙肝病毒DNA的定量或定性检测结果。
通常情况下，检测结果会以数字或阴阳性方式呈现。
5. 报告与解读：将检测结果整理成书面报告，并提供给医生或受检者。
医生根据检测结果判断受检者是否感染乙肝病毒，以及病毒的复制程度和传染性。
受检者应遵循医生的建议进行相应的治疗或监测。
需要注意的是，乙肝DNA检测是一项高技术含量的实验，需要由经过专业培训的医务人员进行操作。
同时，乙肝病毒的检测结果解读需要结合其他相关检查结果和临床表现进行综合分析，因此最好在医生的指导下进行。
PCR实验室操作流程
乙型肝炎病毒(HBV DNA PCR ABI7300)检侧标准操作程序一、INFORMATIONFORTEST检测信息项目名称乙型肝炎病毒核酸方法聚合酶链反应方法依据卫生部《全国临床检验操作规程》第三版（2006）第七篇第六章第一节二、ANALYTICALPRINCTPLE检测原理聚台酶链式反应(PCR〕可对特定核苷酸片段进行指数级的扩增，而实时荧光定量PCR技术，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
在实时荧光定量PCR反应中，引入了一种荧光化学物质，荧光物质有两种：荧光探针和荧光染料。
我们目前是使用TaqMan荧光探针的检测原理：PCR扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针，该探针为一寡核苷酸，两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。
探针完整时，报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收；PCR扩增时，Taq酶的5’一3’外切酶活性将探针酶切降解，使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离，从而荧光监测系统可接收到荧光信号，即每扩增一条DNA链，就有一个荧光分子形成，荧光信号强度也等比例增加（图一）。
这样就可以通过荧光强度变化监测产物量的变化，从而得到一条荧光扩增曲线图。
三、操作步骤（一）试剂配制1、进入试剂准备区，开启冰箱冷冻层取出HBV-DNA检测试剂盒。
查看外包装盒(包括生产批号、有效期)，无误后拆开试剂盒，取出核酸提取液、反应液及Taq酶(核对核酸提取液、HBVPCR反应液及Taq酶管上批号与试剂外包装盒批号是否一致)（图1），不一致则不可使用，需更换新的试剂。
室温平衡20min，完全融化后2000rpm离心备用。
2、核酸提取液的分装（1）取0.5ml离心管架置于超净工作台内(开机前用紫外线消毒30分钟)，用右手拿起镊子逐个将离心管放入离心管架（注意应夹住离心管外壁，不能碰到管内壁)，摆放顺序为横列从左往右摆，竖列为从上往下隔行排，离心管个数为n(n=样本数+对照品+质控品)。
HBV-DNA检测标准操作程序
2.3 吸取已编号的待测血清或血浆样本、试剂盒中的阴性对照、强阳性对照、临界阳性对照及定量标准品（1→）各200μl,分别加入到1.5ml离心管中，在离心管上编好号，振荡混匀。
2.4 56℃温浴15-2Omin,期间颠倒混匀数次。
2.5 加入200Ul无水乙醇，充分混匀，将全部液体转入装有2ml收集管的硅胶柱中，IoOoorPm离心Imin,倒掉收集管中的废液，将硅胶柱重新放入收集管中。
2.6 在硅胶柱中加入500Ul溶液Wl（使用前先检查是否加入相应体积的无水乙醇），1000OrPm离心Imin,倒掉收集管中的废液，将硅胶柱重新放入收集管中。
2.7 在硅胶柱中加入500Ul溶液W2（使用前先检查是否加入相应体积的无水乙醇），1000OrPm离心Imin,倒掉收集管中的废液，将硅胶柱重新放入收集管中。
2.8 在硅胶柱中加入500Ul溶液W2（使用前先检查是否加入相应体积的无水乙醇）,IoOOOrPm离心Imin,倒掉收集管中的废液。
2.9 将硅胶柱放入收集管中，1200OrPm空管离心3min,丢弃收集管。
2.10 将硅胶柱放入新的1.5ml离心管中，开盖静置L2min,往硅胶柱中心加入80Ul 的TE洗脱液，静置2-5min,1200OrPm离心2min,丢弃硅胶柱，盖好离心管盖，做好相对应的编号。
（注意：TE洗脱液的体积应不少于50ul,体积过小影响回收率。
为增加基因组DNA的回收率，可将TE洗脱液稍微加热。
获得的DNA应保存在-20°C,以防DNA降解。
）3 .加样（在样本处理区进行）3.1 向设定的n个PCR反应管中分别加入步骤1处理好的样品DNA、强阳性对照、临界阳性对照、阴性对照以及定量标准品（4个）各20μ∣,盖紧管盖，稍做离心。
3.2 将PCR反应管转移到检测区，放入相应的荧光PCR检测仪内，记录样品摆放顺序。
4 .PCR扩增（检测区）4.1 循环条件设置使用ABI7500和Line-Gene9660荧光PCR检测仪时循环程序设置如下：1150℃2min无2195℃9min无34595℃15sec无58℃50sec单次采集荧光4138℃10sec无■阴性对照无定量值出现，且内标Ct值W40；■强阳性对照检测值范围(3.16X105-3.16X106),临界阳性对照检测值范围(3.16×101-3.16×102),且内标Ct值W40。
HBV、HCV检测规程
乙型肝炎病毒核酸定量检测1原理本试剂盒用一对乙型肝炎病毒特异性引物和一条乙型肝炎病毒特异性荧光探针配以PCR反应液、耐热DNA聚合酶（TAQ酶）、核苷酸单体（DNTPS）等成分，用PCR体外扩增法定量检测乙型肝炎病毒DNA。
2 标本种类及收集要求2.1 标本采集2.1.1标本种类：血清或血浆。
2.1.2标本要求：血清——用一次性无菌采血针抽取受检者静脉血2ml，注入无菌的干燥生化管，使用水平离心机，3000rpm离心10min;吸取上层血清，转移至1.5ML进口灭菌管。
血浆——用一次性无菌采血针抽取受检者静脉血2ml，注入含EDTA（乙二胺四乙酸二钠）抗凝剂管，立即轻轻颠倒玻璃管混合5~10次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，3000rpm离心10min;吸取上层血浆，转移至1.5ML 进口灭菌管2.2 标本储存：标本可立即用于测试，也可以保存与—20℃待测，保存期为6个月。
2.3标本运输：密封，室温运输。
2.4标本拒收标准：污染、标本量不足、严重溶血或脂血标本不宜作此项检测。
3试剂3.1 试剂名称：乙型肝炎病毒核酸定量检测试剂盒（PCR-荧光探针法）3.2 试剂生产厂家：中山大学达安基因股份有限公司。
3.3 包装规格：20人份/盒3.4 试剂盒组成DNA浓缩液，DNA提取液，PCR反应管，HBV临界阳性质控品，HBV强阳性质控品，阴性质控品，HBV阳性定量参考品（1.0×104IU/ml、1.0×105 IU/ml、3.5试剂储存条件及有效期：-20℃避光保存，有效期6个月。
4 仪器设备4.1 仪器名称：生物安全柜(Ⅱ级)、高速冷冻离心机、荧光定量PCR仪、恒温金属浴。
4.2 仪器厂家：上海培清、美国NUAIR公司、美国eppendorf、美国ABI生物技术公司、广州达安基因有限公司。
4.3 仪器型号：ABI7300、DA7600。
5 操作步骤5.1 DNA提取：5.1.1 标本处理（血清和血浆标本处理相同）-取100ul血清加入等量DNA浓缩液，振荡器振荡混匀5sec；12，000rpm离心10min；去上清，沉淀中加入30ul DNA 提取液，振荡器剧烈振荡混匀5-10sec，瞬时离心数秒，100℃恒温处理10±1min；12，000rpm离心5min，备用。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
乙型肝炎病毒（HBV）核酸定量检测标准操作规程（PCR-荧光探针法）
1.目的: 规范乙型肝炎病毒（HBV）核酸定量检测操作流程，保证检测结果的准确性。
2.应用范围: HBV DNA 荧光定量检测。
3.职责:
3.1 文件编写：实验室技术员。
3.2 文件审核：实验室主管。
3.3 文件审批：实验室主任。
3.4 执行：PCR实验室所有工作人员。
4. 参考文献：
4.1 中山大学达安基因股份有限公司乙型肝炎病毒（HBV）核酸定量检测试剂盒（PCR-荧光探针法）说明书。
4.2 中山大学达安基因股份有限公司核酸扩增荧光检测系统DA7600型使用说明书。
5. 内容：
5.1 检测方法：PCR-荧光探针法。
5.2 实验原理：用一对乙型肝炎病毒特异性引物和一条乙型肝炎病毒特异性荧光探针，配以PCR反应液、耐热DNA聚合酶（Taq酶）、核苷酸单体（dNTPs）等成分，通过PCR体外扩增法，即高温变性、低温退火、适温延伸进行DNA扩增，并对PCR全过程进行实时监测，从而定量检测乙型肝炎病毒DNA。
5.3 性能参数：
5.3.1 精密度：检测下限为5.0x102IU/ml。
5.3.2 线性范围：1.0x103～1.0x108IU/ml。
5.4 标本采集：由合作单位按照以下要求进行采集
5.4.1 标本类型：血清。
5.4.2 标本采集：用一次性无菌注射器抽取受检者静脉血2毫升，注入无菌的干燥玻璃管，室温（22～25℃）放置30～60 min，全血标本可自发完全凝集析出血清，或直接使用水平离心机，1500 rpm离心5min；吸取上层血清，转移至1.5ml灭菌离心管。
5.4.3 标本保存：标本可立即用于测试，也可以保存于-20℃待测，保存期为6个月，应避免反复冻融。
5.4.4 运送条件：标本运送采用0℃冰壶。
5.4.5 标本拒收标准：污染、严重溶血、脂血类或肝素抗凝剂标本。
5.5 设备和试剂：
5.5.1 设备： DA7600荧光定量PCR仪、低速水平离心机、生物安全柜、台式高速离心机、移液器、混匀器、恒温水浴箱/干式恒温器、冰箱（4℃、-20℃）、移动/固定紫外灯、冷冻离心机。
5.5.2 试剂：
5.5.2.1 试剂品牌：乙型肝炎病毒核酸定量检测试剂盒（PCR-荧光探针法）
5.5.2.2 试剂批准文号：国食药监械（准）字2014第3400032号。
5.5.2.3 试剂组成：
5.5.2.4 试剂保存和有效期：保存于-20±5o C；有效期9个月。
5.5.2.6 质控品：由康切斯坦购买质控品。
质控水平S4。
5.6 操作过程：
5.6.1 血清标本与质控品的处理：待测样本、阳性定量参考品、阴性质控品、HBV强阳性质控品、HBV临界阳性质控品进行同步处理。
5.6.1.1 打开恒温水浴箱或干式恒温器，设定温度100℃。
5.6.1.2从试剂盒中取出DNA提取液I、内标溶液、阴性质控品、HBV阳性定量参考品。
从冰箱取出阳性质控品，让其在室温下完全融化。
5.6.1.3 取450ul DNA提取液I和4ul内标溶液，分别加到1.5ml的灭菌离心管中并编号。
5.6.1.4 将DNA提取液I、阴性质控品于振荡混匀器振荡5s，6,000rpm离心5s。
5.6.1.5 往装有450ul DNA提取液I和内标溶液的灭菌离心管中加入待测样本血清和阳性质控品各200ul，用振荡器剧烈振荡混匀15s，瞬时离心数秒。
100℃恒温处理10min。
5.6.1.6 12,000rpm离心5min,2～8℃保存备用（如需长期保存请放置-20℃）。
5.6.1.9 排版：根据样本数量编写《PCR实验室DA－7600取试剂、加样、扩增对照图面版表》，注意添加阴性质控，阳性质控及阳性定量参考品。
5.6.1.10 加样：从-20℃冰箱取出HBV-PCR 反应管若干管转移至加样区，根据《PCR实验室DA 7600取试剂、加样、扩增对照图面版表》的位置放好后，直接加入处理好的样本DNA和阴性质控品、阳性质控品，阳性定量参考品各20μL，盖紧管盖，瞬时离心以将液态离如管底。
5.6.2 DA7600仪器操作与结果分析：参见《达安7600荧光定量PCR仪操作、校准及保养规程》及《基因扩增检测及结果分析规程》。
5.6.3 记录实验数据。
5.6.4 取出结束后扩增仪内扩增产物需用一次性手套包好、封口后，丢入医疗废物垃圾桶内，以防止扩
增管破裂而导致污染。
5.6.5 关闭扩增仪电源和计算机电源。
5.7 干扰和交叉反应：
5.7.1 样本存在溶血可导致检测结果升高。
5.7.2 某些药物可干扰检测，使检测结果降低，如拉米夫定，因此需避免用药期间采样检测。
5.8 临床意义：直接反映人体内乙肝病毒是否存在及病毒复制活跃程度，可作HBV病毒感染的辅助诊断及其疗效监测的标准。
5.9 安全防护措施：
5.9.1 试剂处理：
5.9.1.1 使用或更换试剂时，务必戴手套；不要用身体直接接触试剂，以免损伤皮肤。
5.9.1.2 如果皮肤接触了试剂，立即用大量清水冲洗并消毒。
5.9.1.3 如果眼睛接触了试剂，立即用喷淋器冲洗，并紧急就医。
5.9.2 仪器使用：
5.9.2.1 仪器运转中不要触摸加样机构、试剂分注机构、搅拌机构、反应容器清洗机构等可动部分。
5.9.2.2 仪器通电时不能打开仪器上面、背面、侧面的盖板，不能触摸光源灯的玻璃面。
5.9.3 生物安全防护：参见《生物安全防护手册》
5.10 注意事项：
5.10.1 PCR荧光定量检测法容易受污染，所以实验过程中应避免反复开盖。
5.10.2 试剂使用前要完全解冻，但应避免反复冻融。
5.10.3 试剂盒DNA提取液内含不溶于水的物质，取样时需用加样器充分混匀后吸取。
如出现因吸头嘴部太细不能吸取或取样后堵塞吸头的现象，可先用洁净无污染的剪刀将吸头嘴部剪去一截。
5.10.4 实验完毕应用有效氯含量为1000mg/L的84消毒液擦拭桌面，打开紫外线灯消毒30分钟以上。
6.相关记录表格：
6.1 LAB-SOP-PCR-005-T01-001《PCR实验室实验、交接班记录表》
6.2 LAB-SOP-PCR-015-T01-001《PCR实验室迟发报告登记表》
6.3 LAB-SOP-PCR-014-T01-001《PCR实验室不合格标本登记表》
6.4 LAB-SOP-PCR-016-T01-001《PCR实验室室内质控记录表》
6.5 LAB-SOP-PCR-016-T01-001《PCR实验室室内质控图》
6.6 LAB-SOP-PCR-025-T01-001《PCR实验室DA－7600取试剂、加样、扩增对照图面版表》
本SOP文件颁发部门: 质管部
本SOP文件分发部门：PCR实验室
本程序文件编写人: 编写日期：年月日本程序文件审核人：审核日期：年月日本程序文件审批人: 执行日期：年月日。