石蜡包埋
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石蜡切片及HE染色过程
一石蜡切片
1. 取材: 刀片要求锋利而薄,组织厚度约2—3mm, 大小1.5×1.5×0.2~0.3cm为宜. 取材时间越快越好.
2. 固定: 组织取下后应立即放入10%福尔马林(相当于4%甲醛)固定.
注意: (1). 固定液量应为组织块体积的40倍.
(2) 固定时间固定时间与使用的固定液种类和组织块大小, 温度等有关. 一般为3—24h.
(3)固定温度大多可在室温固定, 在低温(4℃)时间应延长.
(4)固定容器应大些.
3. 漂洗: 流水冲洗2—10h.
4. 脱水: 从低浓度酒精到高浓度酒精.
70%(数分钟)→80%(60-120’)→90%(60-120’)→95%(60-120’)→95%(60-120’)→100%(60-120’)→100%(6 0-120’).
5. 透明: 组织块脱水后必须经过一种既能与酒精混合又能溶解石蜡的溶剂, 而使石蜡进入组织块. 常用二甲苯, 一般浸泡30m即可.
6. 浸蜡: 组织经透明后在熔化的石蜡内浸渍的过程称浸蜡. 一般需经2—3次浸渍才能完成, 总时间为3—4h. 用于浸蜡的石蜡熔点为52—56℃.
7. 包埋: 先将熔化的石蜡倒入包埋框再用加热的镊子将组织块放入. 包埋面必须平整. 包埋后石蜡稍凝后可移入冷水或冰箱中加速凝固.
8. 切片: 修块→切片→展片→捞片→烤片.
二HE染色
1. 染色前切片处理
(1) 脱福尔马林色素.
(2) 脱汞盐结晶.
(3) 脱黑色素.
2. 染色步骤
二甲苯脱蜡(10’)→ 无水乙醇洗去二甲苯(1’×2次)→95%酒精(1’)→90%酒精(1’)→85%酒精(1’)→自来水洗(2’)→苏木精染色(1—5’)→自来水洗(1’)→1%盐酸酒精分化20s→自来水洗(1’)→稀氨水(1%)反蓝30s→自来水或蒸馏水洗(1’)→伊红染色(20s—5min)→自来水洗(30s)→85%酒精脱水(20s)→90%酒精脱水(30s)→95%酒精(1’)→95%酒精(1’)→100%酒精(2’)→100%酒精(2’)→二甲苯(2’)→中性树胶封片.
3. 染色结果: 细胞核呈兰色, 胞浆呈红色.
三盐酸酒精的配制
浓盐酸0.5—1ml + 75%酒精99ml.
此液用一段时间后需延长或更换液体, 新液体分化时间要短.
脑组织的石蜡包埋过程中有很多干预因素,一个环节处理的不好就会影响整个实验,我把我们的制作方法说一下,供参考。
1,后固定充分的脑组织放于0.01mol/L PBS中,40minx3次
2,50%的酒精4小时
3,70%4小时
4,80%4小时
5,90%过夜
6,95%6小时(1.5x4次)
7,100%6小时(1.5x4次)
8,二甲苯透明的时间要看组织块大小了,一般我们的经验是4毫米厚的组织块一般是45分钟,基本可以。薄一点呢就取40,后一点就取50,这步其实很关键,建议taratara 先用一个空白组的大鼠脑组织先做一次,看条件怎么样,然后再调整一下时间。
9,浸蜡,一般是4.5--5小时,蜡一1小时,蜡二1小时,蜡三2.5--3小时。
以上就是我们的作法,希望对你有所帮助。
如果脑组织不能及时包埋,就用原来的固定液继续固定,放于4度冰箱中,最好不要时间太长,小于一个月,越早包埋越好。
祝实验顺利!
脑组织包埋过程基本上和其它组织是相同的。
但对于某个具体的组织块来说,脱水、透明、浸蜡的时间需要摸索。虽然相差不大,可是有些原则。比如:
1.在组织块大小相同的情况下处理疏松的组织需要较短一点的时间;
2.肌肉组织比脂肪组织时间短;
3.纤维组织比结构细腻、细胞成分多的组织时间长。
4.组织块越大需要处理时候越长;等等。
所以你处理脑组织的具体时间需要自己摸索,并不是有很现成的步骤的。
建议你去病理科, 是因为这些过程不是一次两次就可以摸索透彻的。
病理科一般不会擅自切你的标本的,也不会切掉你需要的组织。他们只是包埋,又不是帮你取材。
你的目的是做HE切片或者免疫组化之类的实验吧?如果不去病理科,难道你连片子也自己切吗?
GOOD LUCK!
我们实验室的做法通常是:
固定: 组织取下后应立即放入4℃的4%甲醛过夜.(注意:固定液量应为组织块体积的20倍.)脱水: 从低浓度酒精到高浓度酒精依次:(注意:不能时间太长,否则组织易碎。)
70%酒精1min----80%酒精2-4小时----95%酒精2-4小时----95%酒精2-4小时----100%酒精2-4小时----100%酒精2-4小时。
透明: 常用二甲苯, 一般浸泡30min即可.
浸蜡: 组织经透明后放入熔化的石蜡(熔点为52℃)内,1小时/次,共三次。
可以试一下冰冻切片,我们实验室先是用石蜡做大脑的免疫组化,后发现冰冻孵片法方便,而且抗原丢失少,具有很多优点。
我们石蜡的过程如下:
1. 前固定:脑组织最好经心脏灌流进行前固定——麻醉动物,暴露心脏,从左心室灌注生理盐水或0.1M PBS几百毫升(一般为动物体积2-3倍),同时在右心房剪一口。然后再灌注几百体积4%多聚甲醛等固定液。
2. 后顾定:然后取脑,置于固定液中后顾定24小时
3. 脱水: 从低浓度酒精到高浓度酒精依次:(注意:高浓度酒精时间不能太长,否则组织易
碎。)
70%酒精可过夜--80%酒精2小时--95%酒精1小时两次--100%酒精1小时两次。
4. 透明: 1:1酒精二甲苯1小时--常用二甲苯, 一般浸泡30-45min即可。
5. 浸蜡: 组织经透明后放入熔化的软蜡(熔点为52-54℃)内,2小时;然后入硬蜡(熔点56-58℃)2-3小时。
6. 包埋: 将熔化的硬蜡倒入包埋框再将组织块放入,放入时不能有气泡。
建议:大鼠脑袋大,若不影响实验可切开,有利于上述步骤。
祝试验成功!