常用实验动物的采血方法简介
(完整版)各动物采血方法
各种动物采血方法及注意事项1牛的静脉采血1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。
牛站立，助手保定好头部，使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧，颈部稍有弯曲，颈静脉暴露出来，局部剪毛，消毒，术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧，用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方（近心端）压迫静脉管，使颈静脉充盈怒张，部分牛由于膘肥看不清，此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟，有跳动，再按压，用右手食指和中指探摸跳动的部位，有波动和弹性的管状物，颈为颈外静脉。
右手拇指、食指、中指夹住16号针头，对准颈外静脉，并使针头与皮肤接近垂直（75°角），用腕力迅速将针头扎进皮肤，穿入血管，血液会喷射出来，即可采血，停止采血后先松左手，后拔针头，用消毒棉球压迫采血部位1min。
1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定，术者站于牛的正后方，左手抓住牛尾中段用力抬起，使之与地面平行，右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟（大约在尾后下方4-5cm处），消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向，依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。
2马的静脉采血马的颈静脉比较浅显，位于静脉沟内，术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟，使脉管充盈怒张，右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内，感到空虚无阻力即见回血后，再沿脉管向前进针使针头靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度，近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm，血液流出，即可采血。
停止采血后，先松左手，后拔出针头，并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。
3猪静脉采血3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定，耳静脉局部常规消毒处理，助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎，使静脉充盈，怒张，也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血，血管怒张，或用手指弹叩引起血管充盈。
术者用左手拇指和食指把持耳尖，将耳拉直托平，用中指、无名指和小指在耳下面向上托，使采血进针部位稍高，右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角，向远心端刺入血管，有空虚感无阻力时即进入血管。
大鼠和小鼠的采血方法
大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。
常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。
-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。
-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。
2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。
3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。
-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。
常用的有离心管、毛细管等。
-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。
4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。
然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。
-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。
手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。
-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。
再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。
5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。
-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。
将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。
以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。
在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。
另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。
动物采血方法实验报告
一、实验目的1. 掌握动物采血的基本方法与技巧。
2. 了解不同动物采血方法的特点及适用范围。
3. 培养实验操作技能，提高实验成功率。
二、实验材料1. 实验动物：豚鼠、小鼠、兔2. 采血工具：注射器、止血带、剪刀、刀片、酒精棉球、碘酒棉球、无菌纱布、脱脂棉、止血钳、手术刀、手术台、酒精灯3. 试剂：20%柠檬酸钠溶液、抗凝剂、生理盐水三、实验方法1. 豚鼠采血（1）耳缘剪口采血：将豚鼠固定，消毒耳缘，用锐器割破耳缘，涂抹20%柠檬酸钠溶液，待血液自动流出，进入盛器。
（2）心脏采血：取血前探明心脏搏动最强部位，选心跳最显的部位作穿刺。
针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。
（3）肌动脉采血：将动脉仰位固定在手术台上，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部用碘酒消毒。
切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离。
然后，用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液即导管口流出。
（4）背中足静脉取血：助手固定动物，将其右或左右膝关节伸直提到术者面前。
术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿的注射针刺入静脉。
拔针后立即出血，呈半球状隆起。
2. 小鼠采血（1）割（剪）尾采血：固定动物并露出鼠尾，剪去尾部毛，消毒，将尾部浸在45左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。
3. 兔采血（1）耳静脉采血：将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，选耳静脉清晰的耳朵，去除耳静脉部位的毛，局部消毒。
用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张。
用注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液流出，接取血液。
（2）耳中央动脉采血：在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，一手固定兔耳，另一手持注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，轻轻回抽取血。
采血方法
查看文章实验动物的取血方法2007-11-10 11:01采血方法（1）小鼠和大鼠①尾尖取血将动物装在固定筒内，露出尾巴。
将尾共剪掉1～2mm(小鼠)或5cm(大鼠)，然后自尾根向尖端按摩，血自尾尖流出。
亦可先将鼠尾泡于500C热水中，揩干后剪去尾尖，取血后用棉球压迫止血。
此法可反复多次取血，小每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
②眶动脉和眶静脉取血将动物头部按住并压迫眼球使突出充血后，以止血钳迅速钳取眼球后。
眼眶内很快流出血液，将血滴入玻璃器皿内，达到所需采用量后用棉球压迫眼眶止血。
此法所取血量较多，小鼠每次可采血0.2～0.3ml，大鼠每次可采血0.5～lml，动物可存活。
间隔数日后可自另一侧眼眶取血。
③眼眶后静脉丛取血用一长约7～lOcm的玻璃毛细管(内径约1mm)，另端渐扩大呈喇叭形，将其尖端折断。
折断端锋利，预先将玻璃管浸入l％肝素溶液，取出干燥。
取血时左手抓住鼠两耳间头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。
右手持毛细管，将其尖端插入眼睑与眼球之间并向眼底方向移动，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。
取血完毕拔出毛细管，左手放松出血即停止。
毛细管就叫“玻璃毛细管”，是硬质中性玻璃，内径：0.9--1.1mm, 壁厚0.1--0.15mm 管长120mm。
④股静脉(或股动脉)取血麻醉动物背位固定，切开左或右腹股沟的皮肤，作股静脉或股动脉分离手术。
注射针穿刺股动脉或股静脉抽血，也可在颈静脉或颈动脉处穿刺取血。
此法小鼠可采血0.2～0.8ml，大鼠约0.4～0.6ml。
⑤断头取血用剪刀剪掉鼠头，立即将鼠头向下，提起动物，将血滴入容器内。
小鼠可采用0．8～1.2ml，大鼠5～lOml。
（2）豚鼠①心脏取血豚鼠背位固定，左手触摸心脏搏动最明显处。
一般在胸骨左缘第4～6肋间隙，用注射针刺入心脏。
血液即进入注射器内，取血宜迅速，以防血液凝固。
本法取血量多，可达15～20ml。
生理学实验常用的采血方式
生理学实验常用的采血方式生理学实验中，采血是一项非常重要的操作，它可以为实验提供必要的生物样本，以便研究生物体的生理功能和代谢过程。
采血的方式有很多种，下面将介绍几种常用的采血方式。
1. 尾静脉采血法尾静脉采血法是一种常用的小鼠采血方法。
在采血前，需要将小鼠放置在温暖的环境中，以促进血液循环。
然后，用消毒酒精清洁小鼠的尾部，用手指轻轻按压尾部，使尾静脉充血。
接着，用消毒的针头穿刺尾静脉，将血液收集到采血管中。
采血后，需要用消毒棉球压迫穿刺部位，以止血。
2. 静脉采血法静脉采血法是一种常用的大动物采血方法。
在采血前，需要将动物放置在安静的环境中，以减少动物的压力。
然后，用消毒酒精清洁采血部位，用一根消毒的针头穿刺静脉，将血液收集到采血管中。
采血后，需要用消毒棉球压迫穿刺部位，以止血。
3. 毛细血管采血法毛细血管采血法是一种常用的小动物采血方法。
在采血前，需要将动物放置在温暖的环境中，以促进血液循环。
然后，用消毒酒精清洁采血部位，用一根细针头穿刺毛细血管，将血液收集到采血管中。
采血后，需要用消毒棉球压迫穿刺部位，以止血。
4. 母乳采血法母乳采血法是一种常用的新生儿采血方法。
在采血前，需要让婴儿吸允母乳，以促进血液循环。
然后，用消毒酒精清洁采血部位，用一根细针头穿刺婴儿的脚趾或手指，将血液收集到采血管中。
采血后，需要用消毒棉球压迫穿刺部位，以止血。
采血是一项非常重要的生理学实验操作，需要严格遵守操作规程，以确保采血的安全和准确性。
在采血前，需要对采血部位进行消毒处理，采血时需要注意穿刺的深度和角度，采血后需要及时止血和处理采血废弃物。
动物采血法实验报告
一、实验目的1. 掌握动物采血的基本原理和方法。
2. 熟悉常用动物采血技术，如心脏采血、耳缘静脉采血等。
3. 提高实验操作技能，为后续生物学实验奠定基础。
二、实验原理动物采血是生物学实验中常用的技术，主要目的是获取动物血液样本，用于各种生物学研究。
采血方法包括心脏采血、耳缘静脉采血、股动脉采血等。
本实验主要介绍心脏采血和耳缘静脉采血方法。
三、实验材料1. 实验动物：豚鼠、兔子、小鼠等。
2. 实验器材：剪刀、针头、注射器、酒精棉球、碘酒棉球、无菌试管、烧杯、镊子等。
3. 实验试剂：生理盐水、肝素、抗凝剂等。
四、实验步骤（一）心脏采血1. 将豚鼠放入实验台上，用酒精棉球消毒其颈部皮肤。
2. 用剪刀剪开豚鼠颈部皮肤，暴露心脏。
3. 用碘酒棉球消毒心脏表面。
4. 用左手固定豚鼠，右手持注射器，在心脏搏动最明显处，用7号或9号针头刺入心脏。
5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。
6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。
7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。
（二）耳缘静脉采血1. 将兔子固定在实验台上，用酒精棉球消毒其耳缘皮肤。
2. 用镊子轻轻提起兔子耳缘，暴露耳缘静脉。
3. 用碘酒棉球消毒耳缘静脉。
4. 用左手固定兔子耳缘，右手持注射器，在耳缘静脉处刺入。
5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。
6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。
7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。
五、实验结果通过实验，成功采集到豚鼠和兔子的血液样本，血液颜色正常，无凝块。
六、实验讨论1. 心脏采血和耳缘静脉采血是常用的动物采血方法，适用于不同实验需求。
2. 采血过程中，应注意消毒和止血，防止感染和出血。
3. 实验操作要熟练，避免损伤动物。
七、实验总结本次实验成功掌握了动物采血方法，为后续生物学实验奠定了基础。
在实验过程中，应注意以下几点：1. 实验操作要规范，防止感染和出血。
2. 实验操作要熟练，提高实验效率。
实验动物采血实验报告
一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。
2. 熟悉实验动物采血设备的操作流程。
3. 了解采血过程中的注意事项及紧急处理方法。
二、实验原理实验动物采血是生物医学研究中常用的实验技术，通过采集动物的血液样本，可以检测血液中的各项指标，为疾病诊断、治疗和预防提供依据。
实验动物采血主要包括心脏采血、股动脉采血和尾静脉采血等方法。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：大鼠、小鼠等。
2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、止血带等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水等。
四、实验方法1. 实验动物准备：将实验动物放入安静、舒适的环境中，使其适应实验环境。
2. 采血部位选择：根据实验需要，选择合适的采血部位。
本实验以尾静脉采血为例。
3. 采血操作：（1）用酒精棉球消毒实验动物尾根部，待酒精挥发后，用止血带扎紧实验动物尾巴。
（2）左手捏住实验动物尾巴，右手持采血针，垂直刺入尾静脉。
（3）拔出采血针，将血液吸入注射器中，注意防止气泡进入。
（4）采集完成后，迅速拔出采血针，用酒精棉球按压伤口，防止出血。
4. 血液处理：（1）将采集到的血液加入抗凝剂，混匀。
（2）将血液样本置于离心机中，以3000r/min离心10分钟。
（3）取上清液，放入冰浴中保存。
五、实验结果与分析1. 实验结果：成功采集到实验动物血液样本。
2. 结果分析：通过本次实验，掌握了实验动物采血的方法和技巧，熟悉了采血设备的操作流程。
在实验过程中，注意了采血过程中的注意事项，如消毒、止血等，确保了实验的顺利进行。
六、实验讨论1. 采血部位的选择：不同实验动物和实验目的选择不同的采血部位。
本实验采用尾静脉采血，操作简便，创伤小，适用于一般实验。
2. 采血技巧：采血时，动作要轻柔，避免对实验动物造成不必要的伤害。
同时，注意观察实验动物的反应，以便及时调整采血方法和力度。
3. 采血过程中的注意事项：（1）严格遵守无菌操作规程，防止感染。
（2）采血过程中，注意观察实验动物的反应，避免过度采血。
采血
常用实验动物的采血方法一、犬的采血1．前肢内侧皮下头静脉和后肢外侧小隐静脉采血:此法最常用。
由助手将犬固定，采血部位剪毛、消毒，实验者用左手拇指和食指握紧剪毛区上部或扎紧止血带，便远端静脉充血，右手用接有7号针头的注射器刺入静脉，左手放松，以适当速度抽血。
一般一次可采血10～20ml。
2．颈静脉采血:大量或连续采血时，可采用颈静脉采血法。
二、狗、猫采血法1. 后肢外侧小隐静脉和前肢内侧头静脉采血此法最常用，且方便。
后肢外侧小隐静脉在后肢胫部下1/3的外侧浅表的皮下，由前侧方向后行走。
抽血前，将狗固定在狗架上或使狗侧卧，将胶皮带绑在狗股部，由助手将狗固定好。
将抽血部位的毛剪去，碘酒－酒精消毒皮肤。
使下肢静脉充盈，右手用连有针头的注射器迅速穿刺入静脉，左手将针固定，以适当速度抽血（以无气泡为宜）。
采集前肢内侧头静脉血时，操作方法基本与上述相同。
一般采血量为10～20ml。
2. 耳缘静脉采血本法宜取少量血液作血常规或微量酶活性检查等。
有训练的狗不必绑嘴，剪去耳尖部短毛，即可见耳缘静脉，手法基本与兔相同。
3. 颈静脉狗不需麻醉，经训练的狗不需固定，未经训练的狗应予固定、绑嘴。
取侧卧位，剪去颈部被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。
将狗颈部拉直，头尽量后仰。
用左手拇指压住颈静脉入胸部位。
使颈静脉怒张，右手取连有针头的注射器。
针头沿血管平行方向，向远心端刺入血管。
由于颈静脉在皮下易滑动，针刺时刺入要准确。
取血后注意压迫止血。
采用此法一次可取较多量的血。
猫的采血法基本与狗相同。
常采用前肢皮下头静脉、后肢的股静脉、耳缘静脉取血。
需大量血液时可从颈静脉取血。
方法见前述。
家畜临床实验采血
家畜临床实验采血家畜临床实验是一项重要的科研工作，采血作为其中一项关键步骤，在实验结果的准确性和可靠性上起着至关重要的作用。
本文将介绍家畜临床实验采血的方法和注意事项。
一、采血方法1. 选择合适的采血部位在家畜临床实验中，常用的采血部位主要有颈静脉、耳静脉和尾静脉。
根据不同实验需要和动物的特点，选择合适的采血部位非常重要。
2. 准备好采血工具在进行家畜临床实验采血时，需要准备好以下工具：注射器、采血针、采血管等。
确保这些工具干净、无细菌污染，并符合实验要求。
3. 消毒准备采血前，需对采血部位进行消毒处理，以避免感染和交叉感染的风险。
可以使用酒精来进行局部消毒，确保消毒过程干净、彻底。
4. 采血操作在准备就绪后，将采血针插入已消毒的采血部位，以一定的角度与血管相平行，注意不要插入过深，以免受伤。
然后，将采血管连接到采血针上，并轻轻抽取血液。
二、注意事项1. 动物福利在进行家畜临床实验采血时，要保证动物的福利和权益。
采血过程中，动物应尽量减少痛苦和压力，确保其身心健康。
2. 采血量控制采血量的控制非常重要，过少的采血量可能导致实验结果不准确，而过多的采血量可能对动物的健康产生不良影响。
要根据实验需要和动物的身体状况，合理控制采血量。
3. 采血频率在进行家畜临床实验采血时，要注意采血频率的控制。
频繁的采血可能会对动物的生理状况产生不利影响，因此需要根据实验要求和动物的耐受能力，合理安排采血频率。
4. 样本保存和处理采集到的血液样本应及时处理或保存起来，确保实验的完整性和可靠性。
根据实验需要，可以选择不同的保存方式和条件，比如冷藏或者冷冻保存。
三、伦理与法规在进行家畜临床实验采血时，需要严格遵守相关的伦理规定和法律法规。
确保实验符合伦理标准，保护动物的权益和福利，避免违法行为。
总结：家畜临床实验采血是一项关键的步骤，对实验结果的准确性和可靠性起着重要作用。
在采血过程中，要选择合适的采血部位，准备好采血工具，并进行消毒处理。
狗采血方法实验报告
1. 掌握狗采血的方法和技巧。
2. 熟悉狗采血过程中的注意事项。
3. 提高动物实验操作技能。
二、实验材料1. 实验动物：健康成年狗一只。
2. 采血器材：无菌注射器、无菌针头、胶带、剪刀、碘酒、酒精、消毒巾、狗架等。
3. 实验用品：试管、抗凝剂、试管架等。
三、实验方法1. 狗采血部位选择本次实验采用后肢外侧小隐静脉采血法。
在狗的后肢胫部下1/3的外侧浅表皮肤上寻找小隐静脉，该静脉由前侧方向后行走。
2. 狗采血步骤（1）将狗固定在狗架上或使狗侧卧，由助手将狗固定好。
（2）将抽血部位的毛剪去，用碘酒消毒皮肤。
（3）左手拇指和食指握紧剪毛区上部，使下肢静脉充盈。
（4）右手用连有6号或7号针头的消毒器迅速穿刺入静脉。
（5）左手放松将针固定，以适当速度抽血（以无气泡为宜）。
（6）采血完毕，迅速拔出针头，用消毒巾压迫穿刺部位，直至止血。
3. 采血量一只狗一般采10-20mL血并不困难。
四、实验结果本次实验成功采集了狗的血液，血样无污染，符合实验要求。
1. 狗采血部位的选择：后肢外侧小隐静脉采血法是最常用的采血方法，操作简便，成功率较高。
2. 采血过程中的注意事项：在采血前，应对狗进行适当训练，使其在采血过程中保持安静。
在采血过程中，应避免对狗造成疼痛，以免影响采血质量。
3. 采血量：根据实验需求，可适当调整采血量。
本次实验采血量为10-20mL，符合实验要求。
4. 采血后的处理：采血后，应将血样及时放入试管中，加入适量的抗凝剂，防止血液凝固。
六、实验总结本次实验成功掌握了狗采血的方法和技巧，了解了采血过程中的注意事项。
在今后的动物实验中，我们将不断提高实验操作技能，为科研工作提供有力支持。
常见动物采血方法及注意事项
常见动物采血方法及注意事项况树斌孟建明陕西省南郑县圣水镇兽医站,陕西南郑723100做好重大动物疫病的监测和预警是有效防止疫病发生的措施之一,动物血清学检测是动物疫病监测的重要手段,制备有效合格的血清是动物疫病监测的首要条件㊂笔者结合实际工作经验,就常见动物的采血方法及血清制备作了如下总结,供同仁参考㊂1常见动物采血方法1.1猪血的采集采血部位为前腔静脉(仔猪)或耳静脉(成年猪)㊂1)前腔静脉采血㊂该法适用于35~70k g的猪,可采用仰卧或站立保定㊂助手将猪保定好后,采血者先用75%的酒精对猪的前腔静脉窝(位于肩胛内侧,手压有窝状感)进行消毒,再手持采血器,以45~60ʎ的倾斜度朝向心端刺入2~3c m;回抽采血器,在有血回流时,根据需要采3~5m L即可㊂2)耳静脉采血㊂该法适用于较大的猪(如成年母猪或种公猪)或采血较少时,可采用侧卧或站立保定㊂助手保定好猪只后,采血者一只手拉直猪耳,另一只手先用75%酒精对耳静脉处进行消毒,再持采血器从远心端平行耳静脉刺入;采血完毕时先松开握耳根的手,然后拔出采血器,再用干棉球按压采血处约1m i n(直至采血部位不出血)㊂1.2牛、羊血的采集采血部位通常为颈静脉㊂1)牛的颈静脉采血㊂采用站立保定(最好在六柱栏中保定),采血者沿颈静脉沟(对于种牛或种羊应适当剪毛)消毒,用一只手按压颈静脉下端,使其充盈怒张;另一只手持16号针头,垂直刺入颈静脉处1~2c m,血液即可流到采血器中;终止采血后,先松手,后拔针头,并用酒精棉球按压采血部位约1m i n㊂2)羊的颈静脉采血㊂采用骑式保定法保定,助手跨骑在羊背上,两手抓住羊角或羊耳;采血者对羊的颈静脉沟部位剪毛㊁消毒,一只手按压颈静脉下端,使其充盈怒张;另一只手将12号针头平行于颈静脉朝远心端刺入0.5~1.0c m,血液即可流到采血器中;采血完毕后,先松手,后拔针头,并用酒精棉球按压采血部位约1m i n㊂1.3鸡血的采集采血部位为鸡翅静脉,保定方法为卧式保定㊂助手将鸡保定好后,采血者将鸡翅拉直呈30ʎ倾斜,消毒翅静脉处,将采血器平行翅静脉朝远心端刺入;血液流出后,固定采血器,回抽活塞;采血完毕后,用干棉球压紧采血部位并拔出采血器,持续按压采血部位直至不出血㊂2血清的制备2.1自然析出法将采集的血样呈30~45ʎ斜放,静置2h,待血液完全凝固后可带回实验室;再将血样立放,夏季3~5h后即可得到血清,冬㊁春季节由于气温较低,血清析出较慢,可于第2天分离到血清㊂2.2离心机分离法此法适用于采样任务大㊁时间紧的情况,将采集的血样呈30~45ʎ斜放,静置,血样凝固后置于离心机中,以3500~4000r/m i n的速度离心5~8m i n,即可得到所需的血清㊂以上2种方法均可分离出血清,自然析出法较㊃33㊃养殖与饲料2014年第1期养殖生产收稿日期:2013-12-16况树斌,男,1972年生,大专,助理兽医师㊂离心机分离法获得的血清质量好,但较费时㊂3 注意事项3.1 采样要有随机性采样要随机,不要挑着采,更不要专挑那些不健康㊁消瘦的牲畜㊂如果挑着采样,检测的结果不具有代表性,就失去了检测的意义㊂3.2 选好采血时间由于接种疫苗后,动物体内要产生稳定的抗体需要一定的时间和过程㊂因此,进行鸡新城疫疫苗㊁禽流感疫苗㊁猪瘟疫苗及牛羊口蹄疫疫苗抗体检测,在免疫后21d 采血较合适;进行猪口蹄疫疫苗㊁高致性猪蓝耳病疫苗抗体检测,在免疫后28d 采血较好㊂3.3 做好标记将血样进行编号并做好标记,分离血清的标记应与血样编号一致;同时,填写采样单,并一一对应㊂采样单是对采样品种群基本情况的简要记录,包括畜主信息㊁饲养量㊁采样量㊁采样时间㊁免疫时间㊁疫苗种类和生产厂家㊁接种剂量等,均要一一填写完整㊂3.4 及时送检血清分离好后,有条件的应于当日连同采样单一起送交上级实验室保存;没有条件的则自行冷冻保存,冷藏送检,避免因血清腐败变质而影响检测结果췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍췍㊂鉴定猪饲料小技巧目前,饲料行业竞争激烈,饲料厂家数目较多,小饲料厂各地都有,各厂家在销售过程中打起价格战,小厂家更是争相降价,致使产品质量得不到保证,但又为迎合养殖户心理需要,添加了一些添加剂,导致出现了很多问题㊂特介绍以下几个小技巧供广大养殖户鉴定猪饲料参考㊂1 皮肤颜色尤其饲养白色猪更易观察,若发现有些猪全身发红㊁过几天红得发紫,且多在背部出现白泡,则说明猪出现了中毒现象㊂关于使猪皮毛红亮㊁眼观好看,是有些厂家在饲料中添加了一些添加剂,如有机砷制剂㊂有机砷制剂在正常添加剂量的情况下,可以促进猪只生长,使其皮肤红润;但添加剂量过大,制剂质量低下,就会出现中毒现象㊂望广大农户使用中注意观察,以便及时更换饲料㊂2 石粉含量为占有市场,各小饲料厂售价一再降低,致使饲料质量得不到保证㊂有些饲料厂在全价料配制中,使用一些价格低廉的原料,如谷子壳㊁草籽等㊂这些原料比重小㊁单位重量的体积大,致使40k g 包装装满饲料后不够40k g ,此时,某些厂家则在饲料中添加一些比重大㊁价格低廉的石粉,使重量达到40k g,这样的饲料营养价值低㊁适口性差㊂养殖户可采用如下方法鉴定:取1k g 左右的饲料放在盆中,加入足量清水,搅拌,过一会儿,让石粉充分沉淀,倒掉上面的水及饲料,就可看到石粉的多少㊂有些饲料石粉细度不够,还有许多石粉颗粒㊂适量石粉能满足动物营养所需,但过量就会影响饲料质量㊂3 粪便状态猪粪正常状态应是不稀不硬㊁落地柔软成形,由于拉稀对仔猪影响大,饲料厂家和养殖户都非常重视这一问题㊂为此,有些饲料厂家在饲料中加入了防治拉稀的药物,如抗生素㊁抗菌药物等,起到了很好的效果;但添加剂量过大,会致使猪粪便发硬㊁呈球状,这也是猪消化不良的原因所在㊂若长期使用这样的饲料,会导致猪生长缓慢㊂来源:华夏养猪网㊃43㊃养殖生产养殖与饲料2014年第1期。
常见医学实验动物采血方法
2017年12月常见医学实验动物采血方法刘宁（沈阳化工研究院有限公司安全评价中心，辽宁沈阳110141）摘要：本文介绍了常用的实验动物的采血方法，希望能给我国其他同类实验室提供一些操作经验。
关键词：实验动物;采血动物采血是动物实验中经常应用的样本采集方法。
根据实验要求和动物种类的不同，而确定不同的采血部位。
根据本实验室常用的实验动物，下面介绍一下各实验动物的采血方法。
1大、小鼠的血液采集方法有很多种，本实验室最常用的为腹主动脉采血法、眼窝静脉丛采血法、尾静脉采血法、颈静脉采血法、心脏采血法1.1腹主动脉采血法：将麻醉后的动物腹部朝上固定于解剖板上，用固定针固定其四肢，用0.9%生理盐水将动物腹部皮毛喷湿，拿取采血管，从生殖器上部至剑状软骨，用手术剪呈“V ”字型开腹，将肠管推向动物身体左侧，充分暴露出中间粉红色腹主动脉，将采血针针尖斜面朝下向心脏方向刺入腹主动脉，根据检查项目分别采血，采血后，用手术剪剪断动物腹腔大血管，充分放血。
1.2眼窝静脉丛采血法：将麻醉后动物的下眼睑插入特制玻璃毛细管，用指尖在下眼睑内左右移动玻璃毛细管，将眼窝静脉丛泵入玻璃毛细管的血样滴入的采血管中，拔出玻璃毛细管，用灭菌纱布或干棉球压迫止血，在采血部位涂抹红霉素软膏。
1.3尾静脉采血法：将动物放在固定器内固定，露出尾部，用75%酒精棉擦拭消毒尾部，使血管充分扩张，用灭菌纱布或干棉球擦干酒精，用带有医用头皮针的注射器刺入动物尾静脉，缓慢抽血，采血后，用灭菌纱布或干棉球压迫止血。
1.4颈静脉采血法：将麻醉后的动物腹部朝上固定，熟练采血人员也可以不用麻醉，必要时将采血部位剃毛，采血部位用75%乙醇消毒，用注射器或真空采血针抽血，在颈部左侧或右侧锁骨上进针，轻轻抽动注射器栓并同时轻轻进针，采血后，用灭菌纱布或干棉球压迫止血。
1.5心脏采血法：麻醉后，将动物仰卧固定，从胸剑状软骨部到颈部切开皮肤，用镊子揭开剑状软骨，用圆头剪剪开左右肋骨分开胸腔，不要剪切到胸骨两侧的静脉，剪断的胸骨用止血钳固定于动物左上方，用注射针刺入心脏抽取血液。
动物的采血方法
动物的采血方法动物的采血方法一、小鼠、大鼠的采血1.眼眶后静脉丛采血左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外凸。
右手持玻璃采血管，将其尖端插入内眼角与眼球之间，轻轻向眼底方向刺入，小鼠刺入2~3mm，大鼠刺入4~5mm，当感觉有阻力时即停止刺入，放置取血管以切开静脉丛，血流即流入取血管。
采血结束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。
本方法在短期内可重复采血。
小鼠一次可采血0.2~0.3ml，大鼠一次可采血0.5~1.01ml。
为防止血液在取血管中凝固，可将取血管进入1%肝素溶液，干燥后使用。
2.摘眼球采血此方法用于鼠类大量采血。
采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球凸出，右手用弯头镊子摘除眼球，眼眶内很快流出血液。
二、兔的采血1.耳中央动脉、耳沿静脉采血左手固定兔，并用酒精棉球消毒采血部位，右手持注射器，在兔耳血管的末端，沿着与血管平行的向心方向刺入血管，即可见血液流入针管，注意固定好针头。
采血结束后，拔出注射器，用棉球压迫止血2~3min。
2.颈静脉采血将兔麻醉后，仰卧在固定台上固定，剪去一侧颈部被毛，用碘酒、酒精棉球消毒皮肤，手术刀轻轻划破皮肤，钝性分离静脉，颈静脉暴露后，用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入，采血结束后，拔出注射器，缝合切口。
三、狗的采血1.前、后肢皮下静脉血此方法一次可取较多的血，操作可参照相应的静脉注射。
如需采少量血。
则可用5.5号针头直接刺入静脉。
如需采一定量的血，最好用静脉滴注针头与注射器连接，以防狗挣扎时针头刺破血管。
2.股动脉采血将狗仰卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒。
左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管，右手区静脉滴注针，针头由动脉搏动处慢慢刺入，当血液流入针头后的朔料管时，固定好针头，连接好注射器可抽到大量血液。
3.心脏采血将狗仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。
常见小鼠给药和采血方法
常见小鼠给药和采血方法小鼠是广泛应用于生物医学研究的模式动物之一，其独特的生物学特性使其成为了研究各种疾病和药物疗效的重要工具。
在小鼠实验中，给药和采血是常见的操作步骤。
本文将介绍常见的小鼠给药和采血方法。
一、小鼠给药方法1.口服给药法：口服给药是最常见的小鼠给药方法之一，对于口服可吸收的药物非常有效。
给药时，首先选用合适的管子或针筒，将药物溶解在适量的溶剂中。
然后将小鼠固定住，用管子或针筒将药液缓慢地注入小鼠的口腔中，同时用手指轻轻按压小鼠的喉部，以保证药物进入食道而不是气管。
2.注射给药法：注射给药是给药的常见方法之一，适用于药物需要快速达到血液循环的情况。
常见的注射方法有以下几种：-皮下注射法：将药物注射到小鼠的皮下组织中。
操作时，首先选用合适的注射针和注射器，然后将药物注射到小鼠的腹部、背部或颈部的皮下组织中。
注射时需要注意，将针尖插入皮下组织中，然后缓慢注射药液，最后拔出针头。
-静脉注射法：将药物注射到小鼠的静脉系统中。
此方法可以快速达到血液循环，适用于药物需要迅速发挥作用的情况。
操作时，首先选用合适的注射针和注射器，然后将药物注射到小鼠的尾静脉中。
注射时需要注意，将针尖插入尾静脉中，然后缓慢注射药液，最后拔出针头。
-腹腔注射法：将药物注射到小鼠的腹腔中。
此方法适用于需要药物进入腹腔内脏器官的情况。
操作时，首先选用合适的注射针和注射器，然后将药物注射到小鼠的腹腔中。
注射时需要注意，将针尖插入腹腔中，然后缓慢注射药液，最后拔出针头。
除了以上的常见给药方法外，还有其他一些特殊的给药方法，如经鼻给药法、肌肉注射法等。
在给药前，需要根据药物的性质和实验要求选择合适的给药方法，并遵循良好的实验守则和伦理规定。
二、小鼠采血方法采血是小鼠实验中常见的操作步骤之一，用于获得小鼠的血液样本，以进行分析和检测。
常见的小鼠采血方法有以下几种：1.经尾静脉采血法：经尾静脉采血是最常见的小鼠采血方法之一，适用于需要少量血液样本的情况。
常见小鼠给药及采血方法
常见小鼠给药及采血方法常见的小鼠给药和采血方法是科研实验中非常常用的技术手段，在实验过程中对小鼠进行给药和采血可以获取药物的药代动力学信息，并且用于评估药物的疗效。
下面将详细介绍常见的小鼠给药方法和小鼠采血方法。
一、小鼠给药方法：1.口服给药：口服给药是最常见且简单的给药方法，适用于药物通过胃肠道吸收的情况。
通常使用胃管或者灌胃针将药物溶液灌入小鼠的胃中，可以精确控制给药剂量。
在给药前需要将小鼠禁食一段时间，以确保胃中没有食物。
2.稀释给药：稀释给药主要是用于药物溶解度较低的情况，通常使用溶剂将药物稀释后进行给药。
常用的稀释溶剂有PBS、麦芽糊精等。
在给药过程中需要控制好溶剂比例，避免对小鼠造成不必要的伤害。
3.注射给药：注射给药分为皮下注射、腹腔注射和静脉注射等。
皮下注射适用于需要给予较小剂量的药物，腹腔注射适用于需要给予中等剂量的药物，静脉注射适用于需要给予大剂量的药物。
注射给药需要掌握好注射技巧，避免对小鼠造成伤害。
4.气管给药：气管给药主要用于给药物通过呼吸道吸收的情况，通常使用雾化器将药物转化为粒径合适的颗粒进行给药。
此方法可以避免药物通过其他途径的代谢和消除，提高药物的生物利用度。
给药时需要注意控制好呼吸机的参数。
二、小鼠采血方法：1.尾静脉采血：尾静脉采血是最常用的小鼠采血方法，适用于需要采集较小量血液的情况。
通常使用尾静脉切口钳夹住小鼠的尾部，然后用刀片或者盖玻片划破尾静脉进行采血。
在采血前可以将小鼠的尾部浸泡在温水中，以扩张血管。
2.空心针穿刺静脉采血：空心针穿刺静脉采血适用于需要采集较大量血液的情况。
通常选择小鼠的颈静脉或者股静脉进行穿刺。
在采血前需要消毒采血部位，并使用无菌技术进行采血操作。
3.心脏穿刺采血：心脏穿刺采血是最常用于大量采血的方法，但是操作较为复杂且有一定难度，需要具备一定的技术经验。
在采血前需要消毒采血部位，并使用无菌技术进行采血操作。
给药和采血对小鼠的健康和生长状态有一定的影响，需要在实验过程中注意动物的福利和保护动物的权益，严格按照实验伦理和动物保护法规进行操作，以确保实验结果的准确性和可靠性。
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常用实验动物的采血方法
一小鼠和大鼠的采血方法
1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。
先将动物固定，将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾，使尾部血管充盈，剪去尾尖1～2mm(小鼠)或3～5mm(大鼠)，便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。
采血结束时，伤口消毒并用棉球压迫止血。
此法每只鼠一般可采血 10次以上，小鼠每次可取血0.1mL左右，大鼠可取血0.3～0.5ml。
2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏
紧，或轻轻压迫颈部两侧，使鼠眼球突出，眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45°从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。
若技术熟练，此方法在短斯内可重复采血，小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。
如只进行一次取血，可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，抽取血液。
3、鼠装进固定器，漏出尾巴，同1，使尾部血管充盈，作好尾部消毒，用1 ml针筒接好4号针头，穿刺尾静脉，抽取血液。
4、腋下采血：将麻醉后的小鼠仰卧固定，剪开腋下皮肤，钝性分离腋下的胸肌等组织，暴露腋下血管，剪断腋下静脉，用注射器或吸管吸血。
5、断头采血：用剪刀迅速剪掉动物头部，立即将动物头朝下，提起动物，血液可流入试管中。
6、心脏采血：切开动物胸膛，直接从见到的心脏内采血，也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。
7、股动脉采血:大量取血时常用此法。
需手术分离股动脉，用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样，小鼠的一次采血量可达 0.5ml，大鼠可达2.0ml，操作时防止喷血。
二豚鼠、家兔的采血方法
1、家兔耳缘静脉采血
穿刺采血法：是家兔最常用的采血方法。
具体方法同耳缘静脉注射给药。
此法一次可采血5～lOml，可多次重复使用。
针头不可连接注射器，直接让血液滴在有抗凝剂的试管内。
切割采血法：当兔耳部血管被充分扩张后，可用刀片割破耳缘静脉，或用注射针刺破耳缘静脉，让血液自然流出。
采血穿刺和注射穿刺方向不同。
采血穿刺逆血流方向行针，采血量越大，越要靠近根部行针。
2、兔耳中央动脉采血：经兔耳中央的一条较粗、颜色鲜红的动脉采血，可采到约15 ml/次血。
操作方法基本与静脉采血同。
由动脉末端，朝向心方向进针，取血完毕后注意止血。
3、豚鼠耳缘切割采血法:方法同兔相同。
4、心脏采血法:对豚鼠、兔、猫、狗都适用。
采血前，将动物麻醉并仰卧固定置实验台上。
心前区皮肤脱毛，常规消毒。
于左侧第 3、4肋间心尖博动最强处将针头垂直刺入心脏，由于心脏的搏动，血液可自动迸入注射器。
如无血液流出，拔出针头后重新穿刺，不能左右来回斜穿，以免造成气胸而导致动物很快死亡。
经6～7天后可重复穿刺采血。
5、体表静脉采血
（1）兔后肢胫部皮下静脉采血
将兔仰卧固定，拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，可在胫部外侧皮下，见到皮下静脉。
用左手拇指、食指固定好血管，右手持，与皮下静脉平行进针，抽血有回血即可采血。
采血完毕后用棉球压迫止血，因为此处
不易止血，止血时间应稍长。
（2）豚鼠背中足静脉采血
固定豚鼠，将左或右后肢膝关节伸直，提到实验者面前。
实验者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，用左手拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手持注射针刺入静脉，抽出注射针后即有血液渗出，用棉球压迫止血。
6 、大血管采血
（1）颈外静脉采血
兔或猫：将动物仰卧固定，注意用固定器将颈部充分暴露。
用左手朝心短蹦紧颈部皮肤，右手将注射器沿颈部平行方向朝头端方向刺入，有回血后，固定好注射器位置，缓慢采血。
（2）股动脉、股静脉采血
将动物固定好后，左手扪及股三角区，当感到有动脉搏动时，尽量由远心端方向进针，向近心端方向穿刺，刺到血管可见血液流入针筒。
如果需要采静脉血，要特别注意扪到动脉搏动的部位进针后，当针头触及索状感股动脉时，稍将针头朝内侧移动，再迅速的穿刺，即可穿刺到股静脉。
采血过程中操作应迅速。
采血完毕后用棉球压迫针眼及其上方部位2～3分钟止血。
（3）豚鼠股动脉采血
将动物仰卧固定，煎去腹股沟的被毛行股三角区局部麻醉，切开长约2～3cm的皮肤，钝性分离软组织，暴露股动脉并游离出约1～2 cm。
结扎股动脉的远心端，近心端用止血钳夹注，在动脉壁中央夹一小孔，插入采血用的细管子，放开止血钳，血液即可流出。
三犬的采血
1．前肢内侧皮下头静脉和后肢外侧小隐静脉采血:此法最常用。
由助手将犬固定，采血部位剪毛、消毒，实验者用左手拇指和食指握紧剪毛区上部或扎紧止血带，便远端静脉充血，右手用接有7号针头的注射器刺入静脉，左手放松，以适当速度抽血。
一般一次可采血10～20ml。
2．颈静脉采血:大量或连续采血时，可采用颈静脉采血法。
四鸡的采血
需血量少时，常用的取血方法是从其翼根静脉取血。
取血时，可将动物翅膀展开，露出腋窝，将羽毛拔去，即可见到明显的翼根静脉，此静脉是由翼根进入腋窝的一条较粗静脉。
用碘酒酒精消毒皮肤。
抽血时用左手拇指，食指压迫此静脉向心端，血管即努张。
右手取连有51/2号针头的注射器，针头由翼根向翅膀方向延静脉平行刺入血管内，即可抽血。
一般一只成年动物可抽取10－20ml血液。
也可采用右侧颈静脉采血，以食指和中指按住头的一侧，用酒精棉球消毒右侧颈静脉的部位。
以拇指轻压颈根部以使静脉充血，右手持注射器刺入静脉取血。
需血量较大时，可从心脏采取。
心脏采血时，用手指将心脏部位向下推，从三角形的锁骨窝的中央部与脊椎平行方向进针，刺入心脏，采血。
五猪的采血
少量血可从耳静脉, 前肢内侧皮下头静脉和后肢外侧小隐静脉采血，大量血可从颈静脉、锁骨下静脉采
取。
六猴的采血
1、毛细血管采血:需血量较少时可经毛细血管采血。
局部消毒后，刺破猴拇指或足跟等处即可采血。
2、静脉采血:需血量较大时采用静脉采血，最适部位是后肢皮下静脉及外颈静脉。
后肢皮下静脉的取血法与狗相似。
用外颈静脉采血时，把猴固定在猴台上，侧卧，头部略低于台面，助手固定猴的头部和肩部。
先剪去颈部的毛，用碘酒－酒精消毒，即可见位于上颌角与锁骨中点之间的努张的外颈静脉。
用左手拇指按住静脉，右手持连
有61/2号针头的注射器，其他操作与人的静脉取血同。
3、动脉采血：股动脉可触及。
取血量多时常被优先选用，手法与狗股动脉采血相似。
七羊的采血方法
常采用颈静脉取血方法。
也可在前后肢皮下静脉取血。
颈静脉粗大，容易抽取，而且取血量较多，一般一次可抽取50－100ml。
将羊蹄捆缚，按倒在地，由助手用双手握住羊下颌，向上固定住头部，在颈部外缘剪毛约7cm范围，碘酒酒精消毒。
用左手拇指按压颈静脉，使之努张，右手取连有粗针头的注射器沿静脉一侧以30度倾斜由头端向心方向刺入血管，然后缓缓抽血至所需量。
取血完毕，拔出针头，采血部位以酒精棉球压迫片刻，同时迅速将血液注入盛有玻璃珠的灭菌烧瓶内，振荡数分钟，脱去纤维蛋白，防止凝血，或将血液直接注入装有抗凝剂的烧瓶内。