(参考课件)微生物标本的正确采集运送及注意事项
合集下载
临床微生物标本采集与运送课件
留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集，不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。
采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过30分钟；将注射器针头插入采样
端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
•
收集中段尿液5-10ml，及时送检。
室温保存下不得超过2小时，否则应置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖，因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏，
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征：
•
•
•
•
•
•
•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养：
1.粪便涂片白细胞>5个/HP；
2.体温>38℃;
3.重症腹泻；
4.脓血便；
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人；
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
•
•
•
•
•
采集：
按脊椎穿刺操作规程，采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中，每支试管至少1-2ml，然后马
上将第2支（或第1支）送至实验室。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送：
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
应该采多少血量？
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml，共20ml；要求至少采两份标本，即
采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过30分钟；将注射器针头插入采样
端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
•
收集中段尿液5-10ml，及时送检。
室温保存下不得超过2小时，否则应置于4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖，因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏，
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征：
•
•
•
•
•
•
•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养：
1.粪便涂片白细胞>5个/HP；
2.体温>38℃;
3.重症腹泻；
4.脓血便；
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人；
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
•
•
•
•
•
采集：
按脊椎穿刺操作规程，采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中，每支试管至少1-2ml，然后马
上将第2支（或第1支）送至实验室。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送：
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性，则继续采集2套血培养。
应该采多少血量？
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml，共20ml；要求至少采两份标本，即
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
管理流程不严密
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
微生物标本的正确采集运送及注意事项
痰标本注意事项
1.痰以深咳排除后，应装有密封瓶盖的无菌塑料容 器中，以免感染自己或他人。
2.标本应及时送检，室温≤2h。
3.若不能及时处理，可选择运送培养基运送和保 存标本，但不应≥48h
尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
静脉导管：75%酒精消毒导管周围皮肤，将导管末端约 5cm移入无菌瓶送检
引流液：75%酒精消毒导管采集部位，用注射器从引流管 无菌采集2-3ml至无菌容器送检
无菌体液采集注意事项：
➢ 患者用药前或停药后1-2日采集
➢ 无菌体液的直接涂片可为临床提供重要信息（苛养菌？ 厌氧菌？白细胞吞噬细菌？）
时间太长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
粪便标本采集运送规范
自然排便，挑取脓血、粘液、组织碎片的粪便2-3g剩余无 菌容器
直肠拭子法
小结
➢ 无菌采集 ➢ 无菌容器 ➢ 及时采集 ➢ 及时送检
对于未破溃的脓肿可严格消毒后，以无菌注射器抽取脓 汁及分泌物,也可切开排脓用 无菌棉拭采取,但不能留下碘 和乙醇等消毒剂，若混入标本将影响细菌生长。
创伤出血敷有药物在2h以内及烧伤12h内均不应采集标本， 此时获得的阳性结果机会甚少。
痰标本的采集运送规范
1.推荐用晨痰——混合痰液和24h痰液有多量杂菌 2.刷牙，清水漱口三次——减少口咽部定植菌污染 3.水化，生理盐水雾化排痰——重症病人，气管抽痰 4.标本立即送检（2小时内），否则4℃存放 5.咳痰不宜做厌氧培养——口咽部大量厌氧菌
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
临床微生物标本的采集与运送图文
临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。
选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。
在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。
送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
临床微生物标本的正确采集与运送图文ppt课件
疗后的2至5天内血液中的感染细菌不会马上消失。
2020/9/17
Dr.HU Bijie
7
国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
血培养的采血量
对于成年患者，每套血培养瓶推荐的采血 量为20至30ml
数小时 血培养瓶不得在采血接种后放入冰箱或冷
冻
国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
添加剂（树脂、活性炭、抗凝剂）
和无添加剂的血培养瓶相比，拥有添加剂 的血培养瓶的阳性率更高
3
国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
血培养标本
采集与运送
4
国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
血培养的数量
❖ 研究结果
➢ 一套血培养的阳性率为65％
➢ 二套血培养的阳性率为80％
➢ 三套血培养的阳性率为96％
❖ CLSI(药敏试验标准）建议方针
➢ 对于每位需要血培养的患者需采取2至3套。
➢ 对于成年患者的血培养，只采单一的血培养是不允许的。 因为单一血培养的结果的临床意义很难解释。
微生物标本的正确采集运送及注意事项ppt课件
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
0
30
细菌浓度
体温
60（min）
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
时间长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
有意义的痰标本： 1、合格痰标本培养优势菌中度以上生长（≥ +++） 2、合格痰标本有细菌少量生长，但与涂片镜检结果一
致（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌 ） 3、多次培养到相同细菌；
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
完整微生物标本的正确采集运送ppt课件
05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少，可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符，导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集，可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染，可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染，确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器，以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏，应使用适当的冷藏设 备，以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器，以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤，正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长，可能导致微生物死亡或
繁殖，影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送，温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护，可能导致标本受到污染 或损坏。
完整 微生物标本的正确采集运送ppt课件
︕
极易由表皮葡萄球菌造成污染
标本采集步骤
血培养标本的运送要求和拒收标准
采血量
• 成年人采血量为10～20ml, 婴幼儿为1～2ml，儿童3～5ml
血液标本与培养基之比1:5 -1:10为宜
成人血液中含有的菌量 <=10cfu/ml 儿童血液中含有的菌量 100～1000cfu/ml
• 需氧瓶和厌氧瓶
– 对常规血培养，建议采需氧和厌氧的一套血培养瓶 – 当采血量不能满足推荐的血量时，需氧培养优先
先注入哪个瓶？
影响阳性标本检测的因素
绝对需氧菌
苛养菌？
生长因子X，V 维生素B6，K3
1.细菌
兼性厌氧菌 微需氧菌 绝对厌氧菌
影响阳性标本检测的因素
高？
２. 血中细菌的浓度
低？ - 成人：血中细菌1～30 CFU/ml - 儿童：血中细菌高于成人 （100～1000 CFU/ml或更高）
为何要多次采血？
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持 续性” • 一过性的菌血症，细菌仅在外周血中 持续数秒 • 共生菌、复数菌 • 提高检出率、减少漏检，判断病原
采血部位
• 多次采血时，应在不同部位进行 消 毒 剂 的 作 用 时 间 • 切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本
避免由插管或导管取标本
4. 标本的采集次数和采集量
采 血 量 与 检 出 率 的 关 系
每增加 1 毫升血 = 增加 3% 的敏感度 （由0.6%至4.7%)
每天1、2、或3次血培养对敏感度的影响
100% 95% 90% 85% 80% 75% 70% 1 2 3
96% 89%
99%
所以一般要求血培养一天做3次
血培养的阳性检出率低原因：
临床微生物标本采集和运送规范
19
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
临床微生物标本的正确采集与运送图文
临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。
本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。
一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。
例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。
1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。
下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。
采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。
常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。
尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。
采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。
中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。
呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。
采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。
常见的方法有喉拭子和气管切开。
胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。
采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。
常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。
1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。
采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。
二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。
消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。
2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。
进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。
2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。
应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。
微生物标本正确采集及运送课件
29
下呼吸道标本采集方法
1、自然咳痰法：漱口，深咳呼吸道深部痰（非后鼻部分
泌物、非唾液）留于无菌容器内。当咳痰困难时，先用湿 牙刷清洁口腔粘膜、舌头和牙龈，勿用牙膏；再用无菌水 或生理盐水漱口。
在采集痰液的过程中与患者的沟通，向患者耐心解释检 查的目的、重要性及留痰方法，取得患者的合作，在医师 或护士直视下采集标本
36
粪便
自然排便 挑取带脓或血部分（> 2g） 液状粪便取絮状物（> 2ml） 置于无菌容器或置于保存液或增菌液送检
直肠拭子 肥皂、水和70%的酒精清洁肛门周围 棉棒插入括约肌约 4-5cm（幼儿约2-3cm） 轻轻的旋转数圈后送检
37
标本运送、储存温度
储存、运送温度
标本种类
4℃
1. 尿液、粪便、鼻腔、咽喉及存在共生菌标本
1、手卫生：洗手或手消毒。 2、准备血培养瓶：检查血培养瓶有无破损、培养
液有无变色或混浊、是否在有效期等，用75%酒精 消毒血培养瓶塞，作用60s，待干。
整个过程严格遵守无菌操作规程
11
采集方法
3、皮肤消毒：用2根安儿碘棉签，以穿刺点为圆心， 以约5cm直径画圈进行皮肤消毒，作用时间至少30s。 注意消毒过的地方不能重复涂抹，在涂抹的过程中 棉签必须也要同时旋转。如果病人手臂皮肤不够干 净，则需重新擦拭。在洁净后不要触摸穿刺部位
15
血培养假阳性的危害
1、增加患者抗生素用量，破坏其微生态环境 2、延长了住院天数 3、延误病情诊断 4、增加经济负担
16
二、泌尿道感染标本采 集规范
17
尿液培养标本送检指征
1、 有典型的尿路感染症状；尿频，尿急，尿痛 2、 肉眼脓尿或血尿； 3、 尿道口有脓性分泌物； 4、 不明原因的发热，无其他局部症状； 5、 留置导尿管的病人出现发热； 6、 尿常规异常：白细胞，细菌计数，亚硝酸盐。
下呼吸道标本采集方法
1、自然咳痰法：漱口，深咳呼吸道深部痰（非后鼻部分
泌物、非唾液）留于无菌容器内。当咳痰困难时，先用湿 牙刷清洁口腔粘膜、舌头和牙龈，勿用牙膏；再用无菌水 或生理盐水漱口。
在采集痰液的过程中与患者的沟通，向患者耐心解释检 查的目的、重要性及留痰方法，取得患者的合作，在医师 或护士直视下采集标本
36
粪便
自然排便 挑取带脓或血部分（> 2g） 液状粪便取絮状物（> 2ml） 置于无菌容器或置于保存液或增菌液送检
直肠拭子 肥皂、水和70%的酒精清洁肛门周围 棉棒插入括约肌约 4-5cm（幼儿约2-3cm） 轻轻的旋转数圈后送检
37
标本运送、储存温度
储存、运送温度
标本种类
4℃
1. 尿液、粪便、鼻腔、咽喉及存在共生菌标本
1、手卫生：洗手或手消毒。 2、准备血培养瓶：检查血培养瓶有无破损、培养
液有无变色或混浊、是否在有效期等，用75%酒精 消毒血培养瓶塞，作用60s，待干。
整个过程严格遵守无菌操作规程
11
采集方法
3、皮肤消毒：用2根安儿碘棉签，以穿刺点为圆心， 以约5cm直径画圈进行皮肤消毒，作用时间至少30s。 注意消毒过的地方不能重复涂抹，在涂抹的过程中 棉签必须也要同时旋转。如果病人手臂皮肤不够干 净，则需重新擦拭。在洁净后不要触摸穿刺部位
15
血培养假阳性的危害
1、增加患者抗生素用量，破坏其微生态环境 2、延长了住院天数 3、延误病情诊断 4、增加经济负担
16
二、泌尿道感染标本采 集规范
17
尿液培养标本送检指征
1、 有典型的尿路感染症状；尿频，尿急，尿痛 2、 肉眼脓尿或血尿； 3、 尿道口有脓性分泌物； 4、 不明原因的发热，无其他局部症状； 5、 留置导尿管的病人出现发热； 6、 尿常规异常：白细胞，细菌计数，亚硝酸盐。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
对已破溃脓肿一般以无菌棉拭子采集脓液及病灶深部的 分泌物，置入无菌试管中送检。
对于未破溃的脓肿可严格消毒后，以无菌注射器抽取脓 汁及分泌物,也可切开排脓用 无菌棉拭采取,但不能留下碘 和乙醇等消毒剂，若混入标本将影响细菌生长。
创伤出血敷有药物在2h以内及烧伤12h内均不应采集标本， 此时获得的阳性结果机会甚少。
作穿刺抽取，尽可能留取多的标本 静脉导管：75%酒精消毒导管周围皮肤，将导管末端约
5cm移入无菌瓶送检 引流液：75%酒精消毒导管采集部位，用注射器从引流管
无菌采集2-3ml至无菌容器送检
9
无菌体液采集注意事项： 患者用药前或停药后1-2日采集 无菌体液的直接涂片可为临床提供重要信息（苛养菌？
微生物标本的正确采集与运送
黄弋鸿
1
微生物检查样本采集原则 无菌采集 无菌容器 及时足量 及时送检
2
送检标本种类与临床意义
临床意义低的标本： 痰、咽拭子（流感嗜血杆菌、肺炎链球菌除外） 粪便、肛拭子（艰难梭菌除外） 临床意义中等的标本： 尿 脓、伤口分泌物 临床有意义的标本： 血、胸腹水、无菌体液
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
5
采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
厌氧菌？白细胞吞噬细菌？）
10
脓液、伤口分泌物采集注意事项：
1、采集的标本应立即送检，如不能立即送检，放4℃保存， 但不能超过2个小时。
2、尽可能在用药前采集标本，
11
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
脓液，伤口分泌物标本的采集运送规范
培养用的标本尽可能取自深部（指的是脓液与组织的交 界处），再用无菌拭子采取脓 液及病灶深部分泌物。
3
血液标本的采集运送
血培养采集的临床指证： 1、发热（≧38℃）或低温（≦36℃） 2、寒战 3、WBC↑（>10×109特别有“核左移”时） 4、粒细胞减少（成熟粒细胞<1×109） 5、PLT↓、皮肤黏膜出血 6、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP增高及呼吸加快、 肝脾肿大 7、新生儿怀疑菌血症时应同时做脑脊液和尿液培养 8、老年菌血症可能不发热，如伴有身体不适、肌痛等，有 可能是感染性心内膜炎重要指证
4
血培养采集规范操作
培养瓶消毒： 1、 观察血培养瓶是否有破损、是否在保质期内 2、75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s 皮肤消毒（严格按三步法执行） 1、75%酒精擦拭静脉穿刺部位，作用30s 2、碘伏棉签消毒皮肤60s，从穿刺点由内向往消毒 3、75%酒精脱碘 标本接种程序：（1）棉签清除橡皮塞残余酒精
直肠拭子法
18
小结 无菌采集 无菌容器 及时采集 及时送检
19
12
痰标本的采集运送规范
1.推荐用晨痰——混合痰液和24h痰液有多量杂菌 2.刷牙，清水漱口三次——减少口咽部定植菌污染 3.水化，生理盐水雾化排痰——重症病人，气管抽痰 4.标本立即送检（2小时内），否则4℃存放 5.咳痰不宜做厌氧培养——口咽部大量厌氧菌
13
痰标本要求： 白细胞（WBC）≥25⁄LPF 上皮细胞（SEC）＜10⁄LPF 如不符合上述指标，应重新采样
存标本，但不应≥48h
16
尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
时间太长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
17
粪便标本采集运送规范
自然排便，挑取脓血、粘液、组织碎片的粪便2-3g剩余无 菌容器
6
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
0
30
细菌浓度
体温
60（min）
7
有相关统计表示血培养采血套数与细菌检出率相关 1套：73% 2套：94% 3套：97%
8
无菌体液采集运送规范
胆汁：1、十二指肠引流法 2、胆囊穿刺法 3、手术直接采取法
直接注入无菌瓶，2小时内送检，若不能及时送检 4℃保存 穿刺液（胸水、腹水、关节液等）：由临床医师无菌操
14
有意义的痰标本： 1、合格痰标本培养优势菌中度以上生长（≥ +++） 2、合格痰标本有细菌少量生长，但与涂片镜检结果一
致（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌 ） 3、多次培养到相同细菌；
15
痰标本注意事项
1.痰以深咳排除后，应装有密封瓶盖的无菌塑料容 器中，以免感染自己或他人。
2.标本应及时送检，室温≤2h。 3.若不能及时处理，可选择运送培养基运送和保
对于未破溃的脓肿可严格消毒后，以无菌注射器抽取脓 汁及分泌物,也可切开排脓用 无菌棉拭采取,但不能留下碘 和乙醇等消毒剂，若混入标本将影响细菌生长。
创伤出血敷有药物在2h以内及烧伤12h内均不应采集标本， 此时获得的阳性结果机会甚少。
作穿刺抽取，尽可能留取多的标本 静脉导管：75%酒精消毒导管周围皮肤，将导管末端约
5cm移入无菌瓶送检 引流液：75%酒精消毒导管采集部位，用注射器从引流管
无菌采集2-3ml至无菌容器送检
9
无菌体液采集注意事项： 患者用药前或停药后1-2日采集 无菌体液的直接涂片可为临床提供重要信息（苛养菌？
微生物标本的正确采集与运送
黄弋鸿
1
微生物检查样本采集原则 无菌采集 无菌容器 及时足量 及时送检
2
送检标本种类与临床意义
临床意义低的标本： 痰、咽拭子（流感嗜血杆菌、肺炎链球菌除外） 粪便、肛拭子（艰难梭菌除外） 临床意义中等的标本： 尿 脓、伤口分泌物 临床有意义的标本： 血、胸腹水、无菌体液
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
5
采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
厌氧菌？白细胞吞噬细菌？）
10
脓液、伤口分泌物采集注意事项：
1、采集的标本应立即送检，如不能立即送检，放4℃保存， 但不能超过2个小时。
2、尽可能在用药前采集标本，
11
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
脓液，伤口分泌物标本的采集运送规范
培养用的标本尽可能取自深部（指的是脓液与组织的交 界处），再用无菌拭子采取脓 液及病灶深部分泌物。
3
血液标本的采集运送
血培养采集的临床指证： 1、发热（≧38℃）或低温（≦36℃） 2、寒战 3、WBC↑（>10×109特别有“核左移”时） 4、粒细胞减少（成熟粒细胞<1×109） 5、PLT↓、皮肤黏膜出血 6、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP增高及呼吸加快、 肝脾肿大 7、新生儿怀疑菌血症时应同时做脑脊液和尿液培养 8、老年菌血症可能不发热，如伴有身体不适、肌痛等，有 可能是感染性心内膜炎重要指证
4
血培养采集规范操作
培养瓶消毒： 1、 观察血培养瓶是否有破损、是否在保质期内 2、75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s 皮肤消毒（严格按三步法执行） 1、75%酒精擦拭静脉穿刺部位，作用30s 2、碘伏棉签消毒皮肤60s，从穿刺点由内向往消毒 3、75%酒精脱碘 标本接种程序：（1）棉签清除橡皮塞残余酒精
直肠拭子法
18
小结 无菌采集 无菌容器 及时采集 及时送检
19
12
痰标本的采集运送规范
1.推荐用晨痰——混合痰液和24h痰液有多量杂菌 2.刷牙，清水漱口三次——减少口咽部定植菌污染 3.水化，生理盐水雾化排痰——重症病人，气管抽痰 4.标本立即送检（2小时内），否则4℃存放 5.咳痰不宜做厌氧培养——口咽部大量厌氧菌
13
痰标本要求： 白细胞（WBC）≥25⁄LPF 上皮细胞（SEC）＜10⁄LPF 如不符合上述指标，应重新采样
存标本，但不应≥48h
16
尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
时间太长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
17
粪便标本采集运送规范
自然排便，挑取脓血、粘液、组织碎片的粪便2-3g剩余无 菌容器
6
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
0
30
细菌浓度
体温
60（min）
7
有相关统计表示血培养采血套数与细菌检出率相关 1套：73% 2套：94% 3套：97%
8
无菌体液采集运送规范
胆汁：1、十二指肠引流法 2、胆囊穿刺法 3、手术直接采取法
直接注入无菌瓶，2小时内送检，若不能及时送检 4℃保存 穿刺液（胸水、腹水、关节液等）：由临床医师无菌操
14
有意义的痰标本： 1、合格痰标本培养优势菌中度以上生长（≥ +++） 2、合格痰标本有细菌少量生长，但与涂片镜检结果一
致（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌 ） 3、多次培养到相同细菌；
15
痰标本注意事项
1.痰以深咳排除后，应装有密封瓶盖的无菌塑料容 器中，以免感染自己或他人。
2.标本应及时送检，室温≤2h。 3.若不能及时处理，可选择运送培养基运送和保