精子实验报告

精子检测报告怎么看？如何看精液分析报告单？

男人精子是否有问题需要做精液检查，那么检查结果如何知道是否有问题呢？精子检测

报告怎么看？如何看精液分析报告单？下文为大家讲解精子检查报告的一些正常值和异常值。

精液量：正常数值范围是2～6毫升

精液量是指每次射精排出的数量。正常的精液量是2～6毫升，最低需要1.5～2毫升，

如果低于这个数值，就说明精液量有点少了，甚至可能是少精症。当然，精液量也并不是越

多越好，如果精液量太多，需要排除是不是病态的“多”。

精子密度：每毫升1500万算正常

精子密度是指单位体积内精子的数量。现在，精子密度能达到每毫升1500万就已经算是

正常了。然而，在30年前，精子密度要求达到每毫升6000万～2亿。“可以说，现在男性的

生殖能力已经大大退化。这种退化跟现在的环境以及人们的生活方式不无关系。比如现在人

们开车的多了，走路的少了，长时间坐着的人多了，运动少了。”

精子密度少于1500万/毫升，属于少精症，精子进入子宫腔及输

卵管的机会就会减少，从而导致受孕能力降低；但如果超过2亿/毫升，则属于多精症，

精子活动力会受到影响，同样也会影响精子受孕的能力。因此，精子密度过高、过低甚至无

精，都是男性不育因素。

精子活动力：直线前向运动精子要≥32% 精子的活动力一般分四级。0级指无活动的精子；1级指在原地活动的精子；2级为缓慢

向前曲线游动的精子；3级为直线向前游动的精子；4级为快速直线向前游动的精子。一般情

况下，3级以上的精子，才有可能使卵子受精。要成功受孕，一般要求3级精子加上4级精

子的比例要大于32%。

精子成活率和畸形率：分别为58%以上和96%以下

精子的成活率也很重要。成活率通常是指在射精后一小时内，具有活动能力的精子比例。

正常的情况下，精子的成活率要在58%以上。

同样，精子的畸形率也影响着精子的受孕能力。精子畸形率在92%以下是一个比较理想

的指标。“如果能够在96%以下也算是及格了。”事实上，精子成活率和畸形率的标准也已经

降低了。

精液ph值：大部分稳定在7.1左右

精液酸碱度正常的情况下，大部分的精液ph值稳定在7.1左右。过高或过低都可能是因

为有炎症。有炎症，自然也会影响受孕。

精液颜色：定期排精男性精液为乳白色

此外，精液的外观也需要重视。在正常情况下，如果是定期排精的男性，精液应当是乳

白色的；如果比较长的时间没有排精，精液的颜色会呈淡黄色；如果精液的颜色发红，可能

精液内有血；如果精液的颜色很黄，很稠，则可能是有脓细胞了。

判断精液质量需要检查三次

对于男性精子质量差的，比如少精，精子成活率低，精子颜色异常，一般情况下服用育

之缘片为精子补充微量元素可解决。事实上精液检测的所有这些指标都是灵活的。影响精液

质量的因素有很多，其中包括先天因素，比如睾丸先天发育不好；也包括后天因素，比如工

作压力、饮食习惯、睡眠、情绪都可能影响精液的质量。因此，即使是一个人，每次检查，

他的精液质量未必都是一样的。因此，即使第一次检查时精液不正常，也不一定表示他的精

液不正常。一般来说需要在不同的时间点检查三次才能进行判断，了解患者精液参数的波动

区间。篇三：精子与卵细胞随机结合模拟实验(学生) 重庆一中七年级生物学下册实验报告

实践是检验真理的唯一标准探究报告

——精子与卵细胞随机结合模拟实验

姓名组员日期

篇四：精子畸形试验

十三、精子畸形试验

sperm malformation test 1 范围

本规范规定了动物精子畸形试验的基本原则、要求和方法。本规范适用于化妆品原料的

遗传毒性检测。

2 引用标准

gb 14924 试验动物与饲料标准

gb 15193·94 食品安全性毒理学评价程序 3 定义

精子畸形（sperm malformation）指精子形态的异常改变。 4 原理

已知精子畸形是决定精子形成的基因发生突变的结果。常染色体和y-性连锁基因突变及

某些染色体重排，如性-常染色体易位，也可使精子发生畸形。

小鼠精子畸形试验能评价受试物对精子生成、发育的影响，可检测受试物在体内对生殖

细胞的遗传毒性作用。

5 试验的基本原则

通过适当的途径使动物接触受试物，经过一定时间后处死动物，取其附睾，制备涂片，

经固定、染色，在显微镜下计数畸形精子。

6 仪器和器械

生物显微镜、解剖剪、镊子、表面皿、离心管、小漏斗、吸管、滴管、载玻片、擦镜纸

等。 7

试剂

称取伊红1g溶于100ml蒸馏水中。 7.2 生理盐水、甲醇（a.r）

8 实验动物和饲养环境

常规使用动物是雄性小鼠。6周~8周龄，体重为30g ~35g。实验动物及实验动物房应

符合国家相应规定。 9 剂量分组

受试物至少设三个剂量组。分别取1/2、1/5、1/10或1/20ld50剂量。当受试物的ld50

大于5g/kg体重时，可取5g/kg体重为最高剂量。另外设阴性（溶剂）对照组和阳性物对照

组。常用溶剂为水、生理盐水、植物油（玉米油、花生油）等。阳性物对照组可采用环磷酰

胺40mg/kg/7.1 1%伊红染色液

日。每组至少有5只存活动物。

10 染毒途径和方式

染毒途径视实验目的而定。常用途径为经口灌胃方式。受试物各剂量组、阴性对照组和

阳性物对照组的动物，均连续染毒5d，每日一次。一般于首次染毒后的第35d处死动物。

11 试验方法 11.1 制片

用颈椎脱臼法处死小鼠，剖开腹腔，暴露睾丸，分离两侧附睾，用眼科剪剖开附睾组织，

与适量生理盐水混匀，涂片。 11.2 固定

待涂片干燥后，放入甲醇（a.r）液中固定5min。取出晾干。 11.3 染色

将涂片于1%伊红染液中染色1h，然后用蒸馏水轻轻冲洗，晾干。 11.4 观察与计数

首先，在低倍镜下选择背景清晰、精子分布均匀、重叠较少的区域，然后，在高倍镜下

观察结构完整的1000个精子，计数其中畸形的精子。精子畸形主要表现在头部。按wyrobeks

的分类标准，主要类型有：无钩、香蕉形、无定形、胖头、尾折叠、双头及双尾。无尾精子、

头部重叠的或整个与另一个重叠的精子均不计数。判断双头、双尾精子时，要注意与两条精