产胞外多糖(EPS)乳酸菌菌株的分离、筛选
产胞外多糖的乳酸菌的简便筛选与鉴定
取１ｍＬ稀释样品，分别浇注于ＭＲＳ培养基、Ｅｌｌｉｋｅｒ培养基和Ｍ１７培养基，在适宜条件下培养，用于样品中乳酸菌的分离［１１．２．２分离菌株的分离和保存将１．２．１得到的菌落在相应的平板培养基上划线纯化得到纯培养物，进行革兰氏染色，接触酶实验。
纯化菌株在ＭＲＳ斜面上４℃短期保存，置于３０％（Ｗ／Ｗ）无菌甘油中在一７０℃超低温冰箱中长期保存‘１１．２．３利用茵落拉丝法初步筛选产胞外多糖的乳酸菌将分离纯化菌株在ＭＲｓ筛选培养基上进行划线分离，在２５℃厌氧培养４８ｈ，观察并记录菌落特征。
用无菌牙签接触菌落，轻轻地向外拉，然后在２ｓ内垂直离开以在培养基表面形成连续的拉丝，重复操作５—６个菌落，每个菌落平行做２次，测量菌落拉丝的最大长度（伽ｎ），结果以“平均值士标准方差”表示。
１．２．４乳酸茵胞外多糖的提取将１．２．３得到的菌株接种于筛选ＭＲＳ液体培养基中，３０℃发酵２４ｈ，取１０ｍＬ培养物，沸水浴１０ｍｉｎ，冷却至室温，加质量分数为８０％的三氯乙酸至终浓度为４％，４℃静置过夜，１２ｏｏｏｇ离心２０ｍｉｎ，轻倾上清液于透析袋中，对流水透析２４ｈ，再对双蒸水透析３６ｈ，４次换水，定容，待用。
１．２．５硫酸－苯酚法测定乳酸茵胞外多糖（ＥＰＳ）的含量将１．２．４得到的胞外多糖样品用Ｄｕｂｏｉｓ推荐的硫酸一苯酚法［１５］测定，用葡萄糖做标准曲线（如图１），从曲线上求得ＥＰＳ的含量。
以空白培养基为对照，扣除背景干扰。
’１．２。
６·显微镜观察产胞外多糖乳酸茵细茵形态对分离菌株进行革兰氏染色，用ＭｏｔｉｃＰＭＢ５—２２３２—５摄影显微镜观察细胞形态。
１．２．７产胞外多糖乳酸茵的鉴定产胞外多糖乳酸菌的鉴定采用法国梅里埃公司鲁奎、蠢棺益图１硫酸一苯酚法测定胞外多糖含量的标准曲线的ＡＰＩ细菌鉴定系统进行，将纯菌株在ＭＲＳ琼脂培养基上３７℃微厌氧培养４８ｈ，用无菌棉拭子收集细菌，在ＡＰＩ５０ＣＨ试剂条凹槽中加ＡＰＩ５０ＣＨＬ培养基并接种，用石蜡油封好，３７℃培养２４～２８ｈ，记录菌株对碳水化合物的发酵结果，将其输入梅里埃公司的鉴定软件ＡＰＩＬＡＢＰｌｕｓ进行鉴定。
高产胞外多糖乳酸菌的筛选及培养基优化方法的研究的开题报告
高产胞外多糖乳酸菌的筛选及培养基优化方法的研究的开题报告题目：高产胞外多糖乳酸菌的筛选及培养基优化方法的研究研究背景：胞外多糖是一种重要的生物高分子，具有广泛的生物活性和药理学应用价值，例如抗肿瘤、增强人体免疫力和抗菌等。
乳酸菌是一类重要的益生菌，常被用作发酵食品中的菌种。
研究胞外多糖乳酸菌的培养和优化方法，有助于提高其胞外多糖的产量和生产效率。
研究内容：本研究旨在筛选高产胞外多糖的乳酸菌菌株，优化其培养基的组成，以提高胞外多糖的产量。
具体研究内容如下：1. 通过筛选和鉴定，选择出能够高效合成胞外多糖的乳酸菌菌株。
2. 优化胞外多糖乳酸菌的培养基，包括选定最优的碳源、氮源和微量元素等。
3. 研究培养条件对胞外多糖产量的影响，如pH值、温度和培养时间等。
4. 对优化后的培养基进行验证以确定其优化效果，包括胞外多糖的产量、质量特性和生物活性等。
预期研究成果：通过本研究，预期能够筛选出高产胞外多糖的乳酸菌菌株，并优化其培养基，从而提高胞外多糖的产量和生产效率。
同时，本研究还将对胞外多糖的质量特性和生物活性进行分析和评估，为其在药物和食品行业中的应用提供基础研究数据。
研究方法和技术路线：1. 乳酸菌菌株筛选和鉴定：从发酵食品或其他环境样品中筛选出乳酸菌，并进行基本鉴定。
2. 胞外多糖提取和分析：采用合适的胞外多糖提取方法，并采用高效液相色谱（HPLC）、红外光谱（IR）和核磁共振波谱（NMR）等手段对提取的胞外多糖样品进行分析和鉴定。
3. 培养基优化和胞外多糖产量测定：通过选用不同的碳源、氮源和微量元素等优化培养基的组成，同时调控培养条件，以提高胞外多糖的产量。
测量胞外多糖的产量并进行统计学分析。
4. 胞外多糖的质量特性和生物活性评估：对优化后的胞外多糖样品进行质量特性分析和生物活性评估，包括分子量、甲基化程度、抗氧化活性和抗菌活性等。
研究意义和应用价值：本研究将提高胞外多糖乳酸菌的产量和生产效率，并研究其质量特性和生物活性等，为其在药物和食品行业中的应用提供基础研究数据。
高产胞外多糖乳酸菌的筛选及培养条件优化
高产胞外多糖乳酸菌的筛选及培养条件优化孙军德;刘先【摘要】从酸菜汁和生鲜奶中筛选出一株高产胞外多糖的乳酸菌L3,应用苯酚一硫酸法测定其胞外多糖的产量.分别改变基础培养基的碳源、氮源、发酵温度、时间、pH等条件,探索其对乳酸菌L3胞外多糖生物合成能力的影响.结果表明:葡萄糖和蛋白胨分别是乳酸菌产生多糖的良好碳源和氮源.该菌株胞外多糖的最佳生物合成条件为:初始pH值6.5,发酵温度37℃,发酵时间24h,此条件下胞外多糖的生物合成量为108.49mg·L-1.【期刊名称】《沈阳农业大学学报》【年(卷),期】2010(041)001【总页数】4页(P90-93)【关键词】乳酸菌;胞外多糖;筛选;培养条件优化【作者】孙军德;刘先【作者单位】沈阳农业大学,土地与环境学院,沈阳,110866;沈阳农业大学,土地与环境学院,沈阳,110866【正文语种】中文【中图分类】Q939.11.7乳酸菌是能从葡萄糖（或可利用的碳水化合物）发酵产生大量乳酸的一群细菌。
它们无处不在，广泛分布在人体、动物、植物和整个自然界。
乳酸菌用途广泛，在食品中的应用有着悠久的历史，很多乳酸菌菌株被认为是没有致病可能的。
因为其的安全性，乳酸菌广泛应用于食品和药品领域。
作为保健食品和药品，可以改善和提高人的健康水平，延年益寿；还可以作为微生物学和微生态学领域研究的模式生物。
大量的乳酸菌被人们给予“安全”或“通常是安全的”（GRAS）的地位[1-3]。
多糖是指由20个以上单糖组成的糖类化合物，根据来源不同分为植物多糖、动物多糖和微生物多糖。
根据糖类组成不同，又可分为同多糖和杂多糖。
乳酸菌胞外多糖（lactic acid bacterium expolysaccharides，LAB EPS）是由乳酸菌在生长代谢过程中发酵产生并分泌到细胞外的黏液或荚膜多糖，是常渗入培养基中的一种糖类化合物[4-5]。
乳酸菌EPS可以改善发酵乳的组织状态和菌株对肠道黏膜的吸附。
产胞外多糖乳杆菌的筛选及其多糖的分离、结构和生物活性研究
产胞外多糖乳杆菌的筛选及其多糖的分离、结构和生物活性研究乳酸菌胞外多糖（LAB EPS）是乳酸菌在其生长、代谢过程中分泌到细胞外的粘液或荚膜多糖。
LAB EPS不仅具有重要的物理化学特性，如良好的流变学特性，能改善发酵乳的粘度、质构和口感，防止缩水和乳清析出，使产品增稠、稳定，质地细腻均匀，口感润滑。
而且LAB EPS还具有良好的生理活性，如抗肿瘤、免疫调节、抗病毒、抗溃疡、抗氧化、降胆固醇、降血压等，还可作为益生元促进肠道内其他益生菌的生长，调节肠道菌群。
近年来关于乳酸菌和乳酸菌胞外多糖的研究成为热点。
本文对产胞外多糖的乳杆菌的筛选和鉴定、多糖的分离纯化、多糖的生物活性、分子特性以及结构进行了研究。
主要研究结果如下：采用菌落拉丝法与多糖产量相结合的方法，从健康人体粪便中筛选到一株产EPS较高的Lactobacillus rhamnosus KF5。
该菌株在脱脂乳中培养产230mg/L的EPS。
研究了菌株KF5的生物学特性，该菌株在MRS培养基中生长良好，最适生长温度37℃，最适生长pH6.0，能够在含7%NaCl的MRS中生长。
菌株KF5在胆盐浓度0.2%以下，生长良好，能够耐受0.3%的胆盐。
菌株KF5耐酸性能好，在pH3.0的环境下，保持3h活菌数几乎不下降。
菌株KF5具有很强的粘附能力（23个bacteria/Caco-2细胞），优于对照菌株LGG（9个bacteria/Caco-2细胞）。
抑菌实验表明，菌株产酸抑制S. aureus、E. coli和B. subtilis的生长。
KF5的发酵乳经煮沸、离心、乙醇沉淀、除蛋白、透析、冷冻干燥得到粗多糖。
粗多糖经DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析分离得到中性糖组分EPS1和酸性糖组分EPS2，再分别经Sephacryl HR S200和Sepharose Cl-6B凝胶柱分离，获得均一组分S1和S2。
结合HPSEC分析、紫外分析，两组分均不含蛋白。
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》范文
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》篇一一、引言乳酸菌是一类重要的微生物，其产生的胞外多糖（Exopolysaccharides, EPS）具有多种生物活性，包括增强免疫力、抗肿瘤、抗氧化等作用。
因此，对乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究具有重要的科学意义和应用价值。
本文旨在探讨乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化方法及其免疫活性的研究进展。
二、乳酸菌胞外多糖的筛选1. 菌种筛选首先，从各种乳酸菌中筛选出能够产生胞外多糖的菌种。
通过观察菌株在培养基上的生长情况、产糖量的多少以及产糖速度的快慢等因素，初步筛选出具有产糖潜力的菌种。
2. 发酵条件优化对初步筛选出的菌种进行发酵条件的优化，包括温度、pH值、接种量、培养时间等因素的调整，以提高胞外多糖的产量和质量。
三、乳酸菌胞外多糖的纯化1. 初步纯化采用离心、沉淀、超滤等方法对发酵液中的胞外多糖进行初步纯化，去除杂质和未完全分解的物质。
2. 高级纯化通过凝胶过滤、离子交换、高效液相色谱等方法对初步纯化后的胞外多糖进行进一步纯化，得到较为纯净的胞外多糖样品。
四、免疫活性研究1. 细胞免疫实验通过细胞免疫实验，观察乳酸菌胞外多糖对免疫细胞的影响，包括刺激淋巴细胞增殖、促进细胞因子分泌等作用。
2. 动物实验通过动物实验，观察乳酸菌胞外多糖对动物免疫功能的影响，包括增强体液免疫、细胞免疫等作用，以及其对肿瘤的抑制作用等。
五、结果与讨论经过筛选、纯化后的乳酸菌胞外多糖具有较高的纯度和生物活性。
在细胞免疫实验和动物实验中，均表现出较强的免疫增强作用，能够刺激免疫细胞增殖、促进细胞因子分泌，增强体液免疫和细胞免疫等作用。
此外，乳酸菌胞外多糖还具有抗肿瘤、抗氧化等作用，具有广泛的应用前景。
在研究过程中，我们还发现乳酸菌胞外多糖的产量和纯度受发酵条件、菌种类型等多种因素的影响。
因此，在今后的研究中，需要进一步探讨不同因素对乳酸菌胞外多糖产量和纯度的影响，以及不同来源的乳酸菌胞外多糖的生物活性差异等方面的内容。
高产胞外多糖能力的乳酸菌筛选及其培养条件的优化
第３４卷第３期２０２０年５月兰州文理学院学报(自然科学版)J o u r n a l o fL a n z h o uU n i v e r s i t y ofA r t s a n dS c i e n c e (N a t u r a l S c i e n c e s )V o l ．３４N o ．３M a y ２０２０收稿日期:２０２０Ｇ０３Ｇ１９基金项目:宿州学院科研平台开放课题(２０１９yk f ２９)作者简介:孔德卉(１９９３Ｇ),女,安徽宿州人,助理实验师,研究方向:食品生物技术．E Ｇm a i l :s z x y y pl ＠１６３．c o m．㊀㊀文章编号:２０９５Ｇ６９９１(２０２０)０３Ｇ００５３Ｇ０７高产胞外多糖能力的乳酸菌筛选及其培养条件的优化孔德卉,蒋家璇(宿州学院生物与食品工程学院,安徽宿州２３４０００)摘要:以本实验室保藏的４３株乳酸菌为筛选源,测定它们的产胞外多糖的能力,得到植物乳杆菌２Ｇ２产胞外多糖能力最强,产量为１０１２．６μg /m L ,以此菌为供试菌,采用响应面法优化其产胞外多糖的条件．通过单因素试验,考察菌种接种量㊁培养温度㊁不同碳源及浓度对胞外多糖产量的影响,在此基础上,采用响应面法进一步优化该菌产胞外多糖的条件．结果表明,影响植物乳杆菌２Ｇ２的胞外多糖产量的因素主次顺序为乳糖浓度＞菌种接种量＞培养温度,最佳优化条件为乳糖４５g /L ㊁接种量为３．５％㊁培养温度为３９ħ,在此条件下胞外多糖的产量为１４９８．９１μg /m L ,是优化前的１．４８倍．关键词:乳酸菌;胞外多糖;响应面法中图分类号:T S ２０１．３㊀㊀㊀文献标志码:A0㊀引言乳酸菌(l a c t i ca c i db a c t e r i a ,L A B )作为一种重要的益生菌,可以净化肠内环境,调节人体胃肠道健康及微生态环境平衡[１Ｇ２],并可抑制致病菌的生长,对乳糖不耐症㊁消化不良及过敏刺激反应等均有一定的治疗功效[３Ｇ４]．此外,在一定程度上可以激活机体体液免疫机制,降低肿瘤的发生率[５]．近几年随着对乳酸菌的深入研究,其在农业㊁食品㊁生物㊁医学等领域的应用价值更益突显．乳酸菌胞外多糖(E x o p o l ys a c c h a r i d e ,E P S )是乳酸菌在生长代谢过程中发酵产生并分泌到细胞壁外的次级代谢物的总称[６],一般为黏液或荚膜多糖等水溶性多糖,是一种天然高分子聚合物[７]．作为一种安全的功能性产物,乳酸菌胞外多糖因其双重理化功能,越来越广泛地被应用于食品工业及医疗领域中[８]．在生理功能上,胞外多糖具有良好的抗肿瘤㊁保护机体组织细胞㊁增强免疫抵抗力和降低胆固醇等活性[９]．在物化特性上,作为一种新型天然食品添加剂,E P S 对于酸乳及豆制品的流变性㊁乳化性㊁黏着性都有显著影响,极大地提高了其质构㊁凝胶和流变性能,缓解了乳清分离㊁结构脆弱等问题,使其变得更加细腻,鲜嫩爽滑,从而大大增加酸乳及豆制品的口感,提高风味,乳酸菌E P S 有广阔的工业应用价值[１０Ｇ１１]．目前用于发酵生产酸乳的大部分菌株稳定性差,产糖能力弱,E P S 在工业生产中规模性应用受到极大限制．因此乳酸菌E P S 产量的提高是目前急需解决的难题．要想解决这一难题,就必须筛选高产菌株并就其培养条件进行优化．本研究以实验室菌种库保藏的４３株乳酸菌为筛选源,测定它们的产胞外多糖的能力,获取产胞外多糖能力最强的目标菌株,再通过单因素试验设计㊁B o x ＧB e h n k e n 试验设计,以胞外多糖含量作为响应值,对影响因素进行优化分析,以求得培养条件的最优组合．1㊀材料与方法1.1㊀材料与试剂乳酸菌来源:本实验室菌种库保藏的４３株乳酸菌．M R S 培养基,胞外多糖筛选培养基．主要试剂:三氯乙酸㊁硫酸㊁乙酸乙酯㊁蒽酮等,均为国产分析纯试剂,购买于国药集团．1.2㊀仪器与设备S H P Ｇ２５０型生化培养箱(上海三发科学仪器有限公司);１Ｇ１５P K 离心机(湖南湘仪实验室仪器开发有限公司);B B S ＧS D C ＧA 超净工作台(博科生物公司);７２２型可见光分光光度计(上海仪电分析仪器有限公司)．1.3㊀实验方法１．３．１㊀葡萄糖标准曲线的绘制㊀精密移取葡萄糖标准液０．０m L㊁２．０m L㊁４．０m L㊁６．０m L㊁８．０m L㊁１０．０m L于试管中,加蒸馏水稀释１００倍,并从中取１．０m L稀释液于２５m L的具塞试管中,再各加６％苯酚溶液１．５m L振荡摇匀,沿着玻璃棒缓慢加入５m L浓硫酸,摇匀,静置１０m i n．再放于水浴锅沸水加热２０m i n,拿出冷却放置至室温,在４９０n m处,对照测定标准液的吸光度[１２]．葡萄糖的标准曲线如图１所示．图１㊀葡萄糖的标准曲线１．３．２㊀胞外多糖的提取㊀将供试乳酸菌活化后接种到胞外多糖M R S液体筛选培养基中,３０ħ静置培养４８h,取１０m L培养液于试管中,并加入２m L８０％的三氯乙酸,置冰浴中搅拌振荡３０m i n后于４ħ㊁６０００g下离心３０m i n,吸取上清液于灭菌过的５０m L的离心管中,再加入３倍体积的冰冻无水乙醇,放置在４ħ冰箱中冷藏．第２天取出,最终可以观测到多糖呈乳白色絮状沉淀析出,再于４ħ㊁６０００g下离心３０m i n,用１０m L 蒸馏水溶解沉淀,可得胞外多糖提取液[１３]．１．３．３㊀胞外多糖的测定㊀用移液枪吸取１m L 胞外多糖粗提取液于试管中．稀释到合适倍数,吸取１m L稀释液于２０m L的具塞试管中．另取１m L蒸馏水作为试剂空白参比,然后分别添加０．５m L的蒽酮试剂．随后沿璃棒缓缓加入５m L浓硫酸,盖上塞子后,充分摇匀,再沸水浴１０m i n,冷却至室温后,在波长６２０n m下测定提取液O D 值,并根据葡萄糖标准曲线回归方程计算胞外多糖的含量．１．３．４㊀培养条件的优化(１)接种量对菌株产E P S的影响将筛选的菌株活化后,调节M R S液体培养基初始p H为６．２,然后以２％㊁３％㊁４％㊁５％㊁６％５个水平的接种量分别接种到培养基中,３７ħ恒温培养４８h,测定培养液中E P S含量．不同的接种量重复３次实验,取其平均值．(２)不同碳源对菌株产E P S的影响改变M R S培养基中的碳源,将碳源分别更改为葡萄糖㊁乳糖㊁蔗糖㊁果糖和麦芽糖,并调节培养基初始p H至６．２,以３％接种量接至改良的M R S培养基中,３７ħ下恒温培养４８h,测定培养液中E P S含量．每个水平重复３次实验,取其平均值．(３)碳源浓度对菌株产E P S的影响改变M R S培养基中的乳糖浓度,将浓度分别设定为１０㊁２０㊁３０㊁４０㊁５０g/L,并调节培养基初始p H至６．２,以３％接种量接至改良的MR S培养基中,３７ħ下恒温培养４８h,测定培养液中E P S含量．每个水平重复３次实验,取其平均值．(４)发酵温度对菌株产E P S的影响将MR S培养基的碳源更换为乳糖,浓度设置为４０g/L,并调节初始p H至６．２,活化菌株后以３％接种量接至改良过的M R S液体培养基中,分别置于２３㊁３０㊁３７㊁４４㊁５１ħ的培养箱中,恒温培养４８h,测定培养液中E P S含量．每个培养温度重复３次实验,取其平均值[１４Ｇ１５]．2㊀结果与讨论2.1㊀高产胞外多糖菌株的筛选以实验室保藏的４３株乳酸菌为筛选源,测定其产胞外多糖的能力,结果如表２所列．由表２易知,在４３株乳酸菌中,菌株２Ｇ２产E P S的能力最强,胞外多糖产量高达１０１２．６μg/ m L,该菌株经鉴定为植物乳杆菌,故以此菌为供试菌,优化其产胞外多糖的条件．2.2㊀乳酸菌产EPS培养条件的优化２．２．１㊀接种量对产E P S结果影响㊀为探究不同接种量对乳酸菌株产E P S能力的影响,本次试验设定２％㊁３％㊁４％㊁５％㊁６％不同水平的５个接种量,利用蒽酮Ｇ硫酸法测定活化后植物乳杆菌２Ｇ２产多糖溶液的吸光度值,并代入葡萄糖标准曲线回归方程中计算E P S的产量,所得结果如图２所示．由图２可知,接种量在２％~３％时,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的能力呈上升趋势,这是因为当接种量适当增加时,植物乳杆菌２Ｇ２生长增殖周４５㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀兰州文理学院学报(自然科学版)㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第３４卷表２㊀乳酸菌株产E P S 的能力菌株来源O D 值胞外多糖含量/(μg /m L )菌株来源O D 值胞外多糖含量/(μg /m L )植伊利牛奶０．２１０６１８．５３５Ｇ２腌空心菜０．１８２５３６．１８A Ｇ１酸菜０．１７８５２４．４２５Ｇ３腌空心菜０．２６１７６８．５３B 腌泡椒０．１３４３９５．００５Ｇ４腌空心菜０．１５７４６２．６５C 酱瓜０．３１８９３６．１８６君乐宝纯享０．２２３６５６．７６D酸辣白菜０．１６４４８３．２４６Ｇ２萝卜１０．２２４６５９．７D Ｇ１酸辣白菜０．１９６５７７．３５６Ｇ３萝卜１０．２９６８７１．４７J Ｇ１黄豆０．１９０５５９．７０６Ｇ４萝卜１０．１７８５２３．５３Q ３蒜头汁０．１４６４３０．２９７Ｇ１萝卜２０．２２４６５９．７１Q ４蒜头汁０．１９５５７４．４１７Ｇ２萝卜２０．１４９４３９．１２P T Ｇ１酸菜汁０．１７６５１８．５３８白伊利牛奶０．１６６４８９．１２P T Ｇ２酸菜汁０．１６４４８３．２４９蓝君乐宝０．１７７５２１．４７１Ｇ１豆腐乳０．２６３７７４．４２１０Ｇ１泡菜０．２１５６３３．２４２蓝蒙牛优益C ０．１６６４８９．１２１１Ｇ２泡菜０．１４８４３６．１８２Ｇ１腌豆角０．１６３４８０．２９１１Ｇ３泡菜０．１４８４３６．１８２Ｇ２腌豆角０．３４４１０１２．６１２Ｇ１泡菜０．１７０５００．８８３蒙牛优益C ０．２７８８１８．５３１２Ｇ４泡菜０．１４２４１８．５３３Ｇ１腌雪菜０．１２９３８０．２９１３Ｇ２泡菜０．１９０５５９．７１３Ｇ３腌雪菜０．２１６６３６．１８１４Ｇ１泡菜０．１７３５０９．７１４黄养乐多０．２４８７３０．２９１４Ｇ２泡菜０．１８７５５０．８８４Ｇ４腌辣椒０．１８８５５３．８２１５Ｇ２菌粉０．１７３５０９．７１５蒙牛冠益乳０．２３１６８０．２９１７Ｇ１菌粉０．２２６６６５．５９５Ｇ１腌空心菜０．１７８５２４．４１图２㊀不同接种量下的E P S 产量期相应缩短,菌液浓度增大,从而使发酵液中的E P S 产量提高,当接种量为３％时,其产胞外多糖的含量最多,高达４２７μg /m L ;当接种量位于３％~６％时,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S 的能力呈下降趋势,这是因为当接种量持续增加时,过高的菌液浓度会争夺培养基中的营养物质,尤其在增殖培养后期会有一部分菌体因培养基中养分不足而不断死亡,从而影响菌株产胞外多糖的能力;当接种量为６％时,其产胞外多糖的含量最少,为２２２．５μg /m L ．因此,植物乳杆菌２Ｇ２产胞外多糖的最佳接种量为３％．２．２．２㊀不同碳源对产E P S 结果影响㊀碳源是微生物培养基必须成分,培养基中碳源的不同会导致乳酸菌产胞外多糖量的差异[１６Ｇ１７]．目前微生物可利用的碳源主要为木糖㊁葡萄糖㊁半乳糖㊁果糖㊁麦芽糖㊁乳糖㊁蔗糖等,本次优化碳源试验中,将碳源设置为葡萄糖㊁乳糖㊁蔗糖㊁果糖和麦芽糖,分别探究其对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S 的影响．利用蒽酮Ｇ硫酸法测定活化后的植物乳杆菌２Ｇ２产多糖溶液的吸光度值,并代入葡萄糖标准曲线回归方程中计算E P S 的产量,所得结果如图３所示．由图３易知,当碳源为乳糖时,菌株２Ｇ２产E P S 的能力最大,产量为５８１．３２μg/m L ,显著高于其他碳源产E P S 浓度．然而对于从多宝鱼肠道分离的菌株L a c t o b a c i l l u s pl a n t a r u m Ｇ１２[１５],当碳源为蔗糖时胞外多糖合成量最高;对于菌株L ．k e f i r a n o f a c i e n s [１６],当乳糖为碳源时,其产胞外多糖的能力最好;而对于植物乳杆菌YM Ｇ２[１７],当碳５５第３期孔德卉等:高产胞外多糖能力的乳酸菌筛选及其培养条件的优化图３㊀不同碳源下的E P S产量源为葡萄糖时,菌株代谢产E P S的量最多．从这些文献可以看出,不同的菌株,其最佳碳源也会不同,碳源的利用具有菌株差异性．根据本次实验研究,获知植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的最优碳源为乳糖．２．２．３㊀不同乳糖浓度对产E P S结果影响㊀为探究不同乳糖浓度对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S能力的影响,本次试验设定１０㊁２０㊁３０㊁４０㊁５０g/L５个不同水平的浓度,利用蒽酮Ｇ硫酸法测定活化后的植物乳杆菌２Ｇ２产多糖溶液的吸光度值,并代入葡萄糖标准曲线回归方程中计算E P S的产量,所得结果如图４所示．图４㊀不同乳糖浓度下的E P S产量由图４可知,乳糖浓度在１０~４０g/L时,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的能力逐级增强,当浓度为４０g/L时,菌株产胞外多糖的量最多,高达７２６．４μg/m L．这是因为随着乳糖浓度的提高,培养基中充分的营养物质为植物乳杆菌２Ｇ２的增殖培养提供优良环境,提高了其新陈代谢速度,从而使菌株２Ｇ２发酵液中的胞外多糖产量逐渐增加;但乳糖浓度在４０~５０g/L时,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S 的能力急剧降低,当浓度为５０g/L时,菌株产胞外多糖的量最少,为４９３．０９μg/m L．这是因为培养基中营养物质(乳糖)浓度过高,会使培养基的渗透压太高,导致细胞脱水,抑制植物乳杆菌２Ｇ２的生长,从而影响其产E P S的能力．因此根据本次试验研究,可以获知植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的最适乳糖浓度为４０g/L．２．２．４㊀不同温度对产E P S结果影响㊀为探究不同的发酵温度对菌株产E P S含量的影响,本实验利用蒽酮Ｇ硫酸法测定活化后的植物乳杆菌２Ｇ２产多糖溶液的吸光度值,并代入葡萄糖标准曲线回归方程中计算E P S的产量,结果如图５所示．图５㊀不同温度下的E P S产量由图５可得,随着培养温度的不断上升,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的能力呈先上升后降低趋势,当培养温度为３７ħ时,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S 的能力最强,合成量为７３１．２８μg/m L;５１ħ时E P S含量最低,为４８９．７２μg/m L．这是因为温度与微生物生长代谢之间密切相关,当处于适宜温度下,乳酸菌生长迅速,发酵性能强,从而产E P S 的能力也会相应提高;当超出适宜温度范围时,乳酸菌增殖代谢速率降低,发酵性能降低,甚至会有个别细菌因过高的温度而失活,从而影响菌株产E P S的能力．因此根据本次试验研究,可以获知植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的最适温度为３７ħ．2.3㊀响应面实验分析２．３．１㊀回归方程的参数分析㊀本次试验以接种量㊁乳糖浓度㊁温度３个培养因素进行优化分析,根据上述单因素试验结果,可知当接种量为３％㊁碳源为乳糖㊁浓度为４０g/L㊁温度为３７ħ时植物乳杆菌２Ｇ２产胞外多糖的含量最多．因此将这些条件作为基础条件来采用B o xＧB e h n k e n法进行进一步的优化,其优化方法可见表３．选择好各试验因素的含量之后,按照表３进行实验,再利用软件D e s i n gＧE x p e r８．０．６设计出组合试验,数据可见表４．再根据R S A软件对数据进行分析,分析结果如表５．在响应面优化设计中,F值反映的是不同变量与响应值之间的拟合程度,F值越高,表明模型６５㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀兰州文理学院学报(自然科学版)㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第３４卷表３㊀B o xＧB e h n k e n法因素选择与含量水平接种量/％浓度/(g/L)温度/ħ－１２．５０３５．００３５．０００３．００４０．００３７．００＋１３．５０４５．００３９．００的显著性好;而P值反映的是不同变量对响应值的影响程度,P值越小,表明该因素对响应值的影响程度更大．由表５可知,F模型＝３０．１１,P＜０ ００１时,模型为显著;失拟项F＝２．４１,P＝０ １５２０＞０．０５时,不显著,因此模型建立有效．此外,从表５分析结果还获知在接种量㊁乳糖浓度㊁培养温度３个培养条件中,乳糖浓度的F模型最大,P值最小,模型显著,对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S能力的影响程度最大;相反,菌株接种量的F模型最小,P值最大,模型不显著,对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S能力的影响程度最小．因此各因子对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S能力的影响顺序为:乳糖浓度＞接种量＞培养温度[１８]．２．３．２㊀响应曲面实验分析㊀接种量与浓度交互对E P S产量的影响如图６,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的能力随接种量和乳糖浓度的增加呈先上升后降低趋势．其中,相对于接种量,乳糖浓度的响应曲面坡度更加陡峭,变化更加显著,因此乳糖浓度对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S能力的影响更为显著．并且由表５方差分析结果可知,接种量与浓度的交互作用对E P S产量的影响不显著．表４㊀中心组合实验的设计和结果实验号A接种量/％B乳糖浓度g/LC发酵温度/ħY胞外多糖(μg/L)１３．００４５．００３５．００１１４５．５０２３．００４０．００３７．００１１３１．３２３３．００３５．００３９．００６６２．２１４２．５０４０．００３９．００６７７．９４５３．５０３５．００３７．００６７３．９７６３．００３５．００３５．００１３６９．４４７２．５０４５．００３７．００１００６．３２８３．５０４０．００３９．００９２８．３８９２．５０３５．００３７．００７２５．３８１０３．５０４０．００３５．００６０６．３２１１３．５０４５．００３７．００１１０３．２４１２２．５０４０．００３５．００９８３．７１１３３．５０４５．００３９．００１４９８．９１表５㊀中心组合实验结果分析方差来源平方和自由度均方F值P值显著性模型１．３E＋００６９１．３E＋００５３０．１１＜０．０００１显著A２６６１９．４５１２６６１９．４５６．３５０．０３０４B２．８E＋００５１２．８E＋００５６４．００＜０．０００１显著C３２１５．５７１３２１５．５７０．７７０．４０１７A B７４４６．４５１７４４６．４５１．７８０．２１２１A C７９９１０．４６１７９９１０．４６１９．０６０．００１４显著B C２．８E＋００５１２．８E＋００５６６．８４＜０．０００１显著A２５．１E＋００５１５．１E＋００５１２０．９０＜０．０００１显著B２１９４００．８８１１９４００．８８４．６３０．０５６９C２３３９７．６５１３３９７．６５０．８１０．３８９１残差４１９１６．０４１０４１９１．６０失拟误差２１３１１．５４３７１０３．８５２．４１０．１５２０不显著纯误差２０６０４．５０７２９４３．５０总变异１．２E＋００６１９接种量与温度交互对E P S产量的影响如图７,植物乳杆菌２Ｇ２产E P S的能力随接种量和温度的增加呈先上升后降低趋势．其中,相对于温度,接种量的响应曲面坡度更加陡峭,变化更加显著,因此接种量对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S能力的影响更为显著．并且由表５方差分析结果可知,接种量与温度的交互作用对E P S产量的影响显著．浓度与温度交互对E P S产量的影响如图８,７５第３期孔德卉等:高产胞外多糖能力的乳酸菌筛选及其培养条件的优化植物乳杆菌２Ｇ２产E P S 的能力随乳糖浓度和温度的增加呈先上升后降低趋势．其中,相对于温度,乳糖浓度的响应曲面坡度更加陡峭,变化更加显著,因此乳糖浓度对植物乳杆菌２Ｇ２产E P S 能力的影响更为显著．并且由表５方差分析结果可知,乳糖浓度与温度的交互作用对E P S 产量的影响显著．图６㊀接种量与浓度交互对E P S产量的影响图７㊀接种量与温度交互对E P S产量的影响图８㊀浓度与温度交互对E P S 产量的影响3㊀结论根据上述实验探究得到产E P S 最佳工艺参数:接种量为３．５％,温度为３９ħ,最佳碳源为乳糖,其最适浓度为４５g /L ,E P S 产量能够达到１４９８．９１μg /m L ．按照上述条件实验进行３次重复试验,其误差在５％以内,说明该模型能够较好地模拟其发酵过程中E P S 的含量变化．参考文献:[１]唐京,陈明,柯文灿,等．乳酸菌在疾病防治和人体保健中的应用研究进展[J ]．微生物学杂志,２０１７,３７(４):９８Ｇ１０７．[２]华鹤良．乳酸菌的分离鉴定及其抗菌肽与发酵性能研究[D ]．扬州:扬州大学,２０１４．[３]MA J AMA A H ,I S O L A U R IE ,S A X E L I N M ,e t a l ．L a c t i c a c i db a c t e r i a i n t h e t r e a t m e n t o f a c u t e r o t a v i r u s ga s t r o e n t e r i t i s [J ]．J P e d i a t r G a s t r N u t r ,１９９５,２０(３):３３３Ｇ３３８．[４]黄承敏,肖茜,王蓉蓉,等．一株高产胞外多糖乳酸菌的分离鉴定及其产胞外多糖的研究[J ]．中国酿造,２０１９,３８(１):８０Ｇ８３．[５]袁起伟,郝凤奇,杨文涛,等．乳酸菌抗肿瘤作用的研究进展[J ]．食品科学,２０１１,３２(９):３０３Ｇ３０６．[６]张玉龙,胡萍,王金龙,等．产胞外多糖乳酸菌的筛选及抗氧化特性研究[J ]．中国酿造,２０１５,３４(１０):３７Ｇ４２．[７]汪清美,赵丽平．乳酸菌胞外多糖的结构及益生功能研究进展[J ]．天津农业科学,２０１５,２１(５):１９Ｇ２２[８]叶广彬,陈源红,王长丽,等．柠檬明串珠菌T D １产胞外多糖条件的响应面法优化及其抗氧化性研究[J ]．中国酿造,２０１８,３７(１１):７０Ｇ７５．[９]孟凡岭,万姝含,胡风庆．乳酸菌胞外多糖生物活性研究进展[J ]．辽宁大学学报(自然科学版),２０１８,４５(４):３７９Ｇ３８４．[１０]杨靖鹏,王静,张晓辉,等．乳酸菌胞外多糖研究进展以及在食品工业中的应用[J ]．食品与发酵工业,２０１６,４２(１):２６４Ｇ２７２．[１１]冯美琴．植物乳杆菌胞外多糖发酵㊁结构鉴定及其功能特性研究[D ]．南京:南京农业大学,２０１２．[１２]熊芳,孙淑静,肖颖,等．６种食用菌菌丝体多糖含量的比较[J ]．食品研究与开发,２０１２,３３(８):２７Ｇ３１．[１３]姚沛琳．乳酸菌抑制变异链球菌生物膜形成的研究[D ]．无锡:江南大学,２０１５．[１４]刘燕．高产胞外多糖乳酸菌的筛选及培养基优化方法的研究[D ]．郑州:河南农业大学,２００９．[１５]刘雯雯,孙梦莹,刘丽娜,等．L a c t o b a c i l l u s p l a n t a Ｇr u m Ｇ１２菌株胞外多糖培养条件优化及功能特性研究[J ]．食品研究与开发,２０１８,３９(７):１８０Ｇ１８６．[１６]C H E I R S I L PB ,S H I M I Z U H ,S H I O Y AS ．M o d e l Ｇl i n g a n do pt i m i z a t i o no f e n v i r o n m e n t a l c o n d i t i o n s f o r k e f i r a n p r o d u c t i o n b y L a c t o b a c i l l u s k e f i Ｇr a n o f a c i e n s [J ]．A p p l i e dM i c r o b i o l o g y &B i o t e c h n o l o g y ,２００１,５７(５/６):６３９Ｇ６４６[１７]司天昭,柳陈坚,秦晓萌,等．植物乳杆菌YM Ｇ２菌株胞外多糖生物合成工艺优化[J ]．食品科学,２０１７,３８８５㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀兰州文理学院学报(自然科学版)㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第３４卷(１０):２４Ｇ３０[１８]李莉,张赛,何强,等．响应面法在试验设计与优化中的应用[J ]．实验室研究与探索,２０１５,３４(８):４１Ｇ４５．[责任编辑:纪彩虹]S c r e e n i n g o fL a c t i cA c i dB a c t e r i aw i t hH i ghE x t r a c e l l u l a r P o l y s a c c h a r i d eC a p a c i t y a n dO pt i m i z a t i o no fC u l t u r eC o n d i t i o n s K O N G D e Ｇh u i ,J I A N GJ i a Ｇx u a n(S c h o o l o fB i o l o g i c a l a n dF o o dE n g i n e e r i n g ,S u z h o uU n i v e r s i t y,S u z h o u２３４０００,A n h u i ,C h i n a )A b s t r a c t :T h e ４３s t r a i n s o f l a c t i c a c i db a c t e r i ad e p o s i t e d i n t h i s l a b o r a t o r y w e r eu s e da s t h e s c r e e n i n gs o u r c e t od e t e r m i n e t h e i ra b i l i t y t o p r o d u c ee x t r a c e l l u l a r p o l ys a c c h a r i d e s ．T h eL a c t o b a c i l l u s p l a n t a Ｇr u m２Ｇ２h a d t h e s t r o n g e s t a b i l i t y t o p r o d u c e e x t r a c e l l u l a r p o l y s a c c h a r i d e s ,w i t ha no u t pu t o f １０１２．６μg /m L ．F o r t h e t e s tb a c t e r i a ,t h e r e s p o n s es u r f a c em e t h o dw a su s e dt oo p t i m i z e t h ec o n d i t i o n s f o r p r o d u c i n g e x t r a c e l l u l a r p o l y s a c c h a r i d e s ．T h r o u g ha s i n g l e f a c t o r e x pe r i m e n t ,t h e ef f e c t so f s t r a i n i n Ｇo c u l a t i o n a m o u n t ,c u l t u r e t e m pe r a t u r e ,d if f e r e n t c a r b o n s o u r c e s a n d c o n c e n t r a t i o n s o n t h e p r o d u c t i o n o fe x t r a c e l l u l a r p o l y s a c c h a r i d e sw e r e i n v e s t ig a t e d ．O nthi sb a s i s ,t h er e s p o n s es u r f a c e m e t h o d w a s u s e d t o f u r t h e r o p t i m i z e t h e c o n d i t i o n s f o r t h e p r o d u c t i o n o f e x t r a c e l l u l a r p o l ys a c c h a r i d e s ．T h e r e s u l t s s h o w e d t h a t t h e m a j o r f a c t o r sa f f e c t i n g th e p r o d u c t i o no fL a c t o b a c i l l u s p l a n t a r u m ２Ｇ２e x t r a c e l l u l a r p o l y s a c c h a r i d e sw e r e l a c t o s e c o n c e n t r a t i o n ＞i n o c u l a t i o n a m o u n t ＞c u l t i v a t i o n t e m p e r a t u r e ,t h e o p t i m a l o p t i m i z a t i o n c o n d i t i o n sw e r e l a c t o s e４５g /L ,i n o c u l a t i o na m o u n t ３．５％,c u l t u r e t e m pe r a t u r ew a s３９ħ,a n d t h e y i e l dof e x t r a c e l l u l a r p o l y s a c c h a r i d e u n d e r t h i s c o n d i t i o nw a s １４９８．９１μg/m L ,w h i c hw a s １．４８t i m e s t h a t b e f o r e o pt i m i z a t i o n ．K e y wo r d s :l a c t i c a c i db a c t e r i a ;e x t r a c e l l u l a r p o l y s a c c h a r i d e ;r e s p o n s e s u r f a c em e t h o d o l o g y ９５第３期孔德卉等:高产胞外多糖能力的乳酸菌筛选及其培养条件的优化。
产胞外多糖菌株的筛选及胞外多糖性质和结构分析
产胞外多糖菌株的筛选及胞外多糖性质和结构分析首先，产胞外多糖的菌株筛选是一个关键步骤。
通过对自然、环境中的微生物进行采样和分离培养，可以得到大量的微生物菌株。
然后，通过培养基中添加特定诱导剂，有利于胞外多糖的产生，将菌株进行筛选，选择具有高产胞外多糖能力的菌株。
接下来，对筛选出的菌株进行胞外多糖的性质和结构分析。
首先，可以通过测定胞外多糖的宏观性质，如溶解性、稳定性、抗酶性等，评估其在工业生产中的应用潜力。
此外，利用一系列生化方法，可以对胞外多糖进行形态学和物化性质的分析，如分子量的测定、糖含量的测定、紫外光谱的测定等，以揭示其基本特征。
进一步，对胞外多糖的结构进行分析，有助于深入了解其组成和空间构型，从而为其功能性的应用提供理论依据。
常见的结构分析方法包括红外光谱、核磁共振、质谱等。
红外光谱可以通过检测样品在不同波长下对入射光的吸收情况，得到胞外多糖中特定官能团的存在和它们之间的相互作用；核磁共振可以通过检测样品中核素的共振频率，得到胞外多糖的碳、氢原子的位置信息；质谱可以通过检测样品中离子的质量，得到胞外多糖的草图和主要成分。
最后，在对胞外多糖性质和结构进行分析的基础上，可以通过体外实验验证其在不同领域中的应用价值。
例如，在食品工业中，可以评估胞外多糖作为乳化剂、稳定剂等的效果；在医药工业中，可以评估胞外多糖作为药物微粒的包裹材料的效果；在环境工程中，可以评估胞外多糖对重金属离子等有害物质的吸附效果等。
综上所述，产胞外多糖的菌株筛选以及胞外多糖性质和结构分析是一项复杂而综合性的工作。
通过这一过程，可以找到具有高产胞外多糖能力的菌株，并进一步了解其胞外多糖的性质和结构，为其在工业生产中的应用提供理论基础。
产胞外多糖乳酸菌的筛选及鉴定
基金项目：湖南省自然科学青年基金项目（编号：２０２１ＪＪ４０２４２）作者简介：陈靖，男，湖南农业大学在读硕士研究生。
通信作者：周辉（１９８０—），男，湖南农业大学副教授，博士。
Ｅ ｍａｉｌ：ｐａｒａｄｉｓｅ９１７＠１６３．ｃｏｍ收稿日期：２０２２ １１ ２３ 改回日期：２０２３ ０３ ２２犇犗犐：１０．１３６５２／犼．狊狆犼狓．１００３．５７８８．２０２２．８１０９１［文章编号］１００３ ５７８８（２０２３）０４ ００２６ ０６产胞外多糖乳酸菌的筛选及鉴定Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇａｎｄｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇｌａｃｔｉｃａｃｉｄｂａｃｔｅｒｉａ陈 靖１犆犎犈犖犑犻狀犵１ 周佳豪１犣犎犗犝犑犻犪 犺犪狅１ 毛琪琪１犕犃犗犙犻 狇犻１ 唐 霞２犜犃犖犌犡犻犪２ 刘成国１，３犔犐犝犆犺犲狀犵 犵狌狅１，３ 周 辉１，３犣犎犗犝犎狌犻１，３（１．湖南农业大学食品科学技术学院，湖南长沙 ４１０１２８；２．皇氏集团湖南优氏乳业有限公司，湖南长沙 ４１０００８；３．湖南农业大学长沙现代食品创新研究院，湖南长沙 ４１０１２８）（１．犆狅犾犾犲犵犲狅犳犉狅狅犱犛犮犻犲狀犮犲犪狀犱犜犲犮犺狀狅犾狅犵狔，犎狌狀犪狀犃犵狉犻犮狌犾狋狌狉犪犾犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔，犆犺犪狀犵狊犺犪，犎狌狀犪狀４１０１２８，犆犺犻狀犪；２．犎狌犪狀犵狊犺犻犌狉狅狌狆犎狌狀犪狀犢狅狌狊犺犻犇犪犻狉狔犆狅．，犔狋犱．，犆犺犪狀犵狊犺犪，犎狌狀犪狀４１０００８，犆犺犻狀犪；３．犆犺犪狀犵狊犺犪犐狀狀狅狏犪狋犻狅狀犐狀狊狋犻狋狌狋犲犳狅狉犉狅狅犱狅犳犎狌狀犪狀犃犵狉犻犮狌犾狋狌狉犪犾犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔，犆犺犪狀犵狊犺犪，犎狌狀犪狀４１０１２８，犆犺犻狀犪）摘要：目的：筛选出产胞外多糖能力强的乳酸菌菌株。
方法：从实验室分离保藏的乳酸菌中挑选４０株乳酸菌，以商业菌株鼠李糖乳杆菌（犔．狉犺犪犿狀狅狊狌狊ＧＧ，ＬＧＧ）为阳性对照菌株，采用菌落拉丝法和苯酚—硫酸法筛选出胞外多糖产量高的菌株，对其进行体外抗逆性、安全性和抗生素敏感性试验，并对最终得到的菌株进行表型特征分析和种属鉴定。
产胞外多糖菌株的筛选及胞外多糖性质和结构分析
产胞外多糖菌株的筛选及胞外多糖性质和结构分析多糖具有降血糖、降血脂、免疫调节、抗肿瘤、抗氧化等诸多优良的生物活性,广泛应用于医药、食品、化妆品等领域,其中微生物胞外多糖具有产生量大、生产周期短、成本相对较低等优势,是研究和应用较多的一类多糖。
筛选新的产胞外多糖菌株和具有良好理化性质的胞外多糖具有很大的意义。
本研究从土壤样品中筛选出一株产胞外多糖的菌株WL113,并对其产生的胞外多糖的性质、结构等作了初步的分析研究。
通过形态特征观察及16SrDNA序列鉴定筛选出的产糖菌株WL113是一种肠杆菌,命名为Enterobacter sp.WL113.向发酵2d的发酵液中加入2-3倍体积95%乙醇提取胞外多糖获得粗多糖,粗多糖中总糖含量为68.33%,蛋白质含量为12.91%。
粗多糖经纯化后通过高效液相色谱、红外光谱和核磁共振进行结构分析表明,此多糖主要由6.46%甘露糖,18.20%葡萄糖,30.90%半乳糖,42.96%岩藻糖,1.47%葡萄糖醛酸组成,摩尔比为0.36：1.00：1.70：2.36：0.08,分子为吡喃糖环,存在a型和p型吡喃糖苷键,分子中存在糖醛酸,是一种酸性杂多糖。
通过单因素实验优化菌株产糖条件,得到最适合菌株产糖的碳源为蔗糖,氮源为酵母粉,且在蔗糖浓度范围为10-30g/L、酵母粉浓度为1-3g/L时,胞外多糖产量逐渐增加,碳氮比为15：1时,产糖量最高；最适培养温度30℃,pH8.0,装液量20mL/100mL(20%).菌株在最适条件下培养后,胞外多糖产量提高至7.67g/L。
流变特性研究表明,胞外多糖溶液粘度随质量浓度升高而增大,浓度为10g/L时粘度比1g/L时提高约33倍；对温度敏感,随着温度升高,粘度下降明显,100℃时粘度比25℃时降低了89.8%;在酸性、中性和弱碱性条件下粘度相对稳定,pHH10以上时粘度下降很快;对Na+、K+、Mg2+、和Ca2+等金属盐离子耐受性能良好,Fe3+会导致多糖沉淀。
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》范文
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》篇一一、引言乳酸菌作为益生菌的一种，具有调节肠道菌群平衡、增强免疫力等重要功能。
其中，乳酸菌胞外多糖（Exopolysaccharides，EPS）作为乳酸菌的重要代谢产物，具有多种生物活性，如抗肿瘤、抗氧化、免疫调节等。
因此，对乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究具有重要的理论和实践意义。
本文旨在通过实验研究，探讨乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化方法及其免疫活性的作用机制。
二、材料与方法1. 材料（1）菌种：选择不同种属的乳酸菌进行实验。
（2）培养基：根据实验需要，配置不同的培养基。
（3）试剂：如乙醇、丙酮、硫酸铵等。
2. 方法（1）筛选方法：采用薄层层析法、紫外-可见光谱法等手段，对乳酸菌产生的EPS进行筛选。
（2）纯化方法：通过醇沉法、硫酸铵沉淀法等方法对EPS 进行纯化。
（3）免疫活性研究：采用体外实验和动物实验相结合的方法，观察EPS对免疫细胞的刺激作用，评估其免疫活性。
三、实验结果1. EPS的筛选结果通过薄层层析法、紫外-可见光谱法等手段，成功筛选出具有较高EPS产量的乳酸菌菌株。
经过对比分析，发现不同菌株产生的EPS在化学组成和分子量等方面存在差异。
2. EPS的纯化结果采用醇沉法、硫酸铵沉淀法等方法对EPS进行纯化。
经过纯化后的EPS，其纯度得到显著提高，为后续研究提供了可靠的实验材料。
3. 免疫活性研究结果（1）体外实验：通过观察EPS对免疫细胞的刺激作用，发现EPS能够显著提高免疫细胞的活性，促进细胞因子的分泌。
（2）动物实验：通过观察EPS对动物免疫功能的影响，发现EPS能够显著提高动物的免疫力，增强机体的抗病能力。
此外，EPS还具有抗肿瘤作用，能够显著抑制肿瘤细胞的生长。
四、讨论通过对乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究，我们得出以下结论：1. 不同菌株产生的EPS在化学组成和分子量等方面存在差异，这可能与菌株的遗传特性、培养条件等因素有关。
产胞外多糖乳酸菌的筛选及其多糖的结构研究
产胞外多糖乳酸菌的筛选及其多糖的结构研究乳酸菌胞外多糖(exopolysaccharide,EPS)是乳酸菌在菌体生长、代谢过程中产生并分泌到细胞外、常常渗透到培养基中的荚膜多糖或粘液多糖。
乳酸菌EPS不仅具有良好的流变学特性,还具有重要的生理活性,如抗氧化、抗肿瘤、免疫调节、益生作用等。
我国拥有丰富的乳酸菌发酵食品,包括产胞外多糖在内的乳酸菌资源尚未得到有效开发。
本文对酸菜中产胞外多糖的乳酸菌进行高效快速地筛选,纯化胞外多糖,对其结构和理化特性进行研究。
以家庭自制东北酸菜为样品,采用产粘菌落法与多糖产量相结合的方法,筛选到两株产EPS较高的菌株NM105和2-19,经过形态学观察、生理生化和16S rDNA 手段对这两株菌进行了系统鉴定,判定这两株菌均属于明串珠菌属,分别命名为Leuconosto citreum NM105和L.mesenteroides subsp.dextranicum 2-19。
将两株菌分别接种至含5%蔗糖的MRS培养基中,25℃培养48 h,得到产EPS的发酵液,经离心、除蛋白、醇沉、透析得到粗多糖的水溶液。
粗多糖再经凝胶过滤层析纯化得到均一的多糖组分,冷冻干燥得到纯多糖,产量分别为23.5g/L和11.4 g/L。
结合紫外分析、高效体积排阻色谱分析,两株菌所产多糖均不含核酸和蛋白,重均分子量Mw分别为1.01×108 Da和8.79×107 Da。
采用气相色谱和薄层色谱分析单糖组成,结果表明两株菌所产EPS均只含葡萄糖。
结合单糖组成分析、红外光谱分析、核磁共振光谱分析,L.citreum NM105所产EPS含有三种糖单元,分别为[→6)-α-D-Glcp-(1→]、[α-D-Glcp-(1→]和[→2,6)-α-D-Glcp-(1→],摩尔比接近1:1:1,是一种带有高含量的α-(1→2)糖苷键的支链多糖。
而L.mesenteroides subsp.dextranicum 2-19所产EPS是一种由α-(1→6)糖苷键连接的高度线性葡聚糖。
传统奶豆腐中产胞外多糖乳酸菌的分离筛选及其潜在益生菌特性
进 行 测序 ， 将 测 序 结 果 与 ＮＣ ＢＩ 数 据 库 中 的 核 酸 序 列 进 行 比对 。 将所测 菌株的 １ ６ Ｓ ｒ ＤＮＡ 序 列 用 Ｂ ｌ ａ ｓ ｔ 软 件 在 Ｇｅ ｎ Ｂ ａ ｎ ｋ 数 据 库 中进 行 相 似性 比较 ， 选 取 同源 性 较高 的相 关 菌 株 的 １ ６ Ｓ ｒ ＤＮＡ区 域 序 列 作 为 参 比 对 象 ， 采 用 ＭＥＧＡ５ ． ０ 软 件构 建 系统 发育树 。 １ ． ４ ． ２ 产 胞 外 多糖 乳 酸 茵 的 筛选 （ １ ） 胞 外 多 糖 标 准 曲 线 的绘 制 。 葡 萄 糖 标 准 曲 线
式 中 ：Ａ。 为 菌 液 与 吸 附剂 混 匀 前 的吸光 度 ； Ａ为 菌液 与 吸附剂 混匀 后 的吸光 度 。 １ ． ４ ． ６ 菌株 的 体 外 降 胆 固 醇 能 力 测 定 将待 测 菌 株 依 次传 代 活 化 ３ 代后 使 其 恢 复活 力 ， 按体积分数为 ３ ％接 种 于 含 有 质 量 浓 度 约 １ ０ ０￣ ｇ ／ ｍＬ 胆 固 醇 的 ＭＲＳ － ＴＨＩ Ｏ 培养 基 中 ， ３ ７℃ 恒 温 培 养 ２ ４ ｈ 后， 采 用 邻 苯 二 甲醛 比色 法 测 定 培 养 基 中 残 留 胆 固
酶 冷却 的发 酵 液 中加 入 质量 浓度 为 ８ ０ ０ ｇ ／ Ｌ的 三 氯 乙
将培养 后 的菌液离 心（ ６ ０ ０ ０ ｇ， ４ ｏ Ｃ， １ ０ ａｉ ｒ ｎ ） ， 取上 清液 ０ ． ５ ｍＬ于 １ ８ ｍｍｘ １ ８ ｃ ｍ试 管 中 ， 依 次加 入 ３ ｍＥ 体积分 数为 ９ ５ ％的 乙醇 和 ２ ｍＬ质 量 浓 度 为 ０ ． ５ ｇ ／ ｍＬ的 氢 氧化钾 溶液 ， 漩涡 震荡 混匀后 置 于 ６ ０℃ 水 浴 中皂 化 １ ０ ｍｉ ｎ， 迅 速冷却 后 加入 ５ ｍＬ正 己 烷 ， 漩 涡震荡 １ ｍｉ ｎ 进行 萃取 ， 静置 １ ０ ａｉ ｒ ｎ后 加 入 ３ ｎ １ Ｌ水 ， 重复震 荡 １ ｍｉ ｎ 后 在室 温下 静 置 １ ０ ｍｉ ｎ， 待分 层 后 取 ２ ． ５ ｍＬ正 己 烷 层 于 １ ５ ｍｍｘ１ ５ ｃ ｍ试 管 中 ， 置于 ６ ０℃ 水 浴 中 用 氮 气 吹 干溶 剂 ， 加入 ４ ｎ Ｌ邻 苯 二 甲醛 显 色 剂 ， 漩 涡震 荡 １ ｍｉ ｎ
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》范文
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》篇一一、引言乳酸菌作为益生菌的一种，在维护人体健康方面具有重要作用。
其中，乳酸菌胞外多糖（Exopolysaccharides，EPS）是乳酸菌分泌到细胞外的复杂糖类物质，具有诸多生物活性，如免疫调节、抗肿瘤、抗氧化等。
因此，对乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究具有重要意义。
本文旨在探讨乳酸菌胞外多糖的筛选方法、纯化过程及其免疫活性的研究。
二、材料与方法1. 材料（1）菌种：从不同来源筛选的乳酸菌菌株。
（2）培养基：营养丰富的液体培养基。
（3）试剂：包括各类化学试剂、酶等。
2. 方法（1）乳酸菌胞外多糖的筛选：从不同来源的乳酸菌中筛选出产EPS的菌株。
（2）乳酸菌的培养及EPS的提取：将筛选出的菌株进行培养，并提取其EPS。
（3）EPS的纯化：采用透析、离心、柱层析等方法对EPS 进行纯化。
（4）免疫活性研究：通过体外实验和动物实验研究EPS的免疫活性。
三、实验结果1. 乳酸菌胞外多糖的筛选结果通过对比不同来源的乳酸菌产EPS的能力，成功筛选出若干高产EPS的菌株。
这些菌株具有较高的产EPS能力和稳定性。
2. EPS的提取与纯化结果通过培养这些高产EPS的乳酸菌，成功提取出EPS。
经过透析、离心、柱层析等纯化步骤，得到较为纯净的EPS。
3. 免疫活性研究结果（1）体外实验：通过细胞增殖实验、细胞因子分泌实验等手段，发现EPS具有刺激免疫细胞增殖、分泌细胞因子等免疫活性。
（2）动物实验：通过建立动物模型，观察EPS对动物免疫系统的影响。
结果表明，EPS能够显著提高动物的免疫力，增强抗病能力。
四、讨论本实验成功筛选出高产EPS的乳酸菌菌株，并对其EPS进行了提取与纯化。
通过体外实验和动物实验，证实了EPS具有显著的免疫活性。
这为进一步开发EPS作为免疫调节剂提供了理论依据。
此外，我们还需进一步研究EPS的结构与功能关系，以及其在人体内的生物利用度和安全性。
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》范文
《乳酸菌胞外多糖的筛选、纯化及免疫活性研究》篇一一、引言乳酸菌作为一种益生菌，因其能够调节肠道微生态平衡，促进肠道健康而备受关注。
近年来，研究发现乳酸菌的胞外多糖（Exopolysaccharides, EPS）在保持益生菌的生理功能中发挥着重要作用。
乳酸菌EPS具有提高机体免疫力、抗氧化、降血脂等多种生物活性。
因此，筛选出具有优良性能的乳酸菌EPS并研究其纯化及免疫活性具有重要意义。
二、乳酸菌胞外多糖的筛选1. 菌种来源本研究所用菌种来源于多种乳酸菌菌株，通过初步筛选，选择具有高产EPS特性的菌株进行深入研究。
2. EPS提取采用适宜的提取方法，如热水浸提法、有机溶剂浸提法等，从筛选出的乳酸菌中提取EPS。
提取过程中需注意温度、时间等条件对EPS产量的影响。
3. EPS纯化将提取得到的EPS进行纯化处理，包括脱盐、浓缩、透析等步骤。
在纯化过程中，可采用色谱法、超滤法等方法进一步纯化EPS。
三、乳酸菌胞外多糖的纯化1. 纯化方法本部分主要介绍采用高效液相色谱法（HPLC）和超滤法对EPS进行纯化的方法。
HPLC法可有效分离不同分子量的EPS组分，超滤法则可去除EPS中的杂质和低分子量组分。
2. 纯化效果评价通过对比纯化前后EPS的物理化学性质、分子量分布、结构特点等，评价纯化效果。
同时，采用高效液相色谱-质谱联用技术（HPLC-MS）对纯化后的EPS进行结构分析。
四、乳酸菌胞外多糖的免疫活性研究1. 动物实验采用动物实验研究EPS的免疫活性。
将EPS以适当剂量喂食实验动物，观察其对动物免疫系统的影响，如对免疫器官发育、免疫细胞数量和功能的影响等。
2. 细胞实验通过细胞实验研究EPS对免疫细胞的刺激作用及信号传导机制。
采用流式细胞术、荧光定量PCR等技术检测EPS对免疫细胞表面标志物、细胞因子分泌等的影响。
3. 结果分析根据实验结果，分析EPS的免疫活性及其作用机制。
同时，结合文献报道的其他乳酸菌EPS的免疫活性研究结果，进行综合分析。
产葡聚糖乳酸菌的筛选及其在酸豆乳中的应用
产葡聚糖乳酸菌的筛选及其在酸豆乳中的应用乳酸菌胞外多糖(LAB EPS)具有良好的流变学特性,能改善发酵乳的粘度、质构和口感。
由于乳酸菌属于益生菌,将乳酸菌胞外多糖直接应用于食品当中,有着广泛的研究和应用价值。
本文对产胞外多糖的乳酸菌进行筛选和鉴定、多糖的分离纯化及结构鉴定。
利用筛选出的乳酸菌发酵豆乳,并对发酵豆乳的抗氧化性和后熟稳定性进行研究。
具体研究内容及结果如下:1.从市售蔬菜表面筛选出120株菌株,其中4株产EPS较高的菌株,命名为F4、H9、H11和H12,在10mL含10%蔗糖-MRS培养液中培养24h产糖量均在40g/L以上。
通过对这四种菌株生理生化特性及测序分析,鉴定出F4、H9及H12为同一种菌株,为 Weissella confuse,H1为 Weissella cibaria。
2.以多糖产量为指标,蔗糖添加量、转速及培养时间为变量对H9和H11合成EPS进行条件优化,结果表明蔗糖添加量20%,转速为80 r/min,培养12 h为最优。
通过乙醇沉淀对合成的EPS进行分离,经透析袋纯化后冻干得到多糖并进行结构分析。
红外光谱显示2个多糖样品的红外光谱均在1200～1000 cm-1范围内呈现多糖的特征吸收峰。
核磁共振光谱显示2个多糖的13CNMR谱图中异头碳化学位移分别97.69和97.15ppm,说明其含有α型吡喃糖残基。
δ65.53、δ69.51ppm是C-6的碳信号,说明该糖是一条以(1 →6)-α-D-Glup为主链的结构的多糖。
3.利用H9和H11发酵豆乳,确定菌株H9发酵豆乳具有更好的粘度及抗氧化性。
同时对菌株H9发酵豆乳的贮藏稳定性进行研究,分别置于25℃和4℃条件下贮藏,通过测定活菌数、pH、酸度,粘度及保水性等对酸豆乳的稳定性进行研究。
研究表明该酸豆乳具有低酸度、高粘度和高保水性的特点,无论在4℃还是25℃下贮藏都能保持较好的稳定性。
乳酸菌胞外多糖的分离筛选方法研究进展
１引言
２产胞外多糖乳酸菌的筛选方法 ２ ． １ ＭＲｓ 一 溴 甲酚 紫平 板 筛选 法 乳酸 菌 ， 是 一类无芽孢 、 革兰 氏染 色为 阳性 的异养
厌 氧型原 核细菌 ， 能够 发酵糖类 ， 产物 主要为乳 酸（ 辨 别的主要 标志） ， 其形态 多样主要 以链状 和杆状 存在 。 乳 酸菌对 人体有 诸多 益处 ， 比如乳 酸菌在生 长过程 中 消耗乳 酸对 预 防和治疗 乳糖 不耐症有 良好 的作用 ； 同 时发 酵 的产 物可 以促 进钙 、 镁离 子 及蛋 白质 、 单糖 等 营 养物质 的 吸收 ； 还可 以产生 Ｂ族维 生素 等大 量有 益 物质； 另外 ， 乳酸菌 的生 长可 以增加 肠道 的益生菌群 ， 进 一步 改善人体 胃肠道 功能 ， 保持人 体肠道 内菌群 平 衡， 维护人 体健康 ； 也可 以抑 制腐败菌 的繁殖 ； 同时消 解腐败 菌产生的毒素 ， 清 除肠道垃圾 ； 代谢产物还 可以 抑 制胆 固醇吸 收 ， 有降血 脂 、 降 血压作 用 ； 亦可 以提高 Ｓ ＯＤ酶活力 ， 消除人 体 自由基 ， 具有 抗衰老 、 延年益 寿 作用。 此外， 还 有一 些报 道认 为 乳酸 菌能有 效 的预 防 女 性泌尿 生殖系统 细 菌感 染 ， 还能控 制人体 内毒素水 平， 保护 肝脏 并有 助于增 强肝 脏的解 毒 、 排 毒功能 。 总 之， 乳 酸菌现在 是备 受瞩 目， 前景广 阔 。 胞外多糖（ ｅ ｘ ｏ ｌ ｍｌ ｙ ｓ ａ ｃ ｃ ｈ ａ ｒ ｉ ｄ ｅ ， Ｅ Ｐ Ｓ ） 是 由细菌及少数 酵母 菌和 丝状真 菌在生 长 的过程 中产生 的 。 微 生物产 生 的Ｅ Ｐ Ｓ 可 以在 自然环境 中起 到保护微生 物细胞的作 用， 比如 使 细胞避 免 因干 燥而 引起 脱水 、 防止 被噬 菌 体侵 染 ， 同时还 可维持 细 胞 的渗 透压 ， 并且 参 与到细 胞 的信息 传递和 细胞 的构成 等作用 。 自从通过 肠膜 明 串珠菌肠 膜亚种（ Ｌ ｅ ｕ ｃ ｏ ｎ ｏ ｓ ｔ ｃ ｍｅ ｓ ｅ ｎ ｔ ｅ ｒ ｏ ｉ ｄ ｅ ｓ ｓ ｕ ｂ ｓ ｐ ． ｍｅ ｓ ｅ ｎ ｔ ｅ ｒ ｏ ｉ ｄ ｅ ｓ ） 的发酵生 产 出右旋糖酐 以来 ， 乳酸菌胞 外多糖 的 开发与 应用便 引起 了诸多研 究人 员 的关注 ， 已变成 了一个 重大 的研究 热点［ 】 ｌ 。 乳 酸菌Ｅ Ｐ Ｓ 是乳 杆菌诸多 菌属 中多种乳 酸细菌在 特 定 环 境 下 分 泌 到 细 胞 壁 外 的 黏 液 或 荚 膜 多 糖 （ ｃ ａ ｐ ｓ ｕ ｌ ａ ｒ ｐ ｏ ｌ ｙ ｓ ａ ｃ ｃ ｈ ａ ｒ ｉ ｄ ｅ ） 。 乳酸菌Ｅ Ｐ Ｓ 的作用很多 ， 在酸 乳形成方面 ， 对其质构与 风味 ， 产 生特有的营养价值方 面有极为重要 的作用 与影响 ， 它可 以增加酸奶 的黏度 ， 提高酸奶稳定性 和保 水性 ， 使产 品具有 良好 的 口感 、 质 地和风味 。 又因为乳酸菌Ｅ Ｐ Ｓ 具有安全无 毒的特性 ， 所 以在食 品工 业 中作 为增稠 剂 、 稳定剂 、 乳化剂 、 胶 凝剂 及保湿剂 而被广 泛的应用 。 通过研 究 ， 部分乳酸 菌Ｅ Ｐ Ｓ 还具有抗肿瘤 、 抗病 毒 、 抗衰老 、 降低血糖 、 增 强人体免 疫力 、 调 节 胃肠功 能 、 降血 清胆 固醇 等多种生 理功 能 ， 因此将 其开发为 功能性 食 品具有 广 阔的推广 前景 。 本文综合 阐述拉近几 年有 关乳酸 菌Ｅ ＰＳ 分 离纯化 实验 的研 究报道 ， 总结 分析一 些分离 纯化 的手段并说
产胞外多糖植物乳杆菌的分离筛选、分子表征及其应用研究
产胞外多糖植物乳杆菌的分离筛选、分子表征及其应用研究乳酸菌（Lactic acid bacteria，LAB）胞外多糖（Exopolysaccharides，EPSs）是LAB在生长代谢过程中分泌到细胞壁外的黏液多糖或荚膜多糖。
LABEPS 具有独特的理化及流变学特性，可作为增稠剂、乳化剂、胶凝剂和稳定剂广泛应用于发酵食品生产中，改善食品的流变学特性、质构和口感等。
大量研究表明，LABEPSs还具有促进人体健康和预防疾病的生理活性，如抗肿瘤、抗氧化、抗病毒、抑制有害菌、抑制菌膜形成、免疫调节、降胆固醇以及降血压等。
此外，LABEPSs还可作为益生元促进肠道内其他益生菌的生长，调节肠道菌群。
由于LAB被公认为是安全的（GRAS）食品级微生物，因此其代谢产生的EPS 也是安全可靠的，可直接应用于发酵食品中。
本文对产EPS乳杆菌的筛选、鉴定、益生特性、EPS的分离纯化、理化特性、生物活性（体外和体内）以及产EPS乳杆菌在发酵乳制品中的应用进行了系统研究。
主要研究结果如下：采用菌落拉丝法与EPS定量测定相结合的方法，从西藏灵菇中分离筛选到3株产EPS较高的乳杆菌SKT109、YW11和YW32。
通过表型、生理生化、API50CH和16S rDNA方法对菌株进行了鉴定，最终判定3株菌均为植物乳杆菌（Lactobacillusplantarum）。
以商业菌株鼠李糖乳杆菌GG（L.rhamnosusGG）为对照，研究了3株产EPS 植物乳杆菌的体外益生特性。
3株菌均对模拟人工胃液（pH3.0，处理3h）、低浓度胆盐（0.3和0.6g/mL，处理3h）和低浓度过氧化氢（0.4mmol/L，处理8h）有较好的耐受性，并具有潜在的肠道表皮细胞黏附能力。
菌株YW11对胆固醇、羟自由基、DPPH自由基和超氧阴离子的清除率最高，其次为菌株YW32和SKT109。
3株植物乳杆菌发酵液经煮沸、离心、乙醇沉淀、除蛋白、透析、冷冻干燥得到粗多糖，粗多糖先后经DEAE-Sepharose Fast Flow 离子交换层析柱和Sepharose CL-6B凝胶层析柱进行分离纯化。
内蒙古奶豆腐中产胞外多糖乳酸菌的分离筛选
内蒙古奶豆腐中产胞外多糖乳酸菌的分离筛选1.3乳酸菌分离方法取少量样品接入11%脱脂乳(m/V)中，37℃培养，凝乳后取样逐级稀释，选3个适宜的稀释度，每个稀释度取0.1mL涂布于MRS琼脂平板[7]，37℃培养48h。
选取合适的平板，挑取典型菌落进行革兰氏染色和过氧化氢酶实验，其中革兰氏染色阳性和过氧化氢酶实验阴性的菌株初步鉴定为乳酸菌，继续划线培养分离纯化，直至得到纯菌，纯化后的菌株接种到MRS液体培养基培养后，加入20%甘油，－80℃冰箱保存备用。
1.4乳酸菌属的鉴定根据凌代文等[8]和杨洁彬等[9]介绍，乳杆菌属的生化特征是形态为单个、成对或链状排列的短或长杆菌，通常不运动，革兰氏染色阳性，微好氧。
极少见硝酸盐还原反应，不液化明胶，不分解酪素，不产生吲哚和H2S，过氧化氢酶阴性，无细胞色素，联苯胺反应阴性。
最适生长温度是30～40℃，耐酸，最适pH值通常为5.5～6.2。
乳杆菌种的划分主要依据碳水化合物发酵实验。
1.5 API鉴定乳酸杆菌的碳水化合物发酵曲线采用API50CH试条测定，按Snart[10]的方法操作，稍有改动。
乳酸菌于MRS琼脂平板上37℃厌氧培养2d，用无菌牙签挑起部分菌落加入悬液基物(2mL无菌生理盐水)的试管中，制成浓的菌悬液(S)；打开悬液基物(5mL无菌生理盐水)的试管，加入少量上述浓菌(S)制得相当于2 McFarland浊度(OD 600nm≈0.3 5)的菌悬液，记录体积(V)；打开API50CHL培养基的安瓿，加2倍(2V)该菌液接种。
用已接种的API50CHL 培养基加入反应管中，并用灭菌的液体石蜡油覆盖所有的测定管，于37℃厌氧培养48h后读取结果。
发酵结果提交到生物梅里埃公司(北京)，根据API数据库现存的数据判定实验结果。
1.6乳酸菌荚膜显微镜观察M R S培养液中生长的新鲜菌体，采用墨汁负染法，于Olympus BX51显微镜油镜下观察，DP71照相。
产胞外多糖(EPS)乳酸菌菌株的分离、筛选
产胞外多糖(EPS)乳酸菌菌株的分离、筛选1.目的要求(1)熟悉产胞外多糖乳酸菌菌株的筛选方法(2)了解乳酸菌产胞外多糖的基本原理2.基本原理微生物胞外多糖(exopolysaccharides, EPS)是一些特殊微生物在生长代谢过程中分泌到细胞壁外、易与菌体分离的荚膜多糖或黏液多糖，属于微生物的次级代谢产物。
微生物EPS是一种长链、高分子质量的聚合物，甚独特的物理学和流变学特性以及使用安全性使它在食品和非食品工业备受青睐，尤其是它在医药领域所具有的巨大应用潜能正日愈引起人们的广泛关注。
自然界中能产生多糖的微生物种类很多，涉及细菌、酵母和丝状真菌。
长久以来，乳酸菌用于发酵乳的生产，通常认为乳酸菌EPS安全性更为可靠，而且乳酸菌作为生理功能调节剂，利用益生菌制成活菌制剂，省去常规发酵、提取等繁琐工艺。
因此，开发乳酸菌EPS较其他微生物EPS来说，更具有理论意义与实际价值。
多糖难溶于乙醇，因此如果乙醇溶液中有絮状沉淀出现，通常可认为样品中含有多糖。
本实验就是利用多糖的这种性质来沉淀分离微生物EPS以供下一步的多糖检测。
目前用于多糖检测的方法较多，主要有干燥称重法、硫酸一蒽酮法、DNS(3, 5一二硝基水杨酸）法、苯酚一硫酸法、相对黏度法和Imshenetskii等报道的浊度法等。
由于苯酚一硫酸法具有简单方便、显色稳定、灵敏度高、重现性好、不受蛋白质干扰等优点而深受欢迎。
其原理是根据苯酚一硫酸试剂与游离的寡糖和多糖中的己糖、糖醛酸（或甲苯衍生物）发生的显色反应。
己糖在490nm处（戊糖及糖醛酸在480nm处）有最大吸收，吸收值与糖含量呈线性关系。
具体操作见实验步骤。
本实验利用多糖难溶于乙醇的性质来沉淀分离微生物EPS。
本实验以乳制品和肉制品为初始原料，分离产EPS的乳酸菌菌株并筛选高产EPS的优良菌株。
3实验材料3.1原料从市场上购买的乳制品、肉制品。
3.2培养基MRS液体培养基、固体培养基（1.5％琼脂）。
高产胞外多糖(EPS)乳酸菌菌株的筛选与鉴定
高产胞外多糖(EPS)乳酸菌菌株的筛选与鉴定
潘道东;吴玲
【期刊名称】《食品科学》
【年(卷),期】2007(028)003
【摘要】本研究对收集的3个混合发酵剂进行了分离、筛选,并通过测定其pH值、粘度和EPS产量,从中筛选出了两株高产EPS的乳酸菌.利用API细菌鉴定系统对
这两株高产EPS乳酸菌的属性进行了鉴定,分别为乳酸乳球菌乳亚种和片球菌.
【总页数】4页(P171-174)
【作者】潘道东;吴玲
【作者单位】南京师范大学金陵女子学院食品科学系,江苏,南京,210097;南京师范
大学金陵女子学院食品科学系,江苏,南京,210097
【正文语种】中文
【中图分类】TS201.3
【相关文献】
1.高产胞外多糖乳酸菌菌株筛选与鉴定 [J], 刘燕;李文献;王少武
2.一株高产胞外多糖乳酸菌的筛选与鉴定 [J], 陈佩;党辉;孟科;王红丽;贺国旗;王伟
3.自制泡菜中高产胞外多糖乳酸菌的筛选与鉴定 [J], 薛艳蓉;靳光;王呈;梁茂文;赵
瑞生;刘波
4.自制泡菜中高产胞外多糖乳酸菌的筛选与鉴定 [J], 薛艳蓉; 靳光; 王呈; 梁茂文;
赵瑞生; 刘波
5.高产生物膜乳酸菌的筛选、鉴定及胞外多糖分泌条件的研究 [J], 钟华晨;张悦;顾悦;郑砚学;纪亚楠;王艳;贺银凤
因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
产胞外多糖(EPS)乳酸菌菌株的分离、筛选
1.目的要求
(1)熟悉产胞外多糖乳酸菌菌株的筛选方法
(2)了解乳酸菌产胞外多糖的基本原理
2.基本原理
微生物胞外多糖(exopolysaccharides, EPS)是一些特殊微生物在生长代谢过程中分泌到细胞壁外、易与菌体分离的荚膜多糖或黏液多糖，属于微生物的次级代谢产物。
微生物EPS是一种长链、高分子质量的聚合物，甚独特的物理学和流变学特性以及使用安全性使它在食品和非食品工业备受青睐，尤其是它在医药领域所具有的巨大应用潜能正日愈引起人们的广泛关注。
自然界中能产生多糖的微生物种类很多，涉及细菌、酵母和丝状真菌。
长久以来，乳酸菌用于发酵乳的生产，通常认为乳酸菌EPS安全性更为可靠，而且乳酸菌作为生理功能调节剂，利用益生菌制成活菌制剂，省去常规发酵、提取等繁琐工艺。
因此，开发乳酸菌EPS较其他微生物EPS来说，更具有理论意义与实际价值。
多糖难溶于乙醇，因此如果乙醇溶液中有絮状沉淀出现，通常可认为样品中含有多糖。
本实验就是利用多糖的这种性质来沉淀分离微生物EPS以供下一步的多糖检测。
目前用于多糖检测的方法较多，主要有干燥称重法、硫酸一蒽酮法、DNS(3, 5一二硝基水杨酸）法、苯酚一硫酸法、相对黏度法和Imshenetskii等报道的浊度法等。
由于苯酚一硫酸法具有简单方便、显色稳定、灵敏度高、重现性好、不受蛋白质干扰等优点而深受欢迎。
其原理是根据苯酚一硫酸试剂与游离的寡糖和多糖中的己糖、糖醛酸（或甲苯衍生物）发生的显色反应。
己糖在490nm处（戊糖及糖醛酸在480nm处）有最大吸收，吸收值与糖含量呈线性关系。
具体操作见实验步骤。
本实验利用多糖难溶于乙醇的性质来沉淀分离微生物EPS。
本实验以乳制品和肉制品为初始原料，分离产EPS的乳酸菌菌株并筛选高产EPS的优良菌株。
3实验材料
3.1原料从市场上购买的乳制品、肉制品。
3.2培养基MRS液体培养基、固体培养基（1.5％琼脂）。
3.3主要试剂6％苯酚，（临用前用80％苯酚配制）、浓硫酸。
3.4器材普通光学显微镜、电热恒温培养箱、超净工作台、高压蒸汽消毒器、高速离心机、分光光度计
4实验方法与步骤
4.1菌种的分离各样品分别称量25 g，粉碎，溶解于225 ml无菌生理盐水中，振荡均匀，得到10-1的菌悬液。
取1 ml此菌悬液，逐级稀释，直到10-8，并将不同稀释度的菌液各1 ml倒入平板，加入约15 ml含有CaCO3的MRS培养基中，轻轻水平转动混匀，待凝固后37℃恒温培养。
(周一)
4.2初筛24 h培养后取出观察，观察产生乳酸溶解圈的菌落，那些表面黏稠或者周围有扩散现象的单菌落，菌落呈圆形，用接种环挑取时可见明显的黏性，疑为胞外多糖。
革兰氏染色并进行显微观察，筛选出形态较好的菌株。
(周二)
4.3复筛将已经挑选出的菌株接种于MRS液体管内，37℃活化培养，苯酚一硫酸法检测其24 h 的发酵液内所产EPS的量并进行比较，筛选出产EPS相对较多的乳酸菌。
检测具体方法如下列步骤。
4.4标准曲线的制作准确称取标准葡萄糖20 mg于500 ml容量瓶中，加水至刻度。
各种试剂按照表所示的量加入试管中后，静置10 min，摇匀，室温放置20 min以后于490nm波长下检测光密度，以2.0 ml水按同样显色操作为空白，横坐标为多糖微克数，纵坐标为光密度值，得标准曲线。
(周一)
4.5多糖的检测取培养24 h的发酵液，8000r/min离心10 min，取上清液加入3倍体积的95％冷乙醇，4℃过夜后，10000r/min离心10 min，收集沉淀，蒸馏水溶解，并对蒸馏水透析过夜。
苯酚一硫
酸法检测490nm处的吸光值，计算EPS的量，筛选出高产EPS的乳酸菌菌株。
(周二——周三)
4.6平板划线分离纯化菌种保存
(周三、周四、周五)
5实验结果
记录初筛时产黏菌落标号及复筛时每种菌所产EPS的量，标记出所产EPS明显多于其他菌株的菌
株标号于下表。
6注意事项
(1)检测过程所用的6％苯酚，是临用前用80％的苯酚配制的。
故实验前，应用重蒸酚配制80％苯酚，4℃保存。
(2)在进行多糖检测时，其检测的浓度依具体情况而定。
一般以最终的多糖溶液接近无色为准，若样品浓度过高，其吸光值会超出线性范围，准确性差。
(3)由于苯酚及浓硫酸的腐蚀性，实验过程应注意自身安全。
7思考题
(1) MRS液体培养基中的碳源是否会影响实验的最终结果，实验中的哪些步骤可以减少此影响？还有什么其他的办法可以消除培养基中碳源的残留？
(2）结合苯酚一硫酸法检测多糖的原理，思考检测EPS时采用490nm作为检测波长，是否合理？为
什么？。