黑曲霉发酵生产纤维素酶实验1

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

黑曲霉发酵生产纤维素酶实验

一、实验目的

1、了解纤维素酶的生产工艺和原理

2、掌握液体发酵和固体发酵工艺

3、学会DNS法测定还原糖含量的方法和原理

二、实验原理

纤维素酶可以用于一切含纤维素的生物质的降解,具有广阔的应用前景。高产纤维素酶的微生物主要有木霉属、曲霉属、根霉属,黑曲霉所产的纤维素酶中β-葡萄糖苷酶活力高,能避免酶解产物纤维二糖的阻遏作用,而且安全无毒,故而成为生产纤维素酶的主要菌种之一。纤维素酶是诱导酶,故发酵生产时需有纤维素物质作诱导剂。

以羧甲基纤维素钠作底物,用发酵所得纤维素酶对底物进行酶解,测定酶解液中的还原糖含量(以葡萄糖计),可以计算酶活力高低。还原糖与DNS反应形成棕色物质,颜色深浅与糖含量成正比。

三、材料与试剂配制

1、生产菌种:黑曲霉

2、斜面(活化)培养基:酵母膏0.4%,蛋白胨0.6%,可溶性淀粉1%,葡萄糖0.9%,马玲薯浸出液7%,琼脂2%,陈海水(或人工海水)配制,pH7.0-7.4。

3、人工海水:NaCl = 24 g/L ;MgSO4·7H2O = 7.0 g/L ;NH4NO3= 1 g/L ;KCl

= 0.7 g/ L ; NaH

2PO

4

= 2.0 g/ L ;Na

2

HPO

4

=3.0 g/ L ,pH7.4。

4、微量元素液:FeSO4·7H2O 5.0mg/L,MnSO4·H2O 1.6mg/L,

ZnSO

4· 7H

2

O 1.4mg/L,CoCl

2

2.0mg/L,加蒸馏水200ml使之溶解。

5、液体发酵产酶培养基:麸皮作碳源 3 g,氯化铵或硫酸铵作无机氮源1 g,蛋白胨0.05g作有机氮源,人工海水100 ml(含1%微量元素液),自然pH值。

6、固体发酵产酶培养基:麸皮:稻草粉=2:1作碳源5 g,人工海水

12 ml(含1%微量元素液,1%氯化铵或硫酸铵,0.05%蛋白胨),自然pH值。

7、6% DNS试剂:称取酒石酸钾钠182g溶于500ml水中,加热溶解,于热溶液中依次加入3,5-二硝基水杨酸6g,20.8gNaOH,5g苯酚,5g无水亚硫酸钠,加热搅拌溶解,冷却后定容至1000ml。储存在棕色瓶中放置一周后使用。(提前配制)

8、0.1 mol/L 柠檬酸钠一柠檬酸缓冲液(pH 4.8)

(1)0.1mol/L柠檬酸钠溶液100mL:称2.941克柠檬酸钠(柠檬酸钠的分子量为294.12),约20L蒸馏水溶解后,转入100mL溶量瓶,定容至刻度。

(2)0.1mol/L柠檬酸溶液100mL:称 2.101克柠檬酸(柠檬酸的分子量为210.14),约20L蒸馏水溶解后,转入100mL溶量瓶,定容至刻度。

(3)pH4.8的柠檬酸钠—柠檬酸缓冲液100mL:量取0.1mol/L柠檬酸钠溶液54mL和0.1mol/L柠檬酸溶液46mL混合摇匀。

9、1%CMC-Na溶液

称取1.0克羧甲基纤维素纳,用pH 4.8的柠檬酸钠—柠檬酸缓冲液加热溶解。

10、1mg.mL-1标准葡萄糖溶液

1mg/mL葡萄糖溶液250mL:准确称取无水葡萄糖250mg,溶解定容到250ml。

四、主要仪器

恒温培养箱,摇床培养箱,可见光分光光度计、冷冻离心机、电子天平等。

五、实验步骤

1、培养基配制

分别按上述方法配制液体发酵培养基和固体发酵培养基,121℃灭菌20分钟。

2、孢子悬液的制备

将斜面培养基上的曲霉孢子用少量无菌人工海水洗下,利用玻璃珠在磁力搅拌下搅拌15~20分钟,充分打散孢子,稀释成5x107个/ml左右的孢子悬液。

3、液体发酵产酶试验

按6%(v/v )接种量将浓度约为5×10 7 个/ml的菌株孢子悬液接入已灭菌

的液体发酵培养基(150 ml 锥瓶装液100 ml),于35℃、180r/min条件下摇床培养5天。发酵液4℃、5000 r/min离心15 min,上清液稀释5倍,测定发酵液中的酶活力。

4、固体发酵产酶试验

100 ml三角烧瓶装5g已灭菌的固体发酵培养基,按1:3(v/w)接种量将浓度约为5×10 7 个/ml的菌株孢子悬液,于35℃恒温培养箱中培养,接种48小时后隔天翻曲一次,第四或第五天补充无菌水保持基质水分。培养5天后,取发酵成熟曲1g,加蒸馏水10ml,搅拌均匀,30℃,浸提lh,双层纱布过滤,滤液经4℃,

在0.2~1.0范5000rmp离心15min,上清为粗酶液。测定时适当分级稀释,使OD

540

围。

5、酶活力测定及酶活力定义

(1)葡萄糖标准曲线绘制

准确称取无水葡萄糖250mg,溶解定容到250ml。分别吸取此液1.0, 2.0, 3.0, 4.0, 5.0 ml至5个25ml的比色管中,用蒸馏水定容到25ml(即加水24, 23, 22, 21, 20ml)

再分别吸取上溶液各 2.5ml于比色管中(糖液分别含糖量为0.1,0.2,0.3,0.4,0.5mg),各加2.5mlDNS试剂,煮沸5min。(对照管2.5ml水

代替糖液,冷却,测定OD

540

表1 葡萄糖标准曲线绘制加样表

管号 1 2 3 4 5 6

蒸馏水(mL) 2.5 - - - - -

标准葡萄糖

- 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5 (mL)

DNS(mL) 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5

含糖量(mg)0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 OD540

为纵坐标,(或反过来)绘制标准曲线。

以糖含量为横坐标,A

540

(1)内切葡聚糖酶 (CMCase) 酶活:取适当稀释的酶液0.5 ml,加入2.0 ml

相关文档
最新文档