(参考课件)微生物标本的正确采集运送及注意事项
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14
有意义的痰标本： 1、合格痰标本培养优势菌中度以上生长（≥ +++） 2、合格痰标本有细菌少量生长，但与涂片镜检结果一
致（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌 ） 3、多次培养到相同细菌；
15
痰标本注意事项
1.痰以深咳排除后，应装有密封瓶盖的无菌塑料容 器中，以免感染自己或他人。
2.标本应及时送检，室温≤2h。 3.若不能及时处理，可选择运送培养基运送和保
厌氧菌？白细胞吞噬细菌？）
10
脓液、伤口分泌物采集注意事项：
1、采集的标本应立即送检，如不能立即送检，放4℃保存， 但不能超过2个小时。
2、尽可能在用药前采集标本，
11
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
脓液，伤口分泌物标本的采集运送规范
培养用的标本尽可能取自深部（指的是脓液与组织的交 界处），再用无菌拭子采取脓 液及病灶深部分泌物。
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
5
采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
微生物标本的正确采集与运送
黄弋鸿
1
微生物检查样本采集原则 无菌采集 无菌容器 及时足量 及时送检
2
送检标本种类与临床意义
临床意义低的标本： 痰、咽拭子（流感嗜血杆菌、肺炎链球菌除外） 粪便、肛拭子（艰难梭菌除外） 临床意义中等的标本： 尿 脓、伤口分泌物 临床有意义的标本： 血、胸腹水、无菌体液
作穿刺抽取，尽可能留取多的标本 静脉导管：75%酒精消毒导管周围皮肤，将导管末端约
5cm移入无菌瓶送检 引流液：75%酒精消毒导管采集部位，用注射器从引流管
无菌采集2-3ml至无菌容器送检
9
无菌体液采集注意事项： 患者用药前或停药后1-2日采集 无菌体液的直接涂片可为临床提供重要信息（苛养菌？
3
血液标本的采集运送
血培养采集的临床指证： 1、发热（≧38℃）或低温（≦36℃） 2、寒战 3、WBC↑（>10×109特别有“核左移”时） 4、粒细胞减少（成熟粒细胞<1×109） 5、PLT↓、皮肤黏膜出血 6、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP增高及呼吸加快、 肝脾肿大 7、新生儿怀疑菌血症时应同时做脑脊液和尿液培养 8、老年菌血症可能不发热，如伴有身体不适、肌痛等，有 可能是感染性心内膜炎重要指证
存标本，但不应≥48h
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尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
时间太长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
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粪便标本采集运送规范
自然排便，挑取脓血、粘液、组织碎片的粪便2-3g剩余无 菌容器
4
血培养采集规范操作
培养瓶消毒： 1、 观察血培养瓶是否有破损、是否在保质期内 2、75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s 皮肤消毒（严格按三步法执行） 1、75%酒精擦拭静脉穿刺部位，作用30s 2、碘伏棉签消毒皮肤60s，从穿刺点由内向往消毒 3、75%酒精脱碘 标本接种程序：（1）棉签清除橡皮塞残余酒精
6
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
0
30
细菌浓度
体温
60（min）
7
有相关统计表示血培养采血套数与细菌检出率相关 1套：73% 2套：94% 3套：97%
8
无菌体液采集运送规范
胆汁：1、十二指肠引流法 2、胆囊穿刺法 3、手术直接采取法
直接注入无菌瓶，2小时内送检，若不能及时送检 4℃保存 穿刺液（胸水、腹水、关节液等）：由临床医师无菌操
直肠拭子法
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小结 无菌采集 无菌容器 及时采集 及时送检
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对已破溃脓肿一般以无菌棉拭子采集脓液及病灶深部的 分泌物，置入无菌试管中送检。
对于未破溃的脓肿可严格消毒后，以无菌注射器抽取脓 汁及分泌物,也可切开排脓用 无菌棉拭采取,但不能留下碘 和乙醇等消毒剂，若混入标本将影响细菌生长。
创伤出血敷有药物在2h以内及烧伤12h内均不应采集标本， 此时获得的阳性结果机会甚少。
12
痰标本的采集运送规范
1.推荐用晨痰——混合痰液和24h痰液有多量杂菌 2.刷牙，清水漱口三次——减少口咽部定植菌污染 3.水化，生理盐水雾化排痰——重症病人，气管抽痰 4.标本立即送检（2小时内），否则4℃存放 5.咳痰不宜做厌氧培养——口咽部大量厌氧菌
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痰标本要求： 白细胞（WBC）≥25⁄LPF 上皮细胞（SEC）＜10⁄LPF 如不符合上述指标，应重新采样
有意义的痰标本： 1、合格痰标本培养优势菌中度以上生长（≥ +++） 2、合格痰标本有细菌少量生长，但与涂片镜检结果一
致（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌 ） 3、多次培养到相同细菌；
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痰标本注意事项
1.痰以深咳排除后，应装有密封瓶盖的无菌塑料容 器中，以免感染自己或他人。
2.标本应及时送检，室温≤2h。 3.若不能及时处理，可选择运送培养基运送和保
厌氧菌？白细胞吞噬细菌？）
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脓液、伤口分泌物采集注意事项：
1、采集的标本应立即送检，如不能立即送检，放4℃保存， 但不能超过2个小时。
2、尽可能在用药前采集标本，
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ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
脓液，伤口分泌物标本的采集运送规范
培养用的标本尽可能取自深部（指的是脓液与组织的交 界处），再用无菌拭子采取脓 液及病灶深部分泌物。
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
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采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
微生物标本的正确采集与运送
黄弋鸿
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微生物检查样本采集原则 无菌采集 无菌容器 及时足量 及时送检
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送检标本种类与临床意义
临床意义低的标本： 痰、咽拭子（流感嗜血杆菌、肺炎链球菌除外） 粪便、肛拭子（艰难梭菌除外） 临床意义中等的标本： 尿 脓、伤口分泌物 临床有意义的标本： 血、胸腹水、无菌体液
作穿刺抽取，尽可能留取多的标本 静脉导管：75%酒精消毒导管周围皮肤，将导管末端约
5cm移入无菌瓶送检 引流液：75%酒精消毒导管采集部位，用注射器从引流管
无菌采集2-3ml至无菌容器送检
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无菌体液采集注意事项： 患者用药前或停药后1-2日采集 无菌体液的直接涂片可为临床提供重要信息（苛养菌？
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血液标本的采集运送
血培养采集的临床指证： 1、发热（≧38℃）或低温（≦36℃） 2、寒战 3、WBC↑（>10×109特别有“核左移”时） 4、粒细胞减少（成熟粒细胞<1×109） 5、PLT↓、皮肤黏膜出血 6、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP增高及呼吸加快、 肝脾肿大 7、新生儿怀疑菌血症时应同时做脑脊液和尿液培养 8、老年菌血症可能不发热，如伴有身体不适、肌痛等，有 可能是感染性心内膜炎重要指证
存标本，但不应≥48h
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尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
时间太长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
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粪便标本采集运送规范
自然排便，挑取脓血、粘液、组织碎片的粪便2-3g剩余无 菌容器
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血培养采集规范操作
培养瓶消毒： 1、 观察血培养瓶是否有破损、是否在保质期内 2、75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60s 皮肤消毒（严格按三步法执行） 1、75%酒精擦拭静脉穿刺部位，作用30s 2、碘伏棉签消毒皮肤60s，从穿刺点由内向往消毒 3、75%酒精脱碘 标本接种程序：（1）棉签清除橡皮塞残余酒精
6
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
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细菌浓度
体温
60（min）
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有相关统计表示血培养采血套数与细菌检出率相关 1套：73% 2套：94% 3套：97%
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无菌体液采集运送规范
胆汁：1、十二指肠引流法 2、胆囊穿刺法 3、手术直接采取法
直接注入无菌瓶，2小时内送检，若不能及时送检 4℃保存 穿刺液（胸水、腹水、关节液等）：由临床医师无菌操
直肠拭子法
18
小结 无菌采集 无菌容器 及时采集 及时送检
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对已破溃脓肿一般以无菌棉拭子采集脓液及病灶深部的 分泌物，置入无菌试管中送检。
对于未破溃的脓肿可严格消毒后，以无菌注射器抽取脓 汁及分泌物,也可切开排脓用 无菌棉拭采取,但不能留下碘 和乙醇等消毒剂，若混入标本将影响细菌生长。
创伤出血敷有药物在2h以内及烧伤12h内均不应采集标本， 此时获得的阳性结果机会甚少。
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痰标本的采集运送规范
1.推荐用晨痰——混合痰液和24h痰液有多量杂菌 2.刷牙，清水漱口三次——减少口咽部定植菌污染 3.水化，生理盐水雾化排痰——重症病人，气管抽痰 4.标本立即送检（2小时内），否则4℃存放 5.咳痰不宜做厌氧培养——口咽部大量厌氧菌
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痰标本要求： 白细胞（WBC）≥25⁄LPF 上皮细胞（SEC）＜10⁄LPF 如不符合上述指标，应重新采样