流感病毒的快速检测要求方法
甲型流感病毒感染病毒检测的方法有哪些?
甲型流感病毒感染病毒检测的方法有哪些?甲型流感是一种由甲型流感病毒引起的呼吸道传染病。
与其他呼吸道感染相比,甲型流感的病毒传播能力较强,而且症状也比较严重。
在预防、治疗和后期恢复中,正确的检测方法是非常重要的。
本文将介绍甲型流感病毒感染的检测方法以及预防、治疗和后期恢复的注意事项。
甲型流感病毒感染的检测方法1.核酸检测(RT-PCR):核酸检测是目前甲型流感病毒感染的主要检测方法。
这种方法通过采集患者的呼吸道标本,如咽拭子、鼻咽拭子或痰液,提取其中的病毒核酸,然后利用反转录聚合酶链反应(RT-PCR)技术进行检测。
核酸检测的优点是准确度高,能够检测出病毒的存在,但需要在实验室条件下进行,耗时较长。
2.快速抗原检测(Rapid Antigen Test):快速抗原检测是一种简便、迅速的甲型流感病毒感染检测方法。
该方法通过检测标本中的特定病毒抗原,可以在数分钟内快速筛查出感染情况。
然而,与核酸检测相比,快速抗原检测的准确性略低,有时会出现假阴性结果。
因此,如果快速抗原检测结果为阴性,但临床症状明显,仍然需要进行核酸检测以排除感染。
3.血清学检测(Serologic Test):血清学检测通过检测患者血液中的特定抗体来判断是否感染甲型流感病毒。
这种检测方法主要用于疫情调查和流行病学研究,对于早期感染的诊断准确性较低。
以上三种检测方法各有优劣,医生会根据病情和实际需要选择合适的方法进行检测。
预防甲型流感病毒感染的注意事项预防甲型流感病毒感染是非常重要的,可以采取以下措施:1.接种疫苗:甲型流感病毒感染的最有效预防方法是接种相关的流感疫苗。
每年秋季接种疫苗可以有效提高免疫力,减少感染的风险。
接种疫苗还可以降低患者的病情严重程度,减少并发症的发生。
2.保持良好的个人卫生:勤洗手、使用洗手液消毒、避免接触口鼻眼等黏膜部位,是预防病毒传播的简单有效措施。
此外,尽量避免与感染者密切接触,特别是在流感高发季节。
3.注意健康状况:保持良好的生活习惯,均衡饮食,增强体质,提高免疫力,可以降低感染甲型流感病毒的风险。
甲型流感的分子诊断技术与实验室检测方法
甲型流感的分子诊断技术与实验室检测方法甲型流感是一种由甲型流感病毒引起的急性呼吸道传染病,其传播迅速且易感染大量人群。
为了准确诊断和及时干预,科学家们开发出了多种分子诊断技术和实验室检测方法。
本文将介绍几种常用的技术与方法,以提高对甲型流感的检测效率和诊断准确性。
一、聚合酶链式反应(PCR)技术PCR技术是一种灵敏度高、特异性强的分子诊断技术,已被广泛应用于甲型流感的检测中。
该技术通过放大甲型流感病毒基因组中特定的DNA片段,从而使其能够被检测到。
PCR技术可在短时间内,从患者的样本中检测到甲型流感病毒的存在,并确定其亚型。
此外,PCR 技术还能够对病毒的基因组进行序列分析,从而确定其突变情况和传播途径。
二、实时荧光定量PCR(qPCR)技术实时荧光定量PCR技术是PCR技术的一种改进版本,其主要优势在于可实现对病毒数量的精确测量和即时定量。
该技术结合了PCR和荧光探针技术,使得可以在PCR反应过程中实时监测目标序列的扩增情况。
实时荧光定量PCR技术能够快速检测出甲型流感病毒的数量,并对病毒载量进行准确测量,帮助医生判断病情的严重程度,指导治疗决策。
三、免疫荧光技术免疫荧光技术是一种通过特定的抗体和荧光探针对病毒进行检测的技术。
在甲型流感的实验室检测中,科学家们通常采用免疫荧光技术检测病毒的抗原。
该技术的原理是将含有甲型流感病毒的标本与特异性荧光标记的抗体结合,然后通过荧光显微镜观察是否有荧光信号出现。
免疫荧光技术能够准确、快速地检测出甲型流感病毒的存在,并且可以对其亚型进行鉴定。
四、核酸测序技术核酸测序技术是一种可以解析病毒基因组序列的方法,可以帮助科学家们了解甲型流感病毒的基因组结构和功能。
通过高通量测序技术,科学家们可以在较短的时间内获取大量的病毒基因组序列信息。
这些信息有助于了解甲型流感病毒的变异情况,筛选药物治疗靶点,并指导疫苗的设计与开发。
五、免疫学检测方法除了分子诊断技术,免疫学检测方法也发挥着重要作用。
快速检测流感病毒抗原方法的建立
【 关键词 】 胶体金免疫层析法 ; 快速检测 , 流感病毒
Esa l h n f p d d t ci n M e h d f ri f e z iu n i e L n — n , HE Ha g we WA t bi me t o s Ra i e e t t o o l n a vr sa t n o n u g /Y y e e C N n — i , NG
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急性呼吸道疾病住院患者应用 G C IA法检测患者鼻咽部分泌物的流感病毒 A、 ( IA、 ) B Fu B 抗原 , 同时用 IA法作对照 , G C 并 F 对 IA
法做出评价 。对以上患者分别应用鼻 、 咽拭子法和鼻咽部 细导管负压吸 引法两种不 同方法 采集患者鼻 咽部分泌物 , 均经 G C IA
6
床肺科 杂志
21 0 1年 1 月 第 l 6卷第 1 期
快 速检 测流 感病 毒抗 原方 法 的ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ 立
流感病毒的核酸检测技术操作规范
流感病毒的核酸检测技术操作规范(一)流感病毒Conventional one step RT-PCR 检测应用核酸检测技术为疑似流感病毒感染病例诊断提供依据,为流感病毒的型别和亚型的鉴定提供技术方法。
按照规定方法对标本和病毒进行处理和检测,保证检测结果的快速性和可靠性,同时确保样本不被污染和污染环境。
1.生物安全要求实验室操作应当遵守生物安全实验室的有关生物安全的规定。
季节性流感病毒生物安全二级,疑似高致病禽流感病例标本需在BSL-2级实验室操作,采取BSL-3级防护;核酸提取及加RNA模板可在BSL-2级实验室生物安全柜内操作;PCR反应体系配制在体系配制区;PCR产物检测在电泳区操作。
2.主要试剂(所列厂家仅用作举例,实验室可自行选择)注:*引物序列详见表1.3.设备(1)BSL-2生物安全柜;(2)可调转速最大至140rmp的离心机;(3)涡旋混合器;(4)10p L,1pL,2pL,10^L量程移液器;(5)PCR 仪;(6)电泳槽和电泳仪;(7)凝胶成像系统。
4.质量控制(1)实验检测所需核酸提取试剂和一步法RT-PCR检测试剂不同批号之间需进行灵敏度的检测。
同一试剂不同批次的灵敏度的检测至少半年一次。
(2)实验检测除待检标本外还需设置阳性对照及阴性对照,阳性对照核酸事先应稀释分装,经Real-time PCR检测Ct值在30以内;阴性对照为DEPC处理水Real-time PCR检测Ct值为0.5.实验步骤(1)实验注意事项由于PCR检测灵敏度高,因此必须采取一些预防污染的措施,以避免假阳性结果的出现,建议采取如下方法:a)核酸提取、反应液配制及检测反应进行应在独立的房间中进行。
b)不同的房间配制相应的专用耗材和设备,不可交叉使用。
c)配制反应液时,应穿着干净的实验服,带无粉手套进行操作。
d)实验操作期间,如怀疑有污染,请更换手套。
e)试剂及反应管的盖子应尽可能盖上。
(2)设备准备操作台的表面、枪头和离心机应保持洁净,可用5%漂白剂或其它清洁剂,如可以去除DNA酶的试剂擦拭台面,以减少核酸污染的风险。
流感病毒实验室pcr检测技术
流感病毒实验室pcr检测技术
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Real-Time PCR
▪ 基础原理:指在RT-PCR反应体系中加入荧光基团, 利用荧光信号积累实时监测整个RT-PCR进程,最 终经过标准曲线对未知模板进行定量或定性分析 方法.荧光基团主要有TaqMan荧光探针和SYBR 荧光染料
标本采集(一)
▪ 主要采集上呼吸道标本 ▪ 鼻咽拭子:将棉签平行于上颚插入鼻孔,保持几
秒吸收分泌物。 ▪ 口咽拭子:拭抹咽后壁和扁桃体部位,防止触及
舌部;快速将棉签放入无菌、内装3-5ml样本运 输液及带垫圈螺口塑料管中,在靠近顶端处折断, 旋紧管盖并密封。 ▪ 气管分泌液:搜集气管吸收液或支气管浇灌液510ml放入无菌、带垫圈50ml螺口塑料管中,马上 密封。
区、旅游区)人群健康,快速诊疗将提供有效信息以 供控制方案制订,提供有效公共健康提议。
流感病毒实验室pcr检测技术
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快诊应用价值
➢ 监测:为社会公众提供流感活动情况“早期预警”系 统。在一些国家快速检测已经被应用流感监测形成制 度,被用于病毒分离前标本筛选。不过WHO要求对 流感进行抗原分析,不推荐把快速检测作为监测单一 伎俩。
▪ TaqMan荧光探针工作原理:PCR扩增时,在加入一 对引物同时加入一个特异性荧光探针,探针两端分 别标识一个汇报荧光基团和淬灭荧光基团.探针完 整时,汇报基团发射荧光信号被淬灭基团吸 收;PCR扩增时 ,探针被酶切降解,汇报基团和淬灭 基团分离,从而荧光监测系统接到荧光信号,每扩 增一条DNA链,就有一个荧光分子形成,实现了荧 光信号累积与PCR产物形成完全同时
甲型流感病毒检测方法及技术方案H1N1
甲型(H1N1)流感病毒实验室检测技术方案(试行)广州健仑生物科技有限公司整理本方案旨在为全国流感监测网络实验室提供甲型H1N1流感病毒实验室检测技术方案,不用作商业活动或赢利目的。
一、标本的采集种类和要求1、推荐采集的呼吸道标本种类疾病发病后应尽快采集如下标本:鼻拭子、咽拭子、鼻腔吸取物、鼻腔冲洗液。
气管插管的病人也应收集气管吸取物。
标本应置于无菌病毒采样液,并立即用冰块或冰排保存或置于4 ℃(冰箱),并马上送至实验室。
(临床样品采集人员及实验室检测人员的感染控制指导请见相关文件。
)采样同时填写疑似人感染甲型H1N1感染病例标本采样单。
(附表1)2、拭子的选择标本应使用头部为合成纤维的拭子(例如,聚酯纤维),用铝或塑料做柄。
不推荐棉拭子和木柄。
标本采集管应包含3毫升病毒采样液(含有蛋白质稳定剂,阻止细菌和真菌生长的抗生素,缓冲液)3、临床标本储存要求保存在4℃(不能超过4天)或者-70℃或-70℃以下。
有条件的实验室均应保存在-70℃或-70℃以下。
不应保存在-20℃。
4、标本的分装处理标本送至实验室后,立即进行处理,避免反复冻融。
将原始标本分为三份,一份用于核酸检测,一份用于病毒分离,一份保存待复核。
5、标本的运输疑似人感染甲型H1N1感染病例列为 A类,用UN2814包装运输。
填写疑似人感染甲型H1N1感染病例标本送检单(附表2)。
二、核酸检测基于PCR原理的核酸检测方法是一种快速有效的诊断方法,在突发传染病应急工作中发挥了巨大作用。
1、基于real-time RT-PCR的方法检测新的甲型H1N1流感病毒(引物和探针序列为美国CDC设计):4月29日WHO网站上公布了美国CDC设计的针对此次甲型H1N1流感病毒的real-time RT-PCR引物和探针,此实验用于检测疑似甲型H1N1流感病例的呼吸道样本, 因此,用此real-time RT-PCR的方法,建议首先筛选甲型流感病毒并排除季节性流感病毒和H5N1禽流感病毒。
流感诊断标准
流感诊断标准流感,又称为流行性感冒,是由流感病毒引起的急性呼吸道传染病。
流感病毒主要分为甲型和乙型两种,其中甲型流感病毒又分为H1N1、H3N2等亚型。
流感的传播速度快,易引起大范围的流行,给人们的生活和工作带来了不小的困扰。
因此,及时准确地诊断流感对于控制疫情的蔓延至关重要。
本文将介绍流感的诊断标准,希望能对大家有所帮助。
首先,流感的临床表现是诊断的重要依据之一。
流感患者常表现为突然发热、头痛、肌肉疼痛、乏力、咽痛、干咳等症状。
与普通感冒相比,流感症状较为剧烈,且病程较短。
在流感高发季节,出现上述症状的患者,应高度怀疑患有流感。
其次,实验室检查是流感诊断的重要手段之一。
目前,常用的实验室检查方法包括病毒培养、免疫荧光抗体检测、快速抗原检测和核酸检测等。
这些检查方法可以帮助医生明确患者是否感染了流感病毒,对于流感的早期诊断和治疗具有重要意义。
此外,流感的流行病学调查也是诊断的重要依据之一。
当某一地区出现流感疫情时,医生可以通过流行病学调查,了解患者的病史、接触史和病毒的传播途径,从而及时采取控制措施,遏制疫情的蔓延。
最后,临床医生的临床经验和专业知识也是流感诊断的重要依据之一。
临床医生应结合患者的临床表现、实验室检查结果和流行病学调查,进行综合分析,做出准确的诊断。
同时,医生还应根据患者的病情,选择合适的治疗方案,提高治疗效果,减少并发症的发生。
综上所述,流感的诊断标准主要包括临床表现、实验室检查、流行病学调查和临床医生的临床经验和专业知识。
只有全面准确地掌握了这些诊断标准,我们才能及时发现和诊断流感,采取有效的控制措施,遏制疫情的蔓延,保障人民的身体健康。
希望本文对大家有所帮助,谢谢阅读。
4 流感病毒标本采集、运输、分离检测及注意事项
在采样管上用油性记号笔做好标记用塑料袋密封。同时填 写“流感/人禽流感监测病例标本原始登记表”,用另一 塑料袋密封;
将装标本的密封袋放入专用运输箱内,放入冰排,然后以 柔软物质填充,内衬具吸水和缓冲能力的材料。同一患者 2份以上的密封标本,可以放在同一个塑料袋内再次做密 封。所有容器必须有生物危险标识。
感病毒对热很敏感 • 标本管标识明确:医院名称,标本号,患者姓名,性别,
采样日期 • 标本采集后尽量在24小时内送到实验室进行病毒分离。
24小时内未能进行病毒分离的标本应放-70 ℃或以下
血清学标本注意事项
• 血清学最好采集急性期和恢复期的双份血清塑料管里, 拧紧;
膜与鸡胚胎的另一面形成明显的界限 标记出鸡胚的气室与尿囊的界限、胚胎头部
的位置 如果鸡胚是死胚、没有受精、有裂痕、发育
不全、或表面有好多渗水孔,应弃掉
流感病毒操作要求生物安全规程
禁止在同一实验室,同一时间处理接种未知临床 标本和已知标准病毒
禁止在同一实验室,同一时间处理接种采自不同 动物的标本
国家流感中心 张烨
标本种类
临床标本
鼻拭子、咽拭子、鼻咽吸取物、漱口液等
血清标本
病人的急性期和恢复期血清双份血清
临床样本的选择
采样对象:流感样病例(没有服用过抗病毒药物 )、人禽流感待 查病例
流感样病例:发热(体温≥38℃),伴咳嗽或咽痛之一者, 而缺乏其它的实验室确定诊断依据
采集时间:病人发病后的头三天
RT-PCR 组成成分
PCR的基本原理
• PCR反应条件 • PCR过程 • PCR的特点
94 温 度 72 (℃)
流感病毒RNA荧光RT-PCR检测技术
流感病毒RNA荧光RT-PCR检测技术实时荧光定量PCR是在常规PCR基础上发展起来的定量PCR技术,通过在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积,实时监测整个PCR进程,最后根据ct值和标准曲线,对未知模版进行定量分析。
常用的实时荧光定量PCR又分为非特异性荧光标记的SYBR Green 法和特异性荧光标记的TaqMan法和分子信标法。
一、实时荧光定量PCR原理:1、SYBR Green法:SYBR Green是一种双链DNA结合染料,游离状态下不发光,非特意地掺入到双链DNA中后发出荧光信号,其强度与双链DNA的数量相关,随着扩增产物量的增加,检测到的荧光信号增强。
2、TaqMan法:在扩增反应液中,加入一特异性探针,该探针5‘端和3’端分别标记一个荧光报告基团和一个荧光淬灭基团,探针完整时,两基团位置靠近,5‘端报告基团的荧光能量被3’端淬灭基团吸收,此时检测不到荧光信号,在扩增过程中,探针与模板结合形成Taq 酶的5‘→3’外切活性底物,当Taq酶沿模板向前延伸到探针结合处时,发生链的置换,Taq酶的5’→3’外切活切将探针5‘端连接的报告基团从探针上切割下来,5’端报告基团的荧光能量脱离3’端荧光淬灭基团的吸收,可检测到荧光信号,每经过一个PCR循环,荧光信号也和扩增产物一样,有一个同步增长的过程。
3、分子信标法:探针设计成茎环结构的发夹状,环部核苷酸序列与扩增产物序列互补,两端核苷酸序列互补形成茎部,且一端标记有报告基团,另一端标记有淬灭基团,探针未与模板结合时,报告基团和淬灭基团空间位置靠近,报告基团的荧光能量被淬灭基团吸收,此时,检测不到荧光信号,与模板结合后,探针的构象由发夹状改变为链状,报告基团和淬灭基团分离,可检测到荧光信号。
核酸检测是一种鉴定流感病毒基因组的有力方法,即使基因组含量很低或死病毒也可以检测到。
本章将介绍检测流感病毒的聚合酶链式反应(PCR)。
流感病毒的基因组是负链RNA,在进行PCR扩增前必须合成与病毒RNA 互补的DNA,即为cDNA。
甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品技术要求
甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品技术要求随着流感病毒的不断变异和扩散,流感病毒的监测和检测工作越来越受到重视。
甲型乙型流感抗原检测胶体金法作为一种快速、灵敏的检测方法,被广泛应用于临床诊断和疫情监测中。
然而,由于其技术要求较高,质量参差不齐的产品可能会影响检测结果的准确性和可靠性。
对甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品的技术要求有着非常严格的规定和标准。
具体来说,甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品的技术要求主要包括以下几个方面:1、抗原提取和制备技术要求:乙型流感病毒的抗原提取是甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品制备的第一步,提取的抗原质量和纯度直接影响检测结果。
抗原提取和制备技术要求相当严格,需要严格控制实验条件和操作流程,确保提取的抗原具有足够的纯度和活性。
2、胶体金试剂的制备和保存技术要求:胶体金试剂是甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品的核心材料之一,其制备和保存技术要求十分严格。
在制备过程中,需要控制好试剂的浓度和粒径分布,以保证试剂的稳定性和敏感性;在保存过程中,需要避免光照和高温,防止试剂发生凝聚和变质。
3、检测试剂盒的组装和包装技术要求:甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品在市场上以检测试剂盒的形式销售,而检测试剂盒的组装和包装技术也是关键的一环。
检测试剂盒的组装要求操作规范,避免污染和交叉感染;包装要求牢固耐用,保护试剂免受外界环境的影响。
4、操作流程和结果解读的标准化要求:甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品对操作流程和结果解读有着严格的标准化要求。
操作流程要求简单清晰,便于操作者掌握和操作;结果解读要求规范明确,避免主管者对结果的误解和错误判断。
甲型乙型流感抗原检测胶体金法产品的技术要求非常严格,涉及到抗原提取和制备、胶体金试剂的制备和保存、检测试剂盒的组装和包装以及操作流程和结果解读等多个方面。
只有严格遵守这些技术要求,生产出质量稳定、准确可靠的产品,才能更好地为临床诊断和疫情监测提供支持。
流感病毒检验及相关方法
流感是因流感病毒造成的一种常见的人类呼吸道感染疾病,具有流行范围广、发病率高等特点,其不仅极易对儿童、老年人及免疫力低下的人群造成不可估量的危害,也给社会公共卫生的维持带来一定负担。
我国是流感病毒高发区,近年来,流感发生率不断升高,直接威胁人类生命健康。
目前临床对流感病毒诊断方法主要包括病毒分离、免疫学检测以及核酸检测等。
为了快速、准确诊断出流感病毒,并给予其特异抗病毒治疗,进而有效控制疫情,对降低疾病发病率及病死率,本人根据自身实际的工作经验,结合一些相关的理论知识。
就流感病毒检验及相关方法阐述意见。
①酶联免疫吸附试验:免疫学检测是检测流感病毒常用方式之一,其主要依据抗原抗体反应进行检验,一般需要对血清中的抗原或者抗体进行检测,而酶具有较高的催化频率,可在较大程度上放大其作用,提高测定结果的灵敏度。
在检测抗原与抗体时,可运用不同的酶联免疫吸附试验,具有方便快捷、灵敏度及特异度高等优点,是当前临床较为常用的免疫测定方式之一。
此外,在不同流感病毒亚型间,不同病毒之间均不存在交叉反应现象;根据部分研究的结果可发现,酶联免疫吸附法操作简单,具有较高灵敏度及特异度,可广泛应用于流感病毒实验室检测。
②聚合酶链反应 (PCR):聚合酶链反应(PCR)是核酸检测的一种,其通过分子生物学检测技术实现经 PCR 检测流感病毒,其技术原理在于可以在较短时间内添加大量特异性 DNA片段完成病毒检测,具体检测过程中仅需要少量样品即可完成检测工作的一项生物学技术,具有敏感性、特异性高、可重复操作、速度快等特点,可在较短时间内完成收集样本并获得最终的检测结果工作,对早期诊断流感病毒感染具有较高价值。
PCR 方法包括实时荧光定量方法、RT-PCR 方法、多重 RT-PCR 方法。
其中 RTPCR 方法包括检测 HA 基因片段、NA基因片段,目前检测未知流感,通过合并引物扩增病毒的基因片段完成分型。
研究显示,PCR技术用于病原体的确定,可有效检测出早期感染患者,与病毒分离法比,其敏感性是其500倍,同时可更加直观的检测荧光因子,有效降低检测假阳性可能性,但一般的PCR技术具有一定污染。
流感采样方法
流感采样方法
1 采样标准
严格规范采样标准,是保证流感病毒采样阳性率上升的关键,有以下两点:(1)体温≥38℃,且不超过3天的发热病人:(2)伴有咳嗽、咽痛。
2 采样方法
2.1 患者沟通告诉患者采样的目的、意义、方法以及操作过程中的注意事项以取得患者的合作。
2.2 采样前准备采样者二级防护,采样材料有病毒保存液、注射器、一次性无菌平皿、易折专用无菌拭子、压舌板、剪子。
2.3 采样过程在采样管外写上病人的名字、性别、采样日期。
(1)漱口液:患者面向采样者坐于靠背椅上,先沾湿两支无菌拭子,然后嘱患者用5ml采样液漱喉,漱时让患者头部未仰,发“噢”声,让采样液在咽部转动,吐于平皿。
(2)鼻拭子:患者面向采样者坐于靠背椅上,头后仰45℃左右,将一支沾湿的拭子平行于上鄂的角度轻轻地左右转动从一侧鼻孔插入,一般当拭子插入有阻力时再将拭子停留2到3秒后缓慢转动退出,另一侧鼻孔重复操作。
(3)咽拭子:嘱患者头后仰张大嘴巴发出“啊”声,将另一支沾湿的拭子左右两面及拭子头部快速较用力地分别刮去扁桃体腺两侧和咽后壁的分泌物。
将两支拭子放于空采样管,用剪子或者折断手接触部分,然后用注射器吸取平皿里的漱口液于采样管里,加盖旋紧,最后将样本放于冷藏包中,在24小时内送至实验室。
3 讨论
由于很难采到双份血清标本,不建议采取血清标本,根据病人的情况也可以单采鼻拭子或者咽拭子,咽拭子采样时动作轻巧、快速、准确,而鼻拭子要求动作缓慢、轻巧、稳重,主要用的检测方法是实时荧光定量RT-PCR。
RT—LAMP法快速检测人季节性流感病毒
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b t e h s t o s R - e we n t e e t wo meh d . T LAM P a s y wa e f r d i tro e n h e u t c u d b ie t s a sp ro me n wae v n a d t e r s ls o l e d r c l y
u e e t y n f u t p f n u n av r s s di i n i i g o by eo f e z i . n d f s il u
甲流检测步骤
甲流检测步骤
甲流是由甲型流感病毒引起的呼吸道传染病,其检测步骤主要包括以下几个方面:
1.病史询问和体格检查:医生会询问患者是否有流感症状,如
发热、咳嗽、喉咙痛等,并检查患者的体温、呼吸、心跳等表现。
2.实验室检测:医生可能会进行实验室检测以确认是否感染了
甲型流感病毒。
常用的检测方法包括:
- 咽拭子样本:医生用棉签或专用拭子在咽喉部取样,将样本
送到实验室进行病毒核酸检测,来确定是否存在甲型流感病毒。
- 血液检测:医生可能会抽取患者的血液样本,通过血液检测
寻找甲型流感病毒的抗体或病毒核酸。
3.其他辅助检查:医生可能会要求进行其他辅助检查,如X光检查或者胸部CT扫描,以了解病毒是否引起了其他并发症,
如肺炎。
值得注意的是,专业的医生和医疗机构会有相应的流感检测指南,并根据具体情况进行相应的检测。
因此,如果出现流感症状或怀疑感染甲型流感,最好及时就医并遵循医生的建议进行检测。
流感病毒的快速检测方法
流感病毒的快速检测方法一、RT-PCR快速诊断方法(一)生物安全要求(二)病毒核酸提取(三)RT-PCR(四)PCR 产物纯化(五)流感病毒RT-PCR检测引物二、免疫荧光方法检测流感病毒(一)原理(二)标本处理(三)间接免疫荧光法(四)结果判断三、实时荧光定量PCR(Real-Time PCR)快速诊断检测(一)基本原理(二)实验试剂(三)实验步骤四、快速诊断试剂盒流感的快速检测方法,与传统的病毒分离鉴定相比具有快速、简便的特点。
因此常用于流感暴发时早期病原学检测用。
流感的快速诊断包括直接和间接免疫荧光法、ELISA、RT-PCR、Real-Time PCR快速诊断速方法、流感快速诊断试剂盒等。
这里介绍RT-PCR、Real-Time PCR、免疫荧光快速诊断速诊断方法和几种流感快速诊断试剂盒优缺点。
无论那种快速诊断都无法代替传统的病毒分离鉴定方法。
一、RT-PCR快速诊断方法核酸检测是一种鉴定流感病毒基因组的有力方法,即使基因组含量很低或死病毒也可以检测到。
本章将介绍检测流感病毒的聚合酶链式反应(PCR)。
流感病毒的基因组是负链RNA,在进行PCR扩增前必须合成与病毒RNA 互补的DNA,即为cDNA。
逆转录酶(RT)就是用于合成cDNA的多聚酶,因此,扩增流感病毒基因组的过程称为RT-PCR。
RT-PCR需要一对型别特异引物,四种脱氧核苷酸(dNTPs),RNA模板,逆转录酶及Taq DNA 多聚酶;首先由逆转录酶将病毒的RNA逆转录合成cDNA,然后再进行聚合酶链反应经25~30个循环,使DNA产物达到倍增的效果。
(一)生物安全要求生物安全级别与个人防护要求:生物安全二级实验室,防护要求与二级实验室的要求相同。
并应遵守相应的生物安全规定。
进行高致病性禽H5 RT-PCR快速检测时可以在生物安全二级实验室里进行,核酸提取在生物安全三级实验室的生物安全柜里完成。
(二)病毒核酸提取1. 实验材料及仪器(1) QIAGEN公司的Rneasy Mini Kit(Catalog# 74104)(2) β-巯基乙醇(β-mercaptoethanol)(3) 70% 乙醇(4) 无菌1.5ml 离心管(5) 10μl、20μl、200μl、1000μl加样器和枪头(6) 可调14K微型离心机(7) 旋转混合器2. 操作步骤(1) 取1支无菌、无RNA酶的1.5ml Eppendorf管,加入500μl RLT。
流感病毒实验室检测
湖南省疾病预防控制中心 微生物检验科 黄一伟 2013-12-27
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流感病毒实验室检测技术 及盲样考核结果分析
衬底1
01
监测流感活动水平和流行动态;
02
及时发现流感病毒变异并作出预警;
03
为全球及我国流感疫苗毒株的预测和推荐提供依据。
流感监测目的
202X
(一)流感样病例监测 (二)流感样病例暴发疫情监测
F
50ul
B
50ul
A
50ul
稀释完病毒液后加入50ul红细胞悬液
1
病毒 原液
3
128
2
2
4
HA: 32
5
HA>128
HA: 4
衬底1
01
HA滴度≥8,进行红细胞凝集抑制(HI)试验;HA滴度<8者,继续在敏感的MDCK细胞系或鸡胚上进行传代培养,使其HA滴度≥8后,再进行HI测定
衬底1
荧光定量PCR
第一次使用前引物稀释 1.引物工作浓度(40μM) 配制方法: (1)将新合成的引物开盖前短暂离心(12000rpm,15s)。 (2)用RNase Free Water溶解,加水量为10×总摩尔数,充分混匀,此时引物浓度为100μM,可作为储存液。(例如:假设合成引物每管2OD,若2OD的量为9.1 nmol ,加水量为10×9.1=91μl) (3)将100μM的引物2.5倍稀释,此时浓度为40μM,可作为工作浓度。 2.探针工作浓度(10/20μM/) 配制方法: (1)将新合成的探针管开盖前短暂离心(12000rpm,15s)。 (2)用RNase Free Water溶解,加水量为10×总摩尔数,充分混匀,此时引物浓度为100μM,可作为储存液。 (3)将100μM的探针10/5倍稀释,此时浓度为10/20μM,可作为工作浓度。
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流感病毒的快速检测方法一、RT-PCR快速诊断方法(一)生物安全要求(二)病毒核酸提取(三)RT-PCR(四)PCR 产物纯化(五)流感病毒RT-PCR检测引物二、免疫荧光方法检测流感病毒(一)原理(二)标本处理(三)间接免疫荧光法(四)结果判断三、实时荧光定量PCR(Real-Time PCR)快速诊断检测(一)基本原理(二)实验试剂(三)实验步骤四、快速诊断试剂盒流感的快速检测方法,与传统的病毒分离鉴定相比具有快速、简便的特点。
因此常用于流感暴发时早期病原学检测用。
流感的快速诊断包括直接和间接免疫荧光法、ELISA、RT-PCR、Real-Time PCR快速诊断速方法、流感快速诊断试剂盒等。
这里介绍RT-PCR、Real-Time PCR、免疫荧光快速诊断速诊断方法和几种流感快速诊断试剂盒优缺点。
无论那种快速诊断都无法代替传统的病毒分离鉴定方法。
一、RT-PCR快速诊断方法核酸检测是一种鉴定流感病毒基因组的有力方法,即使基因组含量很低或死病毒也可以检测到。
本章将介绍检测流感病毒的聚合酶链式反应(PCR)。
流感病毒的基因组是负链RNA,在进行PCR扩增前必须合成与病毒RNA 互补的DNA,即为cDNA。
逆转录酶(RT)就是用于合成cDNA的多聚酶,因此,扩增流感病毒基因组的过程称为RT-PCR。
RT-PCR需要一对型别特异引物,四种脱氧核苷酸(dNTPs),RNA模板,逆转录酶及Taq DNA 多聚酶;首先由逆转录酶将病毒的RNA逆转录合成cDNA,然后再进行聚合酶链反应经25~30个循环,使DNA产物达到倍增的效果。
(一)生物安全要求生物安全级别与个人防护要求:生物安全二级实验室,防护要求与二级实验室的要求相同。
并应遵守相应的生物安全规定。
进行高致病性禽H5 RT-PCR快速检测时可以在生物安全二级实验室里进行,核酸提取在生物安全三级实验室的生物安全柜里完成。
(二)病毒核酸提取1. 实验材料及仪器(1) QIAGEN公司的Rneasy Mini Kit(Catalog# 74104)(2) β-巯基乙醇(β-mercaptoethanol)(3) 70% 乙醇(4) 无菌1.5ml 离心管(5) 10μl、20μl、200μl、1000μl加样器和枪头(6) 可调14K微型离心机(7) 旋转混合器2. 操作步骤(1) 取1支无菌、无RNA酶的1.5ml Eppendorf管,加入500μl RLT。
(2) 取采样液(鼻拭子、咽拭子、胸水等)或病毒培养物(鸡胚尿囊液或细胞培养液)100μl,加入上述Eppendorf管中。
(3) 加5μl β-巯基乙醇,充分混匀。
(4) 加600μl 70%乙醇,于旋转混合器混匀。
(5) 从试剂盒中取出带滤膜的离心柱,并标上标本号。
(6) 将第4步的混合液体分两次(每次600μl)吸入于滤柱中,12000rpm离心15秒,弃收集管中的离心液。
(7) 滤柱仍放回收集管上,将第4步的混合液全部吸入滤柱中,12000rpm离心15秒,弃收集管中液体。
(8) 于滤柱中加入700μl RW1,12000rpm 离心15秒。
(9) 从试剂盒中取出一支新的2ml收集管,将离心后的滤柱转到新的收集管上,于柱子中加入500μl RPE,12000rpm 离心15秒弃收集管中液体。
(10) 滤柱放回收集管上,于滤柱中加入500μl RPE,13000~14000rpm 离心2分钟。
(11) 从试剂盒中取出一支1.5ml Eppendorf管,将滤柱转到新的1.5ml管上,于滤柱中加入30~50μl 无RNA酶的水,室温静置1~3分钟。
(12) 12000rpm 离心1分钟,弃滤柱。
收集的离心液即为提取病毒的RNA,可以直接用于逆转录实验,或在-20℃以下保存,-30℃可保存3~4个月。
3. 注意事项(1) 试剂盒中的RPE液用前需加44ml无水乙醇,使终体积达到55ml。
(2) 所有用过的枪头、收集管放入2%次氯酸钠消毒缸中过夜。
(三)R T-PCR1. 一步法RT-PCR(1) 实验材料1) QIAGEN One Step RT-PCR Kit Cat No 2102122) RNase inhibitor 40u/μl(Promega)3) 上游引物200ng/μl4) 下游引物200ng/μl5) 模板RNA(Templet RNA)(2) 实验步骤1) PCR反应配置(在清洁区缓冲间,加RNA模板应在核酸室)无RNA酶水(Rnase Free Water)28.75μl5×Buffer 10μl10mM dNTP 2μlEnzyme Mix 2μlRnase inhibitor 0.25μl上游引物1μl下游引物1μlRNA 模板5μl总量:50μl2) 将PCR 反应管放入PCR扩增仪3) RT-PCR 反应条件:此循环的反应条件仅共参考,如果引物更换,相应的反应条件需要做适当调整。
→60℃ 1 min→42℃10 min→50℃30 min→95℃15 min→94℃30 sec→52℃30 sec→72℃ 1 min→返回第5部,循环34次→72℃10 min→4℃保存4) PCR产物检测琼脂糖凝胶配置:用1×TBE 将琼脂糖配成1.2%~1.5%溶液,加热使之完全溶解。
冷却到50~60℃时加入溴化乙锭(Ethidium Bromide EB,10ug/μl),终浓度为0.5μg/ml。
PCR产物检测:将凝胶放入电泳槽,加入1×TBE Buffer ,使它淹没过胶面。
每份标本取4μl PCR产物,与1μl 5×Loading Buffer 充分混匀后全加入凝胶孔中。
于同一凝胶的第一孔加入5μl分子量标准样品。
加完样后,盖上电泳槽盖子,接通电源,稳压100v,电泳时间约30~40min。
结果分析:用UV~254暗箱式紫外透射仪观察电泳结果,在透射波长254nm 下观察结果效果较好。
或者用凝胶成像系统观察电泳结果。
5) 注意事项:含EB的琼脂糖经处理后放入科研垃圾袋内统一处理。
含有EB的凝胶处理方法:→加1倍体积的0.5mol/L KMnO4,小心混匀。
→加入1倍体积的2.5 mol/L HCl,小心混匀。
于室温放置数小时。
→加入1倍体积的2.5 mol/L NaOH,小心混匀后即可丢弃。
2. 二步法RT-PCR(1) 实验材料1) 逆转录酶:AMV Reverse Transcriptase,Catalog# M5101 Paromeg2) 5×RT Buffer3) 2.5mM dNTP4) Rnase inhibitor 40u/μl(Promega)5) 上游引物200ng/μl6) 下游引物200ng/μl7) 无RNA酶的水(Rnase Free Water)8) Ex-Taq 酶5u/μl DRR 001A 250u (Takara)9) 10×PCR Buffer(2) 实验步骤1) 逆转录反应(在清洁区缓冲间,加RNA模板在核酸提取室)无RNA酶的水 6.8μl5×RT Buffer 4μl2.5mM dNTP 2μl上游引物1μlRnase inhibitor 0.2μl逆转录酶1μlRNA 模板5μl总量:20μl将上述反应液混匀,42℃水浴作用1小时。
然后94℃ 3min ,放置冰上(下步PCR反应或-20℃待用)2) PCR反应配置(在清洁区缓冲间,加cDNA模板应在PCR扩增室)无RNA酶的水35.5μl10×PCR Buffer 5μl2.5mM dNTP 2μl上游引物1μl下游引物1μlEx-Taq 酶0.5μlcDNA 模板5μl总量:50μl3) 将PCR 反应管放入PCR扩增仪4) PCR 反应条件:此循环的反应条件仅共参考,如果引物更换,相应的反应条件需要做适当调整。
→94℃ 3 min→94℃40 sec→52℃40 sec→72℃ 2 min→返回第2部,循环30 次→72℃7 min→4℃保存PCR 产物检测:同一步法(四)P CR 产物纯化1. 实验材料QIAquick Gel Extraction Kit Cat No 287042. 操作步骤(1) PCR 产物进行琼脂糖凝胶电泳;(2) 用干净的手术刀切割目的DNA片段,将切下的DNA胶放入1.5ml离心管(切胶在暗箱或紫外透射仪下操作);(3) 加3倍胶体积的Buffer QG(即100mg DNA胶加300μl Buffer QG);(4) 水浴50℃孵育10min,直到DNA胶完全溶解(每隔2~3min 用旋转混合器混匀);(5) 加一个胶体积的异丙醇(100mg DNA胶加100μl异丙醇);(6) 从试剂盒中取出带滤膜的离心柱收集管,并标上标本号;(7) 将上述DNA液吸入带滤膜的离心柱,13000rpm离心1min,弃收集管中废液,再将带滤膜的离心柱放回收集管;(8) 于带滤膜的离心柱中加0.5ml Buffer QG,13000rpm离心1min,弃收集管中废液;(9) 带滤膜的离心柱中加入0.75ml Buffer PE,放置2~5min,13000rpm离心1min,弃收集管中废液,再将带滤膜的离心柱放回收集管上,13000rpm离心1min;(10) 将带滤膜的离心柱转移到一新的1.5ml离心管上;(11) 于带滤膜的离心柱中加20~30μl TE(或Rnase Free Water),室温3~5min,12000rpm离心1min,弃小柱,收集的离心液即为纯化的PCR产物,可直接用于测序。
(五)流感病毒RT-PCR检测引物A型检测引物:5’ CCG,AGA,TCG,CAC,AGA,GAC,TTG,AAG,AT5’ GGC,AAG,TGC,ACC,AGC,AGA,ATA,ACT B型检测引物5’ GGG,ACA,TGA,ACA,ACA,AAG,ATG5’ TGT,CAG,CTA,TTA,TGG,AGC,TGH1亚型鉴定引物5’ ACT,ACT,GGA,CTC,TGC,TGG,AAC5’ CAA,TGA,AAC,CGG,CAA,TGG,CTC,C H3亚型鉴定引物5’ ATC,AGG,GAG,AGT,CAC,AGT,CTC5’ ATG,CTT,CCA,TTT,GGA,GTG,ATG,C H5亚型鉴定引物5’ GAG,TGA,AGC,CTC,TCA,TTT,TG5’ GTA,CTT,CTT,GGT,TGG,TAT,TAT,TGT,ACG,TCC H5亚型鉴定引物5’ GGG,TGA,GCT,CAT,GTA,CA5’ YTG,AGT,CCC,CTT,TCT,TGAH5亚型鉴定引物5’ GCC,ATT,CCA,CAA,ACA,CCC5’ CTC,CCC,TGC,TCA,TTG,CTA,TGN1鉴定引物5’ AAG,G GG,TTT,TCA,TAC,AGG,TAT,GGT5’ TCT,GTC,CAT,CCA,TTA,GGA,TCCN2鉴定引物5’ GGA,AAT,CGT,TCA,TAT,TAG,CCC,ATT,G5’ AGC,ACA,CAT,AAC,TGG,AAA,CAA,TGC二、免疫荧光方法检测流感病毒(一)原理流感病毒主要感染呼吸道上皮细胞,因此在病人呼吸道标本的脱落细胞中含有流感病毒抗原,通过直接检查上皮细胞内病毒特异性抗原即可诊断。