紫杉醇的性质及色谱分析方法

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紫杉醇含量测定

紫杉醇含量测定

微球载药率和包埋率的测定紫杉醇的定量分析采用高效液相色谱法。

色谱柱采用Inersil®ODS-3 C18 柱,流动相为乙腈/水(60/40),流速为1mL/min,进样量为100μL,紫外检测波长为227 nm。

采用紫杉醇标准品绘制标准曲线:精密称取紫杉醇标准品10mg,溶于100mL的乙腈/水混合溶液(60/40)中,配制成100μg/mL紫杉醇储备液,精密量取5、4、3、2、1、0.5 和 0.25 mL 储备液于5mL容量瓶中定容,分别得到浓度为 100、80、60、40、20、10 和5μg/mL 的标准液,采用上述液相色谱条件进行测定得标准曲线。

微球中的紫杉醇含量的测定:精确称取10mg载药微球溶于5mL乙腈中,每个样品做3个平行样,长时间超声后,置室温下过夜降解,漩涡3min,8000rpm下离心5min后取上清液600μL,加400μL超纯水完全混匀,使乙腈与水的体积比为60/40,采用上述色谱条件进行HPLC测定,将测定的峰面积代入标准曲线即可求得样品中紫杉醇浓度,进而计算得到微球的载药率(Loading Efficency,LE)和包埋率(Encapsalution Efficency,EE)。

载药微球体外释放行为测定精密称取5mg载药微球置于8mL玻璃小瓶中,加入5mL磷酸盐缓冲溶液(PBS,pH=7.4,其中含0.1%吐温80和0.1%吐温20)。

释放实验每个样品做三个平行样。

将其置于37℃恒温空气浴振荡器中振摇释放药物,振摇频率为40rpm。

特定时间段,将样品取出在8000 rpm 下离心5min。

将微球用新的磷酸盐缓冲液重新悬浮进行进一步的药物释放,上清液中加入2mL二氯甲烷溶液对PTX进行过夜萃取,当二氯甲烷溶液挥发干燥后加入1mL乙腈/水溶液(60/40)溶解紫杉醇,用上述HPLC方法测定释放的药物量。

2.2.1检测波长的选择紫杉醇适量,加甲醇溶解,制成每1ml中约含10陀的溶液。

沃特世最新PFP色谱柱适用于USP方法紫杉醇

沃特世最新PFP色谱柱适用于USP方法紫杉醇

沃特世最新PFP色谱柱适用于USP方法紫杉醇紫杉醇(Paclitaxel)最初是从红豆杉科红豆杉属(Taxus)植物的树皮中提取得到的二萜类化合物,具有独特抗癌活性,曾被美国国立癌症研究所认为是近15~20年来肿瘤化疗的最重要的进展。

紫杉醇注射液功效主治卵巢癌和乳腺癌及NSCLC的一线和二线治疗。

头颈癌、食管癌,精原细胞瘤,复发非何金氏淋巴瘤等。

USP对紫杉醇[1]以及紫杉醇注射液[2]的含量测定系统方法(系统方法参见色谱<621>通则*):流动相:水-乙腈 11:9(即 55:45),如需要时可适当调整比例。

洗脱:等度,1.5mL/min[1]色谱柱:5um, 4.6[1] 或 4.0[2] mmID x 250mmL,L43(即:PFP,全氟苯基)检测:UV227nm要求:拖尾因子0.7-1.3范围内[1];紫杉醇峰的保留时间在6.0-10.0min范围内[2] *USP Chromatography <621>允许调整范围如下而仍具有法规依从性:- 色谱柱粒径可减小(但减小程度最多为50%)- 柱长度可调整±70%- 流速可调整±50%使用沃特世最新产品XSelect HSS PFP色谱柱(3.5um, 4.6x150mm, PN186005862),流速1mL/min,可对混标得到如下分离效果,满足对紫杉醇定量分析的要求。

沃特世公司也提供更多规格XSelect HSS PFP色谱柱以满足不同应用与需要。

适当调整流动相,如降低乙腈浓度至42%v/v,即可获得更完全可靠的紫杉醇分离度如下:关于沃特世XSelect HSS PFP柱产品:- 是目前市场上稳定性最好的、最具重现性的PFP(全氟苯基)柱- 基于沃特世HSS(高强度硅胶)颗粒,有完全对等的ACQUITY UPLC亚二微米柱,可供未来无忧升级至UPLC技术平台- 独特的PFP(全氟苯基)键合相对碱性化合物和平面状芳香族化合物具有独特选择性[1] USP34, 3798, Assay of Paclitaxel Monograph.[2] USP34, 3799, Assay of Paclitaxel InjectionMonograph.。

真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究

真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究

真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究真菌发酵法生物合成抗癌药物紫杉醇的研究一、引言癌症是当今世界严重威胁人类健康的重大疾病之一,寻找有效的抗癌药物一直是医学和生物学领域的研究热点。

紫杉醇作为一种重要的抗癌药物,具有独特的作用机制和显著的临床疗效。

传统的紫杉醇提取方法主要依赖于从红豆杉属植物中提取,然而红豆杉生长缓慢,资源有限,这限制了紫杉醇的大量生产。

因此,探索新的紫杉醇生产方法具有重要的现实意义。

真菌发酵法生物合成紫杉醇作为一种有潜力的替代方法,受到了广泛的关注。

二、紫杉醇的结构与作用机制1. 紫杉醇的化学结构紫杉醇是一种复杂的二萜类化合物,其分子结构包含多个手性中心和独特的官能团。

它的基本结构由紫杉烷环和侧链组成,紫杉烷环是一个刚性的四环结构,侧链则连接在紫杉烷环的特定位置上。

这种复杂的结构赋予了紫杉醇独特的物理和化学性质。

2. 紫杉醇的抗癌作用机制紫杉醇主要通过促进微管蛋白聚合,抑制微管解聚,从而稳定微管结构来发挥抗癌作用。

在细胞分裂过程中,微管是构成纺锤体的重要成分,紫杉醇稳定微管的作用会导致纺锤体无法正常形成,进而阻断细胞的有丝分裂过程,使癌细胞停止增殖并最终死亡。

此外,紫杉醇还可能通过其他机制影响癌细胞的生物学行为,如调节细胞信号传导通路、诱导细胞凋亡等。

三、真菌发酵法生物合成紫杉醇的研究进展1. 产紫杉醇真菌的筛选与鉴定研究人员从自然界中广泛筛选能够产生紫杉醇的真菌。

通过对不同环境样本(如土壤、植物组织等)进行分离培养,然后利用高效液相色谱(HPLC)等分析方法检测培养物中是否含有紫杉醇。

经过大量的筛选工作,已经发现了一些能够产生紫杉醇的真菌菌株,如紫杉霉属(Taxomyces)、拟盘多毛孢属(Pestalotiopsis)等。

对这些产紫杉醇真菌进行准确的分类鉴定,有助于深入了解它们的生物学特性和代谢途径。

2. 真菌发酵条件的优化为了提高真菌发酵生产紫杉醇的产量,需要对发酵条件进行优化。

红豆杉中紫杉醇的提取及检测方法简介

红豆杉中紫杉醇的提取及检测方法简介

红豆杉中紫杉醇的提取及检测方法简介曾欢2009090165摘要:紫杉醇(paclitaxel,商品名Taxol)是当今一种重要的天然抗癌新药。

最早是在红豆杉植物中分离出来的。

属双萜类化合物,为白色结晶粉末、微溶于水,易溶于三氯甲烷、丙酮等有机溶剂。

其分子式:C47H51NO14,相对分子质量为854。

目前紫杉醇生产方法主要有:化学合成法、人工栽培与半合成法、植物细胞悬浮培养法、微生物发酵法。

本文简要论述几种提取紫杉醇的常见方法及检测方法。

关键词:紫杉醇提取检测紫杉醇是一种具有独特作用机理的抗癌药,能有效地治疗晚期乳腺癌、卵巢癌和其他癌症,被认为是癌症治疗的重大进展之一[2]。

1962 年,植物学家A. Ba rclay 将采自美国西海岸的短叶红豆杉( T a x us b rev i f ol i a) 的树皮经NCI 交给Resea rch Triangle 研究所的化学家M. E. Wall 和M. C. Wani 进行提取。

同年对该药品的抗癌活性筛选显示,它有很强的KB 细胞毒和抗小鼠肉瘤、白血病的活性。

但是,直到1969 年,这种活性成分─紫杉醇才被分离出来。

因其含量甚低(0. 02 %) ,遂经数年积累,直到1971 年,才由其氢谱和甲醇解衍生物的单晶X 射线衍射分析确定了结构[3 ] 。

尽管紫杉醇抗癌活性显著,但由于当时供样困难、筛选体系受限制以及原料中含量不稳定等原因,以致NCI 简单的认为紫杉醇仅仅是与秋水仙碱、长春花碱等一样的另一种微管的解聚剂而将其研究“冷置“起来。

直到1979 年P. B. Schiff 等发现其独特的抗癌机制后,紫杉醇才受到学者们的广泛重视。

目前有关紫杉醇及其类似物的研究资料颇为丰富,而且更有增多的趋势。

紫杉醇属于有丝分裂抑制剂,它的独特机制在于可以诱导和促进微管蛋白聚合,促进微管装配及阻止微管的生理解聚,由此抑制癌细胞纺锤体的形成, 阻止有丝分裂的完成, 使其停留在G2 期和M 期直至死亡, 从而起到抗癌的作用。

高效液相色谱法测定紫杉醇的含量

高效液相色谱法测定紫杉醇的含量
2 23 4 .4
平均 回收 率 ( %)
1 .4 011
RS D
05 .2

1 14 9 .
1 14 9 . 2 0. 4 8
1 o9 0 .8
1 06 0 .4

2 0. 4 8 2 O_ 4 8 2 46 8 .
2 542 4 . 2 36 4 .9 2 63 8 .9 2 9O 8 .2 2 75 8 .3
溶解 并稀 释至 刻度 ,配 置成浓 度 为 20 gml 0 u/ 的储 配
液 。用溶剂 将储 备液 配 置成 1 、 5 5 、 5 O u / 0 2 、 0 7 、l O gml 的系 列浓度 按 “ .”项 下 的色 谱条 件进 行操作 ,以浓 21 度 作 为横 坐标 ( ,峰面积 为纵 坐标( ) X) Y ,绘 制标 准
1 仪器 与试 剂 戴安 p 6 80液相 色谱 仪 ;试 药 :紫杉 醇对 照 品 ( 中
检所 1 1 3 —0 2 2 ,紫 杉醇 注射 液 ( 15 4 2 0 0 ) 市售 ) ;乙腈 为 HL P C级 , 甲醇 、冰醋酸 为分析 纯 ( 南京化 学 试剂有
限公司 ) ,水 为重蒸 水 。
柱 比较 灵敏 、准确 、回收 率 高 ,适 用于 紫杉 醇 的质 量控 制 。
【 关铰词 】 高效液相 色谱法;紫杉醇;含量;五 氟代苯基 固定相
紫杉 醇 系 由红豆杉 属植 物树 皮和 树 叶提取 并 开发 的一种 天然 抗癌 新药 【,特 别对 卵巢癌 、乳腺 癌及 黑 1 】 色 素瘤有 很好 的疗 效 [,为 了控制 紫杉 醇注 射 液 的质 2 】 量 ,笔者 建议 采用 此方 法测 定紫 杉醇 的含 量 ,该方 法 准确 ,灵 敏 ,重现 性好 ,完 全满 足质 量控 制要 求 。 用溶 剂 ( 醋酸 02 加 甲醇 至 1 0 m1 适 量 , 摇 , 冰 . ml 00 ) 振

121013-紫杉醇的检测方法

121013-紫杉醇的检测方法

药典方法:本品,精密称定,加乙腈溶解并定量稀释制成每lml中约含0. 5mg的溶液,作为供试品溶液;精密量取适量,分别用乙腈定量稀释制成每lml中约含2.5иg、 0.5иg;^的溶液,作为对照溶液(1)与对照溶液(2);另取紫杉醇、三杉尖宁碱(杂质I )与7-表-10-去乙酰基紫杉醇(杂质 II)对照品适量,加乙腈溶解并稀释制成每lml中约含紫杉醇0. 5mg 、杂质1与杂质U均为2. 5Mg的溶液,作为系统适用性试验溶液。

照高效液相色谱法(附录V D)试验,用十八烷基硅垸键合硅胶为填充剂,以乙腈-水为流动相进行梯度洗脱,初始流动相为乙腈-水(40 = 60),待紫杉醇主峰洗脱完毕后(约35分钟),立即按下表进行线性梯度洗脱,流速为每分钟1. 5ml ,柱温为30°C,检测波长为227rm!。

取系统适用性试验溶液与对照溶液(2)各10(J注人液相色谱仪,紫杉醇峰与杂质H峰之间的分离度应大干1. 2,对照溶液(2)信噪比应不小于10。

精密量取供试品溶液与对照溶液(])各,分别注人液相色谱仪,记录色谱图。

供试品溶液色谱图中如有杂质峰,杂质I (杂质I峰面积乘以校正因子1.26)与其他单个杂质峰面积均不得大于对照溶液(1)主峰面积(0. 5%),各杂质峰面的和不得大于对照溶液(1)主峰面积的3倍(1.5%)。

期刊:分析测试学报名称:反相HPLC法分析红豆杉树皮和树叶中紫杉醇及其类似物含量的研究方法:期刊:现代中药研究与实践2010年第24卷第4期名称:高效液相色谱法测定南方红豆杉中紫杉醇的含量方法:期刊:林业科学研究名称:高效液相色谱-质谱联用技术测定毛榛中的紫杉醇含量方法:期刊:色谱名称:苯基-硅胶色谱介质的合成及其在紫杉醇提纯中的应用方法:期刊:Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae名称:HPLC法测定加拿大紫杉中紫杉醇的含量方法:期刊:食品与生物科技学报名称:D4020大孔树脂提纯发酵液中紫杉醇的研究方法:期刊:Journal of Chinese Medicinal Materials名称:HPLC测定比较曼地亚红豆杉和南方红豆杉不同部位的紫杉醇含量方法:期刊:中国职业药师‘质量控制名称:HPLC法测定南方红豆杉种子中紫杉醇的含量方法:期刊:天津医科大学报名称:HPLC法测定紫杉醇血药浓度条件的筛选方法:期刊:河南科学名称:RP-HPLC 法测定新乡种植红豆杉树皮中的紫杉醇方法:期刊:生物技术通报名称:SPE-HPLC法快速检测发酵液中紫杉醇的含量方法:期刊:中南药学名称:高效液相色谱法测定不同生长年限南方红豆杉中紫杉醇的含量方法:期刊:时珍国医国药名称:云南红豆杉枝叶中紫杉醇和三尖杉宁碱含量的测定方法:期刊:生物工程学报名称:正相和反相柱层析组合分离纯化紫杉醇方法:期刊:哈尔滨商业学报名称:正相色谱法分离纯化紫杉醇工艺过程的研究方法:期刊:解放军药学学报名称:中性氧化铝固相萃取-HPLC法测定紫杉醇含量方法:期刊:中国药科大学学报名称:紫杉醇高产菌发酵产物的分离、纯化和鉴定方法:。

紫杉醇

紫杉醇

紫杉醇1.紫杉醇的发现和历史2.紫杉醇的化学结构3.紫杉醇的提取分离方法4.紫杉醇的合成研究5.常见的几种紫杉醇药物6.个人感想1.紫杉醇的发现和历史紫杉醇是红豆杉科红豆杉属植物的次生代谢产物,这类植物主要分布于北半球的温带至亚热带地区,全世界共有11种。

最初,紫杉醇是从短叶紫杉(Taxus brevi folia)的树皮中分离获得的,在它的抗癌作用被发现之前,林木工人通常把它砍了当柴烧或者用来做篱笆。

早在1856年德国科学家Lucas·H开始对Taxus baccata Linn(浆果红豆杉)进行化学研究,并从其叶片中提取出粉状碱性成分Taxine,但在随后的100多年里没有多大的研究进展。

直到20世纪60年代,随着光谱技术的飞速发展,科学家才开始对红豆杉属的植物有了比较深入的研究。

20世纪初,人们发现美国西部山区的一个有一片红豆杉林的小城镇中的居民很长寿,他们的寿命最短的在95岁以上,绝大多数的人寿命超过100岁,而且百岁老人随处可见。

科学家到那里考察发现当地居民除了两个与其他地方居民不同的生活习惯外,其余的都差不多。

一是当地居民喜欢采摘山林中的红豆杉树叶泡茶喝;二是经常去红豆杉林中散步或运动。

这种现象引起了科学家对红豆杉的研究兴趣,他们从红豆杉树皮中提取出一种对许多类型的肿瘤细胞有细胞毒作用的提取物——紫杉醇。

后来研究表明其化学结构为紫杉烷类中的一种四环二萜类化合物【1】。

1962年8月,在美国农业部任职的植物学家Barclay响应由美国国立癌症研究所(National Cancer Institute ,NCI)发起的植物提取物抗癌活性成分筛选研究,收集了7Kg太平洋紫杉的树皮寄回了NCI。

这些样品后来经NCI北卡罗莱纳州“研究三角学院”(Research Triangle Institute ,RTI)分馏实验室的美国化学家Wani博士和Wall博士。

他们分离提取得到紫杉醇的粗提物,在筛选实验中他们发现紫杉醇粗提物对离体培养的鼠肿瘤细胞有很高的抑制活性,有强烈的KB细胞毒作用及抗小鼠肉瘤和抗白血病活性。

紫杉醇HPLC分析方法按USP要求

紫杉醇HPLC分析方法按USP要求

紫杉醇HPLC分析检验方法测试方法1:(适用于天然提取的紫杉醇)1、试剂:1.1乙腈1.2甲醇1.3磷酸1.4乙酸1.5纯化水2、溶液:2.1稀释剂:甲醇-乙酸混合溶液(1000:1 V/V)。

2.2系统适用性溶液:精密称取紫杉醇对照品和10-去乙酰-7-差向紫杉醇对照品,用稀释剂溶解,浓度约为(0.1+0.1)mg/ml。

2.3标准溶液:标准溶液A:精密称取紫杉醇对照品,用稀释剂溶解,可采用逐步稀释的方式,浓度约为0.1mg/ml。

标准溶液B:精密称取紫杉醇对照品,用稀释剂溶解,可采用逐步稀释的方式,浓度约为0.01mg/ml。

2.4供试液:供试液①:取约5mg紫杉醇样品,准确称重,置于5ml的容量瓶中,用稀释剂溶解、定容,混合。

供试液②:取约5mg紫杉醇样品,准确称重,置于50ml的容量瓶中,用稀释剂溶解、定容,混合。

3、流动相:乙腈-甲醇-0.1%磷酸的水(45:5:50 V/V),需混合、脱气及过滤。

4、色谱条件:4.1检测波长:227nm4.2色谱柱: 4.6- mm×25.0-cm,5-μm ,L43填料(PFP,五氟苯基)。

4.3流速:1.2ml/min4.4柱温: 20℃~25℃4.5 运行时间:约30min5、要求:5.1系统适用性试验:5.1.1精密度:取系统适用性溶液进样10μl至液相色谱系统,记录色谱图,连续5次进样紫杉醇峰面积测量值的相对标准偏差(RSD%)≤2%;5.1.2分离度:紫杉醇与10-去乙酰-7-差向紫杉醇的分离度(Rs)≥1.5;5.1.3拖尾因子:紫杉醇峰的拖尾因子≤1.5。

5.2标准溶液测试:5.2.1重复进样标准溶液A的紫杉醇峰面积测量值的相对标准偏差≤2%。

5.2.2重复进样标准溶液B的紫杉醇峰面积测量值的相对标准偏差≤15%。

5.2.3检测极限:相关物质的检测定量限为0.005%。

5.2.4相关物质的相对保留时间(RRT)和相对响应因子(f):6、相关物质分析:将标准溶液B和供试液①分别进样10μl至液相色谱系统,记录色谱图,并按色谱图上各相关物质峰面积以外标百分比方法计算相关物质含量(以无水、无溶剂干基计)。

紫杉醇详细资料大全

紫杉醇详细资料大全

紫杉醇详细资料大全紫杉醇别名红豆杉醇,泰素,紫素,特素,是目前已发现的最优秀的天然抗癌药物,在临床上已经广泛用于乳腺癌、卵巢癌和部分头颈癌和肺癌的治疗。

紫杉醇作为一个具有抗癌活性的二萜生物碱类化合物,其新颖复杂的化学结构、广泛而显著的生物活性、全新独特的作用机制、奇缺的自然资源使其受到了植物学家、化学家、药理学家、分子生物学家的极大青睐,使其成为20 世纪下半叶举世瞩目的抗癌明星和研究重点。

基本介绍•中文名:紫杉醇•外文名:taxol•别名:泰素、紫素、特素•类别:处方药•主要适用症:卵巢癌、乳腺癌•生理功能:抗癌概述,理化性质,鉴别,合成 ... ,概述1963年美国化学家瓦尼(M.C. Wani)和沃尔(Monre E. Wall)首次从一种生长在美国西部大森林中称谓太平洋杉(Pacific Yew)树皮和木材中分离到了紫杉醇的粗提物。

在筛选实验中,Wani和Wall 发现紫杉醇粗提物对离体培养的鼠肿瘤细胞有很高活性,并开始分离这种活性成份。

由于该活性成份在植物中含量极低,直到1971年,他们才同杜克(Duke)大学的化学教授姆克法尔(Andre T. McPhail)合作,通过X-射线分析确定了该活性成份的化学结构,一种三环二萜化合物,并把它命名为紫杉醇(taxol)。

紫杉醇是一种从裸子植物红豆杉的树皮分离提纯的天然次生代谢产物,经临床验证,具有良好的抗肿瘤作用,特别是对癌症发病率较高的卵巢癌、 ... 癌和乳腺癌等有特效。

紫杉醇是近年国际市场上最热门的抗癌药物,被认为是人类未来20年间最有效的抗癌药物之一。

近年来地球人口和癌发率呈爆发性增长,对紫杉醇的需求量亦明显增大。

目前临床和科研所需的紫杉醇主要是从红豆杉中直接提取,由于紫杉醇在植物体中的含量相当低(目前公认含量最高的短叶红豆杉树皮中也仅有0.069%),大约13.6kg的树皮才能提出1g的紫杉醇,治疗一个卵巢癌患者需要3-12棵百年以上的红豆杉树,也因此造成了对红豆杉的大量砍伐,致使这种珍贵树种已濒临灭绝。

紫杉醇

紫杉醇

成份的化学结构——一种四环二萜化合物,
并把它命名为紫杉醇(taxol)
紫杉 醇的提取
a、萃取,以红豆杉为原料获得含有 紫杉醇的提取物; b、去除胶质,除去提取物中的胶质 杂质; c、分离纯化
萃 取 法
实验原理:
在乙酸乙酯、甲醇、已烷、乙酸乙酯-甲醇、
乙酸乙酯-丙酮、等溶剂中,以乙酸乙酯-丙酮
(1:1)混和溶剂提取的效果最好,所得浸膏
紫杉醇发现历史
1963年美国化学家瓦尼和沃尔首次从一种
生长在美国西部大森林中称谓太平洋杉树皮和
木材中分离到了紫杉醇的粗提物。在筛选实验
中,Wani和 Wall发现紫杉醇粗提物对离体培
养的鼠肿瘤细胞有很高活性,并开始分离这种
活性成份。
由于该活性成份在植物中含量极低,直到
1971年,才通过x-射线分析确定了该活性
杨雪峰等采用PSp-6大孔树脂,以工业反相制备
色谱从云南红豆杉树皮及东北红豆杉针叶粗提物中 分离紫杉醇及半合成前体取得成功。、
图一
图二
离子交换树脂法装置
装置流程图




早期的色谱纯化紫杉醇工艺是采用多根硅 胶层析柱串联的一种操作。近年来,不断有 新的色谱技术被引入到紫杉醇的分离提取过 程中来。除了HPLC外,还有薄层色谱(TLC) 法、胶束电动色谱(MEKC)和高速逆流色
3.神经系统
4.心血管 5.关节和肌肉
谱(HSC-CC)
图一
图二
色谱法测定紫杉醇
工业色谱法生产紫杉醇
紫杉醇药理作用
紫杉醇注射剂是新型抗微管药物,通过促进微 管蛋白聚合抑制解聚,保持微管蛋白稳定,抑制 细胞有丝分裂。体外实验证明紫杉醇具有显著 的放射增敏作用,可能是使细胞中止于对放疗 敏感的G2和M期。

紫杉醇(Paclitaxel)含量测定方法(H)

紫杉醇(Paclitaxel)含量测定方法(H)

编号:FZD0110 紫杉醇(Paclitaxel)含量及杂质测定方法
一、色谱条件
色谱柱:ZORBAX C18 15cm×4.6mm 5μm
流动相:乙腈∶水(43∶57,V/V)
柱温:25℃
流速:1.0mL/min
检测波长:230nm
进样量:20μL
运行时间: 60min
二、溶液制备
1.对照品溶液制备
精密称取经五氧化二磷减压干燥至恒重的紫杉醇对照品10mg于25mL容量瓶中,以乙腈溶解定容。

2.供试品溶液制备
精密称取紫杉醇样品约15mg,于25mL容量瓶中,用乙腈溶解定容,供含量及杂质测定。

三、样品测定
在上述色谱条件下,待仪器稳定基线平稳后,进样测定。

紫杉醇保留时间约为18min,Cephalomannine, 10-deacetyl-7-epi Taxol and 7-epi-taxol 保留时间分别约为15min、16min 、26min。

含量按外标法计算。

紫杉醇纯度和相关物质含量以删除溶剂峰后各物质对应峰的面积百分比计。

紫杉醇及其类似物的相关研究

紫杉醇及其类似物的相关研究

物理性质
紫杉醇是白色结晶体粉末。无臭,无味。 易溶于氯仿、丙酮等有机溶剂,难溶于 水,不溶于石油醚。
紫杉醇抗癌机制
1.微管动力学稳定机制 紫杉醇促进微管蛋白聚合 ,抑制解聚 ,使微管稳定 , 导致细胞在有丝分裂时不能形成纺锤体和纺锤丝 ,抑 制了细胞分裂和增殖 ,使肿瘤细胞停止在有丝分裂的 G2 期和 M期 ,直至肿瘤细胞死亡 。 2.免疫机制 紫杉醇可 以通过作用于巨噬细胞 ,导致肿瘤坏死因 子受体的减少及其释放,还可 以促进 白介素及 干 扰 素的释放 ,对肿瘤细胞起杀伤或抑制作用 。 3.凋亡机制 紫杉醇可使肿瘤细胞周期阻滞于G2/M期并诱导细胞 凋亡 。
才发展起来的技术, 由于植物材料中紫杉醇含量很低,且成分复杂, 给提取工作造成了很大的困难,而将此方法用 于紫杉醇的提取可以快速除去浸膏中的脂、蜡 及色素等杂质。 利用高容量C18固相柱,超高容量C18固相柱
3.膜分离


在紫杉烷类物质的分离过程中采用平板式、中空 纤维式和管事膜组件,对超滤膜和反渗透膜。 采用膜分离技术从植物细胞或真菌发酵液中分离 紫杉醇是一种非常可行的技术,该方法可省去用 液液萃取步骤,节省溶剂。今后对特殊的膜如尼 龙膜等进一步改造或修饰,有可能实现从紫杉烷 混合物中选择性的洗脱紫杉醇。
2.反相柱色谱法
反相色谱使用极性较大的有机溶剂作为流动
相,先将一些杂质及色素洗脱下来,然后再 增大梯度将紫杉烷类化合物洗脱出来。 反相色谱固定相有五氟基苯、双苯基、氰基 硅胶等。 优点:不消耗大量的有机溶剂,对环境污染 较小;产品回收率相对于正相色谱法高很多。
展望
紫杉醇的研究,具有重大的社会价值和经济效 益 。目前 ,癌症越来越严重地威胁着人类的生命 。 在美国 ,每年约有 3万名妇女被确诊为卵巢癌 ,每 年死于此病的人数达 1.2万人 ,每年因患晚期乳腺 癌而死亡的美国妇女达4.5万人 ,每年因肺癌死亡 的美国人达10万人,在加拿大 ,每年有1.5万人患乳 腺癌 ,每年死于此病的人数为5200人 。由于紫杉 醇供不应求 , 因此紫杉醇缺 口还相当大 ,可以预期 随着紫杉醇的半合成 ,从人工栽培的红豆杉枝叶中 提取紫杉醇和红豆杉细胞及产紫杉醇真菌大量培 养等技术的发展和完善 ,将会逐渐解决紫杉醇的来 源问题 ,而对紫杉醇类似物的深入研究 ,将会生产 出高效低毒的新抗癌药物 。

紫杉醇的提取和性能

紫杉醇的提取和性能

紫杉醇的提取和性能姓名:高海艳学号:51151300057专业:种子植物分类学紫杉醇的提取和性能一、紫杉醇简介紫杉醇(T axol)是一种复杂的具有抗癌活性的二萜类生物碱[1](结构如图一所示),是从短叶红豆杉(Taxus brevifolia)和东北红豆杉(Taxus cuspidata)的树皮中提取出来的。

具有抗肿瘤、抗白血病的显著作用,主要用于治疗卵巢癌和乳腺癌[2],被人们誉为“植物黄金”。

Vidensek[3]对东北红豆杉(Taxus cuspidata)幼苗以及成树的不同部位中的紫杉醇含量作了分析结果表明成树紫杉醇的含量高低依次为树皮>树叶>树根>树干>种子>心材,幼苗的紫杉醇含量高低依次则是树叶>树根>嫩枝条>心材。

另外,对于不同植物来源的组织培养细胞中的紫杉醇含量陈未名等[4]作了大量的研究,结果表明愈伤组织中的紫杉醇含量以云南红豆杉为最高其次为欧洲红豆杉,再次为红豆杉;而悬浮培养细胞中的紫杉醇含量从高到低依次为云南红豆杉、欧洲红豆杉、红豆杉。

二、紫杉醇提取工艺1、从原植物体中提取紫杉醇[5]:红豆杉枝叶、树皮、树枝的采集原料的干燥及粉碎有机溶剂提取:甲醇除去浸膏固—液萃取2、细胞培养高效提取紫杉醇[6]:1、紫杉醇药用功能:紫杉醇是目前已发现的最优秀的天然抗癌药物,在临床上已经广泛用于乳腺癌、卵巢癌和部分头颈癌和肺癌的治疗[12]。

2、紫杉醇作用于癌症的机制:1979年,美国爱因斯坦医学院的分子药理学家Horwitz博士阐明了紫杉醇独特的抗肿瘤作用机制:紫杉醇可使微管蛋白和组成微管的微管蛋白二聚体失去动态平衡,诱导与促进微管蛋白聚合、微管装配、防止解聚,从而使微管稳定并抑制癌细胞的有丝分裂和防止诱导细胞凋亡,进而有效阻止癌细胞的增殖,起到抗癌作用(如下图所示)[7-11]。

参考文献[1] Wani MC,Taylor HL,Wall ME,et al.Plant antitumor agents VI:The isolation and structure of taxol,a novel antilekemic and antitumor agent from Taxus Brevifolia[J].Am Chem Soc,1971,93:2325.[2] 赵凯,周东坡. 抗癌药物紫杉醇的提取与分离纯化技术[J].生物技术通讯,2004,15(3):309-312.[3] Vidensek N.Taxol content in bark,wood,root,leaf,twig and seeding from several Taxus specials[J].J Nat Prod,1990,53(6):1609.[4] 陈未名.红豆杉属植物的化学成分和生理活性[J].药学学报.1990,25:277.[5] 李春斌,佟憬憬,范圣第.东北红豆杉紫杉醇提取纯化和HPLC检测[J].大连民族学院学报.2005,7(5):22-25.[6] 赵晶.东北红豆杉细胞培养高效提取紫杉醇技术体系研究.[7] Schiff P B, Fan J, Horwitz S B. Promotion of microtubule assembly in vitro by taxol[J]. Nature, 1979, 277: 665-667.[8] Parness J, Horwitz S B. Taxol binds to polymerized tubulin in vitro[J]. J Cell Biol, 1981, 91: 479-487.[9] Schiff P B, Horwitz S B. Taxol stabilizes microtubules in mouse fibroblast cells [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1980, 77: 1561-1565.[10] Horwitz S B. Personal recollections on the early development of taxol [J]. J Nat Prod, 2004, 67: 136-138.[11] Parness J, Horwitz S B. Taxol binds to polymerized tubulin in vitro[J]. J Cell Biol, 1981, 91: 479-487.[12] 史清文.天然药物化学史话:紫杉醇[J].中草药.2011,42(10):1878-1884.。

紫杉醇脂溶性

紫杉醇脂溶性

实验结果1.HPLC检测条件:流动相为乙腈:注射用水=60:40;检测波长为227nm;流速u=1.2ml/min;进样体积为20ul;柱温T=45℃。

2.精确称量紫杉醇3mg置于50ml容量瓶中,分别溶解于经注射用水稀释的20%乙腈,35%乙腈,50%乙腈及100%乙腈。

浓度见表1表1 紫杉醇药物质量和浓度3.出峰时间比较表2 HPLC检测的出峰时间通过4组实验比较,两种批号的紫杉醇平均出峰时间相差无几,只有经20%乙腈溶解的紫杉醇TP99-120204出峰时间在TFJ20130101之后,50%时平均出峰时间相等,35%和100%时出峰时间TP99-120204 早于TFJ20130101。

反相色谱中固定相为弱极性或非极性,而流动相为极性,固定相与极性物质结合能力较弱,所以极性大的物质先出峰。

而脂溶性大,极性小的物质出峰时间比较靠后。

3.峰面积比较两种紫杉醇在不同浓度有机溶剂下的出峰面积大小随着有机溶剂浓度的增加,紫杉醇的峰面积也变大。

脂溶性越大的物质其极性越小,越不易溶于水,所以HPLC检测时的出峰面积越小。

当有机溶剂为20%乙腈时,紫杉醇没有完全溶解,紫杉醇TP99-120204的峰面积小于TFJ120204的峰面积。

表4 紫杉醇乙腈溶液HPLC检测结果紫杉醇TFJ20130101的20%乙腈溶液(浓度0.0610mg/ml)紫杉醇TP99-120204的20%乙腈溶液(浓度0.0614mg/ml)紫杉醇TFJ20130101的35%乙腈溶液(浓度0.0608mg/ml)紫杉醇TP99-120204的35%乙腈溶液(浓度0.0608mg/ml)紫杉醇TFJ20130101的50%乙腈溶液(浓度0.0614mg/ml)紫杉醇TP99-120204的50%乙腈溶液(浓度0.0606mg/ml)紫杉醇TFJ20130101的100%乙腈溶液(浓度0.0606mg/ml)紫杉醇TP99-120204的100%乙腈溶液(浓度0.0614mg/ml)。

2010药典紫杉醇

2010药典紫杉醇

[新增]紫杉醇ZishanchunPaclitaxel OH 3ONH O OHH 3O O OHO CH 3O C 47H 51NO 14 853.91本品为天然提取或半合成制备。

本品为(2S,5R,7S,10R,13S)-10,20-双(乙酰氧基)-2-苯甲酰氧基-1,7-二羟基-9-氧代-5,20-环氧紫杉烷-11-烯-13-基(3S )-3-苯甲酰氨基-3-苯基-D-乳酸酯。

按干燥品计算,含C 47H 51NO 14应为98.0%~102.0%。

【性状】本品为白色或类白色结晶性粉末。

本品在甲醇、乙醇或三氯甲烷中溶解,在乙醚中微溶,在水中几乎不溶。

比旋度 取本品,精密称定,加甲醇溶解并定量稀释制成每1ml 中含10mg 的溶液,依法测定(附录VI E ),比旋度为 -49.0º ~-55.0 º。

【鉴别】(1)在含量测定项下的色谱图中,供试品溶液主峰应与对照品溶液主峰的保留时间一致。

(2)本品的红外吸收图谱应与对照的图谱(光谱集875图)一致。

【检查】溶液的澄清度与颜色 取本品0.1g ,加甲醇10ml 溶解后,溶液应澄清无色。

有关物质 取本品,加乙腈制成每1ml 中约含0.5mg 的溶液,作为供试品溶液;精密量取适量,分别加乙腈稀释成每1ml 中约含2.5µg 、0.5µg 的溶液,作为对照溶液⑴和对照溶液⑵;另取紫杉醇、紫杉醇杂质A(三杉尖宁碱)与紫杉醇杂质B(7-表10-去乙酰基紫杉醇)对照品适量,用乙腈溶解并稀释制成每1ml 中约含紫杉醇0.5mg 、紫杉醇杂质A 与紫杉醇杂质B 均为2.5µg 的溶液,作为系统适用性溶液。

照高效液相色谱法(附录V D )测定,用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂(柱长为250mm );以乙腈-水为流动相进行梯度洗脱,初始流动相为乙腈-水(40:60),洗脱至主峰出完(约35分钟),然后以每分钟1.6%的速度增加乙腈的比例,25分钟后,乙腈的比例增至80%,再以每分钟4%的速度降低乙腈的比例,10分钟后,乙腈的比例降至40%,保持此比例10分钟;流速为1.5ml/min;柱温为30℃;检测波长为227nm。

紫杉醇注射液的RP-HPLC法分析

紫杉醇注射液的RP-HPLC法分析

紫杉醇注射液的RP-HPLC法分析
汪正宇;胡锦钊;文瑾
【期刊名称】《安徽医药》
【年(卷),期】2005(009)011
【摘要】目的建立以RP-HPLC法测定紫杉醇注射液的含量及有关物质的方法.方法采用RP-HPLC法,以ODS C18柱(250 mm×4.6 mm)为色谱柱.含量测定以甲醇-水-乙腈(20∶ 30∶ 50)为流动相,流速1.0 ml·min-1,检测波长228 nm;有关物质检查参照国家药品标准,采用梯度洗脱程序,便于将所有的杂质分离完全.结果紫杉醇在5~50 mg·L-1的范围内线性关系良好(r=0.9998,n=5),平均回收率为99.90%,最低检测限为1.92 ng,有关物质含量低于2.5%.结论方法灵敏、快速、准确,重复性试验结果良好,可用于紫杉醇注射液的质量控制.
【总页数】3页(P822-824)
【作者】汪正宇;胡锦钊;文瑾
【作者单位】安徽省宿州市药品检验所,安徽宿州234000
【正文语种】中文
【中图分类】R9
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液相色谱-串联质谱法快速测定人血浆中紫杉醇的含量

液相色谱-串联质谱法快速测定人血浆中紫杉醇的含量

色 谱柱 : BC821 0 AS l .×5mm,5 m。 流动 相 : 乙腈 : 4 mmo/ l L醋酸 铵 溶液 (0 :2) 8 0,流速 为 03 -
ml n / ,进样 量 1 L。 mi 0L L 22 质 谱条 件 .
正 T r opa ub sry电离源 ( S ) E I ,离 子源 参数 为 浆中紫杉醇的含量 ; 仝新勇等采用 L / 研 C MSMS C U R :1 0, CA D :M e um , I :5 00, TE M : di S 0 究 紫杉醇 自组 装前 体脂质体 在 大 鼠体 内的组 织分 布 0 ,GS 4 ,GS 4 。 监 测 模 式 : R 方 1: 5 2: 5 M M 及 靶 向性 ,仅 有 Ia a t smuOk moo等 对小 细胞 未 6 0 离 紫 7. 5 0 .,多西 他 赛 分化肺癌患者紫杉醇一期临床以及药物代谢动力学 法 ; 子 对 : 杉 醇 8 6 — 3 81 的进行研 究 ,但 是该 项研究 是 紫杉醇 与其它 2种药 物合 用 ,纯粹 的单一 的人血 浆 中紫杉 醇 的含量测定
进样 测定 。
岛 津 UF .0 LC 2 AD 液 相 色 谱 仪 ; I 2 0 AP O Q 3
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反 应监 测 ( M) MR 方式 ,用 于定量 分析 的 离子 对分 3 为 m/ 7 . m/ 0 . 紫杉 醇 ) 3 , j z8 65一 z3 81 (
和 m/ 3 . m/ 4 _(内标 ,多 西他 赛 ) 该 方 法 紫杉 醇 的 线性 范 围为 0 — 1 0 z80 6一 z5 92 。 . 2 00

高效液相色谱法测定多西紫杉醇脂质体药物含量及包封率.

高效液相色谱法测定多西紫杉醇脂质体药物含量及包封率.

高效液相色谱法测定多西紫杉醇脂质体药物含量及包封率【摘要】目的建立测定多西紫杉醇脂质体药物含量及包封率的HPLC法。

方法采用Diamonsil C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相:甲醇乙腈水(体积比35∶40∶25);紫外检测波长:230 nm。

结果在本色谱条件下多西紫杉醇与辅料及溶剂峰分离良好,多西紫杉醇在1.0~50.0 μg/mL范围内线性关系良好(r=0.9996,n=7),平均回收率为101.51%,RSD为1.96%。

结论该方法准确可靠、简单快速,可用于多西紫杉醇脂质体含量及包封率的测定。

【关键词】多西紫杉醇脂质体含量测定包封率高效液相色谱法Analysis of content and entrapment efficiency of docetaxel in docetaxel liposomes by HPLCWANG Xiao ling,LU Zhu fen,CHEN Yan zhong,HUANG Hongbin,LIU Tao1.Guangdong College of Pharmacy,Guangzhou,Guangdong510240 ,China;2.Oncology Hospital of Sun Yat senUniversity,Guangzhou,Guangdong 510275,ChinaAbstract:Objective To establish an HPLC method for the determination of content and entrapment efficiency of docetaxel in docetaxel liposomes.Methods The analysis was performed on a C18 column (250 mm × 4.6 mm,5 μm). The mobile phase consisted of methanol acetonitrile water (35∶40∶25),and the detection wavelength was 230 nm. Results The linear range for docetaxel was 1.0~50.0 μg/mL (r=0.9996,n=7). The average recovery was 101.51%and RSD was 1.96%. Conclusion This method is simple,accurate,sensitive for measurement of content and entrapment efficiency of docetaxel in the liposomes.Key words:docetaxel liposomes;entrapment efficiency;HPLC多西紫杉醇(docetaxel,商品名为:泰索帝taxotere)是近年开发的新一代紫杉烷类抗肿瘤药物,分子式为C43H53NO14·3H2O,分子量为861.9。

紫杉醇的性质及色谱分析方法

紫杉醇的性质及色谱分析方法

紫杉醇的性质及色谱分析方法摘要紫杉醇是从紫杉(Taxus brevifolia)树皮中所提得,是红豆杉属植物中的一种复杂的次生代谢产物,也是目前所了解的惟一一种可以促进微管聚合和稳定已聚合微管的药物。

已成为目前全球销售量排名第一的抗肿瘤药物。

综述紫杉醇的发现历史、来源、性质及色谱分析方法。

AbstractPaclitaxel is extracted from Taxus brevifolia bark,whichnot only is one of the plants of the genus Taxus chinensis complex secondary metabolites, also is the only kind of antitumor drugs that can promote microtubule polymerization and stable microtubule polymerization till now. It has become the top sales in the worldwide . Review of Paclitaxel history, origin, nature and chromatographic methods.关键词:发现历史;来源;性质;紫杉醇;色谱Keyword:Discovery history; Source; Properties; Paclitaxel; The chromatographic1.紫杉醇简介:1.1发现历史1963年美国化学家瓦尼(M.C. Wani)和沃尔(Monre E. Wall)首次从一种生长在美国西部大森林中称谓太平洋杉(Pacific Yew)树皮和木材中分离到了紫杉醇的粗提物。

在筛选实验中,Wani和 Wall发现紫杉醇粗提物对离体培养的鼠肿瘤细胞有很高活性,并开始分离这种活性成份。

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紫杉醇的性质及色谱分析方法摘要紫杉醇是从紫杉(Taxus brevifolia)树皮中所提得,是红豆杉属植物中的一种复杂的次生代谢产物,也是目前所了解的惟一一种可以促进微管聚合和稳定已聚合微管的药物。

已成为目前全球销售量排名第一的抗肿瘤药物。

综述紫杉醇的发现历史、来源、性质及色谱分析方法。

AbstractPaclitaxel is extracted from Taxus brevifolia bark,whichnot only is one of the plants of the genus Taxus chinensis complex secondary metabolites, also is the only kind of antitumor drugs that can promote microtubule polymerization and stable microtubule polymerization till now. It has become the top sales in the worldwide . Review of Paclitaxel history, origin, nature and chromatographic methods.关键词:发现历史;来源;性质;紫杉醇;色谱Keyword:Discovery history; Source; Properties; Paclitaxel; The chromatographic1.紫杉醇简介:1.1发现历史1963年美国化学家瓦尼(M.C. Wani)和沃尔(Monre E. Wall)首次从一种生长在美国西部大森林中称谓太平洋杉(Pacific Yew)树皮和木材中分离到了紫杉醇的粗提物。

在筛选实验中,Wani和 Wall发现紫杉醇粗提物对离体培养的鼠肿瘤细胞有很高活性,并开始分离这种活性成份。

由于该活性成份在植物中含量极低,直到1971年,他们才同杜克(Duke)大学的化学教授姆克法尔(Andre T. McPhail)合作,通过x-射线分析确定了该活性成份的化学结构——一种四环二萜化合物,并把它命名为紫杉醇(taxol)。

1.2来源由于野生红豆杉资源有限且紫杉醇含量极低,限制了紫杉醇制药业的发展,全世界紫杉醇的需求量约为4000公斤/年,而总产量只有到300-400公斤/年。

所以,从天然的红豆杉中提取紫杉醇的方法远远不能满足人们对紫杉醇日益增长的需要。

因此,采用各种手段积极寻求紫杉醇新药源生产途径,扩大紫杉醇原料供应能力,已成为紫杉醇产业发展的重点研究方向之一, 目前已取得了一定的进展, 其途径可归结为以下几种:1.2.2天然红豆杉植物提取紫杉醇的最直接来源是对天然植物红豆杉属种树皮和叶片中中提取。

但由于红豆杉数量极少,自身繁殖率低,生长缓慢,且紫杉醇的含量又极低。

在这种情况下,要获得足够的紫杉醇用于临床研究和基础研究,单纯靠从天然植物中提取必将给红豆杉属植物的在自然界中的生存带来极大的威胁。

但由于从红豆杉中提取紫杉醇的工艺已经成熟且工业化。

因此,人们可利用人工栽培的方法来解决天然资源不足的问题。

规模化、集约化营造红豆杉人工原料林, 是目前解决紫杉醇原料短缺的最现实、最快捷解决紫杉醇原料紧缺的方法。

近年来,我国红豆杉人工种植发展迅速,云南农科院高山经济植物所繁育了5万株,成活率达94.3%,湖南绥宁县林业局繁殖幼苗3000多株,现已移栽大田,黑龙江中医药大学人工育苗也获成功。

人工植物栽培的成功,为紫杉醇的获取开辟了广阔的前景[1]。

据不完全统计, 我国现有红豆杉种植企业140多家, 现已在云南、福建、湖南、四川、黑龙江等地拥有一定规模的红豆杉种植基地, 种植面积近15万亩。

红豆杉人工种植对保护野生资源和满足紫杉醇制药工业的发展发挥了积极的作用。

1.2.3化学合成1.2.3.1 紫杉醇的全合成1994年初,Holto和Nicolaou几乎同时宣告紫杉醇的全合成获得成功[2-3]。

此后紫杉醇全合成又在不同的研究小组获得成功[4-5],但由于紫杉醇是分子结构复杂的化合物,全合成途径都包括25-40步化学反应,合成路线极其复杂,反应条件极难控制,所用化学试剂昂贵且收率低, 产品成本极高、效率低,目前尚未进入产业化。

1.2.3.2 紫杉醇的半合成半合成法指的是将红豆杉属植物中所含的紫杉醇类似物经过某些化学反应,将其转化为紫杉醇。

目前紫杉醇半合成法是为从天然红豆杉针叶中提取分离10-去乙酰基巴卡亭III(10-deacetylbaccatin III)或巴卡亭III (baccatin III)原料, 通过选择性保护7位羟基, 然后再酰化10位羟基,得到7位保护的巴卡亭III, 然后与侧链缩合,最后去掉保护基团得到紫杉醇。

由于10-去乙酰基巴卡亭III和巴卡亭III在红豆杉属植物枝叶中含量较高,而且红豆杉枝叶量大,再生能力强,为紫杉醇半合成提供了丰富的原料。

现在紫杉醇的半合成方法已比较成熟,国外紫杉醇生产的主要企业如美国Bristol-Myers Squibb Co.,现已利用半合成法进行工业化生产紫杉醇。

目前,半合成紫杉醇被认为是除人工种植外,扩大紫杉醇来源的有效途径。

半合成法可以更大限度地利用植物资源, 但与直接提取紫杉醇的办法并无本质上区别,需要消耗大量红豆杉树木,仍然不能从根本上解决植物资源的匮乏问题。

1.2.4 植物组织细胞培养利用植物细胞培养法生产紫杉醇,是各种研究方向中十分有吸引力的一个方向,细胞培养能够连续均匀生产,受外界条件影响不大,而且可以在反应器中大规模培养,易于提高产量和进行产物的提取纯化。

美国农业部于1991年就批准了Christen和 Gibson 等用细胞培养法生产紫杉醇及其类似物的专利[6-7]。

1994年ESCAgenetics(CA, USA)也宣布用细胞培养的方法生产紫杉醇,用细胞培养法所得产物紫杉醇含量为树皮的2-5倍[8],但这个工作的细节没有报道。

中国的甘烦远等发现云南红豆杉细胞在发酵罐中生长速率达到12 g/L,紫杉醇含量为0.119%,约为成年树树皮中含量的12倍,为栽培植株的40倍[9],但未见实际应用的报道,短期内成功应用的可能性较小。

目前,虽然红豆杉细胞培养生产紫杉醇取得了很大的进展,紫杉醇生物合成途径基本清楚,细胞的生长和紫杉醇的产量已基本得到解决,有的已经得到生物反应器放大阶段,如美国一公司现在已经完成4000 L的培养技术,正在进行20000 L规模的工业放大研究[10],但植物细胞遗传与生理的不稳定性、细胞间的不一致性使得在培养工程中高产细胞系不能实现高产率,而且易发生遗传变异产生其它代谢产物。

另外,植物细胞培养技术较复杂,对反应器要求较高,也阻碍了通过细胞培养工业化生产紫杉醇的实现[11]。

1.2.5微生物发酵法1993 年 Stierle 与 Stroble 首次报道了从太平洋紫杉树中分离出 200 多个内生真菌,对培养产物运用了 TLC、HPLC、ELISA、MS 和同位素标记等多种手段分析研究,发现一个真菌新种在培养 3 周后具有稳定地产生紫杉醇的能力,被命名为Taxomyces andreanae,紫杉醇含量为 24-50 ng/L[12], 随后一系列产紫杉醇内生真菌被分离到[13-19],为人们展示了一个可能生产紫杉醇的诱人的新途径。

除已经报道的内生真菌外,加拿大的科研人员还从加拿大红豆杉(Taxuscanadensis)的针叶中分离出一株产紫杉醇的内生细菌 Brawinia taxi,其紫杉醇的产量为 200-1000 ng/L,该菌株已经被保存在 ATCC (American Type Culture Collection),遗憾的是目前分离到的内生真菌紫杉醇产量都不高,尚达不到产业化的要求。

但是真菌的遗传操作比植物更简单,通过发酵条件和应用现代生物技术,可望提高紫杉醇的产量,降低紫杉醇的价格来满足市场的需求。

所以筛选产高产紫杉醇内生真菌,用微生物发酵的方法生产紫杉醇,是目前解决药源问题的有效途径之一。

1.2.6 从山榛等植物中提取紫杉醇榛子为桦木科(Bet ulaceae)、榛属(Coryl us linn), 坚果树种,世界有15个种, 广泛分布在亚洲、欧洲、北美洲的温带地区。

被学术界确认的有9个种,即美洲榛(C.America)、欧洲榛(C. avellana)、土耳其榛(C. colurna)等。

榛子原产于我国,我国北方主要有两个种,即平榛(C. heterophylla Fisch)和毛榛(C. mandshurica Maxim),其分布范围广,遍布黄河、秦岭以北地区。

1998年美国俄勒岗大学化学系Angela Hoffman博士等人发现从欧洲榛子中可以提取紫杉醇,她们发现至少从12个榛子树中提取到紫杉醇,特别是Gasaway, Halls Giant, Lewis and Willamette这四个品种紫杉醇含量较高[20-25]。

2006年意大利科学家Federica Bestoso等人也从欧洲榛子的愈伤组织提取到紫杉醇且在愈伤组织中紫杉醇水平与红豆杉相当[26]。

尽管山榛中的紫杉醇含量只有红豆杉的1/10,但是山榛是被子植物,世界上被子植物的种类比裸子植物要大数百倍。

另外,山榛生长十分迅速、资源极其丰富,且不怕任何病虫害,更可贵的是山榛不仅枝叶、树皮中能够分离出了紫杉烷和紫杉醇等活性成分,它的果实-山榛子壳中也含有紫杉醇。

他们的发现为紫杉醇药用新资源开发带来了新的希望,既可降低紫杉醇的价格,又有助于保护红豆杉这一珍稀植物资源。

1999年美国科学家Roy Stahlhut等人从东非罗汉松(Podocarpaceae)中提取到紫杉醇,但含量较低(0.54 mg/kg 干重)[27]。

张长河等对可能与红豆杉有共同的起源的三尖杉(Cephalotaxus fortunei Hook.F.)的当年生幼茎和未成熟假种皮诱导出愈伤组织,HPLC分析发现含有紫杉醇和合成紫杉醇的前体10-去乙酰基巴卡亭III等物质[28]。

周荣汉等从白豆杉(Pseudotaxus chienii)中分离到了紫杉醇和短叶醇的存在[29]。

这些发现可望为扩大紫杉醇原料来源的途径之一。

如果上述几种紫杉醇技术开发的成功,将可大大缓解人们对红豆杉的依赖,避免人为造成红豆杉属植物的物种的生存危机,有效降低紫杉醇应用成本,为临床的广泛应用提供可能。

1.2.7 基因工程随着基因工程技术的飞速发展和广泛应用,利用现代生物技术提高植物或微生物中紫杉醇及其前体含量的研究成为近年来科研工作者研究的一个热点。

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