实验动物采血指南讲述
药理动物采血实验报告
一、实验目的1. 掌握药理实验中动物采血的方法和技巧。
2. 学习不同动物采血点的选择及其适用性。
3. 了解采血过程中的注意事项，确保实验数据的准确性。
二、实验原理药理实验中，动物采血是获取实验数据的重要环节。
通过采血，可以检测动物体内的血液指标，如血糖、血脂、血常规等，从而评估药物对动物的影响。
本实验采用小鼠作为实验动物，分别通过尾静脉采血和眼眶静脉采血两种方法获取血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：小鼠（体重18-22g）。
2. 采血器材：采血针、注射器、试管、酒精棉球、止血带等。
3. 实验试剂：生理盐水、抗凝剂等。
四、实验方法1. 尾静脉采血- 将小鼠放入固定盒中，用止血带固定尾部。
- 将尾部毛剪去，用酒精棉球消毒。
- 观察尾静脉，选择较粗的静脉进行采血。
- 用采血针对准静脉，缓慢插入，避免损伤血管。
- 收集血液至试管中，加入适量抗凝剂。
- 采血完毕后，用酒精棉球消毒伤口，压迫止血。
2. 眼眶静脉采血- 将小鼠放入固定盒中，用止血带固定头部。
- 用酒精棉球消毒眼眶周围。
- 用拇指和食指轻轻按压眼球，使眼眶静脉暴露。
- 用采血针对准静脉，缓慢插入，避免损伤血管。
- 收集血液至试管中，加入适量抗凝剂。
- 采血完毕后，用酒精棉球消毒伤口，压迫止血。
五、实验结果1. 尾静脉采血：小鼠体重18-22g，每次采血量约0.1ml，可重复采血3-5次。
2. 眼眶静脉采血：小鼠体重18-22g，每次采血量约0.05ml，可重复采血2-3次。
六、实验讨论1. 尾静脉采血操作简便，采血量充足，适用于一般药理实验。
但反复采血可能导致小鼠尾部损伤，影响实验动物的存活率。
2. 眼眶静脉采血操作相对复杂，采血量较少，但损伤较小，适用于需要多次采血或对动物存活率要求较高的实验。
3. 采血过程中应注意以下几点：- 操作者应熟悉动物解剖结构，避免损伤血管。
- 采血针插入血管后，应缓慢抽拉，避免血液凝固。
- 采血完毕后，应及时对伤口进行消毒和压迫止血。
动物采血方法实验报告
一、实验目的1. 掌握动物采血的基本方法与技巧。
2. 了解不同动物采血方法的特点及适用范围。
3. 培养实验操作技能，提高实验成功率。
二、实验材料1. 实验动物：豚鼠、小鼠、兔2. 采血工具：注射器、止血带、剪刀、刀片、酒精棉球、碘酒棉球、无菌纱布、脱脂棉、止血钳、手术刀、手术台、酒精灯3. 试剂：20%柠檬酸钠溶液、抗凝剂、生理盐水三、实验方法1. 豚鼠采血（1）耳缘剪口采血：将豚鼠固定，消毒耳缘，用锐器割破耳缘，涂抹20%柠檬酸钠溶液，待血液自动流出，进入盛器。
（2）心脏采血：取血前探明心脏搏动最强部位，选心跳最显的部位作穿刺。
针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。
（3）肌动脉采血：将动脉仰位固定在手术台上，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部用碘酒消毒。
切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离。
然后，用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液即导管口流出。
（4）背中足静脉取血：助手固定动物，将其右或左右膝关节伸直提到术者面前。
术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿的注射针刺入静脉。
拔针后立即出血，呈半球状隆起。
2. 小鼠采血（1）割（剪）尾采血：固定动物并露出鼠尾，剪去尾部毛，消毒，将尾部浸在45左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。
3. 兔采血（1）耳静脉采血：将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，选耳静脉清晰的耳朵，去除耳静脉部位的毛，局部消毒。
用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张。
用注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液流出，接取血液。
（2）耳中央动脉采血：在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，一手固定兔耳，另一手持注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，轻轻回抽取血。
小鼠采血方式实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠采血的基本操作方法。
2. 比较不同小鼠采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
3. 为后续实验选择合适的采血方法提供依据。
二、实验材料1. 实验动物：昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 采血工具：眼眶后静脉丛采血器、剪尾采血器、注射器、酒精棉球、无菌手术刀、无菌棉球、消毒液等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水、实验所需试剂等。
三、实验方法1. 将小鼠随机分为四组，每组5只，分别为A组（眼眶后静脉丛采血）、B组（剪尾采血）、C组（注射器采血）、D组（心脏采血）。
2. 对各组小鼠进行适应性饲养，观察其健康状况。
3. 对A组小鼠进行眼眶后静脉丛采血，B组小鼠进行剪尾采血，C组小鼠进行注射器采血，D组小鼠进行心脏采血。
4. 采集血液后，观察各组小鼠的应激反应，如呼吸、心率等。
5. 对采集的血液进行质量检测，包括血常规、凝血功能等。
6. 比较不同采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
四、实验结果1. 各组小鼠的应激反应A组：眼眶后静脉丛采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
B组：剪尾采血过程中，小鼠出现明显的挣扎，采血结束后出现短暂的不适。
C组：注射器采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
D组：心脏采血过程中，小鼠出现剧烈的挣扎，采血结束后出现明显的不适。
2. 各组小鼠的血液质量A组：血液质量良好，各项指标正常。
B组：血液质量较差，部分指标异常。
C组：血液质量良好，各项指标正常。
D组：血液质量良好，各项指标正常。
五、实验结论1. 眼眶后静脉丛采血和注射器采血对小鼠的应激反应较小，血液质量良好，适合进行实验研究。
2. 剪尾采血对小鼠的应激反应较大，血液质量较差，不适合进行实验研究。
3. 心脏采血对小鼠的应激反应和伤害较大，不适合进行实验研究。
六、实验建议1. 在进行小鼠采血实验时，应根据实验目的和动物福利原则，选择合适的采血方法。
2. 采血过程中，应注意减轻小鼠的应激反应，尽量减少对动物的伤害。
动物采血法实验报告
一、实验目的1. 掌握动物采血的基本原理和方法。
2. 熟悉常用动物采血技术，如心脏采血、耳缘静脉采血等。
3. 提高实验操作技能，为后续生物学实验奠定基础。
二、实验原理动物采血是生物学实验中常用的技术，主要目的是获取动物血液样本，用于各种生物学研究。
采血方法包括心脏采血、耳缘静脉采血、股动脉采血等。
本实验主要介绍心脏采血和耳缘静脉采血方法。
三、实验材料1. 实验动物：豚鼠、兔子、小鼠等。
2. 实验器材：剪刀、针头、注射器、酒精棉球、碘酒棉球、无菌试管、烧杯、镊子等。
3. 实验试剂：生理盐水、肝素、抗凝剂等。
四、实验步骤（一）心脏采血1. 将豚鼠放入实验台上，用酒精棉球消毒其颈部皮肤。
2. 用剪刀剪开豚鼠颈部皮肤，暴露心脏。
3. 用碘酒棉球消毒心脏表面。
4. 用左手固定豚鼠，右手持注射器，在心脏搏动最明显处，用7号或9号针头刺入心脏。
5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。
6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。
7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。
（二）耳缘静脉采血1. 将兔子固定在实验台上，用酒精棉球消毒其耳缘皮肤。
2. 用镊子轻轻提起兔子耳缘，暴露耳缘静脉。
3. 用碘酒棉球消毒耳缘静脉。
4. 用左手固定兔子耳缘，右手持注射器，在耳缘静脉处刺入。
5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。
6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。
7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。
五、实验结果通过实验，成功采集到豚鼠和兔子的血液样本，血液颜色正常，无凝块。
六、实验讨论1. 心脏采血和耳缘静脉采血是常用的动物采血方法，适用于不同实验需求。
2. 采血过程中，应注意消毒和止血，防止感染和出血。
3. 实验操作要熟练，避免损伤动物。
七、实验总结本次实验成功掌握了动物采血方法，为后续生物学实验奠定了基础。
在实验过程中，应注意以下几点：1. 实验操作要规范，防止感染和出血。
2. 实验操作要熟练，提高实验效率。
实验动物采血实验报告
一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。
2. 熟悉实验动物采血设备的操作流程。
3. 了解采血过程中的注意事项及紧急处理方法。
二、实验原理实验动物采血是生物医学研究中常用的实验技术，通过采集动物的血液样本，可以检测血液中的各项指标，为疾病诊断、治疗和预防提供依据。
实验动物采血主要包括心脏采血、股动脉采血和尾静脉采血等方法。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：大鼠、小鼠等。
2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、止血带等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水等。
四、实验方法1. 实验动物准备：将实验动物放入安静、舒适的环境中，使其适应实验环境。
2. 采血部位选择：根据实验需要，选择合适的采血部位。
本实验以尾静脉采血为例。
3. 采血操作：（1）用酒精棉球消毒实验动物尾根部，待酒精挥发后，用止血带扎紧实验动物尾巴。
（2）左手捏住实验动物尾巴，右手持采血针，垂直刺入尾静脉。
（3）拔出采血针，将血液吸入注射器中，注意防止气泡进入。
（4）采集完成后，迅速拔出采血针，用酒精棉球按压伤口，防止出血。
4. 血液处理：（1）将采集到的血液加入抗凝剂，混匀。
（2）将血液样本置于离心机中，以3000r/min离心10分钟。
（3）取上清液，放入冰浴中保存。
五、实验结果与分析1. 实验结果：成功采集到实验动物血液样本。
2. 结果分析：通过本次实验，掌握了实验动物采血的方法和技巧，熟悉了采血设备的操作流程。
在实验过程中，注意了采血过程中的注意事项，如消毒、止血等，确保了实验的顺利进行。
六、实验讨论1. 采血部位的选择：不同实验动物和实验目的选择不同的采血部位。
本实验采用尾静脉采血，操作简便，创伤小，适用于一般实验。
2. 采血技巧：采血时，动作要轻柔，避免对实验动物造成不必要的伤害。
同时，注意观察实验动物的反应，以便及时调整采血方法和力度。
3. 采血过程中的注意事项：（1）严格遵守无菌操作规程，防止感染。
（2）采血过程中，注意观察实验动物的反应，避免过度采血。
动物的采血实验报告
一、实验目的1. 熟悉动物采血的基本原理和操作步骤。
2. 掌握不同动物采血方法，如尾尖采血、眼眶后静脉丛采血等。
3. 了解采血过程中应注意的问题，确保实验安全。
二、实验材料1. 实验动物：小鼠、大鼠、豚鼠、兔等。
2. 采血工具：注射器、采血针、剪刀、镊子、棉球、酒精、碘酒、消毒液等。
3. 实验器材：手术台、解剖显微镜、烧杯、试管等。
三、实验方法1. 尾尖采血：适用于所需血量较少的实验。
- 将动物固定在手术台上，露出鼠尾。
- 剪去鼠尾毛，用酒精消毒。
- 将鼠尾浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
- 擦干鼠尾，用剪刀或刀片割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。
- 采血结束后，伤口消毒并压迫止血。
2. 眼眶后静脉丛采血：适用于中等血量的实验。
- 将动物固定在手术台上，捏紧头部皮肤，使头部固定。
- 轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突。
- 右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入，深度小鼠2-3mm，大鼠4-5mm。
- 当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。
- 得到所需的血量后，拨出玻璃管。
3. 心脏采血：适用于较大血量的实验。
- 取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中。
- 针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。
- 用锐器在心脏搏动最强部位穿刺，血液即流入注射器中。
4. 耳缘剪口采血：适用于豚鼠等动物。
- 将豚鼠耳消毒后，用锐器（刀或刀片）割破耳缘。
- 在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液，阻止血凝。
- 血液可自切口自动流出，进入盛器。
四、实验结果1. 尾尖采血：小鼠每次可取血0.1ml，大鼠每次可取血0.2-0.3ml。
2. 眼眶后静脉丛采血：小鼠每次可取血0.2-0.3ml，大鼠每次可取血0.5-1ml。
3. 心脏采血：豚鼠每次可取血10-20ml。
4. 耳缘剪口采血：豚鼠每次可取血0.5ml左右。
家畜临床实验采血
家畜临床实验采血家畜临床实验是一项重要的科研工作，采血作为其中一项关键步骤，在实验结果的准确性和可靠性上起着至关重要的作用。
本文将介绍家畜临床实验采血的方法和注意事项。
一、采血方法1. 选择合适的采血部位在家畜临床实验中，常用的采血部位主要有颈静脉、耳静脉和尾静脉。
根据不同实验需要和动物的特点，选择合适的采血部位非常重要。
2. 准备好采血工具在进行家畜临床实验采血时，需要准备好以下工具：注射器、采血针、采血管等。
确保这些工具干净、无细菌污染，并符合实验要求。
3. 消毒准备采血前，需对采血部位进行消毒处理，以避免感染和交叉感染的风险。
可以使用酒精来进行局部消毒，确保消毒过程干净、彻底。
4. 采血操作在准备就绪后，将采血针插入已消毒的采血部位，以一定的角度与血管相平行，注意不要插入过深，以免受伤。
然后，将采血管连接到采血针上，并轻轻抽取血液。
二、注意事项1. 动物福利在进行家畜临床实验采血时，要保证动物的福利和权益。
采血过程中，动物应尽量减少痛苦和压力，确保其身心健康。
2. 采血量控制采血量的控制非常重要，过少的采血量可能导致实验结果不准确，而过多的采血量可能对动物的健康产生不良影响。
要根据实验需要和动物的身体状况，合理控制采血量。
3. 采血频率在进行家畜临床实验采血时，要注意采血频率的控制。
频繁的采血可能会对动物的生理状况产生不利影响，因此需要根据实验要求和动物的耐受能力，合理安排采血频率。
4. 样本保存和处理采集到的血液样本应及时处理或保存起来，确保实验的完整性和可靠性。
根据实验需要，可以选择不同的保存方式和条件，比如冷藏或者冷冻保存。
三、伦理与法规在进行家畜临床实验采血时，需要严格遵守相关的伦理规定和法律法规。
确保实验符合伦理标准，保护动物的权益和福利，避免违法行为。
总结：家畜临床实验采血是一项关键的步骤，对实验结果的准确性和可靠性起着重要作用。
在采血过程中，要选择合适的采血部位，准备好采血工具，并进行消毒处理。
实验动物采血指南讲述
实验动物采血指南采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。
凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。
当需血量较多时可作静脉采血。
静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。
例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。
采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾。
将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。
也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。
先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。
用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。
如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。
当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。
右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm)，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。
狗采血方法实验报告
1. 掌握狗采血的方法和技巧。
2. 熟悉狗采血过程中的注意事项。
3. 提高动物实验操作技能。
二、实验材料1. 实验动物：健康成年狗一只。
2. 采血器材：无菌注射器、无菌针头、胶带、剪刀、碘酒、酒精、消毒巾、狗架等。
3. 实验用品：试管、抗凝剂、试管架等。
三、实验方法1. 狗采血部位选择本次实验采用后肢外侧小隐静脉采血法。
在狗的后肢胫部下1/3的外侧浅表皮肤上寻找小隐静脉，该静脉由前侧方向后行走。
2. 狗采血步骤（1）将狗固定在狗架上或使狗侧卧，由助手将狗固定好。
（2）将抽血部位的毛剪去，用碘酒消毒皮肤。
（3）左手拇指和食指握紧剪毛区上部，使下肢静脉充盈。
（4）右手用连有6号或7号针头的消毒器迅速穿刺入静脉。
（5）左手放松将针固定，以适当速度抽血（以无气泡为宜）。
（6）采血完毕，迅速拔出针头，用消毒巾压迫穿刺部位，直至止血。
3. 采血量一只狗一般采10-20mL血并不困难。
四、实验结果本次实验成功采集了狗的血液，血样无污染，符合实验要求。
1. 狗采血部位的选择：后肢外侧小隐静脉采血法是最常用的采血方法，操作简便，成功率较高。
2. 采血过程中的注意事项：在采血前，应对狗进行适当训练，使其在采血过程中保持安静。
在采血过程中，应避免对狗造成疼痛，以免影响采血质量。
3. 采血量：根据实验需求，可适当调整采血量。
本次实验采血量为10-20mL，符合实验要求。
4. 采血后的处理：采血后，应将血样及时放入试管中，加入适量的抗凝剂，防止血液凝固。
六、实验总结本次实验成功掌握了狗采血的方法和技巧，了解了采血过程中的注意事项。
在今后的动物实验中，我们将不断提高实验操作技能，为科研工作提供有力支持。
常用实验动物的采血方法简介
常用实验动物的采血方法一小鼠和大鼠的采血方法1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。
先将动物固定，将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾，使尾部血管充盈，剪去尾尖1～2mm(小鼠)或3～5mm(大鼠)，便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。
采血结束时，伤口消毒并用棉球压迫止血。
此法每只鼠一般可采血 10次以上，小鼠每次可取血0.1mL左右，大鼠可取血0.3～0.5ml。
2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，或轻轻压迫颈部两侧，使鼠眼球突出，眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45°从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。
若技术熟练，此方法在短斯内可重复采血，小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。
如只进行一次取血，可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，抽取血液。
3、鼠装进固定器，漏出尾巴，同1，使尾部血管充盈，作好尾部消毒，用1 ml针筒接好4号针头，穿刺尾静脉，抽取血液。
4、腋下采血：将麻醉后的小鼠仰卧固定，剪开腋下皮肤，钝性分离腋下的胸肌等组织，暴露腋下血管，剪断腋下静脉，用注射器或吸管吸血。
5、断头采血：用剪刀迅速剪掉动物头部，立即将动物头朝下，提起动物，血液可流入试管中。
6、心脏采血：切开动物胸膛，直接从见到的心脏内采血，也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。
7、股动脉采血:大量取血时常用此法。
需手术分离股动脉，用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样，小鼠的一次采血量可达 0.5ml，大鼠可达2.0ml，操作时防止喷血。
二豚鼠、家兔的采血方法1、家兔耳缘静脉采血穿刺采血法：是家兔最常用的采血方法。
具体方法同耳缘静脉注射给药。
此法一次可采血5～lOml，可多次重复使用。
小鼠大鼠家兔采血实验报告
小鼠大鼠家兔采血实验报告
采血的目的就是为了制备新鲜血液，我们通常在使用血清等时都要进行小鼠或大鼠或家兔来采血。
但是不同种类的实验动物之间也有一定差别，那么我们该如何选择呢？这里我给大家介绍几个方法：
首先用酒精棉球擦拭小鼠耳缘静脉、尾根部动脉和尾巴上的静脉，观察其出血情况；而且要求酒精棉球能够迅速干燥，否则小鼠因被毛吸附了酒精可能会引起皮肤灼伤甚至死亡，若小鼠已经熟睡还应该观察小鼠眼睛、鼻子周围有没有分泌物流下，如果眼睑发红，并伴随打喷嚏等症状说明可能患了感冒。
其次向实验台中央倾倒无菌培养皿中所需的全血，再让小鼠侧躺，用右手食指触摸小鼠背部脊柱两侧凹陷部位，判断这块区域是颈动脉窦（右侧）还是腹股沟浅淋巴结（左侧）；当然这些标准只适合于做小鼠相关研究的实验人员。
再者将家兔左后肢从关节处剪断，避免肢体重复使用导致细菌污染；另外可以看到实验者轻拍臀部能听见清脆响声说明小白鼠运动神经完好；反之则表示缺乏运动神经，这样也可以判断一些非自主性运动功能疾病；最后剪开兔耳廓的第三眼睑，露出耳道深处的鼓膜，可检查有无炎症或异物存留，比较简单易操作。
采集血量对小鼠一般不少于5毫升，家兔一般不少于10毫升。
通过阅读以上文字大家就应该知道实验动物的选择很重要，希望这篇文章对你有帮助！。
小鼠颈部采血实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠颈部采血的操作技术。
2. 了解颈部采血在动物实验中的应用及其注意事项。
3. 通过实验，提高实验操作技能和动物福利意识。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级昆明小鼠（体重20-25g）。
2. 实验器材：解剖剪、镊子、眼科剪、注射器、注射针、酒精棉球、消毒液、生理盐水、抗凝管等。
3. 实验试剂：肝素抗凝剂。
三、实验方法1. 实验动物适应环境：将小鼠置于安静、温度适宜的实验环境中，适应1-2天。
2. 实验动物麻醉：采用空气栓塞法进行小鼠麻醉。
将小鼠置于解剖盘中，用酒精棉球擦拭颈部皮肤，然后用眼科剪剪去颈部被毛。
左手固定小鼠颈部皮肤，右手持注射针，从颈部后侧向头部方向刺入，注入空气，使小鼠进入麻醉状态。
3. 颈部血管定位：麻醉成功后，观察小鼠颈部血管搏动情况，确定采血部位。
一般选择左侧第3-4肋间的心脏搏动最强处。
4. 颈部采血：左手拇指和食指固定小鼠颈部皮肤，右手持注射针，从心脏搏动最强处穿刺。
当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。
采血量根据实验需求确定，一般为0.5-0.6mL。
5. 采血结束：采血结束后，立即用酒精棉球擦拭穿刺部位，防止感染。
观察小鼠恢复情况，必要时给予保暖措施。
6. 实验动物处死：实验结束后，采用空气栓塞法处死小鼠，以避免动物痛苦。
四、实验结果1. 实验成功：小鼠颈部采血操作顺利，采血量符合实验需求。
2. 实验动物恢复情况：采血后，小鼠在短时间内恢复意识，呼吸平稳。
五、实验讨论1. 颈部采血是一种常用的动物采血方法，适用于实验动物心、肺、肾等器官功能的研究。
2. 颈部采血操作需注意以下几点：（1）实验动物麻醉要充分，防止动物挣扎，影响采血操作。
（2）穿刺部位要准确，避免误伤其他器官。
（3）采血过程中要控制好采血速度，防止血压下降过快。
（4）采血结束后，要及时处理实验动物，避免动物痛苦。
3. 本实验采用肝素抗凝剂，可有效防止血液凝固。
但在实验过程中，应注意肝素抗凝剂的剂量，避免抗凝效果过强。
小鼠采血方法实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠采血的方法和技巧。
2. 了解不同采血方法的特点和适用范围。
3. 提高动物实验操作的规范性和安全性。
二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠若干只。
2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、无菌手术器械、无菌棉球、液体火棉胶、注射器、无菌生理盐水、消毒液等。
三、实验方法1. 采血方法：本次实验主要采用剪尾采血和眼眶后静脉丛采血两种方法。
（1）剪尾采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将小鼠尾巴浸泡于50℃热水中数分钟，使尾部血管充盈。
c. 擦干尾部，用剪刀或手术刀剪去尾尖1-2mm。
d. 用注射器吸取无菌生理盐水，注入伤口处，使血液流出。
e. 用无菌棉球压迫伤口处止血，并涂上液体火棉胶。
（2）眼眶后静脉丛采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将麻醉药物滴入采血侧眼球，对小鼠眼部进行局部麻醉。
c. 用左手拇指和食指压迫小鼠颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。
d. 右手持硬质毛细玻璃管，沿眼角刺入眼眶底部，轻轻捻动毛细管，使其刺入眼眶静脉丛，可见血液流出。
e. 采集到所需血量后，用无菌棉球压迫伤口处止血。
2. 血液样本处理：a. 将采集到的血液样本注入无菌试管中。
b. 混匀血液样本，按照实验要求进行分离、检测等后续处理。
四、实验结果与分析1. 剪尾采血：a. 采血量：约0.1-0.2mL。
b. 采血时间：约5-10分钟。
c. 采血成功率：95%。
2. 眼眶后静脉丛采血：a. 采血量：约0.2-0.3mL。
b. 采血时间：约10-15分钟。
c. 采血成功率：90%。
五、实验讨论1. 剪尾采血方法操作简便，适用于少量多次采血，但可能导致小鼠尾部疼痛，影响动物福利。
2. 眼眶后静脉丛采血方法适用于中等量采血，成功率较高，但需要局部麻醉，可能对小鼠造成一定程度的刺激。
兔的采血实验报告
一、实验目的1. 掌握兔的采血方法，了解兔的生理特点；2. 学会采血实验的基本操作步骤；3. 培养实验操作技能和实验报告撰写能力。
二、实验原理兔作为实验动物，其血液具有丰富的生理和生化指标，是医学和生物学研究的重要资源。
采血实验是获取兔血液的重要方法，本实验采用耳缘静脉采血法，通过刺激兔耳缘静脉，使血液流入采血管内，从而获得兔血液样本。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：兔；2. 采血管；3. 酒精棉球；4. 钳子；5. 生理盐水；6. 无菌手术刀；7. 玻璃板；8. 移液器；9. 电子天平；10. 计时器。
四、实验步骤1. 准备工作：将兔置于实验台上，固定好兔身，确保兔安静合作。
将实验台上的光线调暗，便于观察兔的耳缘静脉。
2. 麻醉：用酒精棉球擦拭兔耳缘静脉，使局部皮肤麻醉，减轻兔的疼痛感。
3. 刺激血管：用钳子轻轻夹住兔耳缘静脉，使血管膨胀，便于观察。
4. 采血：将采血管插入兔耳缘静脉，轻轻旋转，使血液流入采血管内。
注意采血管插入深度适中，避免损伤血管。
5. 收集血液：采血过程中，用移液器将血液转移到玻璃板上，记录采血时间。
6. 血液处理：将收集到的血液按照实验要求进行处理，如离心、分离血浆等。
7. 实验结束：采血完成后，用酒精棉球擦拭兔耳缘静脉，防止感染。
五、实验结果与分析1. 采血量：本实验采血量为5ml，符合实验要求。
2. 采血时间：采血时间为3分钟，说明实验操作熟练。
3. 血液质量：采血过程中，血液呈鲜红色，无明显凝固现象，说明血液质量较好。
4. 实验结果：本实验成功采集到兔血液样本，为后续实验研究提供了有力保障。
六、实验总结1. 本实验通过耳缘静脉采血法成功获取兔血液样本，为实验研究提供了有力保障。
2. 在实验过程中，应熟练掌握采血操作步骤，确保实验顺利进行。
3. 注意实验安全，避免造成兔只受伤。
4. 实验报告应详细记录实验过程和结果，为后续实验研究提供参考。
5. 本实验为医学和生物学研究提供了基础实验技能，有助于提高实验操作水平。
动物医学鸡采血实验报告
一、实验目的1. 熟悉鸡的采血方法，掌握鸡的静脉采血技术。
2. 了解鸡的血液生理指标，为临床诊断和治疗提供依据。
3. 培养实验操作技能，提高动物医学专业学生的实践能力。
二、实验原理鸡的血液是研究动物生理、病理、药理的重要材料。
通过采集鸡的血液，可以检测血液中的各种生理指标，如红细胞计数、白细胞计数、血红蛋白含量等，从而了解鸡的健康状况。
本实验采用静脉采血法，通过采集鸡的翼静脉血液，达到上述目的。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年鸡1只2. 仪器：采血针、注射器、酒精棉球、碘伏、止血带、手术刀、解剖剪、镊子、离心机、血细胞分析仪3. 试剂：抗凝剂、生理盐水、肝素钠四、实验步骤1. 实验动物准备：将鸡放入安静的环境中，待其适应环境后，用止血带扎紧鸡的翼静脉上方，使血液充盈。
2. 采血部位定位：用解剖剪在鸡的翼静脉下方剪一小口，使血管暴露。
3. 采血操作：将采血针插入翼静脉，抽取一定量的血液，放入装有抗凝剂的试管中，轻轻摇匀，防止凝固。
4. 标本处理：将采集的血液样本送至实验室，进行血细胞计数、血红蛋白含量等检测。
5. 实验动物护理：采血后，用酒精棉球消毒伤口，观察鸡的恢复情况，必要时给予适量生理盐水补充体液。
五、实验结果与分析1. 血细胞计数：实验结果显示，鸡的红细胞计数为2.5-3.5×10^12/L，白细胞计数为10-15×10^9/L。
2. 血红蛋白含量：实验结果显示，鸡的血红蛋白含量为120-160g/L。
3. 实验分析：根据检测结果，鸡的血液生理指标在正常范围内，说明实验动物健康。
六、实验讨论1. 鸡的采血方法：本实验采用静脉采血法，操作简单，采血量适中，适用于动物医学实验。
2. 采血过程中的注意事项：采血过程中，要确保采血针的消毒，避免感染；操作要轻柔，避免造成鸡的痛苦；采血后，要及时处理血液样本，防止凝固。
3. 实验结果的准确性：实验结果受多种因素影响，如鸡的年龄、性别、健康状况等。
动物的采血方法
动物的采血方法动物的采血方法一、小鼠、大鼠的采血1.眼眶后静脉丛采血左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外凸。
右手持玻璃采血管，将其尖端插入内眼角与眼球之间，轻轻向眼底方向刺入，小鼠刺入2~3mm，大鼠刺入4~5mm，当感觉有阻力时即停止刺入，放置取血管以切开静脉丛，血流即流入取血管。
采血结束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。
本方法在短期内可重复采血。
小鼠一次可采血0.2~0.3ml，大鼠一次可采血0.5~1.01ml。
为防止血液在取血管中凝固，可将取血管进入1%肝素溶液，干燥后使用。
2.摘眼球采血此方法用于鼠类大量采血。
采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球凸出，右手用弯头镊子摘除眼球，眼眶内很快流出血液。
二、兔的采血1.耳中央动脉、耳沿静脉采血左手固定兔，并用酒精棉球消毒采血部位，右手持注射器，在兔耳血管的末端，沿着与血管平行的向心方向刺入血管，即可见血液流入针管，注意固定好针头。
采血结束后，拔出注射器，用棉球压迫止血2~3min。
2.颈静脉采血将兔麻醉后，仰卧在固定台上固定，剪去一侧颈部被毛，用碘酒、酒精棉球消毒皮肤，手术刀轻轻划破皮肤，钝性分离静脉，颈静脉暴露后，用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入，采血结束后，拔出注射器，缝合切口。
三、狗的采血1.前、后肢皮下静脉血此方法一次可取较多的血，操作可参照相应的静脉注射。
如需采少量血。
则可用5.5号针头直接刺入静脉。
如需采一定量的血，最好用静脉滴注针头与注射器连接，以防狗挣扎时针头刺破血管。
2.股动脉采血将狗仰卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒。
左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管，右手区静脉滴注针，针头由动脉搏动处慢慢刺入，当血液流入针头后的朔料管时，固定好针头，连接好注射器可抽到大量血液。
3.心脏采血将狗仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。
实验动物采血完全指南
实验动物采血完全指南采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。
凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。
当需血量较多时可作静脉采血。
静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。
例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。
采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.１．取少量血ａ．尾静脉大鼠、小鼠ｂ．耳静脉兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊ｃ．眼底静脉丛兔、大鼠、小鼠d．舌下静脉兔e．腹壁静脉青蛙、蟾蜍f．冠、脚蹼皮下静脉鸡、鸭、鹅２．取中量血ａ．后肢外侧皮下小隐静脉狗、猴、猫ｂ．前肢内侧皮下头静脉狗、猴、猫ｃ．耳中央动脉兔ｄ．颈静脉狗、猫、兔ｅ．心脏豚鼠、大鼠、小鼠ｆ．断头大鼠、小鼠ｇ．翼下静脉鸡、鸭、鸽、鹅ｈ．颈动脉鸡、鸭、鸽、鹅３．取大量血ａ．股动脉、颈动脉狗、猴、猫、兔ｂ．心脏狗、猴、猫、兔ｃ．颈静脉马、牛、山羊、绵羊ｄ．摘眼球大鼠、小鼠采动物品种最大安全采血量(ml) 最小致死采血量(ml)小鼠0.2 0.3大鼠 1 2豚鼠 5 10兔10 40狼狗100 500猎狗50 200猴15 601.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾。
将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。
也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。
实验动物的采血实验报告
一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。
2. 熟悉实验动物采血设备的操作。
3. 了解采血过程中的注意事项。
二、实验原理实验动物采血是医学研究、生物科学等领域的重要实验技术。
通过采集实验动物血液，可以检测其生理指标、病原体、药物浓度等，为疾病诊断、药物研发、生物学研究等提供重要数据。
本实验采用心脏采血法，通过切开动物心脏，收集血液样本。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠1只。
2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、无菌手套、生理盐水。
3. 实验用品：试管、试管架、离心机、记号笔。
四、实验步骤1. 实验动物准备（1）将小白鼠放入代谢笼中，适应实验环境。
（2）在小白鼠头部涂抹少量酒精，使其麻醉。
（3）用记号笔在小白鼠胸部标记心脏位置。
2. 采血操作（1）戴无菌手套，将小白鼠放在实验台上。
（2）用酒精棉球消毒小白鼠胸部皮肤。
（3）用采血针在小白鼠胸部心脏位置切开皮肤，找到心脏。
（4）用注射器抽取血液，注入试管中。
（5）在采血过程中，注意观察小白鼠反应，如有异常，立即停止采血。
3. 血液处理（1）将采集到的血液样本进行离心处理，分离血清和红细胞。
（2）将血清和红细胞分别装入试管，标记清楚。
4. 实验数据记录（1）记录小白鼠的体重、性别、年龄等基本信息。
（2）记录采血时间、采血量、血液颜色等。
五、实验结果与分析1. 实验结果本次实验成功采集到小白鼠血液样本，血液颜色正常，无溶血现象。
2. 实验分析（1）采血过程中，操作者需熟悉实验动物解剖结构，避免损伤心脏。
（2）采血过程中，注意无菌操作，防止感染。
（3）采血量不宜过多，以免影响实验动物健康。
六、实验结论本次实验成功掌握了实验动物采血的方法和技巧，为后续实验提供了可靠的血液样本。
七、实验讨论1. 实验动物采血过程中，如何避免感染？答：实验过程中需严格遵守无菌操作原则，如戴无菌手套、消毒皮肤等。
2. 采血过程中，如何避免损伤心脏？答：熟悉实验动物解剖结构，准确找到心脏位置，操作轻柔。
动物鸡心脏采血实验报告
动物鸡心脏采血实验报告一、实验目的：1.学习并掌握动物鸡心脏采血的方法；2.了解动物鸡心脏采血对心脏功能的影响。
二、实验原理：三、实验材料与方法：1.实验材料：-2只健康成年鸡；-采血器具（注射器、注射针）；-感染预防用品（手套、口罩等）；-采血所需器材（离心管、试管、离心机等）；-生理生化分析仪器。
2.实验方法：(1)实施基本的实验室安全措施，戴上手套和口罩，确保实验的安全进行。
(2)获取两只健康成年鸡作为实验用动物。
(3)将鸡固定在实验台上，用清洁的水和棉球将心脏周围的绒毛清洁干净。
(4)使用注射器和注射针，在鸡心脏区域找到适合采血的位置。
(5)缓慢地将注射针插入心脏，并将注射器连接到针头上。
(6)轻轻地拉开注射器的活塞，使心脏血液填满注射器。
(7)将采血的心脏血液转移到离心管或试管中，避免与空气接触。
(8)使用离心机离心，将血液中的红细胞和血浆分离。
(9)将血浆取出并放入生理生化分析仪器中进行分析。
四、实验结果与讨论：在实验中，我们成功地采集了鸡心脏的血样，并将血液分离为红细胞和血浆。
将血浆送入生理生化分析仪器后，可以进一步分析血样中各种生化参数的含量。
鸡心脏采血对心脏功能的影响是不可忽视的。
实验结果显示，心脏采血后，鸡的心率明显增加，呼吸速率也有所上升。
这是因为采血过程中，心脏受到了一定的刺激，导致心脏自律性的增强，进而增加心脏跳动和氧气的摄取量。
此外，实验还观察到了血液样本的颜色变化。
正常的鸡心脏血液呈鲜红色，而采血后的血液呈棕红色。
这是因为在采血过程中，血液与空气接触导致氧气与血红蛋白结合形成氧合血红蛋白发生改变。
在实验过程中，我们遵循了实验操作的规范和安全措施。
但是，实验中有一定的局限性。
首先，我们只选取了两只鸡作为实验动物样本，样本数量较少，可能存在一定的偏差。
其次，我们只对心脏采血后的生理变化进行了观察，对于后续的心肌功能调查和病理学研究还需要进一步的实验。
五、结论：本次实验成功地实现了动物鸡心脏采血，并得到了一定的实验结果。
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实验动物采血指南采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。
凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。
当需血量较多时可作静脉采血。
静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。
例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。
采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并露出鼠尾。
将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。
也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。
先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。
用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。
如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。
当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。
右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm)，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。
刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。
当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。
若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。
若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。
左右两眼轮换更好。
体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。
4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。
右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。
小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。
5.心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。
活体采血方法与豚鼠相同。
若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。
小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。
6.颈动静脉采血先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。
在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。
7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。
用注射器吸出血液，防止溶血。
或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。
8.股动(静)脉采血先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。
或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。
体重15-20g 小鼠采血约0.2-0.8ml，大鼠约0.4-0.6ml。
(二)豚鼠采血法1.耳缘剪口采血将耳消毒后，用锐器(刀或刀片)割破耳缘，在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液，阻止血凝，则血可自切口自动流出，进入盛器。
操作时，使耳充血效果较好。
此法能采血0.5ml左右。
2.心脏采血取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最显的部位作穿刺。
针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血，其操作手法详见兔心脏采血。
因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血即可。
成年豚鼠每周采血应不超过10ml为宜。
3.肌动脉采血将动脉仰位固定在手术台上，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部用碘酒消毒。
切开长约2-3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离。
然后，用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液即导管口流出。
一次可采血10-20ml。
4.背中足静脉取血助手固定动物，将其右或左右膝关节伸直提到术者面前。
术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿的注射针刺入静脉。
拔针后立即出血，呈半球状隆起。
采血后，用纱布或脱脂棉压迫止血。
反复采血时，两后肢交替使用。
(三)兔采血法1.耳静脉采血本法为最常用的取血法之一，常作多次反复取血用，因此，保护耳缘静脉，防止发生栓塞特别重要。
将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，或由助手以手扶住。
选耳静脉清晰的耳朵，将耳静脉部位的毛拔去，用75%酒精局部消毒，待干。
用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张，用连有5(1/2)号针头的注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液漏出取血或将针头逆血流方向刺入耳缘静脉取血，取血完毕用棉球压迫止血，此种采血法一次最多可采血5-10ml。
2.耳中央动脉采血将兔置于兔固定筒内，在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，用左手固定兔耳，右手取注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，即可见动脉血进入针筒，取血完毕后注意止血。
此法一次抽血可达15ml。
但抽血时应注意，由于兔耳中央动脉容易发生痉挛性收缩，因此抽血前，必须先让兔耳充分充血，当动脉扩张，未发生痉挛性收缩之前立即进行抽血，如果等待时间过长，动脉经常会发生较长时间的痉挛性收缩。
取血用的针头一般用6号针头，不要太细。
针刺部位从中央动脉末端开始。
不要在近耳根部取血，因耳根部软组织厚，血管位置略深，易刺透血管造成皮下出血。
3.心脏取血将家兔仰卧固定，在第三肋间胸骨左缘3毫米处注射针垂直刺入心脏，血液随即进入针管。
注意事项有：⑴动作宜迅速，以缩短在心脏内的留针时间和防止血液凝固；⑵如针头已进入心脏但抽不出血时，应将针头稍微后退一点。
⑶在胸腔内针头不应左右摆动以防止伤及心，肺、一次可取血20-25ml。
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。
拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。
用左手两指固定好静脉，右手取带有5(1/2)号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
一次可取2～5ml。
取完后必须用棉球压迫取血部位止血，时间要略长些，因此处不易止血。
如止血不妥，可造成皮下血肿，影响连续多次取血。
5.股静脉、颈静脉取血先作股静脉和颈静脉暴露分离手术⑴股静脉取血注射器平行于血管，从股静脉下端向心方向刺入，徐徐抽动针栓即可取血。
抽血完毕后要注意止血。
股静脉较易止血，用于纱布轻压取血部位即可。
若连续多次取血，取血部位宜尽量选择靠离心端。
⑵外颈静脉取血注射器由近心端(距颈静脉分支2-3厘米处)向头侧端顺血管平等方向刺入，使注射针一直引深至颈静脉分支叉处，即可取血。
此处血管较粗，很容易取血，取血量也较多，一次可取10ml以上。
取血完毕，拔出针头，用干纱布轻轻压迫取血部位也易止血。
兔急性实验的静脉取血，用此法较方便。
(四)狗、猫采血法1.后肢外侧小隐静脉和前肢内侧下头静脉采血此法最常用，且方便。
后肢外侧小隐静脉在后肢胫部下1/3的外侧浅表的皮下，由前侧方向后行走。
抽血前，将狗固定在狗架上或使狗侧卧，由助手将狗固定好。
将抽血部位的毛剪去，碘酒一酒精消毒皮肤。
采血者左手拇指和食指握紧剪毛区上部，使下肢静脉充盈，右手用连有6号或7号针头的消毒器迅速穿刺入静脉，左手放松将针固定，以适当速度抽血(以无气泡为宜)。
或将胶皮带绑在狗股部，或由助手握紧股部，即可，若仅需少量血液，可以不用注射器抽取，只需用针头直接刺入静脉，待血从针孔自然滴出，放入盛器或作涂片。
采集前肢内侧皮下的头静脉血时，操作方法基本与上述相同。
一只狗一般采10-20ml血并不困难。
2.股动脉采血本法为采取狗动脉血最常用的方法。
操作也较简便。
稍加以训练的狗，在清醒状态下将狗卧位固定于狗解剖台上。
伸展后肢向外伸直，暴露腹肥肉沟三角动脉搏动的部位，剪去毛。
用碘酒消毒。
左手中指、食指探摸股动脉跳动部位，并固定好血管，右手取连有5(1/2)号针头的注射器，针头由动脉跳动处直接刺入血管，若刺入动脉一般可见鲜红血液流入注射器，有时还需微微转动一下针头或上下移动一下针头，方见鲜血流入。
有时，往往刺入静脉，必须重抽之。
待抽血完毕，迅速拔出针头，用干药棉压迫止血2～3分钟。
3.心脏采血本法最好在麻醉下进行，驯服的狗不麻醉也行。
将固定在手术台上，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，将左侧第3-5肋间的被毛剪去，用碘酒-酒精消毒皮肤。
采血者用左手触摸左侧3-5肋间处，选择心跳最显处穿刺。
一般选择胸骨左缘外1cm第4肋间处。
取连有6(1/2)号针头的注射器，由上述部位进针，并向动物背侧方向垂直刺入心脏。
采血者可随针接触心跳的感觉，随时调整刺入方向和浓度，摆动的角度尽量小，避免损伤心肌过重，或造成胸腔大出血。
当针头正确刺入心脏时，血即可进入抽射器，可抽取多量血液。
4.耳缘静脉采血本法宜取少量血液作血常规或微量酶活力检查等。
有训练的狗不必绑嘴，剪去耳尖部短毛，即可见耳缘静脉，手法基本与兔相同。
5.颈静脉狗不需麻醉，经训练的狗不需固定，未经训练的狗应予固定。
取侧卧位，剪去颈部被毛约10×3cm2范围，用碘酒、酒精消毒皮肤。
将狗颈部拉直，头尽量后抑。
用左手拇指压住颈静脉入胸部位的皮肤。
使颈静脉怒张，右手取连有6(1/2)号针头的注射器。
针头沿血管平行方向向心端刺往前血管。
由于此静脉在皮下易滑动，针刺时除用左手固定好血管外，刺入要准确。
取血后注意压迫止血。
采用此法一次可取较多量的血。
猫的采血法基本与狗相同。
常采用前肢皮下头静脉、后肢的股静脉、耳缘静脉取血。
需大量血液时可从颈静脉取血。
方法见前述。
(五)猴采血法与人类的采血法相似，常用者有以下几种：1.毛细血管采血需血量少时，可在猴拇指或足跟等处采血。
采血方法与人的手指或耳垂处的采血法相同。