实验七细菌生长曲线
细菌生长曲线测定
生05 边晔2010030026
四班
同组成员：竞国梁夏川两位学弟
实验时间2012年11月29日
一、实验目的
1.了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时
2.学习液体培养基的配制以及接种法
3.反复练习无菌操作技术
4.了解不同细菌，不同接种法在同一培养基上生长速度的不同
5.掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的法
二、实验原理
将一定量的菌种接种在液体培养基，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。
本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。
三、实验仪器、材料和用具
大肠杆菌，枯草杆菌，金黄色葡萄球菌菌液及平板；
培养基(100mL/250mL三角瓶X10瓶/大组)，牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；
取液器(5000ul, 1000ul 各一支)；
培养箱，摇床，722s分光光度计；
比色皿3个+共用参比杯一个。
四、实验步骤
1.准备菌种（已做）：将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡
培养18h，另外准备单菌落平板各1块；
2.接种，分成3小组做，实验结果共享：
第（1）小组
1)取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃200rpm
2)取2.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃200rpm
3)取4.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃200rpm
第（2）小组
4)取1.0ml金黄色葡萄球菌接种到100ml培养基，37 ℃200rpm
5)取1.0ml金黄色葡萄球菌接种到100ml培养基，37 ℃110rpm
6)取1.0ml金黄色葡萄球菌接种到100ml培养基，30 ℃200rpm
第（3）小组
7)取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基，37 ℃200rpm
8)取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃110rpm
9)取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，30 ℃200rpm
每培养一小时取样一次(2.5h,3.5h加测1次)。对照组测量起始pH，所有瓶子测量
发酵9h结束测pH。注意全班同时取样，同时开始振荡，取样期间时间不算。发酵
时间7小时。
3.测量：
取500ul培养液到2000ul自来水中，以自来水为对照，测OD600；注意固定参比
杯和每个比色皿；固定取样器；固定波长；固定一台分光光度计；零小时也要测，
把结果填入下表。
表1. 生长曲线OD600值
1
2
3
4
5
6
7
8
9
五、实验结果与讨论
1.数据
1)第一组
a)1.0ml大肠杆菌,37 ℃200rpm
b)2.0ml大肠杆菌,37 ℃200rpm
c)4.0ml大肠杆菌,37 ℃200rpm
一个大肠杆菌菌落，37 ℃200rpm
1.0ml大肠杆菌，37 ℃110rpm
1.0ml大肠杆菌，30 ℃200rpm
注：由于5:15-5:30没有开摇床，故往后顺延15min，下同。
2)第二组
d)1.0ml金黄色葡萄球菌，37 ℃200rpm
e)1.0ml金黄色葡萄球菌，37 ℃110rpm
f)1.0ml金黄色葡萄球菌，30 ℃200rpm
3)第三组
g)一个大肠杆菌菌落，37 ℃200rpm
h)1.0ml大肠杆菌，37 ℃110rpm
i) 1.0ml大肠杆菌，30 ℃200rpm
开始取样时间2:20 3:30 4:35 5:10 6:00 6:35 7:10 8:15 9:20 10:25 结束取样时间2:30 3:35 4:40 5:15-5:30 6:05 6:40 7:15 8:20 9:25
发酵时间/h 0 1 2 2.5 3 3.5 4 5 6 7
0Dt g
h
i
0.034
0.030
0.033
0.
0.052
0.040
0.078
0.175
0.112
0.140
0.271
0.200
0.225
0.431
0.210
0.317
0.441
0.293
0.431
0.477
0.468
0.445
0.422
0.510
0.487
0.467
0.554
0.497
0.407
0.577 OD=ODt-OD0g
h
i
-0.005
0.
0.007
0.044
0.145
0.
0.106
0.241
0.
0.191
0.401
0.177
0.283
0.381
0.260
0.397
0.447
0.435
0.411
0.392
0.477
0.452
0.437
0.521
0.463
0.377
0.544
4)pH
实验组对照组第一组 a b c
6.7
pH 4.6 4.4 4.2
第二组 d e f
pH 4.6 4.6 4.4
第三组g h i
pH 4.4 4.5 4.4
2.OD曲线的绘制
1)第一组
a) 1.0ml大肠杆菌菌液,37 ℃200rpm
b) 2.0ml大肠杆菌菌液,37 ℃200rpm
c) 4.0ml大肠杆菌菌液,37 ℃200rpm
图1 第一组生长曲线
2)第二组
d) 1.0ml金黄色葡萄球菌，37 ℃200rpm
e) 1.0ml金黄色葡萄球菌，37 ℃110rpm
f) 1.0ml金黄色葡萄球菌，30 ℃200rpm
图2 第二组生长曲线
3)第三组
g)一个大肠杆菌菌落，37 ℃200rpm
h) 1.0ml大肠杆菌，37 ℃110rpm
i) 1.0ml大肠杆菌，30 ℃200rpm
图3 第三组生长曲线
3.代时计算
根据表2中的数据，做lgOD-t函数。
1)第一组
Lg(OD600) a b c
1h -1.823909 -1.72125 -1.67778 2h -1.119186 -1.08092 -0.91009
2.5h -0.821023 -0.73049 -0.72125
3h -0.619789 -0.54061 -0.43063
3.5h -0.508638 -0.42251 -0.33442
4h -0.396856 -0.41341 -0.32606 5h -0.164309 -0.17653 0.0141 6h -0.294992 -0.30016 -0.31785 7h -0.353596 -0.27737 -0.30715
图4 第一组lg(OD600)-t 曲线
2)第二组
图5 第二组lg(OD600)-t 曲线
3)第三组
图6 第三组lg(OD600)-t 曲线
图4,5,6中取直线部分，用公式：G＝（t1-t2）/[(lgW1-lgW2)/lg2]来计算各瓶的代时。
计算结果见表7。
表7. 各发酵条件下的代时
12
a 1 2.5 -1.823909 -0.821023 27.01474
b 1 2.5 -1.72125 -0.73049 27.34537
c 1 2.5 -1.67778 -0.72125 28.32394
d 2 4 -1.01323 -0.38195 57.22278
e 2 3.5 -1.27572 -0.61439 40.96699
f 2 3.5 -0.97469 -0.38934 46.28462
g 2 3.5 -1.35655 -0.54821 33.51647
h 1 3 -1.65758 -0.39686 28.65315
i 1 4 -2.1549 -0.36151 30.21393
由上表可以看出大肠杆菌代时短于金黄葡萄球菌，但是也有一些数据不太合理，比如说d 组，其数值与同一组相比差距很大，且不符合预期，这可能是由以下原因造成的：
i.人为误差。我们是分组实验，无论是取样稀释，还是测量OD600时，都存在个人
操作上的差异，所以实验数据有一些随机波动。尤其是在取样的过程中，吸取菌液
的位置不同，会对结果产生较大影响。
ii.实验法误差。我们是采取隔一个小时或者半个小时测量一个点的OD值，没有实时监控，所以做出来的曲线会有差异。另外，由于我们每隔一段时间就停止摇床，
开始取样，这样干扰了细菌的生长，导致了生长期的改变。并且，使用OD值来
代表菌体的量的改变误差比较大，死亡的菌体，培养基的变化等都会影响到样品的
OD值，我们没有办法得到真实的细菌浓度。另外本次实验有个重大的问题，就是
有15分钟摇床没有开启，大约在2.5h的时候，而此时正是细菌生长最旺盛处于
对数期的时候。
4.不同因素对于生长曲线的影响
1)接种量
图7 第一组生长曲线
由图7可以看出，虽然三组几乎同时达到顶峰，但是c最先进入对数期，a最晚进入，说明接种量在一定围增大，能缩短延迟期。
2)菌液接种和固体平板接种
图8 菌液与菌落接种大肠杆菌生长曲线
由图8可以看出，菌落接种要比另外三组更晚进入对数期，将其数据与同样条件下的菌液接种（第一组实验结果）进行对比，发现菌落接种确实造成较长的延迟期。这可能是因为大肠杆菌从固体培养基环境移动到溶液环境需要较长时间适应，而液体的接种只需要适应不同的培养基成分和浓度即可。
3)摇床转速
图9 第二组生长曲线
由图9可以看出，d(1ml金黄色葡萄球菌，37 ℃,200rpm)与e(1ml金黄色葡
萄球菌，37 ℃,110rpm)相比仅转速不同，d较早进入对数期。说明在一定围，
提高转速，有利于细菌生长。这是因为增加转速能提高溶氧量。但是转速也有
一定限度，转速过高，会使细胞破裂。不过摇床不是离心机，应该问题不大。
4)温度
由图9可以看出，d(1ml金黄色葡萄球菌，37 ℃,200rpm)与f(1ml金黄色葡
萄球菌，30 ℃,200rpm)相比，d温度较高，但似乎要慢于f，但是差别不大。
可能是实验中有其它因素干扰。但理论上讲，温度影响细菌细胞酶的活性，会
影响细菌的新代，一定围升高温度有助于尽快进入对数期。不过也可能是因为
30 ℃比37 ℃更接近于金黄色葡萄球菌的最适生长温度。
六、思考题
1.为什么可用比浊法来表示细菌的相对生长状况？
细胞悬液的浓度与混浊度成正比（lambert-beer公式）因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度，从而在一定程度上反应细菌的相对生长状况。但是需要注意的是吸光度所指示的为培养瓶的菌体总含量，而非瓶的活菌量，所以在生长曲线中并没有明显的死亡期。
2.生长曲线中为什么会有平衡期和死亡期？
平衡期：由于本次实验所使用的培养环境为封闭式的培养环境，中间没有加料，所以随着营养物质的消耗，代产物的积累和pH等环境因素的变化，培养基环境不再适于细菌的生长繁殖，从而导致细菌的净生长速率逐渐接近于零，单位时间细菌二分裂增加的细胞数量接近于细菌死亡的细胞数量，从而使生长进入平衡期（总菌量基本不变）。这时，死亡细胞数和繁殖细胞数处于平衡状态，细胞总数将处于稳定状态。
死亡期：平衡期后如果继续培养，细胞总数不再稳定，由于培养基中营养物质和氧
气的消耗不利于细菌繁殖，并且细菌开始合成次级代产物，影响培养基的PH或者造成培养基的毒性等，对细菌的生存有害，死亡细胞数将逐渐增加，死亡速度超过繁殖速度，使进入死亡期。
3.什么条件下接种为宜？液体种子比固体种子有什么优越性？
通过本次实验，我们可以看到，接种量、接种式和培养条件（溶氧量和温度等）对细菌调整期的长短，细菌的代时即生长速度均有非常关键的影响。只有在采取最佳接种式和接种量，在该菌种最适条件下进行培养，才能使得细菌迅速渡过调整期，并快速进行生长繁殖。最适宜的接种菌种应该是处在生长曲线的对数区的菌液。此时细菌已经度过调整期，生长繁殖最为旺盛，生命力最强大，各种分解和合成代反应都被充分激活，对环境有最强的适应能力。
从实验结果可知，在细菌的最适温度、溶氧条件下，接种适当数量的对数期液态种子最好。液体种子相比于固体种子，调整期短很多，可以快速进入对数期，工业生产期短，设备利用效率高。原因如下：液体种子所含细菌易于扩散和分布到培养基中，如采用固体种子，可能会使接种环上附着的菌体不能完全进入液体培养基中，而且固体种子在培养基中不宜均匀分散。用液体种子向液体培养基中接种，特别是如果接种前后培养基的成分和培养条件一致，则细菌前后的生活环境基本相同，调整期很短，而固体种子接种则由于环境变化比较大，调整期较长。
4.根据实验结果，谈谈在工业上如缩短发酵时间？
接种处于对数期的液体种子，接种前充分活化，接种量应尽可能多；把培养条件调整到最适合发酵用菌的条件，如温度、溶氧、pH；连续发酵，不断补充培养基，分离代产物。另外，工业生产一定要注意无菌操作。工业设备体积庞大，灭菌非常麻烦而且成本高、影响生产，使用抗生素的话成本过高，不利于市场。
七、实验总结
这次实验由于要观测细菌生长期，所以持续时间很长，一直到晚上十点半。这让我回想起了暑期实验的那段发酵罐时光，也是一整天都泡在实验室里。虽然这次省略了一些数据的测量，但由于没有收集装置，还是要无菌操作的，更要求全班步调一致，对操作速度有要求，必须在5min送回培养瓶。这次实验还是出现一些问题，比如说五点多的一次有15分钟没有开摇床，后来听说好像是我们组管这个，在此道歉反思一下，真是太不谨慎太大意疏忽了。由此感触，团队中的每一个人都不能掉链子，一定要做好自己的本职工作。
八、参考文献
1.金春，国强. 微生物学实验指导. 北京：清华大学出版社，2005
2.教师PPT
微生物实验报告：测定细菌生长曲线
测定细菌生长曲线 一、实验目的 1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时； 2．学习液体培养基的配制以及接种方法； 3．反复练习无菌操作技术； 4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同； 5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法； 二、实验原理 将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。 测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。 从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为： G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2] 式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。 三、实验器材 大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板； 培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基； 取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计； 四、实验步骤 1．活化菌种 将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块； 2．接种 6人大组分为3个小组，按表1接种。 表1.各培养基接入菌种及培养条件
细胞生长曲线的绘制实验报告
细胞生长曲线的绘制实验报告 篇一：实验五微生物生长量的测定及生长曲线的绘制 一、实验目的 学习了解微生物生长量测定的方法 学习了解细菌生长曲线的绘制方法 学习掌握血细胞计数板的使用方法 微生物生长量的测定 计数法重量法生理指标法 1、显微镜直接计数法 利用血细胞计数板计数 涂片计数 2、活菌菌落计数法 3、滤膜法 细菌生长曲线 将单细胞细菌接种到恒定容积的液体培养基中，不补充营养物或移去培养物，细菌以二分裂方式繁殖，以时间为横坐标，细菌数目的对数值为纵坐标，可画出一条反映细菌在整个培养期间菌数变化规律的曲线，称为生长曲线 篇二：细胞生长曲线的测定 细胞生长曲线的测定 一、实验目的
掌握测定细胞生长曲线的方法。 二、实验器具 24孔细胞培养板、微量加样器、eppendorf管、吸头、吸头盒、显微镜、细胞计数板、载玻片、盖玻片、吸管、试管架、普通显微镜、细胞悬液、0.4%台盼蓝。 三、实验方法 1. 培养细胞：首先在24孔细胞培养板内分别接种相同数量的细胞，计数并记录接种的细胞悬液密度，接种时间记为0小时。 2. 计数细胞密度：从接种时间算起，每隔24小时计数3孔的细胞密度，算出平均值。为提高准确率，对每孔细胞可计数2-3次，如此操作至第七天结束。 3. 绘制曲线：以培养时间为横坐标、细胞密度为纵坐标，将全部结果在坐标纸上绘图，即得所培养细胞的生长曲线。 篇三：MTT法绘制生长曲线 实验材料： 1，5%FBS-L-DMEM, 5x104个/ml细胞悬液，5mg/mlMTT溶液，DMSO,0.01M PBS,2, 96孔板共7个,酶标仪,50ml离心管，1.5ml离心管，0.22μm滤膜，锡箔纸，MTT工作液 实验步骤： 1，分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。接种到96孔板，每孔接种200μl 细胞悬液进行培养。
细菌生长曲线测定方案
细菌生长曲线的测定 1 目的 1.1 了解细菌生长曲线特点及测定原理 1.2 学习用比浊法测定细菌的生长曲线 2 原理 将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，定时测定培养液中的菌量，以菌量的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期。这四个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所改变。因此通过测定微生物的生长曲线，可了解各菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。 测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简便。 3 材料 3.1菌种 某细菌 3.2培养基 液体培养基 3.3 仪器和器具 721分光光度计，比色杯，恒温摇床，无菌吸管，试管，三角瓶。 4 流程 种子液→标记→接种→培养→测定 5 方法 5.1种子液制备 取细菌斜面菌种1支，以无菌操作挑取1环菌苔，接入肉膏蛋白胨培养液中（液体培养基接种法），静止培养24h作种子培养液。 5.2标记编号 取盛有50mL无菌肉膏蛋白胨培养液的250mL三角瓶11个，分别编号为0、1.5、3、4、6、8、10、12、14、16、20h。
5.3接种培养 用2mL无菌吸管分别准确吸取2mL种子液加入已编号的11个三角瓶中，于37℃下振荡培养。然后分别按对应时间将三角瓶取出，立即放冰箱中贮存，待培养结束时一同测定OD 值。 5.4生长量测定 将未接种的肉膏蛋白胨培养基（空白对照）倾倒入比色杯中，选用600nm波长分光光度计上调节零点，作为空白对照，并对不同时间培养液从0h起依次进行测定，对浓度大的菌悬液用未接种的牛肉膏蛋白胨液体培养基适当稀释后测定，使其OD值在0.10.～0.65以内，经稀释后测得的OD值要乘以稀释倍数，才是培养液实际的OD值。 6 结果 6.1 将测定的OD值填入下表： 时间(h) 对照 0 1.5 3 4 6 8 10 12 14 16 20光密度值（OD600） 0 6.2 以上述表格中的时间为横坐标，OD600 值为纵坐标，绘制细菌的生长曲线。 Point： 1液体培养基的配制以及接种方法 2无菌操作技术 3直接计数法
模拟曲线测设实验报告PDF.pdf
工程测量学 实验报告 （2013—2014学年第2学期） 实验名称：模拟曲线测设 实验时间：2014年5月10日 实验地点：临潼校区 指导教师：段虎荣 专业班级：测绘工程1102 姓名：张少博杨勋杜少鹏武兴盛陈小亮谷金杨庆玲学号：1110020221 222 223 224 235 207 208 西安科技大学测绘学院测绘系（教研室） 二〇一四年五月
目录
一、实验目的 掌握缓和曲线主点测设的基本方法 二、实验内容 已知某基本型线路曲线交点（JD）里程为DK8+449.140，转向角α右＝40°18′40″，圆曲线半径R=100m，缓和曲线长20m，进行曲线主点测设。 三、实验要求 （1）在校园内15号公寓楼西北方向空地上定义JD点，坐标为（0,200），ZH点切向上点，测设转向角，确定一点，使得，测设精度<15″。 （2）计算曲线要素及主点里程，详细叙述(并绘制草图)ZH、HZ、QZ点的测设步骤。 （3）按切线支距法及偏角法放样HY、YH点。两者差异<5cm. 四、仪器设备 全站仪一套 五、实验步骤 1、曲线要素计算 1.1、常数计算 缓和曲线切线角 切垂距
内移距 1.2、基本型曲线要素计算 切线长 曲线全长 外矢距 切曲差 1.3、主点里程计算 ZH里程= +449.140-46.76263 = +402.37737 HY里程= +402.37737+20 = +422.37737 QZ里程= +422.37737+(90.35463/2-20) = +447.554685 YH里程= +402.37737+90.35463-20 = +472.732 HZ里程= +472.732+20 = +492.732
细菌生长曲线之测定
實驗六細菌生長曲線之測定 ◎ Exp 11. Turbidity of bacteria 一、目的： 在進行細菌生長曲線之測定前，必須先了解 U-2001 Spectropho- tometer 操作方法，才能將細菌的數量以吸光值的方式表示出來。二、原理： 請詳讀整理 p. 90-92，學會調整 Optical density (O.D.) 【Exp 13.會用到】。 三、器材： 1. culture：(每組) 24 hr Escherichia coli (broth) 2. medium： (每組) Nutrient broth 3. equipment ： 1 ml pipette，pipette aid，cuvette，拭鏡紙，廢菌液杯，裝蒸餾水的洗 瓶，滅菌空試管，U-2001 Spectrophotometer，振盪器。 四、實驗步驟 ※由助教先示範操作方法，再由學生自行操作與測量待測液之吸光值。 1. 了解 U-2001 Spectrophotometer 操作方法： a. 溫機約 15 分鐘。 b. MENU → (主目錄) 選 1. Photometer →輸入波長 600 nm 及 ABS → Forward → c. Nutrient broth 歸零 autozero → (前、後二支 cuvette) ※1 d. 取出後面之 cuvette ，倒入待測液※2，等到右上方數據穩定後，按 下 Start →記錄。 ※1 cuvette 有石英管 (測波長 340 nm 以下)、玻璃管、塑膠管等材質，本實驗使用塑膠材質之比色管。 ※2 每次測定前需先用蒸餾水滴洗cuvette，再以待測液潤濕，倒掉，再裝入待測液，測完倒掉，用蒸餾水滴洗。測定之前
《数学实验》曲线绘制实验报告
课程名称数学实验成绩评定 实验项目名称曲线绘制 【实验目的】 1．了解曲线的几种表示方式。 2．学习、掌握MA TLAB软件有关的命令。 【实验内容】 绘制下列四种曲线： 1．以直角坐标方程y=sin x,y=cos x表示的正、余弦曲线。 2．以参数方程x=cos t,y=sin t,t∈[0,2π]表示的平面曲线（单位圆）。 3．以参数方程x=e?0.2t cosπ 2t,y=π 2 e?0.2t sin t,z=t,t∈[0,20]表示的空间曲线。 4．作出摆线的图形。 5.做出以参数方程x=e?0.25t cosπ 2t,y=e?0.25t sinπ 2 t,z=t,t∈[0,30]表示的空间曲线。 6．以极坐标方程r=a(1+cos?),a=1,?∈[0,2π]表示的心脏线。 7．绘制极坐标系下曲线 ρ=acos (b+nθ)的图形，讨论参数a、b和n对其图形的影响。8．（曲线族绘制）三次抛物线的方程为y=ax3+cx，讨论参数a和c对其图形的影响。 【实验方法与步骤】 练习1做出函数y=sin x,y=cos x的图形，并观察它们的周期性。 MATLAB代码及结果如下： >> x=0:0.01*pi:4*pi; y1=sin(x); y2=cos(x); plot(x,y1,'b',x,y2,'r'); legend('y=sin(x)','y=cos(x)','location','best'); axis([0 4*pi -1 1]) 绘制结果如下图：
y=sin x,y=cos x的图形如上图，两个函数的周期皆为2π 练习2设y=√3 2e?4t sin(4√3t+π 3 )，要求以0.01秒为间隔，求出y的151个点，绘出y及 其导数的图形。 MATLAB代码及结果如下： dt=0.01; t=0:0.01:1.5; w=4*sqrt(3); %设定频率 y=sqrt(3)/2*exp(-4*t).*sin(w*t+pi/3); Dy=diff(y)/dt; %求导 for i =1:length(t)-1 t1(i)=t(i); end subplot(2,1,1); plot(t,y); xlabel('时间t'); ylabel('y(t)'); grid subplot(2,1,2); plot(t1,Dy); xlabel('时间t'); ylabel('Dy(t)'' '); grid 绘制结果如下图：
细菌生长曲线的测定实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除细菌生长曲线的测定实验报告 篇一：细菌生长曲线 实验九测定细菌生长曲线 [实验目的]1．了解细菌生长曲线特征：2．学习液体培养基的配制以及注意事项。3．学习液体种子和固体种子的不同接种方法和注意事项。4．利用细菌悬液浑浊度间接测定细菌生长。 [仪器和材料] 1．实验材料 (1)大肠杆曲，枯草杆曲培养液及大肠杆菌平板。 (2)牛肉膏蛋门胨葡萄糖培养基(150ml／250ml三角瓶x4瓶／大组)，配方：牛肉膏5g，蛋白胨10g，nacl5g，葡萄糖10g，加水至1000ml，ph7．5。 2．实验仪器 取液器(5000μl，1000μl，200tμl各一支)；培养箱．摇床，722s分光光度汁；1000μl无菌吸头100个；5000μl 无菌吸头2(:细菌生长曲线的测定实验报告)个；1ml或4ml
玻璃或塑料比色皿4个，共用参比杯一个。 [实验原理] 将一定量的细菌接种在液体培养基内．在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线(图91)。 单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整(迟滞期)、对数期(生长旺盛期)、平衡期(稳定期)、死亡期(衰亡期)。 生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程动态。不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的．测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法等。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与浑浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。将所测得的光密度值(测oD550或oD620或oD600或oD420，可任选一波长)与对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。 从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以g表示。其计算公式为；
细菌生长曲线
实验九测定细菌生长曲线 [实验目的] 1．了解细菌生长曲线特征：2．学习液体培养基的配制以及注意事项。3．学习液体种子和固体种子的不同接种方法和注意事项。4．利用细菌悬液浑浊度间接测定细菌生长。 [仪器和材料] 1．实验材料 (1)大肠杆曲，枯草杆曲培养液及大肠杆菌平板。 (2)牛肉膏蛋门胨葡萄糖培养基(150ml／250ml 三角瓶X 4瓶／大组)，配方：牛肉膏5g，蛋白胨10g，NaCl 5g，葡萄糖10g，加水至1000ml，pH7．5。 2．实验仪器 取液器(5000μl，1000μl，200tμl 各一支)；培养箱．摇床，722s分光光度汁；1000μl 无菌吸头100个；5000μl 无菌吸头2个；1ml或4ml玻璃或塑料比色皿4个，共用参比杯一个。 [实验原理] 将一定量的细菌接种在液体培养基内．在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线(图9 1)。 单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整(迟滞期)、对数期(生长旺盛期)、平衡期(稳定期)、死亡期(衰亡期)。 生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程动态。不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的． 测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法等。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与浑浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。将所测得的光密度值(测OD550或OD620或OD600或OD420，可任选一波长)与对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。 从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示。其计算公式为； G=(t2-t1)/[(1gW1—lgW2)／lg2] 式中tl和t2为所取对数期两点的时间；w1和w2分别为相应时间测得的细胞含量(g/L)或OD。 [实验步骤] 1．准备菌种：将大肠杆菌，枯草杆菌分别接种到装有牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基的三角瓶中，37℃，200r／min振荡培养14-18h．另外准备大肠杆菌单菌落平板l块(37'C培养24h)。 2．接种：分别将1．5ml(1％接种量)和4-5ml(3％接种量)大肠杆菌菌液和一个大肠杆菌单菌落接人含150ml培养液的三角瓶中．37℃，200r／min振荡培养；把4．5ml枯草杆菌(3%接种量)接入含150ml培养液的三角瓶中，37℃，200r／min振荡培养。 3．测量；每培养1h取样一次．净培养(不包括取样时间)10h结束培养，测量培养液pH值。零小时也要测。 如果选用4ml比色皿取500μl培养液到2000μl蒸馏水中(稀释5倍)，以蒸馏水为对照，测OD650。或OD620或OD600或OD420任选一波长)，如果选用lml比色皿，可以取1000μl培养液，以蒸馏水为对照，直接测OD620 、OD600或OD420(任选一波长)，当OD值大于0.6时，下一样品要稀释1倍测量． [实验结果]．
离心泵特性曲线实验报告
化工原理实验报告 实验名称：离心泵特性曲线实验报告：克川 专业：化学工程与工艺（石油炼制）班级：化工11203 学号：201202681
离心泵特性曲线实验报告 一、实验目的 1.了解离心泵的结构与特征，熟悉离心泵的使用。 2.测定离心泵在恒定转速下的特征曲线，并确定离心泵的最佳工作围。 3.熟悉孔板流量计的构造与性能以及安装方法。 4.测量孔板流量计的孔流系数C岁雷诺数R e变化的规律。 5.测量管路特性曲线。 二、基本原理 离心泵的特性曲线是选择和使用离心泵的重要依据之一，其特性曲线是在恒定转速下泵的扬程H、功率N及效率η与泵的流量Q之间的关系曲线，它是流体在泵流动规律的宏观表现形式。由于泵部流动情况复杂，不能用理论方法推导出泵的特性关系曲线，只能依靠实验测定。 2.1扬程H的测定与计算 取离心泵进口真空表和出口压力表处为1、2两截面，列机械能衡算方程：z1+++H=z2+++(1-1) 由于两截面间的管子较短，通常可忽略阻力项，速度平方差也很小，故也可忽略，则有 H=(z1-z2)+=H1+H2（表值）+H3 (1-2)
由上式可知，只要直接读出真空表和压力表上的数值，及两表的安装高度差，就可计算出泵的扬程。 2.2轴功率N的测量与计算 N=N电k(w) (1-3) 其中，N电为电功率表显示值，k代表电机传动效率，可取0.90 2.3效率η的计算 泵的效率η是泵的有效功率Ne与轴功率N的比值。有效功率Ne是单位时间流体经过泵时所获得的实际功率，轴功率N是单位时间泵轴从电机得到的功，两者差异反映了水力损失、容积损失和机械损失的大小。泵的有效功率Ne可用下式计算： N e=HQ/_D_Dd__________π???_______________ η=^ ^/________________________________ 2.4 转速改变时各参数的换算 泵的特性曲线是在定转速下的实验测定所得。但是，实际上感应电动机在转矩改变时，其转速会有变化，这样随着流量Q的变化，多个实验点的转速n将有所差异，因此在绘制特性曲线之前，须将实测数据换算为某一定转速n′（可取离心泵的额定转速2900rpm）的数据。换算关系如下： 流量(1-6) 程H’=H(1-7)
实验项目二住骨髓间充质干细胞的倍增时间与生长曲线的测定资料
PMSCs生长曲线和倍增时间的测定 【1】来自猪脂肪间充质干细胞的分离培养及其成脂分化： 取生长状况良好的P1、P3、P5、P9代细胞，用0.25%胰酶消化液，在37℃消化1-3min，制成单细胞悬液，然后以5x104个/ml密度接种到30个直径为35mm培养皿中，随机分成10组，每组3皿，每天检测一组中每皿的细胞总数，取3个皿的均值，如此至第10组结束，细胞技术如下(2004,司徒镇强)即一天消化3个组，共消化10天。 P1，P3,P5，P9均如此，每代30个皿，共计120个皿。 细胞群体倍增时间（PDT）=(t-t0)lg2/(lgN t-lgN0) t0培养起始时间，t,培养终止时间； N0培养初始细胞数，N t培养终止细胞数。 【2】增强型绿色荧光蛋白转染猪骨髓间充质干细胞特性观察 用0.25%胰酶将转染后的细胞克隆消化为单个细胞，用PBS洗2遍，1x105个细胞加入75μl破膜剂，振荡10s,加入PI染料700μl,室温避光30min,上机检测；选同期培养的为转染细胞为对照组，比较EGFP转染对细胞增殖的影响，分别计算出静止期G0/G1,增殖期S%,和G2/M 【3】两种方法分离小型猪骨髓间充质干细胞的比较 分别取两组0,1,3代细胞，制成1x103的细胞悬液，接种到96孔板，每孔细胞悬液200微升，置37℃、5%CO2饱和湿度孵箱内孵育，各组每24小时分别取出4孔，每孔加入MTT （2mg/ml）20微升37℃孵育，4h后吸弃孔内培养液，每孔加入150微升分析纯的二甲基亚砜，移至酶联免疫检测仪上振荡10min,用分光光度计在492nm波长处测定每孔的吸光度值（OD492），以OD(492)值为纵坐标，时间为横坐标绘制生长曲线。 【4】人骨髓间充质干细胞体外培养及其生物学特性研究 取不同代数细胞，调整细胞浓度为2x104/ml后，接种于96孔培养板，置37℃，5%CO2，饱和湿度培养箱培养后，用胰酶-EDTA进行消化，用台盼蓝拒染法计数活细胞，每天取12复孔，共7天；根据计数结果绘制细胞生长曲线。记录测得的结果，即培养潜伏期持续多长时间（12-24h）,多长时间进入对数生长期（3天后），对数增殖期持续时间（3-5天）,铺满皿底所需时间（5-7天），细胞进入平台期多长时间及持续多长时间，停止生长时间。
曲线拟合实验报告
曲线拟合实验报告 Document serial number【UU89WT-UU98YT-UU8CB-UUUT-UUT108】
数值分析 课程设计报告 学生姓名 学生学号 所在班级 指导教师 一、课程设计名称
函数逼近与曲线拟合 二、课程设计目的及要求 实验目的： ⑴学会用最小二乘法求拟合数据的多项式，并应用算法于实际问题。 ⑵学会基本的矩阵运算，注意点乘和叉乘的区别。 实验要求： ⑴编写程序用最小二乘法求拟合数据的多项式，并求平方误差，做出离散函数（x x,x x）和拟合函数的图形； ⑵用MATLAB的内部函数polyfit求解上面最小二乘法曲线拟合多项式的系数及平方误差，并用MATLAB的内部函数plot作出其图形，并与（1）结果进行比较。 三、课程设计中的算法描述 用最小二乘法多项式曲线拟合，根据给定的数据点，并不要求这条曲线精确的经过这些点，而是拟合曲线无限逼近离散点所形成的数据曲线。 误差向量的1
向量的2范数。前两种方法简单、自然，但不便于微分运算，后一种方法相当于考虑2范数的平方，此次采用第三种误差分析方案。 算法的具体推导过程： 1.设拟合多项式为： y =x 0+x 1x +x 2x 1++x x x x 2.给点到这条曲线的距离之和，即偏差平方和： x 2=∑[x x ?(x 0+x 1x ++x x x x x )]2x x =1 3. x x 偏导数，因而我们得到了： ?2∑[x ?(x 0+x 1x ++x x x x x )]x x =1 x =0 ?2∑[x ?(x 0+x 1x ++x x x x x )]x x =1 =0 ?2∑[x ?(x 0+x 1x ++x x x x x )]x x x x =1 =0 4.将等式左边进行一次简化，然后应该可以得到下面的等式 x 0x +x 1∑x x ++x x ∑x x x x x =1x x =1 x 0∑x x +x 1∑x x 2++∑x x x +1x x =1 x x =1x x =1 x 0∑x x x +x 1∑x x x +1++x x ∑x x 2x x x =1 x x =1 x x =1 5.把这些等式表示成矩阵的形式，就可以得到下面的矩阵：
实验三微生物生长曲线的测定
实验三微生物生长曲线 的测定 Document serial number【UU89WT-UU98YT-UU8CB-UUUT-UUT108】
实验三微生物生长曲线的测定 一、实验目的目的 1、了解细菌生长曲线特点及测定原理 2、学习用比浊法测定细菌的生长曲线? 二、实验原理 将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，定时测定培养液中的菌量，以菌量的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期。这四个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所改变。因此通过测定微生物的生长曲线，可了解各菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。 测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简便。 三、实验材料
1、菌种 2、培养基：肉膏蛋白胨培养基 3、仪器和器具 721分光光度计，比色杯，恒温摇床，无菌吸管，试管，三角瓶。 4、流程 种子液→标记→接种→培养→测定 四、实验步骤 1、种子液制备 取细菌菌种1支，以无菌操作挑取1环菌液，接入肉膏蛋白胨培养液中，培养18h作种子培养液。 2、标记编号 取盛有30mL无菌肉膏蛋白胨培养液的三角瓶6个，分别编号为0、4、8、12、16、20。 3、接种培养
生长曲线的测定
实验日期：2017.11.1 实验班级：生物技术指导教师：张建丽 姓名：高熹学号：1120152430 测定细菌生长曲线 一．实验目的 1.通过对大肠杆菌生长曲线的测定，了解细菌生长的特点，综合训练微生物实验的基本实验技能。 2.巩固培养基的配制、灭菌、仪器的包扎、倒平板。 3.掌握用比浊法测定细菌的生长曲线。 二．实验原理 将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，一定时间测定培养液中的菌量，以菌量的数量作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、生长期、稳定期和衰亡期。将每一种一定量的细菌转入新鲜液体培养基中，在适宜的条件下培养细胞要经历延迟期、对数生长期、稳定期和衰亡期四个阶段。 延迟期：又叫调整期。细菌接种至培养基后，对新环境有一个短暂适应过程（不适应者可因转种而死亡）。此期曲线平坦稳定，因为细菌繁殖极少延迟期长短因素种、接种菌量、菌龄以及营养物质等不同而异，一般为1～4小时。此期中细菌体积增大，代谢活跃，为细菌的分裂增殖合成、储备充足的酶、能量及中间代谢产物。 对数生长期：又称指数期。此期生长曲线上活菌数直线上升。细菌以稳定的几何级数极快增长，可持续几小时至几天不等（视培养条件及细菌代时而异）。此期细菌形态、染色、生物活性都很典型，对外界环境因素的作用敏感，因此研究细菌性状以此期细菌最好。抗生素作用，对该时期的细菌效果最佳。 稳定期：该期的生长菌群总数处于平坦阶段，但细菌群体活力变化较大细菌浓度达到最大即环境最大容纳量。由于培养基中营养物质消耗、毒性产物（有机酸、过氧化物等）积累PH下降等不利因素的影响，细菌繁殖速度渐趋下降，相对细菌死亡数开始逐渐增加，此期细菌增殖数与死亡数渐趋平衡。细菌形态、染色、生物活性可出现改变，并产生相应的代谢产物如外毒素、内毒素、抗生素、以及芽孢等。 衰亡期：随着稳定期发展，细菌繁殖越来越慢，死亡菌数明显增多。活菌数与培养时间呈反比关系，此期细菌变长肿胀或畸形衰变，甚至菌体自溶，难以辩认其形。生理代谢活动趋于停滞。故陈旧培养物上难以鉴别细菌。 体内及自然界细菌的生长繁殖受机体免疫因素和环境因素的多方面影响，不会出现象培养基中那样典型的生长曲线。掌握细菌生长规律，可有目的地研究控制病原菌的生长，发现和培养对人类有用的细菌。 这4个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所不同。因此通过测定微生物的生长曲线，可了解个菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。 测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。本实
黄酮标准曲线绘制的实验报告记录
黄酮标准曲线绘制的实验报告记录
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黄酮标准曲线绘制的实验报告 1.总黄酮的测定 1.1 实验仪器 电子天平AR2140; 紫外可见分光光度计UV2754; 型数控超声波清洗器KQ3200DB; 超级恒温槽; Rotavapor R200 旋转蒸发仪 ; FD21C250 冷冻干燥机2 1.2 试剂及药品 芦丁标准品 硝酸铝国产分析纯（配成5 %） 亚硝酸钠国产分析纯（配成10 %） 氢氧化钠国产分析纯配成（配成1mol/L） 95%乙醇，无水乙醇国产分析纯（配成60%乙醇 50%乙醇） DPPH·（2，2-diphenyl-1-picrylhydrazyl，二苯代苦味肼基自由基） Vc（Ascrobic acid，维生素 C，抗坏血酸） 没食子酸对照品：基准纯。 大青叶子采摘于海南大学东坡湖畔 1.3实验步骤： 1.3.1准备工作及波长的确定 样品60℃烘干粉碎机粉碎，过20目筛，装入试剂瓶中备用。根据查阅文献总黄酮在波长为510nm处吸收值最大。 1.3.2参照品芦丁标准溶液的制备 精密称取120 ℃干燥至恒重的芦丁标准样品37.5mg置于100mL烧杯中,用60%乙醇溶解后定容至25mL 容量瓶中,摇匀，即可得1.5mg/mL的芦丁标准溶液。 1.3.3标准品的测量及绘制标准曲线 精密吸取芦丁标准溶液0.0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0mL ,分别置于10mL 容量瓶中，并定容至刻度线。得到0.0mg/ml、0.15mg/ml、0.3mg/ml、
实验三 微生物生长曲线的测定
实验三微生物生长曲线的测定 一、实验目的目的 1、了解细菌生长曲线特点及测定原理 2、学习用比浊法测定细菌的生长曲线 二、实验原理 将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，定时测定培养液中的菌量，以菌量的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期。这四个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所改变。因此通过测定微生物的生长曲线，可了解各菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。 测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简便。 三、实验材料 1、菌种 2、培养基：肉膏蛋白胨培养基 3、仪器和器具 721分光光度计，比色杯，恒温摇床，无菌吸管，试管，三角瓶。 4、流程 种子液→标记→接种→培养→测定 四、实验步骤 1、种子液制备 取细菌菌种1支，以无菌操作挑取1环菌液，接入肉膏蛋白胨培养液中，培养18h作种子培养液。 2、标记编号 取盛有30mL无菌肉膏蛋白胨培养液的三角瓶6个，分别编号为0、4、8、12、16、2 0。 3、接种培养 用2mL无菌吸管分别准确吸取1mL种子液加入已编号的6个三角瓶中，于37℃下振
荡培养。然后分别按对应时间将三角瓶取出测定OD值。 4、生长量测定 将未接种的肉膏蛋白胨培养基倾倒入比色杯中，选用600nm波长分光光度计上调节零点，作为空白对照，并对不同时间培养液从0h起依次进行测定，对浓度大的菌悬液用未接种的牛肉膏蛋白胨液体培养基适当稀释后测定，使其OD值在0.10.～0.65以内，经稀释后测得的OD值要乘以稀释倍数，才是培养液实际的OD值。 五、实验结果与分析 以上述表格中的时间为横坐标，OD600 值为纵坐标，绘制细菌的生长曲线。
实验八 细菌生长曲线的测定及
实验八细菌生长曲线的测定及 血球计数板测定微生物生长 一、细菌生长曲线的测定及 ★细菌的生长曲线就是把一定量的菌体细胞接种到恒容积的液体培养基中，在适宜的条件下进行培养，在此过程中，其细胞数目将随培养时间的延续而发生规律性的变化，如以细胞数目的对数值(或O.D.值)为纵坐标，以培养时间为横坐标作一条曲线，即为细菌的生长曲线，它反映了细菌的群体生长规律。 ★大多数细菌的繁殖速率很快，在合适的条件下，一定时期的大肠杆菌细胞每20min分裂一次。 ★依据其生长速率的不同，可把细菌的生长曲线划分为延滞期，对数期，稳定期和衰亡期等四个时期。 ★微生物OD值是反映菌体生长状态的一个指标，OD是optical delnsity（光密度）的缩写，表示被检测物吸收掉的光密度。通常400～700nm 都是微生物测定的范围，505nm测菌丝菌体、560nm测酵母、600nm测细菌。 ★本实验测定细菌生长曲线的方法是，将待测菌种接入一只大试管的培养液中，在适宜的培养温度和良好的通气状态下，定时取出此试管，在600纳米波长处测定菌液浓度(O．D．值)，在一定的范围内，菌液浓度与光密度值成线性关系。因此，根据菌液的O．D．值可以推知细菌生长繁殖的进程。将所测得的一组O．D．值与其相应的培养时间作图，即可绘制出该菌的生长曲线。 ☆实验操作 1、菌种培养：取大肠杆菌斜面菌种1支，以无菌操作挑取1环菌苔，接入肉膏蛋白胨培养液（LB）中，静止培养12--14h，备用。 2、制备LB培养基100ml置于200ml三角瓶内，备用。 3、标记：取11支无菌大试管，用记号笔分别标明培养时间，即0、1.5、3、 4、6、8、10、12、14、16和20h。 4、接种：分别用5ml无菌吸管吸取5ml大肠杆菌培养液(培养12~14h)转入盛有100ml LB液的三角瓶内，混合均匀后分别取5ml混合液放入上述标记的11支无菌大试管中。
曲线测设实验及实习报告全新版
目录 第一部分非完整、非对称缓和曲线要素计算及测设 (2) 1.实验目的及要求 (2) 2.前期实验准备和相关安排 (2) 2.1实验人员及仪器 (2) 2.2实验内容 (2) 3.实验原理 (3) 4.计算过程 (4) 5.运行结果 (7) 5.小结 (10) 第二部分圆曲线和缓和曲线的实地放样 (11) 1.实习目的及要求 (11) 2.前期实习准备和相关安排 (11) 2.1实习人员及仪器 (11) 2.2实习内容 (11) 2.3放样元素计算软件设计 (11) 2.3.1放样元素计算原理及过程 (11) 2.3.2 软件设计程序 (14) 2.3.3程序运行结果及检核 (16) 2.4 曲线测设方案及施测过程 (18) 2.4.1曲线测设方案 (18) 2.4.2 施测过程 (20) 2.5 小结 (20)
第一部分非完整、非对称缓和曲线要素计算及测设 随着短程光电测距仪和全站仪在道路勘测中的应用越来越普及，利用极坐标法测设曲线将越来越重要。这种测设曲线的方法，其优点是测量误差不累计，测设的点位精度高。尤其是测站设置在中线外任意一点测设曲线，将给现场的工作带来很大的方便。 极坐标测设曲线主要是曲线测设资料的计算问题，该方法的计算原理及思路为：把由直线段、圆曲线段、缓和曲线段组合而成的曲线归算到统一的导线测量坐标系统中，这样就便于计算放样的元素了。 1.实验目的及要求 1.学会非完整、非对称缓和曲线要素计算方法； 2.学会编写偏角法、极坐标法非完整、非对称缓和曲线要素计算程序； 3.实地放样非完整、非对称缓和曲线； 4.在实习前预先算出实测数据； 5.各小组做好测设过程的人员安排。 2.前期实验准备和相关安排 2.1实验人员及仪器 组长：杨威副组长：张懂庆 组员：杨永强张文超范龙强赵晨亮子丽天 实习仪器：全站仪一台，三脚架两个，棱镜两个，卷尺一个 2.2实验内容 1. 根据自己设计的数据计算测设要素和主点里程； 2. 设置非完整、非对称曲线的主点； 3. 根据书上P169页的曲线测设程序框图(图1)，编写一般缓和曲线的程序，并进行调试和检核； 4. 可以查资料，学习非完整、非对称曲线的计算方法和测设方法，并和自己设计的程序相结合，计算各个放样点的坐标等内容； 5. 在内业计算的基础上，选取合适的控制点和位置进行曲线测设； 6. 直接根据课本实例，进行相应元素的计算和检核，最后安排具体的实习过程，进行现场曲线放样； 7.书写实习报告书。
油层物理实验报告压汞毛管力曲线测定
中国石油大学油层物理实验报告 实验日期：成绩： 班级：石工11-1 学号：姓名：李悦静教师：张俨彬 同组者：周璇武诗琪徐睿智 压汞毛管力曲线测定 一、实验目的 1．了解压汞仪的工作原理及仪器结构； 2．掌握毛管力曲线的测定方法及实验数据处理方法。 二、实验原理 岩石的孔隙结构极其复杂，可以看作一系列相互连通的毛细管网络。汞不润湿岩石孔隙，在外加压力作用下，汞克服毛管力可进入岩石孔隙。随压力增加，汞依次由大到小进入岩石孔隙，岩心中的汞饱和度不断增加。注入压力与岩心中汞饱和度的关系曲线即为毛管力曲线，如图4-1所示。 图1 典型毛管压力曲线 三．实验设备
图2 压汞仪流程图 (岩心尺寸：φ25×20--25mm，系统最高压力50MPa) 全套仪器由高压岩心室，汞体积计量系统，压力计量系统，补汞装置，高压动力系统，真空系统六大部分组成。 1、高压岩心室：该仪器设有一个岩心室，岩心室采用不锈钢材质，对称半螺纹密封，密封可靠，使用便捷；样品参数：φ25×20--25mm岩样；可测孔隙直径范围：~750μm。 2、汞体积计量系统：采用高精度差压传感器配合特制汞体积计量管进行计量，精度高、稳定性好；汞体积分辨率：≤30μl；最低退出压力：≤。 3、压力计量系统：采用串联阶梯式计量的方法，主要由四个不同量程的压力表串联连接，由压力控制阀自动选择不同量程的压力表计量不同压力段的压力值，提高了测量的准确性；压力表量程：、1、6、60MPa各一支；可测定压力点数目：≥100个。 4、补汞装置：主要由调节系统，汞面探测系统及汞杯组成，并由指示灯显示汞面位置。
图3 压汞仪设备图 5、高压动力系统：由高压计量泵组成；工作压力：~50MPa；压力平衡时间：≥60s。 6、真空系统：主要有真空泵以及相关的管路阀件组成；真空度：≤；真空维持时间：≥5min。 四、实验步骤 1．装岩心、抽真空：将岩样放入岩心室并关紧岩心室，关岩心室阀，开抽空阀关真空泵放空阀；开真空泵抽空15~20分钟； 2．充汞：开岩心室阀，开补汞阀，调整汞杯高度，使汞杯液面至抽空阀的距离H与当前大气压力下的汞柱高度（约760mm）相符；开隔离阀，重新调整汞杯高度，此时压差传感器输出值为~之间；关抽空阀，关真空泵，打开真空泵放空阀，关闭补汞阀； 3．进汞、退汞实验：关高压计量泵进液阀，调整计量泵，使最小量程压力表为零；按设定压力逐级进泵，稳定后记录压力及汞体积测量管中汞柱高度，直至达到实验最高设定压力； 按设定压力逐级退泵，稳定后记录压力及汞体积测量管中汞柱高度，直至达到实验最低设定压力； 4．结束实验：开高压计量泵进液阀，关隔离阀；开补汞阀，开抽空阀；打开岩心室，取出废岩心，关紧岩心室，清理台面汞珠。
实验报告四bezier曲线
实验四Bezier曲线的绘制 1. 实验目的 练习Bezier曲线的绘制和de Casteljau算法。 2. 实验内容和要求 按要求完成如下一个作业，提交纸质实验报告，同时提交实验报告和代码的电子版。 实现Bezier曲线的de Casteljau递推算法，能够对任意介于0和1之间的参数t计算Bezier曲线上的点，然后依次连接这些点生成Bezier曲线。要求： 对[0,1]参数区间进行100等分。 控制点的数目至少为5个，即Bezier曲线的次数不低于4次。 de Casteljau算法用一个函数单独实现。 绘制Bezier曲线的同时还要绘制其控制多边形。 至少绘制两条Bezier曲线，具有不同的次数，颜色和曲线宽度。 3.算法描述 Bezier Curve(贝塞尔曲线)是应用于二维图形应用程序的数学曲线。 曲线定义：起始点、终止点、控制点。 通过调整控制点，贝塞尔曲线的形状会发生变化。 1962年，法国数学家Pierre Bezier第一个研究了这种矢量绘制曲线的方法，并给出了详细的计算公式，因此按照这样的公式绘制出来的曲线就用他的姓氏来命名，称为贝塞尔曲线。 以下公式中：B(t)为t时间下点的坐标；P0为起点,Pn为终点,Pi为控制点。 一阶贝塞尔曲线如下，意义由 P0 至 P1 的连续点，描述的是一条线段： 二阶贝塞尔曲线（抛物线：P1-P0为曲线在P0处的切线）：
原理：由 P0 至 P1 的连续点 Q0，描述一条线段。 由 P1 至 P2 的连续点 Q1，描述一条线段。 由 Q0 至 Q1 的连续点 B(t)，描述一条二次贝塞尔曲线。 4. 源程序代码 #include