临床检验标本采集与运送 PPT

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临床微生物标本采集与运送课件

临床微生物标本采集与运送课件
留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集,不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。
采样端口用酒精消毒;必要时,可先夹住导尿管但不能超过30分钟;将注射器针头插入采样
端口,抽吸出尿液;注入无菌杯或试管中
尿标本的运送


收集中段尿液5-10ml,及时送检。
室温保存下不得超过2小时,否则应置于4℃冰箱保存,保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖,因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏,
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征:







当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养:
1.粪便涂片白细胞>5个/HP;
2.体温>38℃;
3.重症腹泻;
4.脓血便;
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人;
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。

脑脊液标本采集与运送





采集:
按脊椎穿刺操作规程,采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中,每支试管至少1-2ml,然后马
上将第2支(或第1支)送至实验室。
做脑脊液培养时,建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送:
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性,则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套,连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性,则继续采集2套血培养。
应该采多少血量?
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶(需氧+厌氧),每瓶8-10ml,共20ml;要求至少采两份标本,即

2024全新临床检验标本采集规范ppt课件(2024)

2024全新临床检验标本采集规范ppt课件(2024)
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标本采集过程中的质量控制与安全管
理2024/1/2726质量控制措施标准化操作流程
制定并执行统一的标本采集、处理、 运输和保存流程,确保每一步操作都 符合规范。
人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训,并定 期考核其操作技能和服务态度,确保 人员能力达标。
2024/1/27
设备维护与校准
定期对采集设备、保存设备和运输设 备进行维护和校准,确保设备处于良 好状态。
质量监控与反馈
建立质量监控机制,对标本采集、处 理、运输和保存过程进行定期检查和 评估,及时发现问题并改进。
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安全防护措施
个人防护
环境安全
标本采集人员需穿戴适当的防护用品,如 口罩、手套、隔离衣等,避免直接接触标 本。
保持采集环境的清洁和消毒,确保环境安 全无污染。
2024/1/27
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规范制定的背景与目的
2024/1/27
背景
随着医学技术的不断发展,临床检验在疾病诊断和治疗中的 作用日益凸显。为确保检验结果的准确性和可靠性,标本采 集作为检验流程的首要环节,其规范性至关重要。
目的
制定全新的临床检验标本采集规范,旨在提高标本质量,减 少误差,确保检验结果准确可靠,为临床医生提供有力的诊 断依据。
针对可能出现的突发事件,制定相应的应急预案,如设备故障 、标本污染、人员受伤等。
定期组织应急演练和培训,提高人员的应急处理能力和协作能 力。
根据问题处理和应急演练的经验教训,持续改进和优化标本采 集过程中的质量控制和安全防护措施。
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06
临床检验标本采集规范实施的评价指
标与持续改进
2024/1/27
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规范的主要内容与特点

检验标本的采集及运送ppt课件

检验标本的采集及运送ppt课件

4、检验人员:必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时,才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录:保存2年。
5/22/2024
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四、标本采集方法:
收取检验申请单——审核合格后,检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2:血液标本的运送应由患者(除血交叉标本外) 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全, 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
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三、检验的申请:
1、临床医生:应完整填写申请单各项内容,字迹必须清楚,包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意:患者的饮食,高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等,都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后,尽快送检验科检测,因为葡萄糖
在空气中,在血细胞的作用下,很容易孝解。 全血标本室温放置1小时,血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时,血糖值下降。10-30%

阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
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二、采集血液标本的职责:
1:住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件,要求及注意事项(如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等);医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题,标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等,指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请,适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。

临床微生物标本采集及运送PPT课件

临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
,避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前,以晨起进食前为宜,取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量,降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查,二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好,防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检,实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内,半小时送检是可接受的,如 果送检时间超过 1 小时,则会影响结果。
注:某些细菌具有自溶酶,放置时间过长易自溶死亡,因此, 标本应立即送检,并且保温(禁止放冰箱,因脑膜炎双球 菌遇冷死亡)
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的,而尿道口有正常菌群寄生,标本的采集 必须无菌操作。

临床检验标本采集运送及保存-课件-PPT

临床检验标本采集运送及保存-课件-PPT

标本检查的意义
标本采集检查的意义 协助明确疾病诊断 制定治疗措施 推测病程进展 观察病情
标本采集原则
遵照医嘱 充分准备 严格查对 正确采集 及时送检
标本采集原则
遵照医嘱 根据医嘱采集标本
标本采集原则
采集前做好充分准备 医护人员准备 病人准备 物品准备 明确检查项目、检验目的、选择采集方
由于体位的因素,在确立参考值时,应 考虑门诊和住院病人可能存在的结果差 异,故采集标本时要注意保持正确的体 位和保持体位的一致性。
病人准备
5.时间 时间对人的影响可大致分为线性和周期
性两种 线性时间影响:最主要的是年龄 周期性时间影响:最主要的是季节循环、
月经周期和昼夜变化。
病人准备
病人准备还应考虑病人的生物钟规律, 特别是激素水平分析,如女性生殖激素 与月经周期密切相关;胆固醇则在经前 期最高,排卵时最低;纤维蛋白原在经 前期最高,血浆蛋白则在排卵时减少。 生长激素于入睡后会出现短时高峰。胆 红素、血清铁以清晨最高;血浆蛋白在 夜间降低;血Ca往往在中午出现最低值。 故采血时间应在相同时间进行。
病人准备
喝带咖啡的饮料,可引起淀粉酶(AMY)、 AST谷丙转氨酶(ALT)、碱性磷酸酶 (ALP)、血糖(GLU)、儿茶酚氨等升高。
但空腹时间过长,会使血糖(GLU)和 蛋白质降低,而使胆红素升高。
病人准备
(2) 高脂餐后2~4h采血,多数人ALP含量增高, 主要来自肠源性同工酶,且与血型有密切关系, O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。
前言
古人云:“差若毫厘,谬以千里”,高 质量的标本是高质量检验的第一步,没 有高质量的标本,再先进、精密的仪器 也得不出准确的结果,相反,医护人员 往往出于对先进仪器的信赖而忽视标本 质量引起的结果偏差,盲目相信检验结 果,影响诊断、治疗及疗效判断。
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血液标本的采集
头盖颜色
红色
临床用途 标本类型
免疫发光
血清
制备步骤
采血后不需颠倒混匀
添加剂
无(内壁硅化)
黄色
急诊生化
血清
采血后立即颠倒混匀6-8次
分离胶(内壁硅化)
桔黄
生化血清
血清
采血后立即颠倒混匀3-5次
纤维蛋白酶(内壁硅化)
浅蓝色
凝血试验
血浆
采血后立即颠倒混匀6-8次
柠檬酸钠与血样比为1:9
尿培养标本的采集与送检
①中段尿采集法: 女性:先以肥皂水清洗外阴部,再用灭菌水冲洗,用灭菌纱布擦拭,弃去前段尿,
留取中段尿10ml于灭菌容器内送检。 男性:用肥皂水清洗尿道口,后用清水冲洗即可采取中段尿。包皮过长者,为防
止包皮内细菌污染,可将包皮翻开冲洗,再取中段尿送检。 • 尿液需在膀胱储存4小时以上。
医院环境卫生学监测
含碘、氯消毒液 戊二醛
物表、手 无菌物 内镜冲洗液、透析液 空气培养基
物体表面卫生学监测
• 采样时间: 在消毒处理后进行采样。
• 采样方法: 对于平面的物体,用5cm × 5cm灭菌规格板,放在被检物体表面,采样面积 100 cm2,连续采样4个,用浸有含相应中和剂的无菌洗脱液的棉拭子1支,在规 格板内横竖往返均匀涂擦各5次,并随之转动棉拭子,剪去手接触部位后, 将棉拭子投入含相应中和剂的无菌洗脱液的试管内,立即送检。门把手等不 规则的物体表面用棉拭子直接涂擦采样。
糖耐量标本采集的特殊要求
⑴试验前每天碳水化合物摄入量不少于150克,有正常的体力活 动至少3天。
⑵过夜空腹10—12个小时。 ⑶试验前8小时禁止吸烟、饮酒或咖啡,口渴可以饮水。 ⑷被试者应尽量注意休息,不做剧烈的体力活动,避免精神紧张,
保持情绪稳定。 ⑸将75克葡萄糖令受检者一次服下,5分钟内饮毕。 ⑹分别于服糖前及服糖后1、2、3小时各采取静脉血一次。
• 取血后立即拔针,将针头斜面刺入橡皮塞内,以免空气进入影响结果,若 注射器内有气泡,应尽快排出。将注射器轻轻转动,可用手搓动1分钟, 使血液肝素充分混合,防止凝血。
• 用无菌干棉签压迫穿刺点,力度以摸不到动脉搏动为准,按压10-15分钟。
ห้องสมุดไป่ตู้
血培养标本采集的特殊要求
• 采集前要严格洗手:血培养的标本采集的无菌要求比采集其 他标本要求要高。
常见的检验采血错误
• 张冠李戴。 • 采血管选择错误。 • 空腹项目进食后采血。 • 抗凝标本由于未混匀造成凝集。 • 采血量过少或过多。 • 细菌培养采血污染。
尿液标本的采集
尿液标本的种类
(1)晨尿标本:留取清晨第一次尿,经长时间睡眠后,尿液趋向于浓缩和酸化,各种有型 成份相对集中,且不受饮食、药物、运动等的影响,故最适合于尿常规检查。特别适合 于住院患者和肾脏患者及泌尿系统疾病的动态观察和早期妊娠试验、本周氏蛋白测定等。
检验标本采集和 运输质量控制
任何一份检验报告都经过:
检验申请→标本采集→标本运送→标本签收→标 本检验→检验后分析→报告发送→报告分析这几 个环节,整个过程都需要严格的质量控制,其中 的任何一个环节出现问题都将直接影响检测结果, 导致检测结果误差增大甚至发出错误报告。影响 临床医生的诊疗活动。
据相关统计:
专用尿液标本的采集
(1)体位性蛋白尿试验标本的收集: 在夜间入睡前先令患者排尿,使膀胱排空,此次尿液不要,次日起床后立 即排尿,并将标本留检。再令患者站立及走动,两小时后再次排尿留检。若 第一次标本蛋白呈阴性而第二次为阳性,则可确诊。
(2)尿三杯试验: 取尿杯3个,标明1,2,3.嘱患者连续排尿,分别收集于3个尿杯中。第1杯 和第3杯各收集10ml 即可,大部分尿留在第2杯中。尿要一次排出,中间 不可间断。标本收集完后立即送检。
(2)随机尿标本:留取随时自然排尿标本,适用于尿液一般定性检查,为门诊急诊患者所 常用。易受饮食、药物、运动等的影响,能使低浓度或临界浓度的病理性物质和有型成 份漏检,并可出现饮食性糖尿。
(3)12小时尿标本:患者可正常进食,晚上8点排尿,弃去。以后12小时尿液全部收 集于一洁净容器内,常用于细胞、管型等有型成份的计数,如Addis计数等(夏季应先加 入1ml福尔马林于容器内防腐)。
③膀胱穿刺取尿法:此法可避免污染,但有一定的痛苦,患者难以接受。
粪便标本的采集
粪便标本的采集与送检
患者的准备: 1.患者应于治疗之前留取标本。 2.留作隐血试验的标本应于3日前禁食肉类及动物性食物,并禁
服铁剂及维生素C等药物。 标本的采集与送检: 1.自然排便采集法:自然排便后,挑取有脓血、粘液部分粪便2-3g,
尿标本的送检及保存
(1)尿标本除特殊规定外,一般需留取10ml左右。 (2)尿标本收集后应及时送检,以免有型成分破坏和有机物质 分解. (3)常用防腐剂:
甲醛(每100ml 尿加400g/L的甲醛0.5ml):尿液有型成分, 如3小时尿沉渣、12小时尿沉渣( Addis计数)等。
甲苯(每100ml 尿加甲苯0.5ml) :尿糖、尿蛋白测定。 盐酸(每L 尿加浓盐酸10ml):尿钙、17-羟、17-酮。
• 中段尿培养的结果是以细菌数为诊断泌尿系感染的依据,故留取的尿液应立 即送检(不超过1小时),否则尿中细菌迅速繁殖,使菌落计数结果不可靠而 影响诊断。
• 最好在用药前留取标本。
②导尿法:用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用注射器斜穿管壁抽吸尿液;或消 毒后解开接口,弃去导尿管前段尿,留无污染的膀胱内尿液,长期留置导尿 管者应在更换新导尿管后留取尿标本。(细菌易在导尿管壁定植)
绿色 紫色 黑色
血流变试验
血细胞分析 血氨、糖化
血沉试验
血浆 全血 全血
采血后立即颠倒混匀6-8次 采血后立即颠倒混匀6-8次 采血后立即颠倒混匀6-8次
肝素锂或肝素钠 EDTA-2K或EDTA-3K 柠檬酸钠与血样比为1:4
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4
5
6
美国临床实验室标准化委员会(NCCLS)推荐采血顺序
在实际工作中,如患者静脉条件较差,有可能采血不足,则应首先考虑凝血(蓝 帽)和血沉(黑帽)检测管,因为这两种样本对血量要求最严格。
标本条形码粘贴规范
标本采集与运输流程
选择新申请状态,会显示当前科室所有医生开出的新检验申请,选择打印条码
显示当前科室所有待打印条码列表,勾选相应的医嘱信息点击打印进行打印条码操作。 此时打印出打印出对应的条码!此时打印后的医嘱状态会自动改变为已打印!
双击医嘱列表或者点击扫描确认按钮弹出扫描确认框进行确认
注意: 若 空 腹 血 糖 大 于 15mmol/L 或 或 I 型 糖 尿 病 有 酮 症 倾 向 者 建 议 以 “馒头试验”代替即口服葡萄糖,必要时寻求临床医生的帮助。
高血压三项标本采集的特殊要求
• 病人准备 (1)β-阻断剂、血管扩张剂、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平、一 般要在停药后两周测定PRA,利血平等代谢慢的药物应在停药后三周测定。不 适停药的病人改服胍乙啶等影响PRA较小的降压药。 (2)钠摄入量影响PRA水平,故病人测定PICA.三天前应适当减少食盐摄入量。 病人应测定取血前24小时尿钠含量,以供分析PRA结果时参考。
• 标本采集 病人清晨不起床或空腹平卧两小时,可在6:00—8:00之间抽取基础态血标本, 然后肌肉注射速尿0.7m g/kg体重,总剂量不大于5 0mg,保持立位两小时(可 以走动),即坐取激发态血标本。
• 注意 注射速尿后两小时内随尿排出的水和电解质的量较多,如 病人血钾过低,试 血前应适当给予补充。试验过程中病人可能出现口渴、无力、出汗等,一般 不重。但应注意观察,必要时寻求医生的帮助。
• 消毒瓶塞:弃去瓶顶塑料帽,用70%乙醇消毒瓶顶橡皮塞, 待干60秒。
• 皮肤消毒: ① 70%酒精擦拭皮肤穿刺部位30s以上。②用 1~2%碘溶液从穿刺点向外以1~2英寸直径画圈进行消毒30s。 ③ 70%酒精脱碘。对碘过敏的病人只能用70%酒精消毒,消 毒60s,待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
• 体位: 体位影响血液循环,由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变,则 细胞成分和大分子物质的改变较为明显。
• 输液 由于输液改变人体血液、体液的成份,应尽量避免输液时采集样本。 若不得不边输液边采血,也应在输液的另一侧手臂取血。
• 饮食 血脂检查,在化验前24h要禁高脂饮食,12h禁流质。 若要做大便隐血试验,则要在收集标本前3天禁动物性饮食。
在扫描条码框内扫描已完成标本采集的试管条码,以确认采集人和采集时间。 扫描后会显示病人医嘱信息,以及该标本的采集人和采集时间!
点击已确认,显示所有采集确认后的标本列表! 点击护送标本按钮,弹出护送窗体界面。
登录后进行标本条码扫描,确认标本接收人和接收时间
点击已护送,可以查询已转交标本
条码补打:在哪一个环节,就在该环节补打,拒收和退回的在已拒收中。 拒收和退回的标本最好不要生成新条码,一是增加医生工作量,二是生成新的费用。
标本采集时间的控制
血液标本原则上晨起空腹时采集,其结果准确可靠, 因它避免了摄入成分和生理活动对检测指标的影响。
细菌培养应尽量争取在抗生素使用前采集标本。 急性心肌梗死患者查cTnT在发病4-6小时采样较好。
病人准备
• 运动状态: 除了特殊检验有专门规定之外,一般要求病人处于安静状态,因运动 能影响许多项目的测定结果。
血气分析标本采集特殊要求
• 用注射器抽取6250U/ml肝素钠0.2ml,转动针栓使整个注射器内均匀附着 肝素,针尖向上推出多余液体和注射器内残留气泡。
• 选动脉穿刺部位,触摸动脉搏动最明显处,用碘伏棉签消毒穿刺部位(5cm) 和术者左手食指和中指。
• 用左手食指和拇指固定动脉(因人而异),右手持注射器与皮肤呈40-60度穿 刺,若取股动脉穿刺采血则垂直进针,穿刺成功则血自动流入针管内,色鲜 红,采血1-2ml即可。
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