第三章第二节 脱毒苗培养
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3. （2）茎尖嫁接：在超净工作台上，将幼苗的上胚轴和子叶 去掉，根系截短，在离上胚轴顶端越0.5cm处斜向下切一深 达木质部，长2-3cm的切口，在斜切口末端横切一刀，用去 掉切下部分。在体视显微镜下，从待脱毒样品上切取0.2mm 的茎尖分生组织，小心放于切口的水平面上，切面向下并与 砧木切口形成层组织紧密贴合，然后接于培养基上。
脱毒技术主要应用于各种无性繁殖植物，如草莓、马铃 薯、甘薯、苹果、香蕉、甘蔗等。
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二、脱毒方法： （一）茎尖分生组织培养脱毒： 1. 脱毒原理：病毒在植物体内的分布不均匀，越靠近
顶端区域，带毒越少，顶端分生组织（0.2-0.5 mm）不带 病毒或含病毒量极低。因此，分离分生组织细胞进行培 养，可以获得无病毒种苗。
2、指示植物鉴定法：利用特定的易于感染某些 病毒的指示植物的特征进行病毒鉴定。
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指示植物
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CMV病毒感染的植株叶片
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3、抗血清鉴定法：利用抗原和抗体的特异性反应原理 进行病毒鉴定。用已知病毒的抗血清（antiserum）鉴 定未知病毒。
近年来又在此基础上发展出酶联免疫法（Enzyme Linked Immunosorbent Assay，ELISA），方法是将抗 原固定在支持物上，加入待检血清，然后加入酶（过氧 化物酶或碱性磷酸酶）标记的抗体，使待检血清与对应 抗原的特异性抗体结合，最后用分光光度计进行诊断。
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（3）热处理脱毒：
通过热处理可以由受病毒侵染的个体得到无病毒植株， 其原理是利用病毒与植物的耐热性不同，在高于常温的环 境下，植物组织中的病毒受热后可被部分或全部钝化或失 去活性，而寄主植物组织很少或不会受到伤害。或高温下 植物生长快，而病毒增殖慢而使植物新生部分不带病毒。
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1.热处理脱毒方法： 可以通过温汤浸渍或热空气处理法脱毒，前者对休眠芽
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酶联免疫法进行病毒鉴定
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4、电子显微镜检测（Electronmicroscope）：采用电 子显微镜对病毒的薄样品（约1－－100um）或纯化的 病毒悬液中进行病毒的直接观察。
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（二）微体嫁接脱毒：
微体嫁接是在无菌条件下，将极小(<0.2mm）的茎尖嫁 接到试管内的无菌实生苗砧木上，经培养，待接口愈合发 育为完整植株而达到脱毒的效果。该方法已在柑橘、苹果、 葡萄、山茶等园艺植物中应用。
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微体嫁接
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来自百度文库
1. 微体嫁接的方法：
2. （1）试管砧木的准备:将无病毒种子表面灭菌后接种与MS 培养基，黑暗条件下培养15d使其发芽。
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2. 茎尖分生组织培养脱毒的基本程序：
一般包括培养基选择和制备、带脱毒材料的表面、灭 菌、茎尖分生组织分离、接种和培养、诱导芽分化和小 植株增殖、诱导生根、驯化移栽等环节。
茎尖分生组织的分离需要在超净工作台上借助体视显 微镜进行。茎尖放在培养皿内进行解剖，一只手用镊子 固定，另一手用解剖针将叶片和叶原基层层剥掉，当露 出半圆形顶端分生组织时，将分生组织切下，接种与培 养基上。
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（四）其他脱毒方法：
1. 花器官培养脱毒：由植物的花器官培养脱分化形成愈伤组 织，然后再分化不定芽，可以获得无毒苗。如草莓花药培 养。
2. 2. 珠心胚培养脱毒：柑橘类珠心胚与微管组织没有联系， 一般不带毒，可以利用珠心胚进行培养获得。
3. 3.化学脱毒:采用病毒唑等试剂处理材料或添加到培养基中 可以钝化病毒，达到一定的脱毒效果。
第二节 脱毒种苗生产及病毒检测技术
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一、脱毒的意义：
无性繁殖作物长期营养繁殖，易受病毒侵染，而使病 毒在体内积累，导致种性退化，造成产量下降或品质降低 甚至死亡，给农业造成巨大损失。
通过茎尖培养获得无病毒种苗，对退化品种进行提纯复 壮。提高产量和品质，如马铃薯脱毒可提高产量30-60%, 提高了经济效益。此外，由于减少农药使用，可以保护生 态环境。
效果较好，后者对活跃生长的茎尖效果较好。 热空气处理即把旺盛生长的植物移入热疗室，在35-40℃
下处理一定时间（几分钟到数周）热处理后将茎尖切下嫁 接于无病毒砧木或进行组织培养。热处理温度应逐步升高， 直到要求温度。
温汤浸渍的材料常用50-55 ℃处理10-50min或35 ℃温 水处理30-40min。
4. 4. 超低温处理脱毒:经过冷冻保护剂处理过的茎尖材料， 采用液氮处理（-196℃）可以钝化病毒，达到脱毒效果， 该方法已在香蕉等果树中成功应用。
5. 5. 合并热处理、茎尖培养或微嫁接脱毒：采用多种方法同 时处理可以达到更好的脱毒效果。
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二、病毒检测方法：
1、形态鉴定： 根据植株的生长状态鉴定是否 脱毒，但不准确。
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2. 热处理脱毒条件： （1）温度和持续时间：因病毒种类而异，有些33-34℃处 理28-33d即可脱毒，而有些必须在39-42 ℃处理50-60d， 耐热杆状病毒热处理脱毒效果差。在植物的耐热范围内， 温度越高，脱毒效果越好。一般采用35-38 ℃.尤其37℃ 恒温处理30±2天为普遍。也可采用高低温处理减少对植 物的损伤。如马铃薯40 ℃ （4h）+16-20 ℃（20h）。 （2）湿度和光照：湿度以70-80%为适宜。光照以自然光 最好。 （3）前处理：27-35 ℃ 1-2周。
4. （3）嫁接苗培养：将嫁接苗置于光下培养，光照时数16h， 嫁接1周后形成愈伤组织，2-3周愈合，5-6周后接穗发育为新 梢。
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2. 微体嫁接脱毒的关键：
影响微体嫁接成活率的主要因素为接穗大小和取样时间。 与接穗大小呈正相关，而无病毒植株获得与接穗茎尖的大 小呈负相关。茎尖分生组织小于0.2mm可以脱除多数病毒， 春季取材嫁接的成活率高于其他季节。
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virus-free tissue virus particles found here
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3. 脱毒效果与茎尖大小的关系：
脱毒效果和茎尖分生组织大小直接相关，茎尖分生组 织越小，脱毒率越高，但生长速度慢。如草莓茎尖切取 0.2-0.3mm时，脱毒率达到100%，而切取1.0mm时，脱 毒率为50%。因此，脱毒培养时，需要兼顾脱毒率、成 活率及茎尖发育成完整植株的能力。既要脱除病毒，也 要使茎尖分生组织迅速生长发育。一般茎尖分生组织大 小以0.2-0.5mm为适宜。
脱毒技术主要应用于各种无性繁殖植物，如草莓、马铃 薯、甘薯、苹果、香蕉、甘蔗等。
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二、脱毒方法： （一）茎尖分生组织培养脱毒： 1. 脱毒原理：病毒在植物体内的分布不均匀，越靠近
顶端区域，带毒越少，顶端分生组织（0.2-0.5 mm）不带 病毒或含病毒量极低。因此，分离分生组织细胞进行培 养，可以获得无病毒种苗。
2、指示植物鉴定法：利用特定的易于感染某些 病毒的指示植物的特征进行病毒鉴定。
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指示植物
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CMV病毒感染的植株叶片
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3、抗血清鉴定法：利用抗原和抗体的特异性反应原理 进行病毒鉴定。用已知病毒的抗血清（antiserum）鉴 定未知病毒。
近年来又在此基础上发展出酶联免疫法（Enzyme Linked Immunosorbent Assay，ELISA），方法是将抗 原固定在支持物上，加入待检血清，然后加入酶（过氧 化物酶或碱性磷酸酶）标记的抗体，使待检血清与对应 抗原的特异性抗体结合，最后用分光光度计进行诊断。
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（3）热处理脱毒：
通过热处理可以由受病毒侵染的个体得到无病毒植株， 其原理是利用病毒与植物的耐热性不同，在高于常温的环 境下，植物组织中的病毒受热后可被部分或全部钝化或失 去活性，而寄主植物组织很少或不会受到伤害。或高温下 植物生长快，而病毒增殖慢而使植物新生部分不带病毒。
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1.热处理脱毒方法： 可以通过温汤浸渍或热空气处理法脱毒，前者对休眠芽
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酶联免疫法进行病毒鉴定
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4、电子显微镜检测（Electronmicroscope）：采用电 子显微镜对病毒的薄样品（约1－－100um）或纯化的 病毒悬液中进行病毒的直接观察。
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（二）微体嫁接脱毒：
微体嫁接是在无菌条件下，将极小(<0.2mm）的茎尖嫁 接到试管内的无菌实生苗砧木上，经培养，待接口愈合发 育为完整植株而达到脱毒的效果。该方法已在柑橘、苹果、 葡萄、山茶等园艺植物中应用。
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微体嫁接
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来自百度文库
1. 微体嫁接的方法：
2. （1）试管砧木的准备:将无病毒种子表面灭菌后接种与MS 培养基，黑暗条件下培养15d使其发芽。
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2. 茎尖分生组织培养脱毒的基本程序：
一般包括培养基选择和制备、带脱毒材料的表面、灭 菌、茎尖分生组织分离、接种和培养、诱导芽分化和小 植株增殖、诱导生根、驯化移栽等环节。
茎尖分生组织的分离需要在超净工作台上借助体视显 微镜进行。茎尖放在培养皿内进行解剖，一只手用镊子 固定，另一手用解剖针将叶片和叶原基层层剥掉，当露 出半圆形顶端分生组织时，将分生组织切下，接种与培 养基上。
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（四）其他脱毒方法：
1. 花器官培养脱毒：由植物的花器官培养脱分化形成愈伤组 织，然后再分化不定芽，可以获得无毒苗。如草莓花药培 养。
2. 2. 珠心胚培养脱毒：柑橘类珠心胚与微管组织没有联系， 一般不带毒，可以利用珠心胚进行培养获得。
3. 3.化学脱毒:采用病毒唑等试剂处理材料或添加到培养基中 可以钝化病毒，达到一定的脱毒效果。
第二节 脱毒种苗生产及病毒检测技术
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一、脱毒的意义：
无性繁殖作物长期营养繁殖，易受病毒侵染，而使病 毒在体内积累，导致种性退化，造成产量下降或品质降低 甚至死亡，给农业造成巨大损失。
通过茎尖培养获得无病毒种苗，对退化品种进行提纯复 壮。提高产量和品质，如马铃薯脱毒可提高产量30-60%, 提高了经济效益。此外，由于减少农药使用，可以保护生 态环境。
效果较好，后者对活跃生长的茎尖效果较好。 热空气处理即把旺盛生长的植物移入热疗室，在35-40℃
下处理一定时间（几分钟到数周）热处理后将茎尖切下嫁 接于无病毒砧木或进行组织培养。热处理温度应逐步升高， 直到要求温度。
温汤浸渍的材料常用50-55 ℃处理10-50min或35 ℃温 水处理30-40min。
4. 4. 超低温处理脱毒:经过冷冻保护剂处理过的茎尖材料， 采用液氮处理（-196℃）可以钝化病毒，达到脱毒效果， 该方法已在香蕉等果树中成功应用。
5. 5. 合并热处理、茎尖培养或微嫁接脱毒：采用多种方法同 时处理可以达到更好的脱毒效果。
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二、病毒检测方法：
1、形态鉴定： 根据植株的生长状态鉴定是否 脱毒，但不准确。
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2. 热处理脱毒条件： （1）温度和持续时间：因病毒种类而异，有些33-34℃处 理28-33d即可脱毒，而有些必须在39-42 ℃处理50-60d， 耐热杆状病毒热处理脱毒效果差。在植物的耐热范围内， 温度越高，脱毒效果越好。一般采用35-38 ℃.尤其37℃ 恒温处理30±2天为普遍。也可采用高低温处理减少对植 物的损伤。如马铃薯40 ℃ （4h）+16-20 ℃（20h）。 （2）湿度和光照：湿度以70-80%为适宜。光照以自然光 最好。 （3）前处理：27-35 ℃ 1-2周。
4. （3）嫁接苗培养：将嫁接苗置于光下培养，光照时数16h， 嫁接1周后形成愈伤组织，2-3周愈合，5-6周后接穗发育为新 梢。
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2. 微体嫁接脱毒的关键：
影响微体嫁接成活率的主要因素为接穗大小和取样时间。 与接穗大小呈正相关，而无病毒植株获得与接穗茎尖的大 小呈负相关。茎尖分生组织小于0.2mm可以脱除多数病毒， 春季取材嫁接的成活率高于其他季节。
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virus-free tissue virus particles found here
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3. 脱毒效果与茎尖大小的关系：
脱毒效果和茎尖分生组织大小直接相关，茎尖分生组 织越小，脱毒率越高，但生长速度慢。如草莓茎尖切取 0.2-0.3mm时，脱毒率达到100%，而切取1.0mm时，脱 毒率为50%。因此，脱毒培养时，需要兼顾脱毒率、成 活率及茎尖发育成完整植株的能力。既要脱除病毒，也 要使茎尖分生组织迅速生长发育。一般茎尖分生组织大 小以0.2-0.5mm为适宜。