《植物生理学实验技术》课程教案
植物生理实验设计教案
植物生理实验设计教案一、引言植物生理实验对于深入理解植物生长和发育过程以及适应环境的机制非常重要。
在本教案中，我们将设计一套植物生理实验，旨在帮助学生掌握实验设计的基本原则，并了解与植物生理研究相关的关键概念和方法。
二、实验目标通过本次实验，学生将能够：1.了解植物光合作用和呼吸作用的基本原理；2.掌握测量光合速率和呼吸速率的方法；3.分析不同环境因素对光合速率和呼吸速率的影响。
三、材料与方法3.1 实验材料- 绿豆种子- 高亮度LED灯或日之光灯- 红外线传感器或氧气电极（用于测量呼吸作用）- 温度计- 培养皿、试管等容器3.2 实验步骤步骤一：准备工作1.将绿豆种子置于湿润纸巾中，在28℃温室条件下孵化48小时。
2.为每组设置相同数量和大小且发芽良好的绿豆苗。
步骤二：测量光合速率1.在白天，将绿豆苗放置于明亮环境下。
2.使用红外线传感器或氧气电极测量植物产生的氧气含量，以确定光合速率。
步骤三：测量呼吸速率1.在黑暗条件下，将绿豆苗放置于容器中，并覆盖密封。
2.使用红外线传感器或氧气电极测量容器中的氧含量变化，以确定呼吸速率。
步骤四：控制实验条件1.对比不同光照强度、温度等因素对光合作用和呼吸作用的影响。
2.通过改变以上因素，并重复上述步骤二和三来收集数据和分析结果。
四、实验原理4.1 光合作用：植物通过叶绿体进行光合作用，利用光能转化为化学能（ATP）和还原力（NADPH），并产生有机物质。
其中主要反应是类肌球蛋白组织I（PSI）和II （PSII）之间的非循环相连反应链。
4.2 呼吸作用：植物通过线粒体进行呼吸作用，将有机物质氧化为二氧化碳和水，并释放能量（ATP）。
其中主要反应是在线粒体内部通过三脱酸核苷酸电子传递链完成的。
五、预期结果与讨论根据光合速率和呼吸速率的测量结果，我们可以得出以下结论：1. 光照强度对光合速率影响显著。
随着光照强度的增加，植物的光合速率也会增加。
然而，在某一临界点之后，进一步增加光照强度将不再对光合速率产生明显影响。
《植物生理学实验技术》教学大纲
《植物生理学实验技术》教学大纲Experimental technology of plant physiology一、基本信息二、教学目的（一）知识目标使学生结合理论教学在感性认识上对理论有更深入的了解和掌握。
（二）能力目标使学生掌握植物生理学研究的基本技术，具备一定的实验技能。
（三）素质目标培养学生的动手及解决问题的能力。
三、基本要求（一）了解目前植物生理学研究的基本方法。
（二）理解各研究方法的原理和技术。
— 1 —（三）掌握掌握植物生理学研究的基本技术和技能。
四、实验项目设置情况五、各实验项目教学内容实验项目一：叶绿体色素的提取、分离、理化性质和定量测定3学时（一）实验目的要求掌握叶绿素的理化性质及其定量测定方法，加深学生对光合色素的理性、感性认识，熟练掌握分光光度计的使用原理及其方法。
（二）实验材料和仪器设备材料：新鲜的菠菜（或芹菜、油菜）或其他待测植物叶片。
试剂：丙酮；汽油或四氯化碳；无水碳酸钠；碳酸钙；石英砂等。
仪器设备：大试管；软木塞；大头针；滤纸；天平等。
（三）实验内容（1）提取— 2 —（2）纸层析分离（3）叶绿素的荧光现象（4）H+和Cu2+对叶绿素分子中Mg2+的取代作用（5）定量测定实验项目二：植物组织水势的测定3学时（一）实验目的要求使学生了解植物组织水势在植物水分代谢中的重要性及目前水势测定的常用方法，熟练掌握阿贝折射仪的使用方法。
（二）实验材料和仪器设备材料：新鲜的菠菜（或芹菜、油菜）或其他待测植物叶片。
试剂：不同浓度的蔗糖溶液；甲烯蓝（研成粉末）。
仪器设备：水势测定取样箱；小试管；大试管；毛细移液管；打孔器；阿贝折射仪；试管架；镜头纸等（三）实验内容（1）小液流法（a）向大试管中加入不同浓度蔗糖溶液5-10ml。
（b）用打孔器将欲测叶片打成圆片，分别装入小试管底部，向各管分别加入不同水势或浓度蔗糖溶液1ml，放少许甲烯蓝，静置15-20min。
（c）用干净的毛细移液管，吸取1-2滴，小心地插入装着相对应同浓度蔗糖溶液大试管溶液的中部，轻轻地挤出一小滴蓝色溶液，观察蓝色液滴流动方向。
《植物生理学实验》实验教学大纲
《植物生理学实验》实验教学大纲课程名称：植物生理学课程类别：专业主干课适用专业：生物技术考核方式：考查实验学时、学分：16 学时0.5学分所属实验室：植物生理学实验室一、实验教学目的植物生理学是一门实践性与综合性很强的科学，对农业生产、作物栽培、花卉园艺栽培等实践性工作有重要的指导意义。
《植物生理学实验》是《植物生理学》的配套课程，要求学生学完本课程后能够对课堂教学内容即：课堂讲授的基本理论、基础知识有深刻的理解，而且要使学生掌握植物生理学的基本实验方法和技能，并在科学态度、实验技能技巧、独立工作能力、理论联系实际能力等方面获得基本的训练。
为未来的教育教学、科研和生产实践打下坚实的基础。
通过本课程的学习，使学生具备以下素质和能力：1. 通过植物生理学实验课的学习，使学生具备基本的实验操作能力。
2. 使学生能够应用植物生理学实验中的基本技术：无土栽培技术、组织培养技术等，发展现代农业、现代园林、设施农业、现代植物工厂等的创新意识和创新能力。
3. 掌握植物生理学实验中的一些基础性实验，获得相关的教育教学能力，进一步的科研工作能力。
4. 通过实验中开展的设计性试验等培养学生的实验设计能力、综合应用能力。
二、实验教学要求通过本实验课程的教学，要使学生学会植物生理学的基本实验方法、技术和设计思路，掌握植物生理学基本原理的验证方法和定量测定植物体内发生的生理生化变化，并初步具有完成综合性、设计性实验的能力。
三、对学生的指导和要求1.要求学生对每个实验的原理、方法有深刻的认识和理解2.要求学生在实验前预习实验内容，实验过程中从玻璃仪器的洗涤、药品的配制、称量及仪器的操作都要严格规范，实验后认真分析实验结果。
四、实验考核方式考查：平时，期末五、实验教学内容实验项目(一)：植物组织渗透势的测定(1) 项目类别：必做■选做□(2) 项目性质：基础性■验证性■设计性□综合性□(3) 项目主要目的要求：一、质壁分离法：掌握用质壁分离法测定植物组织渗透势的原理，学会观察质壁分离现象并进行细胞渗透势的计算。
植物生理学实验技术教学设计
植物生理学实验技术教学设计简介植物生理学是研究植物生命过程的科学，其研究的主要内容涉及植物的生长、发育、代谢、形态、生殖、环境适应等方面。
在植物生理学的教学中，实验是非常重要的环节之一，通过实验可以让学生深入理解生理现象和生理过程，提高学生的动手能力和实际应用能力。
本文将介绍植物生理学实验技术教学设计的相关内容，包括实验内容、教学目的、实验流程和实验结果等。
实验内容实验一：植物的生长与发育规律实验教学目的通过对植物生长发育规律的研究，掌握植物的生长发育过程，了解植物生长规律，提高学生的实验操作能力。
实验材料鸡冠菊种子、土壤、光蒸馏水、培养皿、草木灰实验步骤1.准备工作：将培养皿洗净，加入草木灰和土壤，混匀后均匀铺在培养皿底部，浇入适量的光蒸馏水。
2.将鸡冠菊种子放在培养皿中，将其放置在适当的光照下，观察和摄影记录植物的生长过程。
3.实验结束后，观察和测量植物的生长高度和重量，分析和总结实验结果。
实验结果通过本次实验，可以深入了解植物的生长发育规律，并掌握实验操作技能。
实验二：植物的代谢实验教学目的通过研究植物的代谢过程，掌握植物的营养生理过程，了解植物维持生命的物质基础，提高学生的实验操作技能。
实验材料萝卜、活性炭、硫酸铁实验步骤1.准备工作：将萝卜切成薄片，用活性炭吸附其中的氢气，再用硫酸铁测定其中铁离子的含量。
2.将萝卜薄片放入活性炭中，观察和记录在不同时间内样品中酒精的浓度变化。
3.实验结束后，观察和测量植物的代谢产物含量，分析和总结实验结果。
实验结果通过本次实验，可以深入了解植物的代谢过程，掌握实验操作技能。
实验流程以下是本次实验的流程图:流程图流程图总结植物生理学实验技术教学是植物生理学教学中非常重要的一环。
通过实验可以深入了解生理现象和生理过程，同时也可以提高学生的动手能力和实际应用能力。
本文介绍了植物生长与发育规律实验和植物代谢实验的教学设计，其中包括实验材料、教学目的、实验步骤和实验结果等。
《植物生理学》备课备课教案
《植物生理学》备课教案一、教学目标1. 知识与技能：（1）理解植物细胞的基本结构和功能；（2）掌握植物细胞的分裂和分化过程；（3）了解植物的光合作用和呼吸作用；（4）认识植物的生长发育和生殖过程。
2. 过程与方法：（1）通过观察植物细胞切片，了解植物细胞的结构；（2）利用实验方法，探究植物的光合作用和呼吸作用；（3）观察植物的生长和发育过程，分析其生理机制。
3. 情感态度价值观：培养学生对植物生理学的兴趣，增强其关爱植物、保护生态环境的意识。
二、教学重点与难点1. 教学重点：（1）植物细胞的基本结构和功能；（2）植物的光合作用和呼吸作用；（3）植物的生长发育和生殖过程。
2. 教学难点：（1）植物细胞的分裂和分化过程；（2）光合作用和呼吸作用的关系；（3）植物生长发育的生理机制。
三、教学准备1. 教材：《植物生理学》；2. 实验器材：显微镜、植物细胞切片、实验药品等；3. 课件：植物细胞结构、光合作用和呼吸作用、生长发育过程等图片和视频。
四、教学过程1. 导入：通过展示植物生长过程的图片，引发学生对植物生理学的兴趣，导入新课。
2. 教学内容：（1）植物细胞的基本结构和功能；（2）植物细胞的分裂和分化过程；（3）植物的光合作用和呼吸作用；（4）植物的生长发育和生殖过程。
3. 课堂讨论：引导学生结合教材内容，分组讨论植物细胞的结构、功能以及光合作用和呼吸作用的关系。
4. 实验操作：分组进行植物细胞切片观察实验，让学生亲自操作显微镜，观察植物细胞的结构。
五、课后作业1. 复习教材，整理本节课所学的知识点；2. 完成课后练习题，巩固所学内容；3. 预习下一节课的内容，为课堂学习做好准备。
六、教学评估1. 课堂问答：通过提问方式检查学生对植物细胞结构、功能以及光合作用和呼吸作用的理解程度。
2. 实验报告：评估学生在实验过程中的操作技能以及对观察结果的描述和分析。
3. 课后作业：检查学生对课堂所学知识的巩固情况。
《植物生理学实验技术》课程教案
理解和掌握。
教学手段
利用多媒体课件、实验视频等辅 助教学手段，提高教学效果和学
生的学习兴趣。
实验课程安排与注意事项
实验课程安排
根据教学大纲和实验条件，合理安排实验项目和实验时间，确保学生能够充分 掌握各项实验技术。
实验结果与分析
根据实验结果，分析光照强度对叶片光合作用速率的影响，并探讨其 原因。
植物呼吸作用强度测定实验
实验目的 实验原理 实验步骤 实验结果与分析
了解植物呼吸作用的原理，掌握呼吸作用强度测定的方法。
植物呼吸作用是植物体吸收氧气并分解有机物的过程，通过测 定单位时间内植物体消耗氧气的量，可以计算呼吸作用强度。
鼓励实验人员参加自救互救技 能培训，提高自救互救能力， 减少事故损失。
06
CATALOGUE
课程考核与成绩评定
平时成绩评定标准及比例分配
课堂表现
根据学生的出勤率、课堂参与度、实验操作规范性等方面 进行评价，占总评成绩的20%。
实验报告
每次实验后要求学生提交实验报告，包括实验目的、原理 、步骤、结果分析和讨论等，占总评成绩的30%。
鼓励实验室采用环保型实验 材料和方法，减少废弃物产 生和对环境的影响。
应急情况下自救互救技能培训
实验室应制定应急预案，明确 应急组织、通讯联络、现场处
置等方面要求。
定期组织实验人员进行火灾、 化学品泄漏等应急演练，提高
实验人员的应急处置能力。
实验室应配备急救箱、灭火器 等应急器材，并确保实验人员 了解其使用方法和注意事项。
光合作用
植物利用光能将二氧化碳和水转化为 葡萄糖和氧气，同时储存能量。
《植物生理学》备课备课教案
《植物生理学》备课教案一、教学目标：1. 知识与技能：（1）理解植物细胞的基本结构和功能；（2）掌握植物的光合作用和呼吸作用的原理及应用；（3）了解植物生长发育的过程和调控机制。
2. 过程与方法：（1）通过观察植物细胞切片，认识植物细胞的结构；（2）利用实验方法探究植物的光合作用和呼吸作用；（3）观察植物生长发育过程，分析其调控机制。
3. 情感态度价值观：培养学生对植物生理学的兴趣，提高学生关注生态环境、珍惜资源的意识。
二、教学重点与难点：1. 教学重点：（1）植物细胞的基本结构和功能；（2）植物的光合作用和呼吸作用的原理及应用；（3）植物生长发育的过程和调控机制。
2. 教学难点：（1）植物细胞结构与功能的对应关系；（2）光合作用和呼吸作用过程中的物质变化；（3）植物生长发育的分子调控机制。
三、教学方法与手段：1. 教学方法：（1）讲授法：讲解植物细胞结构、光合作用和呼吸作用的原理；（2）实验法：进行植物光合作用和呼吸作用的实验；（3）观察法：观察植物生长发育过程；（4）讨论法：分组讨论植物生长发育的调控机制。
2. 教学手段：（1）多媒体课件：展示植物细胞结构、光合作用和呼吸作用的过程；（2）实验器材：进行光合作用和呼吸作用的实验；（3）观察植物生长发育的实物材料。
四、教学过程：1. 导入：通过展示植物王国的图片，引导学生关注植物的生长发育过程，激发学习兴趣。
2. 植物细胞结构与功能：（1）讲解植物细胞的基本结构，如细胞壁、细胞膜、细胞质、细胞核等；（2）分析植物细胞各结构的功能及对应关系。
3. 光合作用和呼吸作用：（1）讲解光合作用的原理及应用，如绿色植物的光合作用、蓝藻的光合作用等；（2）讲解呼吸作用的原理及应用，如植物的呼吸作用、微生物的呼吸作用等；（3）分析光合作用和呼吸作用之间的关系。
4. 植物生长发育：（1）讲解植物生长发育的过程，如种子萌发、植株生长、开花结果等；（2）分析植物生长发育的调控机制，如激素调节、基因调控等。
2024版植物生理学课程教案
02
植物体内的水分运 输
通过木质部导管和韧皮部筛管进 行长距离运输，短距离运输则依 靠细胞间的胞间连丝。
03
植物的蒸腾作用
叶片气孔开放，水分以气态形式 从植物体内散失到大气中，是植 物水分散失的主要途径。
植物的水分平衡与渗透调节
植物的水分平衡
吸收
运输
矿质元素在植物体内通过木质部和韧皮部进行长距离 运输，以满足不同器官和组织的需求。
植物通过根系从土壤中吸收矿质元素，吸收过 程受土壤环境、根系发育和元素形态等因素影 响。
利用
植物将吸收的矿质元素用于合成各种有机物质， 如蛋白质、核酸、酶等，以维持正常的生命活 动。
合理施肥的原理与技术
施肥原理
通过喷洒乙烯或脱落酸，促进 或延缓果实成熟。
促进种子萌发
用赤霉素处理种子，打破休眠， 提高发芽率。
提高抗逆性
用脱落酸处理植物，提高抗旱、 抗寒能力。
增产增收
合理使用植物激素，可提高作 物产量和品质，增加经济效益。
THANKS
感谢观看
二氧化碳与五碳糖（RuBP）结合，形 成六碳中间产物。
糖的生成
六碳中间产物经过一系列酶促反应， 最终生成葡萄糖等有机物质。
光合作用的影响因素及其调控
光照强度
光照强度直接影响光 合作用的速率，过弱 或过强的光照都会抑 制光合作用。
温度
温度影响光合作用相 关酶的活性，适宜的 温度有利于光合作用 的进行。
植物通过吸水、运输和蒸腾等过 程维持体内水分的动态平衡，保 证正常生理活动的进行。
植物的渗透调节机制
植物对水分胁迫的响应
通过合成和积累有机溶质（如脯 氨酸、甜菜碱等）和无机离子 （如K+、Cl-等）降低细胞渗透势， 提高吸水能力。
植物生理实验设计教案
植物生理实验设计教案1.实验目的：探究植物生理过程中的一些基本原理和机制，加深对植物生理学的理解，培养学生的实验设计和操作能力。
2.实验内容：2.1光合作用速率的测定2.2呼吸速率的测定2.3水分蒸腾速率的测定2.4叶片光合色素的分析2.5酶活性的测定2.6激素对种子萌发的影响2.7pH值对酶活性的影响3.实验设计：3.1光合作用速率的测定材料：仙人掌叶片、架子、烧瓶、温度计、草绿素提取液步骤：1)在室内清洁的光线条件下获取仙人掌叶片，放置于烧瓶中；2)把烧瓶悬挂在架子上，将草绿素提取液放入烧瓶中；3)观察烧瓶中气泡的数量和大小，测量温度，记录数据；4)改变光照的强度和时间，观察气泡的变化。
3.2呼吸速率的测定材料：豆苗、封闭室、酒精灯、计时器步骤：1)在室内清洁的环境下，准备豆苗；2)在封闭室中放入豆苗，盖上盖子；3)在封闭室内放置酒精灯，进行燃烧，同时计时；4)观察封闭室内空气的变化，记录时间。
3.3水分蒸腾速率的测定材料：其他维管植物叶片、测量器、烧杯、电子天平步骤：1)准备其他维管植物叶片，称量叶片的质量；2)放置于烧杯中，测量烧杯的质量；3)将烧杯放入测量器中，记录初始质量，放置一段时间后，再次记录质量；4)根据质量的变化计算水分蒸腾速率。
3.4叶片光合色素的分析材料：维管植物叶片、70%酒精、束丝菌素、手套、玻璃管、流动相步骤：1)收集维管植物叶片，将叶片放入70%酒精中，研磨成均匀的浆状物；2)将浆状物过滤，得到植物的粗提液；3)将提取液注入试管中，配制出不同浓度的标准曲线；4)通过吸光度计测定不同浓度下的吸光度，绘制标准曲线；5)测定待测样品的吸光度，根据标准曲线计算叶片光合色素的含量。
3.5酶活性的测定材料：酶提取液、底物液、探针、试管、试管夹步骤：1)准备酶提取液和底物液，并测定其初始浓度；2)将酶提取液和底物液混合，放入试管中；3)使用探针测定试管中的浓度变化，记录时间和数据；4)计算酶的活性。
高中生物教学备课教案植物生理实验设计
高中生物教学备课教案植物生理实验设计一、实验目的本实验旨在通过对植物生理过程的观察和实验操作，培养学生的动手能力和实验设计能力，使其了解植物生长与环境因素之间的关系。
二、实验原理植物生理实验设计的基础原理主要包括光合作用、呼吸作用、光周期等方面。
通过调整实验条件，观察植物的生理反应，可以进一步认识植物如何适应不同的环境因素。
三、实验材料和仪器1. 实验材料- 小麦种子- 温水- 盐水- 滤纸- 秤- 温度计2. 实验仪器- 烧杯- 滴定管- 试管- 显微镜- 培养皿四、实验设计1. 实验一：光合作用的影响步骤：- 选取相同大小的小麦种子，分成两组。
- 第一组置于光照充足的环境下，第二组置于没有光照的环境下。
- 观察并记录两组小麦种子的发芽情况和植株生长情况。
结果分析：通过对比两组小麦种子的发芽情况和植株生长情况，可以得出在光照充足的环境下，植物进行光合作用能够促进植物的生长。
2. 实验二：温度对呼吸作用的影响步骤：- 在两个试管中分别加入温水和冷水，并分别将温度记录在试管外侧。
- 将相同大小的小麦种子分别放入温水和冷水中浸泡30分钟，然后取出放置在培养皿内。
- 观察并记录两组小麦种子的发芽情况和生长情况。
结果分析：比较两组小麦种子的发芽情况和生长情况，可以得出温度对植物的呼吸作用有一定影响，较高的温度有助于促进呼吸作用。
3. 实验三：盐水浓度对植物生长的影响步骤：- 准备不同浓度的盐水溶液，如0.1%，0.5%，1%等。
- 将相同大小的小麦种子分别浸泡在不同浓度的盐水溶液中。
- 观察并记录种子的发芽情况和生长情况。
结果分析：通过对比不同浓度盐水溶液中种子的发芽情况和生长情况，可以得出过高的盐浓度会对植物的生长产生负面影响，而适度的盐浓度有助于植物的生长。
五、实验纪录及总结将实验设计、实验过程、结果记录于实验报告中，对结果进行分析总结，并注明实验中遇到的问题及改进的方法。
六、拓展实验学生可自行设计并进行拓展实验，如观察光周期对植物生长的影响、不同颜色光对光合作用的影响等。
植物生理学实验教学教案
● 03
第3章 植物呼吸作用实验
植物呼吸速率测定实验
实验目的
测定植物在不同 条件下的呼吸速
率
结果分析
不同温度、湿度 等条件下呼吸速
率的差异
实验步骤
制备试剂、采集 样品、测定数据
乙醇发酵实验
乙醇发酵实验旨在研 究植物细胞在缺氧条 件下的代谢途径。通 过设计不同条件下的 发酵实验组，分析乙 醇产量与细胞代谢途 径的关系。实验结果 将深入理解植物生理 代谢的机制。
加强实验结果的应用能力
03、Leabharlann 创新思维培养鼓励学生思考实验的各种可能性
培养学生创新思维
04、
教师培训与支持
提供教师实验教学培训 支持教师实验教学的创新
植物生理学实验教学的发展方向
资源整合共 享
推动实验教学资 源整合共享
课程内容创 新
不断创新实验教 学的课程内容
技术设备更 新
促进实验教学技 术设备更新
植物组织中激素含量的测定结果
03、
植物激素信号转导实验
转基植物中激素信号传递路径的分析
04、
● 05
第5章 植物生理实验技术
植物组织培养技术实验
01 取材
采集植物材料用于培养
02 接种
将植物材料接种到培养基上
03 培养
提供适当的生长条件促进植物生长
植物细胞融合技术实验
01、 实验设计
选择不同植物种类进行细胞融合
03、
02、 结果分析
研究细胞融合后植株的性状和遗传机制
04、
植物互作实验
实验方法
构建植物种间竞 争实验
结果分析
探讨植物物质交 换、竞争机制及
演化意义
植物生理学实验教案
植物生理学实验教案实验指导书：候书林主编. 植物生理学实验指导.科学出版社，2004 实验一、植物组织渗透势测定-质壁分离法实验二、植物组织水势测定-小液流法实验三、叶绿体色素的提取与分离及理化性质鉴定实验四、叶绿素a,b 含量测定实验五、植物体内几种呼吸酶的测定实验六、植物叶面积测定实验七、植物根系对离子的选择性吸收实验八、叶片光合速率的测定及光合仪的使用实验九、种子活力的快速测定实验十、植物组织可溶性糖含量的测定实验十一、低温对植物的伤害实验十二、丙二醛含量的测定实验一、植物组织渗透势测定-质壁分离法[原理]将植物组织置于对其无毒害的一系列不同浓度的溶液里处理一定时间，然后镜检发生质壁分离的细胞数，通常视野中有50％的细胞发生质壁分离时定为初始质壁分离，细胞初始质壁分离时压力势为零，因而可把引起细胞初始质壁分离的外界溶液称之为等渗溶液，其溶液具有的渗透势即为细胞的渗透势。
由于很难正好找到引起50％细胞发生质壁分离的浓度。
因此通常用插值法求得等渗溶液浓度，代入公式即可计算渗透势。
[器材与试剂]器材：显微镜，载玻片，盖玻片，镊子，刀片，培养皿(或具塞试管)，记号笔，滴管。
试剂：蔗糖。
[方法与步骤]1. 配制0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7mol蔗糖/L水的质量摩尔浓度，贮6个试剂瓶中，必要时配制溶液浓度的相差可≤0.05mol蔗糖/L水。
2. 取6套干净清洁的小培养皿，用记号笔编号，将配制好的不同浓度的蔗糖溶液按顺序倒入各个培养皿中使成一薄层，盖好皿盖。
3. 将带有色素的植物组织或叶片(可选用有色素的洋葱鳞片的外表皮，紫鸭跖草，蚕豆，小麦，玉米等叶的表皮)撕取表皮迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中，每个培养皿中放材料3个左右，使其完全浸没，浸泡20-40分钟。
4. 到时后，取出表皮，放在载玻片上，滴一滴相同浓度的蔗糖，盖上盖玻片，在显微镜下观察质壁分离的细胞数和细胞总数，直接或间接(插值法)地找出引起50％细胞发生质壁分离的外界溶液浓度，即为细胞渗透浓度值。
植物生理学实验课程
《植物生理学实验》课程大纲一、课程概述课程名称（中文）：植物生理学实验（英文）：Plant Physiology Experiments课程编号：18241054课程学分：0.8课程总学时：24课程性质：专业基础课前修课程：植物学、生物化学、植物生理学二、课程内容简介植物生理学是农林院校各相关专业的重要学科基础课，是学习相关后续课程的必要前提，也是进行农业科学研究和指导农业生产的重要手段和依据。
本实验课程紧密结合理论课学习内容，加深学生对理论知识的理解。
掌握植物生理学的实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学的基本理论是非常重要的。
本大纲体现了植物生理学最实用的技术方法。
实验内容上和农业生产实践相结合，加强学生服务三农的能力。
实验手段和方法上，注重传统、经典技术理论与现代新兴技术的结合，提高学生对新技术、新知识的理解和应用能力。
三、实验目标与要求植物生理学实验的基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面的基本研究方法和技能，包括基本操作技能的训练、独立工作能力的培养、实事求是的科学工作态度和严谨的工作作风的建立。
开设植物生理学实验课程，不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识的理解，而且对培养学生分析问题、解决问题的能力和严谨的科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要的作用。
要求学生实验前必须预习实验指导和有关理论，明确实验目的、原理、预期结果，操作关键步骤及注意事项；实验时要严肃认真专心操作，注意观察实验过程中出现的现象和结果；及时将实验结果如实记录下来；实验结束后，根据实验结果进行科学分析，完成实验报告。
四、学时分配植物生理学实验课学时分配实验项目名称学时实验类别备注植物组织水势的测定3学时验证性叶绿体色素的提取及定量测定3学时验证性植物的溶液培养及缺素症状观察3学时验证性植物呼吸强度的测定3学时设计性红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修植物生长物质生理效应的测定3学时验证性植物种子生活力的快速测定3学时验证性1果实、蔬菜中有机酸含量测定3学时设计性植物抗逆性的鉴定3学时设计性改良半叶法测定植物的光合速率6学时综合性选修植物生理综合演示实验3学时综合、设计性演示合计36学时注：本实验课程总计0.8学分，合24学时，安排8次实验，其中验证性实验占62.5%，综合性、设计性实验占37.5%。
《植物生理学实验》教学大纲全文
《植物生理学实验》教学大纲课程名称（中文/英文）：植物生理学实验（Plant physiology experiments） 课程编号：1805102课程类别：专业方向选修教材名称：《植物生理学实验》实验教学大纲与指导学时学分： 学时 21 学分 1 实验学时 21应开实验学期：二～三 年级 四～五 学期先修课程：植物生理学适用专业：环境科学，生物技术一、课程性质及要求本课程为环境科学、生物技术专业本科生开设的专业教育选修课，是《植物生理学》理论课教学的补充。
本课程教学要求：通过实验操作，让学生深入认识、巩固和扩充植物生理学的基本概念、基本原理、重要生理代谢机制等理论知识，学习植物生理学基本的研究方法和实验技术，培养学生进行科学研究的基本技能，提高学生动手能力以及分析问题、解决问题的能力，养成严谨的科学态度。
二、内容简介《植物生理学》是植物学科方向的高级课程，《植物生理学》实验课是充实课堂理论知识，锻炼学生动手操作能力，培养学生实验基本技能的辅助课程。
该课程通过实践操作，使学生掌握组成植物体各部分的组织学特征及根、茎、叶等器官的细胞学特征，以及掌握植物生理中水分代谢、光合作用、抗性生理、有机物质转化等基本概念和操作技能，更加熟悉植物生理学基础知识，为学生学习后续课程及日后参加生产、科研等工作打下基础。
三、主要仪器设备：普通显微镜，水浴锅，可见分光光度计，托盘天平四、教学方法与基本要求1．必须在所有化学，生物化学等课程完成后才能开设本课程；2. 一般是在理论课教授完成后才进行实验课程的教学；3. 教学方法主要是学生自己操作，授课教师边讲解边示范。
五、考核方法实验报告作为平时成绩记录六、实验项目设置序号实验名称内容提要实验学时每组人数实验属性实验要求1 淀粉粒，石细胞，厚角组织的观察观察植物不同组织的细胞形态及结构 2 1 验证2 根尖形态与结构观察 观察根尖的形态与结构 2 1 验证3 茎的初生与次生结构观察 观察单、双子叶植物茎的初生与次生结构 2 1 验证4 叶表皮细胞，气孔与结构观察观察植物叶表皮细胞及气孔形态与叶横切面结构2 1 验证5 植物细胞原生质流动和质壁分离现象的观察观察植物细胞原生质流动，质壁分离的现象2 1 综合6 植物组织水势的测定 利用小液流法测定植物组织的水势 3 4 综合7 植物叶绿素的提取、分离、性质及吸收光谱利用有机溶剂提取新鲜植物叶片的叶绿素，观察叶绿素的荧光现象，掌握吸收光谱测定方法3 4 综合8 过氧化物酶及超氧化物歧化酶活性的测定掌握植物材料中过氧化物酶及超氧化物歧化酶活性测定原理与方法,比较各种植物材料中酶活性的变化2 4 综合9 油类种子萌发时脂肪酸含量的变化掌握油类种子里脂肪酸测定的方法，比较它们在萌发过程中含量的变化3 4 综合小计21。
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《植物生理学实验技术》课程教案 实验：植物呼吸作用和光合作用强度的测定
授课学期：2008-2009学年第一学期
课程时数：4学时
授课对象：养殖0711、0712、0713
授课教师：张丽莉助教
实验教材：《基础生物学技术实验指导书》集大水产学院自编讲义.2008年主要教学参考书：
潘瑞枳主编.《植物生理学》. 北京：高等教育出版社. 2005
水产学院
2008年
一、目的意义及要求
意义：光合作用强度是代表植物光合作用性能的一个重要指标，往往作为新品种选育的一个生理指标。
而呼吸作用是植物代谢中心，可以作为植物生理活动的指标。
要求：本实验要求掌握测定的原理及方法
二、实验原理
光合作用与呼吸作用强度的测定，一般是测定一个盛有植物的密闭系统中CO2或O2的变化量。
真正光合速率=表观光合速率+呼吸速率，黑白瓶法是根据这个原理而设计的。
测水中溶解氧的含量是用著名的（Winkler）温克勒法，其原理是：根据氢氧化亚锰在碱性溶液中被水中的氧氧化为四价的锰化合物的反应，同时又定量地与全部溶解氧结合着，当再加入盐酸或硫酸时，四价锰化合物又被还原而成亚锰，同时将早先加入的碘化钾氧化，使其产生游离碘，它在量上相当于水中溶解的氧量，然后以硫代硫酸钠溶液滴定所产生的碘（方法与原理同海水化学中溶解氧的测定）。
三、材料、器材
材料：石莼
器材：
500mL三角瓶（黑白各一、带橡皮塞）2个
小碘瓶6个（100mL），烧杯一个（500mL）
移液管
滴定管一支（碱性），250mL三角瓶6个
量筒：100mL 2个；10mL 1个, 100℃的温度计,天平.
玻璃棒一支,虹吸管
四、测定步骤：
1、溶液浓度的标定：略
2、处理用的三角瓶及小碘瓶体积的标定：将黑、白三角瓶及小碘瓶分别编号，
然后装满水，盖上盖子或塞子，把多余的水倒掉，然后用容量瓶及移液管测瓶内的水的体积（要求精确到0.5ml）。
分别记着大三角瓶及小碘瓶的溶剂。
将表面玻璃洗净烘干，在扭力天平上称重。
要求精确到0.005g，并编号记于实验报告中。
3、处理：将黑白三角瓶各一个，用海水冲洗两次，然后用虹吸方式，装满海水(虹
吸管尖应达三角瓶底部、取出时，不要有气泡形成)。
并使水从瓶口溢出整瓶的三分之一左右，然后盖上盖子（不要有气泡）。
先取生长正常的大型海藻数棵：
藻体分别放入黑、白三角瓶中，用玻璃棒搅动一下，然后塞上塞子（注意里面不能有气泡）。
放在光亮的地方，从这时开始计时，处理一小时后结束（为了顺利进行工作，黑、白两瓶处理时间最好前后相隔15分钟），处理过程重，要摇动三次，取样测定时O2时，也要摇动一次，在处理过程中，要随时检查，若发现瓶中有气泡出现时，就要适当缩短处理时间，注意记录处理海水时的温度。
水中含氧量的测定：
首先用小碘瓶2个，用海水冲洗两次，然后用虹吸方式装满海水，并要少量水溢出，盖上盖子（里面不能有气泡），将盖外的水倒去，然后用1ml移液管顺序的加入1mlMnSO4或MnCl2溶液和1mlKI－NaOH溶液（注意取试剂时，将移液管尖端插入试剂中，只要能吸起即可）。
取出移液管后，在碘瓶内，液面上方放出溶液，立即谨慎的将瓶盖盖好，勿使空气进入，溢出的海水倒掉。
用手指按住瓶盖，用力反复颠倒碘瓶摇动，直到沉淀与液体完全混合为止。
混合后将碘瓶静置，让沉淀尽可能完全下沉到瓶底。
样品滴定：
小心打开瓶盖，用移液管加入1：1的H2SO4ml，加酸时，移液管尖靠近沉淀，但注意不要接触沉淀。
小心抽出移液管，盖上瓶盖，用手指按住瓶塞，反复颠倒碘瓶摇动，使沉淀全部溶解，呈黄色的清液。
将碘瓶中的溶液小心倒入三角瓶中（注意不要损失一点溶液，并放旁边待冲洗）,然后用Na2S2O3滴定，待溶液变成浅黄色后以同样的方法，取经过藻体处理后的黑、白瓶中的水进行含氧的测定，注意：将虹吸管插入有藻体的黑白瓶中取水时，动作要迅速，虹吸管尖端不要直接插入植物体上，以免堵住管口。
海藻样品重量和体积的测定
大型海藻的鲜重及体积的测定，将黑、白瓶中的海藻取出，分别用吸水纸将表面的水分吸干，放在表面玻璃上，然后在天平上称重。
称完后，分别将藻体加入盛有一定体积的水的量筒（100毫升量筒中）。
赶走气泡，看水的体积有增加多少，
即为藻体样品的体积。
五、计算
1.首先计算海藻处理前及处理后的海水含氧量：
2.然后算出黑、白三角瓶中所有水（水的数量应是体积减去绿藻体积数）在处理之前与处理之后的总含量，两者之差。
3.将黑瓶中所得的处理前后氧气数之差用海藻单位重量体积以及处理时间除，即得海藻单位重量或体积、在单位（小时）时间内呼吸作用所消耗氧气数（即为
植物呼吸强度）。
大型海藻单位重量克鲜重。
4.将白瓶中所得处理前后氧气数之差，用海藻单位重量或体积以及处理时间来除，即得海藻单位重量、在单位时间（小时）内光合作用放出的氧气减去呼吸作用所消耗的氧气后剩下的氧气数，将这个数值加上呼吸作用所消耗的氧气数的数值，即是植物光合作用强度的数值。
六、注意事项
1．实验材料的筛选：筛选石莼时要注意挑取新鲜的石莼，并用海水冲洗干净，避免将一些海水中的浮游生物及杂质带入。
2．虹吸法取水样：虹吸管尖应插入三角瓶底部，装满海水并使水从瓶口溢出整瓶的三分之一左右，取出虹吸管时动作要慢，不要有气泡形成，然后盖上盖子（不要有气泡，若有气泡则要重新取）。
3．移液管的使用：取试剂时要用专用移液管，将移液管尖端插入试剂中，只要能吸起试剂即可。
4．样品滴定：滴定到淡蓝色后，倒出一小部分溶液于原来的碘瓶中，继续滴定到蓝色刚好消失，即是滴定终点。
七、实验报告
1．植物材料：
2．处理前海水含氧量（两次平均）＝
3．处理后海水含氧量的测定（处理时间）
实验结果：
光合作用强度=
呼吸作用强度=。