植物热激转录因子在非生物逆境中的作用
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分子植物育种,2006年,第4卷,第1期,第88-94页
MolecularPlantBreeding,2006,Vol.4,No.1,88-94
专题介绍
Review
植物热激转录因子在非生物逆境中的作用
翁锦周洪月云*
福建省农业科学院闽台园艺研究中心,漳州,363005
*通讯作者,hongyhk@yahoo.com.cn
摘要非生物逆境通常导致生物体内蛋白变性。
热激蛋白(Hsp)作为分子伴侣协助蛋白的重新折叠、稳定、胞内运输和降解,以阻止受损蛋白的累积,维护细胞内环境的稳定。
而热激蛋白的表达是通过热激转录因子(Hsfs)结合于热激蛋白基因的启动子的热激元件上(heatshockelement,HSE),以募集其它转录因子而形成转录复合体,促进热激蛋白基因的表达。
植物热激转录因子比动物系统更为多样性。
根据其基本的结构域,植物热激转录因子可分为三类:HsfA、HsfB、HsfC。
A类Hsfs已有大量深入的研究和报道,特别是在番茄方面。
HsfB和HsfC的作用尚不清楚。
在其复杂的网络中,每一热激转录因子均有其独特的作用,取决于其表达模式、亚细胞定位、聚合化、活性及与其他蛋白的相互作用。
在非生物逆境,尤其是热激逆境下,A类热激转录因子在调节热激蛋白的表达起着重要作用。
番茄的HsfA1起着主导作用,其缺失无法被其他相近的Hsfs所取代,但在持续热逆境下,在HsfA1的配合下,HsfA2可成为主要调节因子。
B类热激转录因子可作为A类Hsfs的阻抑蛋白。
然而,基于对不同的单个突变体的研究,以及对酵母Hsf1致死突变体的拯救恢复,一些热激转录因子的作用又是丰余的。
此外,热激蛋白也对热激转录因子起负反馈调节作用。
关键词热激转录因子(Hsfs),热激蛋白(Hsps),热胁迫,非生物逆境
TheRolesofPlantHeatShockTranscriptionFactorsinAbioticStress
WengJinzhouHongYueyun*
Fujian-TaiwanHorticultureResearchCenter,FujianAgriculturalAcademyofSciences,Zhangzhou,363005
*Correspondingauthor,hongyhk@yahoo.com.cn
AbstractAbioticstressresultsinproteindenaturation.Heatshockproteinsfunctionasmolecularchaperonesinpreventingtheaccumulationofdamagedproteinstomaintaincellularhomeostasisbyrefolding,stabilization,in-tracellulartranslocationanddegradationofproteins.Theexpressionofheatshockproteins(Hsps)isregulatedbytheheatshocktranscriptionfactors(Hsfs)viabindingtotheheatshockelement(HSE)ofHspsgenestorecruitothertranscriptionfactors,causingtheaccumulationofHsps.ThediversityoftheHsfsysteminplantsisevidentlymuchhigherthanthatofanimals.Basedontheirfunctionaldomainstructures,plantHsfscanbedividedintothreeclasses,HsfA,HsfB,andHsfC.ClassAHsfsarewellcharacterized,especiallyintomato.ThefunctionsofclassBandCarestillnotclear.InthecomplexnetworkofHsfs,eachofHsfshasitsuniquerole,dependentontheex-pressionpattern,subcellularlocalization,oligomerization,activation,andinteractionwithotherproteins.ClassAHsfsplayanimportantroleinregulatingtheHspgenesinabioticstress,especiallyinheatstress.HsfA1intomatoactasamasterregulator.ThedeficiencyoftomatoHsfA1cannotbesubstitutedbyanyofothercloselyrelatedHsfs.HsfA2mightbecomedominantregulatorunderprolongedheatstresscondition,althoughitsfunctionre-quirescooperatewithHsfA1.ClassBHsfsmightfunctionasrepressorofclassAofHsfs.However,someHsfsarealsofunctionallyredundantbasedonthestudiesonsinglemutantofindividualHsfandrescueofyeastHsf1lethalmutant.Inaddition,HspsalsoactasnegativefeedbackregulationofHsfs.
KeywordsHeatshocktranscriptionfactors(Hsfs),Heatshockproteins(Hsps),Heatstress,Abioticstress
随着全球气温的上升及世界人口的快速增长,热逆境对作物的产量和品质的影响日趋显著。
因此,通过分子操作技术提高作物的抗热性日显重要。
植物在热逆境反应中,其热激基因表达迅速增加,导致热激蛋白的迅速累积。
在逆境条件下,特别是热激下的一系列细胞活动过程中,热激蛋白作为分子伴侣促使其他蛋白的重新折叠、稳定、组装、胞内运输和降解,对受损蛋白的修复和细胞的存活起着重要的作用(Wangetal.,2004;SangsterandQueitsch,2005)。
根据其功能、保守的结构域和分子量,热激蛋白可分成五类,即Hsp70、Hsp90、Hsp100、thechaper-onins(GroELandHsp60)和小分子量的sHsp(Wangetal.,2004)。
sHsp在植物中分布最为广泛(Vierling,1991)。
真核生物热激基因的启动子中共同拥有一个回文序列AGAAn/nTTCT的热激转录因子识别元件(HSE)(Nover,1987)。
热激蛋白的表达受到热激转录因子的调控。
在热胁迫、氧化逆境和病毒感染下,热激转录因子结合在热激蛋白基因的热激元件上,以吸引其他转录因子结合在热激蛋白基因上而形成转录复合体,导致热激蛋白基因的转录和热激蛋白的累积(Noveretal.,1996)。
由于植物固生于土壤中而难以逃脱不利的环境条件如热、冷、干旱及盐胁迫,因而在漫长的进化过程中形成了相对于动物体系较为复杂多样的热激转录因子种类。
因此,一个灵活而高效的逆境反应体系是植物在逆境条件下赖以生存、发育和再生的必要条件。
通过对基因组分析或表达序列标签(EST)的搜索,发现水稻、烟草、大豆和拟南芥分别有23、18、34和21个热激转录因子基因(Kotaketal.,2004;Goffetal.,2002)。
这表明植物热激转录因子Hsfs家族组成的功能的多样性及物种特异性以适应快速多变和极端的环境。
根据其DNA结合结构域(DNAbindingdo-main,DBD)及其寡聚化结构域(HR-A/B)的特异性,植物热激转录因子Hsfs可分为3类,即HsfA、HsfB、HsfC。
基于其结构特征和系统发育比较分析,拟南芥具有15个A类Hsfs,5个B类Hsfs和1个C类Hsfs(Noveretal.,2001)。
A类Hsfs在寡聚化结构域中插入21个氨基酸残基,而B类Hsfs则没有这样的插入,且其C端激活结构域(CTAD)是中性或带正电荷。
B和C类的Hsfs缺少AHA基元而不具备激活功能(Noveretal.,2001;Czar-necka-Verneretal.,2000)。
1热激转录因子的结构域与功能
在真核生物界,尽管Hsfs的大小、序列有一定的差异,但其启动子识别位点的基本结构却相当保守。
Hsfs拥有一个模式结构,即包括一个保守的N端DNA结合结构域(DBD),一个具有7个疏水重复的寡聚化结构域(HR-A/B),一簇为核输入信号(NLS)所必需的碱性氨基酸残基和一个酸性C端的激活结构域(AHA)(图1)(Morimoto,1998;Noveretal.,1996;Wu,1995)。
1.1N端DNA结合结构域(DBD)
N端DNA结合结构域(DBD)是Hsfs结构中最为保守的区域,具有一个结合于热激蛋白基因Hsps启动子中的热激元件的螺旋—转角—螺旋结构(Noveretal.,1996)。
通过紫外激光交联实验,发现拟南芥AtHsf1组成型地结合于Hsp18.2基因的热激元件(HSE)上(Zhangetal.,2001)。
通过转基因的烟草体外实验,发现在热激蛋白基因HaHsp17.6G1的上游序列或其不完全的热激元件上的点突变,极大地削弱了热激转录因子对HaHsp17.6Gl的结合及其表达(Carranoetal.,1999)。
热激转录因子Hsfs结合于热激蛋白基因Hsps的热激元件上,从而募集其他转录因子结合于Hsps基因,形成转录复合体,促进Hsps基因的表达。
拟南芥Hsf1被证实与TATA结合蛋白(TBP)直接相互作用,通过亲和层析、电泳迁移率变动分析及酵母双杂交测试表明,HSE
寡聚核苷酸形图1热激转录因子(Hsfs)的基本结构域的模型
注:Hsfs具有一个模式结构,包括保守的N端DNA结合结构域(DBD),含7个疏水重复的寡聚化结构域(HR-A/B),为核输入信号所必需的一簇碱性氨基酸(NLS),核输出信号(NES)和位于C端的、以芳族、大的疏水和酸性氨基酸(AHA)为特征的激活结构域
Figure1Thefunctionaldomainstruturesofheatshocktranscrip-tionfactors(Hsfs)
Note:HsfshaveamodularstructurecontainingaconservedN-terminalDNAbindingdomain(DBD),anoligomerizationdomainpossessingheptadhydrophobicrepeat(HR-A/B),aclus-terofbasicaminoacidresiduesessentialfornuclearimportsig-nal(NLS),anuclearexportsignal(NES),andC-terminalactiva-tordomainwithacharacteristicpatternofaromatic,largehy-drophobicandacidicaminoacids,AHAmotif
植物热激转录因子在非生物逆境中的作用
TheRolesofPlantHeatShockTranscriptionFactorsinAbioticStress89
分子植物育种
MolecularPlantBreeding
成TBP:AtHsf1:HSE的复合体,但突变的HSE却没有这样的复合体(ReindlandSchoffl,1998)。
1.2寡聚化结构域
寡聚化结构域(HR-A/B)位于N端,由7个疏水重复组成,在不同的生物体的Hsfs中也是保守的(Scharfetal.,1994)。
通过位于寡聚化结构域内形成的卷曲的三链α-螺旋的Hsf三聚化是其高效结合于DNA和促成Hsps基因转录的前提(Wu,1995)。
HR-A/B结构域的缺失对生物体生存于高温下没有影响,但却显著地影响Hsfs的聚合化作用。
LacZ报告基因分析表明,单体的Hsf显著地减低了其结合于DNA的亲和力(Boscheinenetal.,1997)。
拟南芥的AtHsf1是组成型的表达(HubelandSchoffl,1994),但其结合于Hsp基因的热激元件HSE却是严格地取决于热逆境及要求蛋白构象由单体向三聚体的转变(Hubeletal.,1995;Noveretal.,1996;Kotaketal.,2004)。
免疫共沉淀和酵母双杂交试验证实了番茄的HsfA2的核输入需要通过与HsfA1同源寡聚化结构域HR-A/B的相互作用来完成(Scharfetal.,1998;Portetal.,2004)。
通过EGS交联和电泳迁移率变动分析,转基因拟南芥植株嵌合的Hsf-GUS以三聚体形式组成型地结合于热激蛋白基因中的热激元件上,组成型地表达了热激蛋白,从而提高了其抗热性(Leeetal.,1995)。
1.3核输入信号(NLS)和核输出信号(NES)结构域
核输入信号(NLS)由一簇碱性氨基酸残基组成,绝大部分与C端的HR-A/B区域相邻。
NLS作为核定位信号并为蛋白输入核内所需。
Hsfs也具有核出输出信号(NES)区,使Hsfs从核内运输到细胞质。
番茄的HsfA2是热激诱导蛋白,由于其具有强烈的C端核输出信号(NES),HsfA2只能定位于细胞质内(Scharfetal.,1998;Mishraetal.,2002)。
免疫荧光分析表明,番茄HsfA2的核输入只能依赖于与HsfA1协同运输,这种协同输入要求两者均必须具有NLS基元,缺失NLS则不具备核输入的能力(Scharfetal.,1998)。
1.4C端激活结构域(CTAD)
C端激活结构域(CTAD)是最不保守的区域,以芳族的、大的疏水的及酸性的氨基酸(AHA)基元为特征,这样的结构通常出现哺乳动物系统和酵母转录因子的激活结构域(D!ringetal.,2000;NoverandScharf,etal.,1997)。
通过报告基因在烟草原生质体和酵母的表达及免疫共沉淀分析,AHA基元为A类的Hsfs转录活动所必需。
相反,B和C类的Hsfs则缺乏AHA基元且没有激活功能(Kotaketal.,2004;Czarnecka-Verneretal.,2000)。
通过GST-HsfCTD融合蛋白及免疫共沉淀分析表明,Hsf-CTD蛋白与转录复合体的组分SNF2、TAF130和ADA3(SAGA)相互作用。
缺失预测的AHA基元则不具备激活功能。
FWXXF/L、F/I/L序列被发现为AHA基元的一个保守的原型,出现在许多植物A类Hsfs的C端激活结构域(CTD)(Kotaketal.,2004)。
A类Hsfs上的AHA基元的作用已被许多拟南芥HsfsC端缺失突变及AHA基元上的丙氨酸替代基本的芳族和(或)疏水的残基的突变所证实(Kotaketal.,2004)。
2热激逆境下Hsfs复杂的网络
2.1A类Hsfs在热胁迫下的作用
番茄的Hsfs已有大量深入的研究和报道。
番茄的HsfA1组成型地表达并在热激反应中起主导作用(Mishraetal.,2002;Noveretal.,2001;Scharfetal.,1998)。
在正常温度下,HsfA1分布于细胞核和细胞质中。
通过HsfA1的超表达和干扰RNA(iRNA)的转基因植株的分析,超表达HsfA1植株叶片的热诱导合成的HsfA2,HsfB1和Hsp17-CI的合成水平比野生型多2 ̄3倍,而HsfA1iRNA植株中却检测不到或明显降低相应的蛋白(Mishraetal.,2002)。
通过电泳迁移率变动分析,野生型的样品可观察到DNA-蛋白复合体,HsfA1iRNA沉默植株的样品中却没有这样的复合体。
同时,超表达植株比野生型更为耐热,而HsfA1iRNA植株则相反(Mishraetal.,2002)。
然而,缺失或减少HsfA2和HsfB1基因表达的转基因番茄对热胁迫没有明显的影响(Mishraetal.,2002)。
此外,为HsfA2的转录活动,其核输入需要HsfA1的配合(Scharfetal.,1998;D!ringetal.,2000;Heeklotzetal.,2001)。
拟南芥的AtHsf1也起了基础调节作用(Noveretal.,1996)。
含有重组蛋白EN-AtHsf1(AtHsf1与果蝇波纹形成阻抑结构域EN的融合蛋白)的转基因植株极大地降低了所有目标基因的表达,包括Hsp17.6、Hsp18.2、Hsp70、Hsp83和Hsp101,并降低了耐热性,特别在热激反应的早期(Wunderlichetal.,2003)。
番茄的HsfA2在热激反应中具有潜在的激活性(Scharfetal.,1998;D!ringetal.,2000;Heeklotzetal.,2001)。
HsfA2是热诱导的蛋白,其表达和核输入依
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赖于HsfA1(Scharfetal.,1998;Portetal.,2004)。
因其C端拥有一个极强的核输出信号,HsfA2自身不具备进入核内的能力(Scharfetal.,1998;Heerklotzetal.,2001)。
免疫荧光和细胞组分分析,发现HsfA2位于细胞质,其核输入要求通过A类Hsf特有的HR-A/B结构域与HsfA1形成异聚体。
HsfA1和HsfA2的相互作用已被酵母双杂交和免疫共沉淀分析所证实。
HsfA2和HsfA1的协同运输进入核内并不要求全长的HsfA1,缺失整个激活结构域的C端仍具有这种功能,但两者的NLS基元则是必需的(Scharfetal.,1998)。
虽然HsfA2的表达及其核滞留依赖于HsfA1,但在持续的热胁迫和恢复期,HsfA2在耐热性方面则处于优势地位。
这是由于HsfA2具有很高的激活潜能并可持续累积到相当高的水平,特别是与HsfA1的配合下(Mishraetal.,2002)。
在合成期间,相当一部分的HsfA2与Hsp17-CⅠ,Hsp17-CⅡ复合形成大的细胞质聚合物。
然而,通过对番茄提取蛋白进行大小排阻层析表明,在修复期,在CⅠ伴侣蛋白包括Hsp17.7-CⅠ,LeHsp17.6-CⅠ和LeHsp17.8-CⅡ的作用下,大多数的HsfA2以可溶的形式存在于细胞质。
与聚合物的结合与释放的动态使HsfA2保持在感受态,以应对反复或严重的热胁迫(Mishraetal.,2002)。
类似于HSFA1,番茄的HsfA3也是组成型表达。
在正常条件下HsfA3主要位于细胞质内,当热胁迫时,则转运到细胞核内。
与HsfA2不同,HsfA3不是结合于热胁迫颗粒体。
在番茄和拟南芥中,HsfA3的行为与Hsf1相似(Bhartietal.,2000;Lohmannetal.,2004)。
2.2B类Hsfs在热胁迫中的作用
B类Hsfs的作用尚不清楚。
通过大豆或拟南芥B类Hsfs基因在烟草原生质体的表达,结果表明,在正常或热胁迫条件下,B类Hsfs没有激活功能。
B类Hsfs可充当热激反应的阻抑蛋白或负调节物。
A类的AtHsfA4-21与B类的AtHsfB1-4的共同表达不能激活AtHsfB1-4,并导致AtHsfA4-21活性的减弱(Czarnecka-Verneretal.,2000)。
相比于A类的AtHsf1和AtHsf3,AtHsfB1-4:GUS融合蛋白的超表达不能激活sHsps(Hubeletal.,1995;Prandletal.,1998)。
许多B类Hsfs存在于正常条件下并在热胁迫条件下被诱导到较高水平(Czarnecka-Verneretal.,1995;NoverandScharf,1997)。
番茄的HsfB1在正常和热胁迫条件下均位于细胞核内(Scharfetal.,1998)。
经体外实验表明,惰性的B类Hsfs特定地与基本转录因子TBP和TFIIB结合形成非功能性转录复合体以抑制热激蛋白的表达(Czarnecka-Verneretal.,1995)。
该数据表明,植物热激正和负的调节可能分别独立于不同的Hsf蛋白,A类的Hsfs起着激活的正调节作用,而一些惰性的B类Hsfs可在热激反应中起抑制作用。
另一相反的观点认为,HsfB2b、B3和C1如果与活性较弱的A类Hsfs结合起来,可起着协同激活的作用(Kotaketal.,2004)。
3Hsps的负反馈调节Hsfs作用
热激蛋白Hsps反过来也具有调节Hsfs的作用(图2)。
例如番茄的HSFA2的亚细胞定位和激活功能被小分子量的热激蛋白sHsps所调控(Portetal.,
图2逆境下Hsfs与Hsps的网络系统
注:热激、氧化、干旱或病毒感染导致蛋白的受损,因而激活或诱导Hsfs蛋白的合成。
HsfAs促使热激蛋白(Hsps)的转录,阻止受损蛋白的累积以保持胞内平衡。
Hsps也充当Hsfs的负反馈调节作用,以阻止恢复期间的Hsfs的进一步增加。
HSFBs负调节HsfAs的表达
Figure2ModelofthenetworkofHsfsandHspsinresponsetoenvironmentalstress
Note:Heatshock,oxidants,droughtorviralinfectionleadstothedamagedofproteins,therebyactivateorinducethesynthesisofHsfproteins.HsfAspromotethetranscriptionofheatshockproteins(Hsps),whichpreventtheaccumulationofdamagedpro-teinstomaintaincellularhomeostasis.HspsalsoactasanegativefeedbackregulatorofHsfstopreventHsfsfurtherincreasingdur-ingrecoveryperiod.HsfBsprobablyregulatenegativelytheex-pressionof
HsfA
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分子植物育种
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2004)。
通过酵母双杂交,瞬时共表达及番茄叶肉原生质体的细胞组分分析表明,在热胁迫下,Hsp17.4-CⅡ热激蛋白作为协同抑制蛋白把HsfA2蛋白锚定在大的胞质聚合物上,而在修复期和正常条件下,HsfA2蛋白又能被CⅠ类的sHsps所溶解而释放出来。
通过报告基因在烟草原生质体的表达,高激活潜能的Hs-fA2的活性随着Hsp17.4-CⅡ的增加而显著降低,同时,HsfA2的转录活动也特定地被其自身的C端的激活结构域结合于Hsp17.4-CⅡ所抑制(Portetal.,2004;Scharfetal.,1998)。
Hsp70和Hsfs之间的相互作用阻碍了Hsfs三聚化及其与Hsp的热激元件HSE的结合,从而抑制了Hsfs的转录活性(Wangetal.,2004)。
拟南芥AtHsf1是组成型的表达,其活性在正常条件下被抑制,但在逆境下被激活。
通过电泳迁移率变动分析和酵母双杂交测定,发现Hsp70通过与DNA结合结构域相互作用而成为AtHsf1活性的一个负反馈调节(KimandSchoffl,2002)。
拟南芥AtHsf1-GUS融合蛋白对负调节作用不敏感并以三聚体构象组成型地结合于目标基因的热激元件(HSE)上。
去阻抑的AtHsf-GUS可能由于嵌和的Hsf1-GUS构象的变化而不能被阻抑物所识别(LeeandSchoffl,1996)。
4Hsfs的丰余及其独特的细胞功能
植物中的Hsfs比动物界的更具多样性(Bhartietal.,2000;Noveretal.,2001)。
在复杂的网络中,每个Hsf具有独特的作用,取决于其表达方式、亚细胞定位、寡聚化、活性及其与其他蛋白的相互作用。
正如前面所述,番茄的HsfA1在热激反应中起主导作用,HsfA1的缺失不能被其他相关的Hsfs所取代(Mishraetal.,2002)。
尽管HsfA2的作用需要HsfA1的配合,但其在持续和严重的热胁迫下成为主要调控者(Portetal.,2004)。
B类的Hsfs可作为A类Hsfs的阻抑物。
然而,一些Hsfs的作用是丰余的。
例如,拟南芥AtHsf1和AtHsf3在热胁迫的早期具有丰余的调节作用,T-DNA分别插入AtHsf1和AtHsf3基因位点的单个突变体对热激反应并没有明显的影响,而AtHsf1/AtHsf3双重突变体却显著地降低Hsfs的目标基因的表达水平,包括Hsp100、Hsp90、Hsp70和sHsp及2个热诱导的B类Hsfs(Lohmannetal.,2004)。
超表达的拟南芥HSF3转基因植株(Prandletal.,1998)或Hsf1融合蛋白(Leeetal.,1995)导致热激反应的去阻抑作用。
番茄A类的Hsfs包括HsfA1、HsfA2和HsfA3均能够振救恢复酵母Hsf1的致死突变(Boscheinenetal.,1997),表明它们具有某些丰余功能。
5Hsfs在其他非生物逆境中的作用
5.1干旱胁迫下的Hsfs
肌醇半乳糖苷合成酶(GolS1),是干旱胁迫中的重要化合物即棉子糖、水苏糖和毛蕊单糖合成的一种关键合成酶。
GolS1的表达在野生型的拟南芥是热诱导的,而在AtHsfs超表达的转基因植株中是组成型表达的(Panikulangaraetal.,2004)。
通过嵌合的Go1S1启动子:GUS报告基因分析,Go1S1基因在一个推断的TATA框的上游包含了几个共有序列-GAA/-TTC的完全或不完全的热激元件HSE。
在大肠杆菌(E.coli)表达重组蛋白AtHsf3的电泳迁移率变动分析表明,AtHsf3蛋白特定地与含有热激元件HSE的GolS1基因起始密码子的上游DNA片段形成DNA:AtHsf3蛋白复合体。
在热胁迫下,野生型的叶片中棉子糖含量明显提高,在AtHsf3超表达植株更为明显,而Go1S1突变体却没有增加。
这些数据表明,Go1S1是一个新型的Hsfs的目标基因,说明Hsfs也介入了干旱胁迫反应。
5.2氧化胁迫下的Hsfs
抗坏血酸过氧化物酶(APX)以抗坏血酸作为还原剂,以排解过氧化氢的毒性,是植物体内一种非常重要的抗氧化酶。
APX1(Storozhenkoetal.,1998)和APX2(Panchuketal.,2002)是HSFS的目标基因,随着温度的升高,APX1和APX2的表达增高,并为热胁迫所诱导。
据体外实验表明,APX1和APX2基因的上游启动子含有热激元件(HSE),并特定地与番茄的重组蛋白Hsf1结合(Storozhenkoetal.,1998;Panchuketal.,2002)。
通过检查APX1和APX2基因上游的启动子DNA序列,发现了类似热激元件(HSE)的序列,并通过变异分析、转基因表达、电泳迁移率变动分析及足迹法的Hsf:DNA复合体形成所证实。
在热激元件序列的突变对热胁迫及氧化胁迫有很强的负效应(Storozhenkoetal.,1998;Panchuketal.,2002)。
6展望
十多年来,通过分子生物学知识和技术应用,人们对植物热激转录因子(Hsfs)在非生物逆境,特别是在热胁迫中的作用进行了大量的研究,从而对其作
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用机理有了较深入的认识。
植物Hsfs的鉴定与克隆技术已为植物Hsfs的研究敞开新的大门。
随着拟南芥基因组测序的完成,越来越多新的植物的Hsfs的鉴定,其网络和分子机理将会更加清楚。
不同的Hsfs以其独特的方式在热胁迫及其他逆境反应及不同发育阶段中参于细胞生理过程,同样,每个Hsfs也有多个不同的目标基因。
对植物Hsfs分子和细胞学机理的研究证实了Hsfs在不同逆境反应的作用。
然而,关于Hsfs在植物非生物逆境的调节功能的多样性和复杂性的问题仍需要进一步探索。
例如,B类和C类的Hsfs的生物功能?何种蛋白在活体内与Hsfs相互作用?以及新的Hsfs的目标基因也有待进一步发现和鉴定。
通过产生T-DNA插入突变或iRNA沉默某一特定基因将有助于探索Hsfs网络和个体Hsfs的特定作用。
致谢
本研究由福建省农业科技攻关计划项目(2004No51)资助。
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通讯作者简介
翁锦周,男,现为福建省农业科学院甘蔗研究所(与闽台园艺研究中心属两块牌子一套人马)副所长,副研究员。
主要研究方向:生物技术在农业上的应用。
在国内期刊上共发表相关论文20篇。
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