微生物标本的采集与运送
微生物标本采集送检及处理原则
微生物标本采集送检及处理原则一、标本采集1.采集时机：采集标本应在疾病出现初期进行，避免开始使用抗生素治疗前采集。
2.采集部位选择：根据病情选择合适的部位进行采集，一般可根据症状、疾病类型和临床表现进行判断。
3.采集方法：采集标本时应采取无菌手法，使用无菌采样器材，避免污染和交叉感染。
4.标本储存条件：采集后的标本应立即送往实验室进行检测，若无法及时送达实验室，则应储存在合适的条件下，避免细菌的生长和繁殖。
二、标本送检1.标注采集信息：标本送检前应在标本瓶或容器上标注病人信息、采集时间和采集部位等必要的信息，确保标本的准确性和唯一性。
2.冷藏和运输：对于易变质的标本，如粪便、尿液等，应冷藏并尽早送达实验室；对于其他标本，应采取适当的保存和运输方式，避免温度过高或过低，影响细菌的生存和检测结果的准确性。
三、标本处理1.标本处理前的准备：在对标本进行处理前，必须进行准备工作，如标记标本编号、记录标本类型、检查标本的一致性和完整性等。
2.标本处理方法：根据标本类型的不同，采取相应的处理方法，如深部标本(如脑脊液、关节液等)应优先进行细菌涂片、培养等方法，浅部标本(如咽拭子、鼻拭子等)可直接进行细菌培养。
3.标本处理的时间：不同类型的标本处理时间有所不同，但一般应尽快进行处理，避免细菌在标本中的生长和污染。
四、标本保存1.标本封存：处理完的标本应在标本瓶或容器上进行标注，并进行封存，避免污染和交叉感染。
2.标本保存时间：保存标本的时间应根据实验室的需求和标本的特性来确定，如对于一些常见的标本，如尿液、粪便等，一般保存时间较短，而对于其他一些特殊标本，如组织标本等，可保存更长时间。
总之，微生物标本采集送检及处理原则的正确遵守可以确保实验结果的准确性和可靠性，为疾病的诊断和治疗提供有力的支持。
同时，医务人员在进行标本采集和处理过程中应加强无菌操作和个人防护，有效避免交叉感染的发生，保障自身和他人的健康安全。
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
微生物标本的采集与运送
（二）血液标本
对怀疑导管相关血流感染，又需保留导管的患者:
采集2份血液标本
1份通过外周静脉采集 1份通过导管采集。
小结
细菌培养鉴定难, 标本留取是关键, 医护人员齐挑担, 合理用药百姓赞。
3.组织：经穿刺或手术活检获得标本，穿刺组 织可放入1.5ml无菌离心管中；
4.体表伤口可接收细菌培养的条件： 鳞状上皮细胞数<10个/低倍视野，并有多
形核白细胞存在
（二）送检：立即送检，建议不超过1小时送达
（一）导管头: 采用无菌性技术，获取插入患者体内最远端的
导管段约5cm，置于无菌容器送检；不能置于生理 盐水或转运培养基中运送。
采血套数与检出率
J C lin Microbiol.2007;45:3546-3548
需氧瓶
采
血
厌氧瓶
试
管
标本不够时, 先满足需氧瓶
1、 已采集的血培养标本必须立即送检， 2. 如不能立即送检，可室温放置，但不超过2小 时，不可放冰箱。
取后不能及时送, 常温放置忌冰冻。
二、尿液标本的采集
1、中段尿 2、导管尿（不能取尿袋内的尿液） 3.膀胱穿刺尿 常用：中段尿（晨尿或在膀胱内停留4h以上的尿液）
1、抗生素治疗之前
若已使用抗生素者，应在下次用药前或血药浓度
最低时采集标本。 2、患者寒战时
发热要做血培养, 双侧双瓶少漏网；
何时采血要记清, 寒战前后菌量深；
3.发热初期或高峰时
超过发热峰值后，病原菌会逐渐被机体免疫系统 清除，从而减低检出率。
特别提示:
采集前非常关键的一步:
皮肤和瓶子的消毒
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。
选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。
在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。
送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
微生物标本采集和运送的基本原则
微生物标本采集和运送的基本原则
微生物标本采集和运送的基本原则包括以下几点：
1. 采集时遵守无菌操作原则：采集人员应佩戴无菌手套，使用经消毒处理的工具和容器，确保采集过程不会引入外来微生物污染。
2. 标本采集要及时：一般来说，微生物标本应在病情出现或患者就诊后尽快采集，以确保标本中的微生物不会失活或过度增殖。
3. 采集要选择适当的采样部位和方法：不同类型的微生物感染，需要针对不同的组织、液体或体表进行采集。
采样时应遵循临床指南，选择适当的采样部位和方法。
4. 采集要足够数量：为了保证对病原体的准确鉴定和敏感性测试，采集的标本应足够数量。
采集过程中，避免采样物与采集容器外部环境的交叉污染。
5. 保证采样物的完整性和稳定性：采集的标本应保持完整，避免在采集、运输和处理过程中造成微生物失活或污染。
对于需保存在冷藏或冷冻条件下的标本，应采取相应的措施确保稳定性。
6. 标本运送要符合规定：标本应尽快送至实验室，运送过程中应避免温度变化、震荡和倒置等可能影响标本稳定性的因素。
运送时应采取相应的隔离措施，避免交叉感染。
7. 运送要有标志和单据：标本运送时应进行明确标识，并附上相应的单据，包括采样日期和时间、采样部位、采样者姓名、患者姓名和病历号等信息，以确保标本能够被正确识别和追踪。
总的来说，微生物标本采集和运送的基本原则是确保标本的无菌、完整和稳定性，遵循正确的采集方法和运送规定，以保证标本的质量和可靠性。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。
2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。
3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。
第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。
第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。
第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。
第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。
第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前，检查采集器具和试剂的生产日期和有 效期，确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
02
03
培训采集人员
对采集人员进行无菌操作 技术规范的培训，确保他 们掌握正确的采集方法和 注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核，确 保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理，以备后续查询 和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染，确保无菌操作，以免影响检验 结果。
采集适量标本
采集标本量应适中，过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录，确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本，应按照相关规定进行处理，避免误用 或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基，确保能 够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌，以消除 杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部，轻轻旋 转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃 体，避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器， 痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集，过程中需严格无 菌操作。
穿刺液标本
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则一、标本采集原则1.选择合适的采集时间：根据不同的微生物检验要求，合理选择合适的采集时间，避免检测结果的误差。
2.手部卫生：在采集标本前，进行手部卫生，包括彻底清洁双手并戴上无菌手套，以防止交叉感染。
3.选择合适的采集器具和培养基：根据标本类型和检测要求，选择相应的采集器具和培养基。
常见的采集器具有吸管、棉签、刷子等，培养基有血平板、巴氏平板、育苗平板等。
4.标本容器选择：选择合适的标本容器，不同类型的标本选择不同的容器，并正确标注标本信息。
标本容器应保持清洁和无菌。
5.采集部位消毒：采集标本前，需要对采集部位进行消毒处理，以减少细菌污染。
消毒可以用酒精棉球或碘酒进行。
6.采集标本量要足够：采集标本时，应确保采集的标本量足够，以保证检验结果的准确性。
对于液体标本，应采集适量的标本，避免过多或过少，对于固体标本，应采集充足的组织样本。
7.采集方式：根据标本类型和采集要求，选择合适的采集方式。
例如，对于尿液标本采集，应根据不同的检测项目选择早晨采集或随机采集。
8.标本保存：采集完标本后，应及时进行保存。
不同的标本有不同的保存条件，如尿液标本应保存在无菌容器中，放置在冷藏室中。
此外，应避免降低标本的质量，如尽量避免标本被太阳直射等。
二、标本运送原则1.运送时间：将采集的标本尽快送往检验室，以确保标本的新鲜度。
不同的微生物标本有不同的时间要求，如直肠拭子标本应在2小时内送达，尿液标本应在4小时内送达。
2.运送方式：标本的运送要采取合适的方式，以避免标本内的微生物因震荡或温度变化而受到影响。
常见的运送方式有冷藏运送、冷冻运送和常温运送等。
需要密封标本容器，防止泄漏。
3.标本的标识：在运送过程中，应在标本容器上正确标注标本的信息，包括患者的姓名、性别、年龄、住院号、就诊科室等，并附上标本的项目名称和送检医生的姓名。
4.运送温度控制：不同的标本有不同的温度要求。
应注意控制运送温度，避免过高或过低，以保持标本的稳定性。
完整微生物标本的正确采集运送ppt课件
05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少，可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符，导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集，可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染，可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染，确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器，以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏，应使用适当的冷藏设 备，以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器，以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤，正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长，可能导致微生物死亡或
繁殖，影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送，温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护，可能导致标本受到污染 或损坏。
临床微生物标本的正确采集及运送
患者出现以上一种或同时具备几种临床表现时可作为血 培养的重要指征
血液标本的采集与运送
2、血培养标本的采集时间 尽可能在患者寒战或开始发热时采血 在患者接受抗生素治疗前采血 如患者已经使用抗生素进行治疗，应在下一次用药
前采血
血液标本的采集与运送
3、血培养标本的采集 ⑴皮肤消毒程序：严格执行以下3步法：①75%酒 精擦拭静脉穿刺部位待30s以上，②再用1%-2%碘 酊作用30s或10%碘伏作用90s以上，从穿刺点向外 画圈消毒，至消毒区域直径3cm以上；③最后用 75%酒精脱碘。如对碘过敏的患者，可用75%酒精 消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。 注意：不允许在消毒后按压静脉，除非戴有无菌手 套
化脓和创伤标本的采集与运送
采集方法 ⑴未破裂脓肿：在采集标本前，对患者病灶局部的
皮肤或黏膜表面，用2.5%—3%碘酊消毒、75%酒精 脱碘，用无菌注射器将脓肿内容物吸出,然后切开脓 肿、引流，采集的脓液（>1ml）,并取部分脓肿壁置 于厌氧运送装置或接种于厌氧培养基中立刻送检。 注意不主张用拭子采集标本。
血液标本的采集与运送
5、血培养采集的次数 ⑴对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时 或短时间间隔（10分钟内）从不同部位（如双臂） 采集2套血培养标本，做到“双瓶双侧”。如有必 要，可同时或短时间间隔内从下肢静脉采血接种第 3套培养瓶。在采集血培养后的2-5天内，不需要重 复采集血培养。当采血量不能满足推荐的采血量时， 应首先接种需氧瓶。 ⑵婴幼儿患者，需要同时采集2次（不同部位）血培 养标本。
穿刺液标本的采集及运送
2、标本运送 采集后应正确盖好，防止泄露或容器外部留有残留
物。 标本应在15min内送检。若不能及时送检室温保存
不超过24h。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
病原微生物的标本采集,运输,储存,使用,销毁的管理流程
病原微生物的标本采集,运输,储存,使用,销毁的管理流程
病原微生物的标本采集、运输、储存、使用、销毁的管理流程如下：
1. 标本采集：采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对医嘱、打印条形码、
选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。
2. 标本运输：标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。
运
输人员需对标本进行核收登记并签名。
3. 标本储存：根据病原微生物的类别将病原微生物分置于专用包装物
或容器内，但包装物和容器应符合<<病原微生物专用包装物容器的标
准和警示标识的规定>>。
盛装的病原微生物达到包装物或容器的3/4时，应当使用有效的封口方式，使封口紧实、严密。
医务人员在盛装
病原微生物前应当对包装物或容器进行认真检查，确保无破损，渗液
和其它缺陷。
4. 标本使用：实验室工作人员按医疗废物分类目录对病原微生物进行
分类。
使用时要认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严
防差错。
5. 标本销毁：病原微生物标本在使用后需要按照医疗废物分类目录进
行分类，并按照相关规定进行销毁。
临床微生物标本的正确采集与运送图文
临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。
本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。
一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。
例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。
1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。
下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。
采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。
常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。
尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。
采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。
中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。
呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。
采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。
常见的方法有喉拭子和气管切开。
胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。
采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。
常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。
1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。
采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。
二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。
消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。
2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。
进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。
2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。
应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。
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• （三）标本量：≥ 1ml，尽量不使用引流 液
六、脑脊液标本的采胸水集腹水脑脊液， 放入血瓶阳性多， 条件限制无血瓶，
（一）采集时间：使用抗生素前 接种平皿亦认可。
（二）采集方法：采用腰椎穿刺术无菌采集
（三）采集量与容器：1～2ml，直接注入血 培养
取后不能及时送， 常温放置忌冰冻。
二、尿液标本的采集
（一）尿标本种类：
1、中段尿 2、导管尿（不能取尿袋内的尿液） 3、膀胱穿刺尿 常用：中段尿（晨尿或在膀胱内停留4h以 上的尿液）
（二）中段尿的留取： 尿液培养要计算， 清洗外阴留中段； 培养长出多种菌， 辨清污染重新送。
1、采集：采样前，应先清洁外阴及尿道 口周围，自然排尿，不间停，截留中段尿， 置于无菌尿杯中，一般留取10ml左右
（三）采集血量：
1、需氧瓶+厌氧瓶 为 一套 注意：每一套血培养应当从身体的不同部 位采集
2、成人： 8～10ml/瓶 儿童： 3～5ml/瓶 婴幼儿： 1～2ml/瓶 注意：采集静脉血
（四）采集频率 通常 情况
1、急性感染：分别从两臂采血，每臂采 1套。
2、急性心内膜炎：在抗生素治疗前1-2h 内，于3个不同部位采集3套
3、亚急性心内膜炎，第1天24h内，相 隔1h分3个不同部位，连续采集3套血培养 标本，若24-48h全部阴性，再采集2-3套血 培养标本
4、对于已进行抗生素治疗的心内膜炎 患者，每日采集2套血液标本，连续3天
5、不明原因发热，于发热期内多次采 血，如果24h培养为阴性结果，应继续采集 2-3套或更多套血培养标本。
为何要多次采血
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持续性”
• 一过性的菌血症，细菌仅在外周血中持续 数秒
• 共生菌、复数菌
• 提高检出率、减少漏检、判断病原
采血套数与检出率
（五）采集顺序：
需氧瓶
采
血
厌氧瓶
试
管
标本不够时，先满足需氧瓶
（六）运送要求：
1、 已采集的血培养标本必须立即送检，
2、 如不能立即送检，可室温放置，但不 超过2小时，不可放冰箱。
注意：标本内切勿混入唾液及鼻咽分泌物
4、合格的痰液标本：
痰液培养杂菌多， 清晨漱口要深咯， 涂片合格继续做， 正常致病必掌握。
平均每低倍视野鳞状上皮细胞数 < 10个
对于不合格痰标本，检验科应在拒收系 统中注明原因，并且打电话临床科室，重 新采样
五、体液标本的采集
• （一）体液标本包括：心包液、关节液、 胸水、腹水、羊膜液、后穹隆等穿刺液
（四）运送：常温下立即送检，一般是15min 内送至实验室。若培养脑膜炎奈瑟菌、流感
七、生殖道标本
（一）常用女性生殖道标本： 阴道后穹隆、盆腔穿刺液、阴道拭子、子宫 颈拭子、前庭大腺吸出液
（二）常用男性生殖道标本： 阴囊穿刺液、前列腺按摩液、水疱液、尿道
分泌物
以上标本均由专科医师采集，2小时内送检
2、运送：常温下2小时内送达微生物室， 4℃保存不超过24h
三、粪便标本的采集
（一）采集指征
1、腹泄、大便≥3次，粪便性状异常，如稀 便、水样便、脓血便、血便，可伴恶心、 呕吐、食欲不振、发热、腹痛及全身不适 等。尽量在用药前采集
2、伤寒患者于发病2周后采集粪便
3、怀疑霍乱时立即采集粪便送检。
（二）采集方法与送检：
1、自然排便法：自然排便后，挑取脓血、 黏液 便2-3g作常规性病原菌培养；液状粪便取絮 状物23ml，直接放入无菌杯内送检。
2、直肠拭子法 难以获得粪便、排便困难者及幼儿用此
Байду номын сангаас
大便要取脓血处， 志贺沙门需关注。
直肠拭子法：将无菌拭子用无菌生理 盐水湿润后插入肛门2-4cm，柔和地旋转拭 子采集粪便标本。一般不推荐使用拭子做 腹泻病菌的培养。
八、眼耳标本
1、结膜标本：湿拭子，滚动采集 2、眼角膜标本：在麻醉下，刮取
3、耳部拭子：外耳炎 4、穿刺液：鼓膜穿孔，穿刺抽取深部分泌 物
以上标本由专科医师采集，2小时内送检， 室温保存不超过24小时。
九、伤口、脓液及组织标本
（二）下呼吸道标本
咳出痰、诱导痰、吸出痰、支气管肺泡 灌洗液、支气管保护性毛刷、 肺穿刺组织
下面仅介绍：咳出痰
1、抗生素使用前，一般以晨痰为好。
2、告知患者在留痰前，先用冷开水或无菌 生理盐水反复漱口，然后再用力咳出深处 痰液（可轻拍背部），吐入无菌痰杯中送 检。
3、常规细菌培养标本两小时内送检，疑为 流感嗜血杆菌、肺炎链球菌时立即送检
微生物标本的采集与运送
检验科 2017.9.5
在临床微生物检验工作中，标本的正确选 择、采集和运送是保证检验质量的重要环 节，是实验室工作准确和有效的基本前提。
早期、无菌、合格
标本
规范化采集 不符合要求 污染的标本
提供重要临床 感染信息 结果无意义
误导临床
常见标本的分类
无菌标本 血液 脑脊液
关节腔积液
有菌标本 痰液 咽拭子 尿液
胸腹水、胆汁 其他类别
粪便 其他类别
一、血液标本的采集
（一）采集指征
1、不明原因的发热（大于38℃或低于36℃） 2、寒战、休克、僵直 3、严重的局部感染（脑膜炎、心内膜炎、肺
炎、肾盂肾炎、腹部术后感染等） 4、白细胞增多（特别是核左移，未成熟或杆
状核） 5、粒细胞减少、血小板减少 6、皮肤粘膜出血、多器官衰竭等 7、CRP、PCT升高
3、送检：1小时内送达，志贺菌30分 钟内送达 怀疑弧菌，立即送检。
四、呼吸道标本的采集
（一）上呼吸道标本：
1、咽拭子采样：患者先用清水漱口，将 患者 的舌头向外轻拉，用无菌拭子越过舌根到咽 后壁或悬 雍垂的后侧（肉眼可见的红肿或白膜部位） 反复涂抹 数次，拭子要避免接触到口腔和舌黏膜。
2、鼻拭子采样：用无菌拭子伸入鼻腔至 少深1cm在鼻内病灶边缘部分，先用力旋转拭 子，停留10-15s后取出，插入无菌管中。
（二）采集时间：
1、抗生素治疗之前
若已使用抗生素者，应在下次用药前或血
药浓度最低时采集标本。 2、患者寒战时
发热要做血培养， 双侧双瓶少漏网； 何时采血要记清， 寒战前后菌量深；
3、发热初期或高峰时
超过发热峰值后，病原菌会逐渐被机体 免疫系统清除，从而减低检出率。
特别提示：
采集前 皮肤和瓶子的消毒