精子实验报告

精子检测报告怎么看？如何看精液分析报告单？
男人精子是否有问题需要做精液检查，那么检查结果如何知道是否有问题呢？精子检测
报告怎么看？如何看精液分析报告单？下文为大家讲解精子检查报告的一些正常值和异常值。

精液量：正常数值范围是2～6毫升
精液量是指每次射精排出的数量。

正常的精液量是2～6毫升，最低需要1.5～2毫升，
如果低于这个数值，就说明精液量有点少了，甚至可能是少精症。

当然，精液量也并不是越
多越好，如果精液量太多，需要排除是不是病态的“多”。

精子密度：每毫升1500万算正常
精子密度是指单位体积内精子的数量。

现在，精子密度能达到每毫升1500万就已经算是
正常了。

然而，在30年前，精子密度要求达到每毫升6000万～2亿。

“可以说，现在男性的
生殖能力已经大大退化。

这种退化跟现在的环境以及人们的生活方式不无关系。

比如现在人
们开车的多了，走路的少了，长时间坐着的人多了，运动少了。

”
精子密度少于1500万/毫升，属于少精症，精子进入子宫腔及输
卵管的机会就会减少，从而导致受孕能力降低；但如果超过2亿/毫升，则属于多精症，
精子活动力会受到影响，同样也会影响精子受孕的能力。

因此，精子密度过高、过低甚至无
精，都是男性不育因素。

精子活动力：直线前向运动精子要≥32% 精子的活动力一般分四级。

0级指无活动的精子；1级指在原地活动的精子；2级为缓慢
向前曲线游动的精子；3级为直线向前游动的精子；4级为快速直线向前游动的精子。

一般情
况下，3级以上的精子，才有可能使卵子受精。

要成功受孕，一般要求3级精子加上4级精
子的比例要大于32%。

精子成活率和畸形率：分别为58%以上和96%以下
精子的成活率也很重要。

成活率通常是指在射精后一小时内，具有活动能力的精子比例。

正常的情况下，精子的成活率要在58%以上。

同样，精子的畸形率也影响着精子的受孕能力。

精子畸形率在92%以下是一个比较理想
的指标。

“如果能够在96%以下也算是及格了。

”事实上，精子成活率和畸形率的标准也已经
降低了。

精液ph值：大部分稳定在7.1左右
精液酸碱度正常的情况下，大部分的精液ph值稳定在7.1左右。

过高或过低都可能是因
为有炎症。

有炎症，自然也会影响受孕。

精液颜色：定期排精男性精液为乳白色
此外，精液的外观也需要重视。

在正常情况下，如果是定期排精的男性，精液应当是乳
白色的；如果比较长的时间没有排精，精液的颜色会呈淡黄色；如果精液的颜色发红，可能
精液内有血；如果精液的颜色很黄，很稠，则可能是有脓细胞了。

判断精液质量需要检查三次
对于男性精子质量差的，比如少精，精子成活率低，精子颜色异常，一般情况下服用育
之缘片为精子补充微量元素可解决。

事实上精液检测的所有这些指标都是灵活的。

影响精液
质量的因素有很多，其中包括先天因素，比如睾丸先天发育不好；也包括后天因素，比如工
作压力、饮食习惯、睡眠、情绪都可能影响精液的质量。

因此，即使是一个人，每次检查，
他的精液质量未必都是一样的。

因此，即使第一次检查时精液不正常，也不一定表示他的精
液不正常。

一般来说需要在不同的时间点检查三次才能进行判断，了解患者精液参数的波动
区间。

篇三：精子与卵细胞随机结合模拟实验(学生) 重庆一中七年级生物学下册实验报告
实践是检验真理的唯一标准探究报告
——精子与卵细胞随机结合模拟实验
姓名组员日期
篇四：精子畸形试验
十三、精子畸形试验
sperm malformation test 1 范围
本规范规定了动物精子畸形试验的基本原则、要求和方法。

本规范适用于化妆品原料的
遗传毒性检测。

2 引用标准
gb 14924 试验动物与饲料标准
gb 15193·94 食品安全性毒理学评价程序 3 定义
精子畸形（sperm malformation）指精子形态的异常改变。

4 原理
已知精子畸形是决定精子形成的基因发生突变的结果。

常染色体和y-性连锁基因突变及
某些染色体重排，如性-常染色体易位，也可使精子发生畸形。

小鼠精子畸形试验能评价受试物对精子生成、发育的影响，可检测受试物在体内对生殖
细胞的遗传毒性作用。

5 试验的基本原则
通过适当的途径使动物接触受试物，经过一定时间后处死动物，取其附睾，制备涂片，
经固定、染色，在显微镜下计数畸形精子。

6 仪器和器械
生物显微镜、解剖剪、镊子、表面皿、离心管、小漏斗、吸管、滴管、载玻片、擦镜纸
等。

7
试剂
称取伊红1g溶于100ml蒸馏水中。

7.2 生理盐水、甲醇（a.r）
8 实验动物和饲养环境
常规使用动物是雄性小鼠。

6周~8周龄，体重为30g ~35g。

实验动物及实验动物房应
符合国家相应规定。

9 剂量分组
受试物至少设三个剂量组。

分别取1/2、1/5、1/10或1/20ld50剂量。

当受试物的ld50
大于5g/kg体重时，可取5g/kg体重为最高剂量。

另外设阴性（溶剂）对照组和阳性物对照
组。

常用溶剂为水、生理盐水、植物油（玉米油、花生油）等。

阳性物对照组可采用环磷酰
胺40mg/kg/7.1 1%伊红染色液
日。

每组至少有5只存活动物。

10 染毒途径和方式
染毒途径视实验目的而定。

常用途径为经口灌胃方式。

受试物各剂量组、阴性对照组和
阳性物对照组的动物，均连续染毒5d，每日一次。

一般于首次染毒后的第35d处死动物。

11 试验方法 11.1 制片
用颈椎脱臼法处死小鼠，剖开腹腔，暴露睾丸，分离两侧附睾，用眼科剪剖开附睾组织，
与适量生理盐水混匀，涂片。

11.2 固定
待涂片干燥后，放入甲醇（a.r）液中固定5min。

取出晾干。

11.3 染色
将涂片于1%伊红染液中染色1h，然后用蒸馏水轻轻冲洗，晾干。

11.4 观察与计数
首先，在低倍镜下选择背景清晰、精子分布均匀、重叠较少的区域，然后，在高倍镜下
观察结构完整的1000个精子，计数其中畸形的精子。

精子畸形主要表现在头部。

按wyrobeks
的分类标准，主要类型有：无钩、香蕉形、无定形、胖头、尾折叠、双头及双尾。

无尾精子、
头部重叠的或整个与另一个重叠的精子均不计数。

判断双头、双尾精子时，要注意与两条精
子的部分重叠相区别。

12 数据处理和结果判断
每只动物应按精子畸形类型分别记录，以便计算各实验组的精子畸形发生率和精子畸形
类型的构成比。

利用wilcoxon秩和检验法和其他适当的统计学方法。

将受试物各剂量组精子畸形发生率
分别与阴性对照组进行比较。

精子畸形试验阳性的判断标准是畸形发生率至少为阴性对照组的倍量或经统计学处理有
显著性差异，并存在剂量-反应关系者。

一般正常小鼠的精子畸形率为0.8%~3.4%，但每个实验室应有自己稳定的精子自发畸形
率。

13 试验报告
试验报告应包括以下内容：
（1）受试物名称、理化性状、配制方法、所用溶剂；
（2）动物种属和品系、体重、数量、来源（注明合格证号和动物级别）；
（3）实验动物饲养环境，包括饲料来源、室温、相对湿度、实验动物室合格证号；（4）
剂量分组，染毒途径和方式；
（5）试验方法：简述操作步骤，所用统计学方法；
（6）结果：以列表方式报告受试物对动物精子畸形发生率和精子畸形类型分析的结果
（表1和表2）；（7）结论。

表1 ×××精子畸形发生率
组别
受试物
溶剂对照
阳性物对照(mg/kg)
表2 ×××精子畸形类型分析
组别
剂量动物数 (g/kg) (只) 受试物
溶剂对照
阳性物对照(mg/kg) 受检精子总数(个)
精子畸形分类及比例（%）
无钩
香蕉形
胖头
无定型
其他
总计
剂量 (g/kg)
动物数 (只)
受检精子总数畸变精子数
(个) (个) 畸变率
（%）
p值
注：畸变率以均数?标准差表示。