肿瘤坏死因子(一)

肿瘤坏死因子(一)

作者：孙嗣国，马保安，周勇，范清宇

【关键词】,肿瘤坏死因子Osteoclastformationandboneresorptioninducedbytumornecrosisfactorα

【Abstract】AIM:Toinvestigatewhethertumornecrosisfactorα(TNFα)caninduceosteoclastformationfromperiph eralbloodmononuclearcells(PBMCs)independentofreceptoractivatorofnuclearfactorkappaBligand( RANKL).METHODS:PBMCswereculturedinthepresenceofmacrophagecolonystimulatingfactor （MCSF）andTNFαinvitro.RANKLblockingagentRANK:FcandneutralizingantiTNFαantibodywererespectivelya ddedtotheculture.Attheendoftheculture,PBMCsculturedoncoverslipswerefixedandstainedfortartr ateresistantacidphosphatase(TRAP),cunaresorptionondentineslices,afunct ionalmarkerofosteoclast,wasalsoobservedusingscanningelectronmicroscopyandlightmicroscopy.R ESULTS:TNFαinducedtheformationofmultinucleatedcells(MNCs)whichwereTRAPpositiveandshow edevidenceoflacunaresorptionpitformationondentineslices.RANK:Fcdidnotinhibitthisprocesswhil eneutralizingantiTNFαantibodycompletelyblockedboththeformationofMNCsandlacunaresorption. CONCLUSION:InthepresenceofMCSF,TNFαcandirectlyinducemononuclearphagocyteosteoclastpre cursorstodifferentiateintoosteoclasticcellscapableoflacunaresorption.

【Keywords】TNFα;osteoclast;boneresorption

【摘要】目的：验证肿瘤坏死因子α（TNFα）是否可以直接诱外周血单核细胞（PBMCs）分化为具有骨吸收作用的破骨细胞.方法：小白鼠PBMCs体外培养中加入TNFα和白细胞介素1α（IL1α）及巨噬细胞克隆集落刺激因子（MCSF）；同时，分别加入细胞核因子κB受体活化因子配体(RANKL)的拮抗剂RANK:Fc和抗TNFα中和抗体.对培养终末细胞作组织化学染色，检测破骨细胞特征性标志物抗酒石酸磷酸酶（TRAP）的表达；并以象牙磨片上虫蚀样骨吸收陷窝的形成为指标检测其生物学活性.结果：PBMCs体外培养形成大量TRAP阳性的多核细胞（MNCs）；象牙磨片上见到虫蚀样骨吸收陷窝，后者的面积对TNFα呈剂量依赖性.RANK:Fc 对此现象无抑制作用，而抗TNFα中和抗体可完全阻断该现象的发生.结论：TNFα能够直接诱导PBMCs分化为具有骨吸收功能的破骨细胞.

【关键词】肿瘤坏死因子α；破骨细胞；骨吸收

0引言

破骨细胞是由单核巨噬系统的破骨细胞前体细胞分化而来的多核细胞(MNCs).多种炎性及非炎性的骨与关节的病变，如骨质疏松、风湿性关节炎、无菌性松动等都与破骨细胞代谢异常有关.近年来的研究表明肿瘤坏死因子(TNFα)通过多种方式参与破骨细胞的分化及生物学活性的调控〔1,2〕.在本实验中，我们将小白鼠外周血单核细胞(peripheralbloodmononuclearcells,PBMCs)及RAW246.7细胞体外培养，并加入TNFα及其他因子，验证TNFα是否可以直接诱导破骨细胞前体细胞分化为具有骨吸收活性的破骨细胞.

1材料和方法

1.1材料

1.1.1试剂αMEM中加入100u/mL青霉素，10mg/L链霉素和10mmolL谷氨酸及100mL/L胎牛血清(Invitrogen,UK)配制成完全培养基(MEM/FBS)；重组人巨噬细胞克隆刺激因子（MCSF）、鼠可溶性细胞核因子κB受体活化因子配体(solvablereceptoractivatorofnuclearfactorkappaBligand,sRANKL)、RANKL拮抗剂（RANK:Fc），TNFα，IL1α，抗TNFα中和抗体均购于R&DSystems公司（UK），抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)试剂盒购于Sigma公司（UK）.

1.1.2动物及细胞系6~9wk的BALB/c小鼠(第四军医大学实验动物中心提供).RAW264.7细胞系由MikeRogers博士(Aberdeen,UK)惠赠.

1.1.3象牙骨片的制备将象牙磨至65μm厚,再冲压成直径4mm的圆形骨片,超声波处理,消毒备用.

1.2方法

1.2.1小白鼠PBMCs的分离、培养及试验分组将小白鼠外周血按1∶4稀释于MEM后缓慢加到histopaque(Sigma,UK)表面,离心(693g)30min.吸取处于界面层的细胞，重悬于MEM并离心（600g）10min，重复两次，然后重悬于MEM/FCS.50mL/L醋酸溶解红细胞后，细胞记数板记数PBMCs.事先将灭菌的4mm直径的象牙磨片和直径6mm的玻璃盖玻片分别放入96孔细胞培养板.将2×105PBMCs加入放有象牙磨片或盖玻片的96孔细胞培养板，调整培养液(MEM/FBS)至总体积0.1mL；孵育2h后将象牙磨片及玻璃盖玻片取出，并在MEM/FCS中充分涮洗以去除非黏附细胞，然后转移到24孔组织培养板，培养板内加入各种因子并调整培养基至总体积为1mL.每3日更换培养液及各种因子.

实验分组：A组加入25μg/LMCSF和10μg/LIL1α作为阴性对照；B组加入25μg/LMCSF和30μg/LsRANKL作为阳性对照；C组加入25μg/LMCSF，10μg/LIL1α和不同浓度的TNFα；D组E组加入25μg/LMCSF，10μg/LIL1α和25μg/LTNFα，分别再加入100μg/L的抗TNFα中和抗体和RANK:Fc.

1.2.2RAW246.7细胞的培养及实验分组5×103RAW246.7细胞加入含有0.5mLMEM/FCS及2块玻璃盖玻片或3块象牙磨片的24孔细胞培养板中，调整培养液至总体积为1mL.孵育2h后将盖玻片和象牙磨片取出并在MEM/FCS中充分涮洗，去除非黏附细胞后放入新的24孔细胞培养板，培养板内加入各种因子并调整培养基至总体积为1mL,每2日更换培养液及各种因子.实验分组：A组加入25μg/LTNFα和10μg/LIL1α;B组加入10μg/LIL1α作为阴性对照；C组加入30μg/LsRANKL作为阳性对照.

1.2.3破骨细胞的鉴定于孵育24h中止部分象牙磨片和玻璃盖玻片上的细胞培养并鉴定,以排除PBMCs中含有成熟OC的可能.再于9d，14d分别终止玻璃盖玻片和象牙磨片上的PBMCs 细胞培养.于培养的第5日和第8日分别终止玻璃盖玻片和象牙磨片上的RAW246.7细胞培养.玻璃盖玻片用于TRAP染色，象牙磨片用于检测骨吸收陷窝的形成.

TRAP染色：玻璃盖玻片于空气中晾干并用柠檬酸/丙酮固定细胞，按照试剂盒说明书作组织化学染色检测破骨细胞标志物TRAP的表达.

甲苯胺蓝染色及电镜扫描(SEM)：象牙磨片浸泡于NH4OH(1mol/L)30min、超声波处理去除黏附的细胞及碎片后，蒸馏水润洗并于空气中晾干.甲苯胺蓝染色后，光学显微镜下检测虫蚀样骨吸收陷窝的形成，并计算虫蚀样骨吸收陷窝面积占象牙磨片总体面积的百分比.另外有一部分象牙磨片用梯度乙醇脱水、空气晾干并覆以金粉涂层后做电镜（PhilipsSEM505）扫描. 统计学处理：每次实验中各组分别设3个象牙磨片，实验一共重复3次.应用SPSS10.0软件包处理数据.计量资料以x±s表示.在比较C组与E组的骨吸收陷窝面积差异时采用Studentst 检验，P0.05时认为差异具有显著性.

2结果

2.1TNFα诱导PBMCs形成具有骨吸收活性的MNCs24h后终止细胞培养未见TRAP阳性MNCs 或虫蚀样骨吸收陷窝形成.培养终止后，仅有MCSF和IL1α存在的条件下（A组），未见TRAP 阳性细胞或虫蚀样骨吸收陷窝形成.而加入sRANKL后（B组）有大量TRAP阳性MNCs(Fig1A)和虫蚀样骨吸收陷窝形成(Fig2A，B).在MCSF和IL1α存在的条件下，TNFα（C组）诱导PBMCs 形成数量不等的TRAP阳性的MNCs（Fig1B），相应的象牙磨片上出现数量、大小不等的虫蚀样骨吸收陷窝（Fig2C，D），并且虫蚀样骨吸收陷窝的面积随TNFα剂量的增加而增大（Fig3）.同sRANKL(B组)相比较TNFα(C组)诱导的TRAP阳性MNCs的直径小且所含细胞核数量少，