第4章基因工程的主要技术及其原理.pptx
合集下载
相关主题
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
真核生物RNA分子主要存在于细胞核与细胞质中。 总RNA:rRNA,tRNA,mRNA。其中mRNA仅占总RNA的1%- 5% ,
分子大小不等,由几百乃至数万核苷酸组成。
能否成功提取RNA,关键在于能否完全抑制或除去RNA酶的破坏作用, 获取完整的全长RNA分子。
RNA酶有一条多肽链组成,不需要任何辅助因子,存在十分广泛并十分稳定, 非常耐热,在较宽的pH范围内有活性,及其顽固。
水溶液中,室温10分钟后,再用0.1%DEPC水彻底冲洗。
提取RNA的方法一般包括4个关键点:
1)细胞的有效破碎,尤其是植物细胞带有细胞壁,研磨要彻底; 2) 使核蛋白复合体充分变性、解离,使核酸释放到溶液中;
变性剂有异硫氰酸胍、N-十二烷基肌氨酸钠等; 3) 有效地抑制内源及外源RNase活性; 4) 将RNA与DNA、蛋白质和多糖分开。策略一是先提总核酸,再用氯化锂将RNA
第四章 基因工程的主要技术及其原理
第一节 DNA和RNA的提取与纯化
一 DNA提取的基本原理与方法
(一)DNA提取的基本原理
DNA的性质:
1) DNA是极性化合物,不溶于有机溶剂,溶于水,在水中溶解度达 10g/L,其钠盐比游离态更易溶于水。在酸性溶液中易水解,在中 性或弱碱性溶液中较稳定。
2) DNA与核蛋白复合体DNP在在低盐浓度(0.1mol/L NaCl)溶液中 溶解度最低(为水中的1%),在高盐浓度(1mol/L NaCl)溶液中 溶解度较高(为水中的2倍),而核糖核蛋白RNP受盐浓度影响较 小,在低盐浓度中溶解度仍较大。从而可将DNP和RNP分开。
4. 苯酚抽提法 原理:苯酚作为蛋白变性剂,同时可抑制DNA酶的降解作用,用苯酚处理细胞匀浆液,
蛋白分子溶于酚相,DNA溶于水相,离心分层取水相,多次重复,合并水相, 用乙醇沉淀,即得到DNA。
5. 水抽提法 原理:利用核酸溶于水的性质,用低盐除去RNA,将沉淀溶于水中,使DNA充分溶解,
离心后收集上清液,加入固体NaCl调至2.6mol/L,加入2倍体积的95%乙醇, 然后,分别用66%,80%,95%乙醇及丙酮清洗DNA,经干燥后即得DNA样品。
提取RNA的实验必须采取以下措施:
1)所有玻璃器皿应置于180℃烘箱烘烤4小时以上;凡是不能烘烤的材料如塑料制 品需用01%的DEPC(二乙基焦碳酸盐)溶液处理,然后121 ℃高压消毒40分钟;
2) 全部过程需戴手套、口罩操作,并经常更换手套; 3) RNA电泳漕需用去污剂洗涤,用水冲洗干净后,用乙醇干燥,浸泡于3%的H2O2
苯酚-氯仿: 对蛋白质具有极强的变性作用,而对DNA无影响。 RNA杂质: 用不含DNA酶的RNA酶去除。
(3). DNA的沉淀与纯化 溶解在上清液中的DNA加入2倍体积的无水乙醇使其沉淀。 在多糖、蛋白含量高时用1倍的异丙醇沉淀效果较好。
(二)DNA提取的几种方法
根据细胞破碎后,分离DNA与蛋白质所采用的技术策略和试剂不同,可分以 下几种方法: 1. 浓盐法 原理:根据RNP和DNA在电解溶液中溶解度不同,将二者分离。
提取和纯化DNA,首先需破碎或溶解细胞,用高盐(1mol/L NaCl)将DNP抽 提出来,再把蛋白质、多糖、RNA及无机离子除去。 DNA提取的步骤: (1). 细胞裂解和DNA的溶解; 一般采用机械破碎或酶解细胞释放DNA,严防细胞中各种酶对DNA的 破坏: 1)利用液氮在超低温下研磨,使酶失活; 2)快速加入缓冲液并迅速混匀,保护DNA。
2. SDS法 原理:SDS使细胞膜裂解,使蛋白质变性,将蛋白质和多糖等杂质与DNA分开,
加入乙酸钾可使SDS-蛋白复合物转变成溶解度更小的钾盐,使沉淀更加完全。
3. CTAB法 原理:在细胞裂解液中,加入CTAB分离缓冲液,将DNA溶解出来。再经氯仿-异戊醇
抽提除蛋白,即可得到含DNA水相,经乙醇或异丙醇沉淀即得到DNA。
(三)质粒的提取
碱裂解法提质粒DNA的原理:
在强碱环境中,大分子量的核DNA变性,而共价闭环质粒DNA仍 为自然状态。将pH调至中性并在高盐环境中,核DNA之间交联形 成不溶性网状结构,但质粒DNA仍然呈可溶状态。
二 RNA提取的基本原理与方法
(一)总RNA提取的基本原理与方法
1. 总RNA提取的原理
CTAB: 十六烷基三甲基溴化铵,可溶解细胞膜,,在高盐溶液中(0.7mol/L NaCl) 与DNA结合形成复合物并呈溶解状态,但当浓度降低到一定程度(0.3mol/L NaCl)时,DNA即从溶液中沉淀,通过离心可将DNA-CTAB复合物与多糖与 蛋白质分开。
SDS: 十二烷基硫酸钠,可使蛋白质变性,核Hale Waihona Puke Baidu白解聚,使DNA游离出来, 再根据DNA和蛋白质在有机溶剂中溶解度差异,用苯酚-氯仿抽提蛋白。
方法1:用1mol/L NaCl抽提,得到的DNP液中加入含辛醇的氯仿,离心,DNA位于 上层水相,回收水相,用2倍体积的95%乙醇或无水乙醇将DNA沉淀出来。
方法2:用0.15mol/L NaCl反复洗涤细胞裂解液除去RNP,再用1mol/L NaCl抽提DNP, 然后用氯仿-异戊醇除去蛋白。
以稀盐溶液提取DNA,可加入适量SDS使蛋白质变性解聚,使DNA解离; 使用SSC溶液( 5mol/L NaCl、0.015mol/L柠檬酸钠)抑制DNase降解DNA
沉淀出来;策略二是直接在酸性条件下用酚-氯仿抽提,低pH的酚将使RNA进 入水相,而蛋白质和DNA留在有机相中,水相中的RNA可用异丙醇沉淀出来。
2. 总RNA提取的方法
(1) 酚-异硫氰酸胍提取法。 Trizol试剂是最广泛的抽提总RNA的试剂,即根据酚-异硫氰酸胍提取法设计。
EDTA:螯合DNA酶的辅助因子Mg2+和Ca2+,降低DNA酶活性; SDS:变性并降解蛋白质,降低DNA酶活性; 抗氧化剂:PVP,β-巯基乙醇,抗坏血酸、半胱氨酸,DTT降低酚类氧化
对DNA的干扰 PVP:有效去除酚类和多糖物质。
(2). 与核酸结合的蛋白质及RNA等杂质的去除; 主要利用DNA与蛋白、多糖性质不同,加入离子变性剂、去污剂使其变性解聚;
分子大小不等,由几百乃至数万核苷酸组成。
能否成功提取RNA,关键在于能否完全抑制或除去RNA酶的破坏作用, 获取完整的全长RNA分子。
RNA酶有一条多肽链组成,不需要任何辅助因子,存在十分广泛并十分稳定, 非常耐热,在较宽的pH范围内有活性,及其顽固。
水溶液中,室温10分钟后,再用0.1%DEPC水彻底冲洗。
提取RNA的方法一般包括4个关键点:
1)细胞的有效破碎,尤其是植物细胞带有细胞壁,研磨要彻底; 2) 使核蛋白复合体充分变性、解离,使核酸释放到溶液中;
变性剂有异硫氰酸胍、N-十二烷基肌氨酸钠等; 3) 有效地抑制内源及外源RNase活性; 4) 将RNA与DNA、蛋白质和多糖分开。策略一是先提总核酸,再用氯化锂将RNA
第四章 基因工程的主要技术及其原理
第一节 DNA和RNA的提取与纯化
一 DNA提取的基本原理与方法
(一)DNA提取的基本原理
DNA的性质:
1) DNA是极性化合物,不溶于有机溶剂,溶于水,在水中溶解度达 10g/L,其钠盐比游离态更易溶于水。在酸性溶液中易水解,在中 性或弱碱性溶液中较稳定。
2) DNA与核蛋白复合体DNP在在低盐浓度(0.1mol/L NaCl)溶液中 溶解度最低(为水中的1%),在高盐浓度(1mol/L NaCl)溶液中 溶解度较高(为水中的2倍),而核糖核蛋白RNP受盐浓度影响较 小,在低盐浓度中溶解度仍较大。从而可将DNP和RNP分开。
4. 苯酚抽提法 原理:苯酚作为蛋白变性剂,同时可抑制DNA酶的降解作用,用苯酚处理细胞匀浆液,
蛋白分子溶于酚相,DNA溶于水相,离心分层取水相,多次重复,合并水相, 用乙醇沉淀,即得到DNA。
5. 水抽提法 原理:利用核酸溶于水的性质,用低盐除去RNA,将沉淀溶于水中,使DNA充分溶解,
离心后收集上清液,加入固体NaCl调至2.6mol/L,加入2倍体积的95%乙醇, 然后,分别用66%,80%,95%乙醇及丙酮清洗DNA,经干燥后即得DNA样品。
提取RNA的实验必须采取以下措施:
1)所有玻璃器皿应置于180℃烘箱烘烤4小时以上;凡是不能烘烤的材料如塑料制 品需用01%的DEPC(二乙基焦碳酸盐)溶液处理,然后121 ℃高压消毒40分钟;
2) 全部过程需戴手套、口罩操作,并经常更换手套; 3) RNA电泳漕需用去污剂洗涤,用水冲洗干净后,用乙醇干燥,浸泡于3%的H2O2
苯酚-氯仿: 对蛋白质具有极强的变性作用,而对DNA无影响。 RNA杂质: 用不含DNA酶的RNA酶去除。
(3). DNA的沉淀与纯化 溶解在上清液中的DNA加入2倍体积的无水乙醇使其沉淀。 在多糖、蛋白含量高时用1倍的异丙醇沉淀效果较好。
(二)DNA提取的几种方法
根据细胞破碎后,分离DNA与蛋白质所采用的技术策略和试剂不同,可分以 下几种方法: 1. 浓盐法 原理:根据RNP和DNA在电解溶液中溶解度不同,将二者分离。
提取和纯化DNA,首先需破碎或溶解细胞,用高盐(1mol/L NaCl)将DNP抽 提出来,再把蛋白质、多糖、RNA及无机离子除去。 DNA提取的步骤: (1). 细胞裂解和DNA的溶解; 一般采用机械破碎或酶解细胞释放DNA,严防细胞中各种酶对DNA的 破坏: 1)利用液氮在超低温下研磨,使酶失活; 2)快速加入缓冲液并迅速混匀,保护DNA。
2. SDS法 原理:SDS使细胞膜裂解,使蛋白质变性,将蛋白质和多糖等杂质与DNA分开,
加入乙酸钾可使SDS-蛋白复合物转变成溶解度更小的钾盐,使沉淀更加完全。
3. CTAB法 原理:在细胞裂解液中,加入CTAB分离缓冲液,将DNA溶解出来。再经氯仿-异戊醇
抽提除蛋白,即可得到含DNA水相,经乙醇或异丙醇沉淀即得到DNA。
(三)质粒的提取
碱裂解法提质粒DNA的原理:
在强碱环境中,大分子量的核DNA变性,而共价闭环质粒DNA仍 为自然状态。将pH调至中性并在高盐环境中,核DNA之间交联形 成不溶性网状结构,但质粒DNA仍然呈可溶状态。
二 RNA提取的基本原理与方法
(一)总RNA提取的基本原理与方法
1. 总RNA提取的原理
CTAB: 十六烷基三甲基溴化铵,可溶解细胞膜,,在高盐溶液中(0.7mol/L NaCl) 与DNA结合形成复合物并呈溶解状态,但当浓度降低到一定程度(0.3mol/L NaCl)时,DNA即从溶液中沉淀,通过离心可将DNA-CTAB复合物与多糖与 蛋白质分开。
SDS: 十二烷基硫酸钠,可使蛋白质变性,核Hale Waihona Puke Baidu白解聚,使DNA游离出来, 再根据DNA和蛋白质在有机溶剂中溶解度差异,用苯酚-氯仿抽提蛋白。
方法1:用1mol/L NaCl抽提,得到的DNP液中加入含辛醇的氯仿,离心,DNA位于 上层水相,回收水相,用2倍体积的95%乙醇或无水乙醇将DNA沉淀出来。
方法2:用0.15mol/L NaCl反复洗涤细胞裂解液除去RNP,再用1mol/L NaCl抽提DNP, 然后用氯仿-异戊醇除去蛋白。
以稀盐溶液提取DNA,可加入适量SDS使蛋白质变性解聚,使DNA解离; 使用SSC溶液( 5mol/L NaCl、0.015mol/L柠檬酸钠)抑制DNase降解DNA
沉淀出来;策略二是直接在酸性条件下用酚-氯仿抽提,低pH的酚将使RNA进 入水相,而蛋白质和DNA留在有机相中,水相中的RNA可用异丙醇沉淀出来。
2. 总RNA提取的方法
(1) 酚-异硫氰酸胍提取法。 Trizol试剂是最广泛的抽提总RNA的试剂,即根据酚-异硫氰酸胍提取法设计。
EDTA:螯合DNA酶的辅助因子Mg2+和Ca2+,降低DNA酶活性; SDS:变性并降解蛋白质,降低DNA酶活性; 抗氧化剂:PVP,β-巯基乙醇,抗坏血酸、半胱氨酸,DTT降低酚类氧化
对DNA的干扰 PVP:有效去除酚类和多糖物质。
(2). 与核酸结合的蛋白质及RNA等杂质的去除; 主要利用DNA与蛋白、多糖性质不同,加入离子变性剂、去污剂使其变性解聚;