普通PCR仪和荧光定量PCR仪的使用
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SG
5’ 3’
SG
3’ 5’
SG
SG
SG
Part IV 荧光定量PCR原理
双标记探针(Taqman Probe)
5’端标记荧光分子(如:FAM),在3’端标记一个吸收
或淬灭荧光的分子(如:TAMRA), 这样5’端激发出的荧光 会被3’端的分子淬灭或吸收掉,所以开始时,仪器并不能检测
到荧光。由于Taq聚合酶同时具有5’端外切酶的活性,在PCR
Part III 普通PCR仪操作规程
PCR仪软件操作指南:
Gene Amp PCR System 9700 Version 3.05 User:***
Run F1 F1 Stop Creat F2 1 4 7 Edit F3 2 5 8 Util F4 3 6 9 User F5
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0
CE
3’ 末端序列
★
△ 3’ 末端碱基最好为G 或C
△ 3’ 末端碱基尽量避免为T
互补性 特异性
RT-PCR用引物
★★★ ★★★ ★★★
△ 引物内部或两条引物之间避免3 base以上的互补序列 △ 引物3’ 末端避免2 base以上的互补序列
使用BLAST检索,确认引物特异性 尽量在Exon junction上设计引物,限制基因组DNA扩增
• 内掺式染料 SYBR Green I • 序列特异性探针 Taqman Molecular Beacons FRET • 引物特异性探针 Amplifluor (Intergen)
Part IV 荧光定量PCR原理
SYBR-Green I
dsDNA的内插染料是一种能插入到双链DNA
并发出强烈荧光的化学物质,其荧光强度的 增加与dsDNA的数量成正比。如SYBR GreenⅠ 染料,当它没有结合上双链DNA时,只发出相 对弱的荧光;然而,当它一旦插入到双链DNA
Part V
1、开始运行仪器
荧光定量PCBaidu Nhomakorabea仪操作规程
打开PCR仪底座开关,再打开定量PCR仪检测 器开关。实验前先让系统预热30分钟,打开电脑,启 动iQ5软件。 2、放置样品 将PCR反应体系加入到0.2ml的薄壁管或96孔板 中,盖上管盖。注意,必须带一次性塑料手套,不要 让手指接触到反应管表面。将反应管按顺序放入仪器 的加热孔中。
Part II PCR原理
高温变性 低温退火 适温延伸 温 度 72 (℃)
1
2
3
94
重复1-3步 25-30轮 目的DNA片段 扩增100万倍以上
形 成
DNA 2
55 22
条变 单性 链
子链延伸 DNA加倍 DNA单链 与引物复性
DNA双螺旋
1
2
3
时间(min)
4
5
Part II PCR原理
PCR原理
反应性能确认
线性关系、扩增效率确认
相关系数(r2):大于0.98 PCR扩增效率(E):0.8-1.2
检测灵敏度确认
35Cycles内可得到好的定量结果。 如果采用SYBR检测方法, 30Cycles内无非特异性产物扩增。
No Template Control确认
30Cycles内无引物二聚体产生。
Part III 普通PCR仪操作规程
PCR仪软件操作指南: Select User Name <<pre>>cql lyf ……
Accept F1 F1 Stop New F2 1 4 7 Edit F3 2 5 8 Delete F4 3 6 9 Cancel F5
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CE
Part III 普通PCR仪操作规程
插至双链DNA,经改装的带有冷CCD的PCR仪检测样 品的荧光强度
PCR循环
= 双链DNA = 染料 = 荧光 Green I取代
后来用与双链DNA有更强结合力的SYBR
EB
Part IV 荧光定量PCR原理
使用Real Time PCR扩增装置实时监测PCR扩增产物并进行分析的方法。
激 发 光
Real Time PCR引物设计原则
扩增片段大小 Primer长度
GC含量
Tm值 序列
★ ★ ★ ★★★ ★
80-150 bp(尽量限制在300 bp以内) 17-25 base 40-60%(最好45-55%) 两条引物的Tm值尽量接近,应用专用软件计算Tm值
△ 整体上碱基不能过偏 △ 个别部分避免GC rich或AT rich(特别是3’ 端) △ 避免T/C连续,A/G连续 △ 3’ 末端避免GC rich或AT rich
Part V
荧光定量PCR仪操作规程
3、设置程序,运行实验 定量PCR软件操作基本步骤为:
a. 设置热循环程序文件(Protocol file)
b. 设置反应板文件(Plate Setup file) c. 点击“Run”键,运行程序
d. 数据分析
Part V
4、结果分析
荧光定量PCR仪操作规程
PCR的理论方程:Y=x×(1+ Ev)n Y:扩增物数量; X :起始模板数量; Ev:扩增效率; n:扩增循环数
Part III 普通PCR仪操作规程
开机操作:
打开PCR仪电源开关; 向后平推PCR仪顶盖,放入PCR薄壁管。 向前平推PCR仪顶盖,并均匀用力将反扣部分压下。
注意:
9700PCR仪必须使用圆头的PCR薄壁管。
里时,荧光信号将会强烈地增加,从而根据
荧光信号的增强来计算PCR扩增产物的增加。
Part IV 荧光定量PCR原理
SYBR-Green I
5’
Excitation
SG
Emission
3’
SG
SG
3’
5’
SG
SG
Part IV 荧光定量PCR原理
SYBR-Green I
Excitation
Emission
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0
CE
Part III 普通PCR仪操作规程
PCR仪软件操作指南:
Method Exp000 Exp001
Start F1 F1 Stop
size qin0 9 qin1 9
View F2 1 4 7 User F3 2 5 8
last used 03/01/06 04/10/06
Sort F4 3 6 9 Cancel F5
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0
CE
Part III 普通PCR仪操作规程
PCR仪软件操作指南:
1Hld 94.0 3:00 Edit F1 F1 Stop F2 1 4 7 F3 2 5 8 F4 3 6 9 3Tmp 94.0 0:20 35Cycles 2Holds 55.0 0:20 72.0 0:20 72.0 7:00 4.0 8 Return F5
Ct值
Part IV 荧光定量PCR原理
实时定量PCR技术是PCR技术和荧光检测技术的结
合
通过荧光染料或荧光标记的特异性的探针, 对PCR产物进行标记跟踪,实时在线监控PCR反
应过程,通过仪器和相应的软件分析结果,对待
测样品的初始模板进行定量或定性分析。
Part IV 荧光定量PCR原理
荧光定量PCR标记方法
普通PCR仪和荧光定量PCR仪的使用
二○一二年十二月
Part I 中心PCR (polymerase chain reaction)仪
简介
Part II PCR 原理
Part III 普通PCR仪操作规程
Part Ⅳ 荧光定量PCR原理 Part Ⅴ 荧光定量PCR仪操作规程
Part I 中心PCR仪简介
普通PCR仪
荧光定量PCR仪 Rotor gene 3000
Gene AMP System 9700
Part II
基因表达 基因水平
PCR
PCR原理
转录水平
(Real time) RT-PCR
翻译水平
Western blot
DNA
mRNA
蛋白
中心法则
核酸的功能是储存 和转移遗传信息, 指导和控制蛋白质的合成; 而蛋白质的主要功能是 进行新陈代谢活动和 作为细胞结构的组成成分。
dNTP(dATP, dGTP, dCTP, dTTP) Mg2+ (magnesium)
模板 (template)
Part II PCR原理
PCR扩增的基本反应步骤
1、变性:加热至95ºC左右,使模板DNA变性。 2、退火:降低温度至适合的温度(55ºC左右, 引物与模板 DNA的互补序列配对结合。 3、延伸:温度在70ºC左右时,Taq DNA聚合酶 从引物3'端催化复制链以5' -3'方向延伸。
对SARS样品中所含SARS病毒RNA进行定量
SARS Control RNA 105-101扩增曲线
标准曲线
SARS Internal Control RNA扩增曲线
SARS Genomic RNA Sample 1、2、3扩增曲线
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0
CE
Part III 普通PCR仪操作规程
关机操作:
实验结束后点击Exit至出现主界面,关闭PCR仪电源开关;
均匀用力将反扣部分抬起,向后平推PCR仪顶盖,取出PCR薄壁
管。
向前平推PCR仪顶盖。
Part IV 荧光定量PCR原理
首先,传统的PCR 检测方法在测定PCR 扩增产物前需打开反应管, 容易造成产物污染,成为“假阳性”的主要来源。实时PCR 在扩增过程 中动态检测,完全以闭管方式进行,不仅操作简便,也杜绝了产物污染 源。
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CE
Part III 普通PCR仪操作规程
PCR仪软件操作指南:
Method Exp000 Exp001
Edit F1 F1 Stop
size qin0 9 qin1 9
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last used 03/01/06 04/10/06
Sort F4 3 6 9 Cancel F5
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CE
Part III 普通PCR仪操作规程
PCR仪软件操作指南:
1Hld 94.0 3:00 Start F1 F1 Stop F2 1 4 7 F3 2 5 8 F4 3 6 9 3Tmp 94.0 0:20 35Cycles 2Holds 55.0 0:20 72.0 0:20 72.0 7:00 4.0 8 Return F5
蛋白/ 酶 AAAA
Part II
PCR概念
PCR原理
利用DNA聚合酶、一对引物和四种
dNTP(三磷酸脱氧核苷酸),对模板DNA
反复多次地进行复制,从而得到大量扩增产 物的反应过程,称为PCR。
Part II
PCR反应五要素
PCR原理
引物(primer) 酶 (Taq DNA polymerase)
3’ 5’ R Q
Q
5’
3’
Real Time PCR引物设计
Real Time PCR用引物与普通PCR引物设计要求不同 普通PCR引物 目的是获得目的基因,对非特异性反应和引物二聚体要求 不严格。
Real Time PCR引物
目的是让目的基因按照理论值进行扩增,对非特异性反应和 引物二聚体要求严格。 => 对引物设计要求严格
(1)PCR反应结束后,软件会自动计算标准曲线和Ct 值等。
(2)如需进行表达量分析、等位基因分析等, 在软件 窗口选择相应分析功能。
(3)点击右上方的“Report”键,还可输出结果报告 单 5、关闭运行仪器 实验结束后关闭iQ5软件、荧光定量检测器及扩 增系统电源,关闭电脑,取出反应管。
绝对定量应用例
PCR仪软件操作指南: User Name___
Accept F1 F1 Stop F2 1 4 7 Backsp F3 2 5 8 F4 3 6 9 abcdefgh ijklmnopq rstuvwxyz
Use ENTER key to select a character. Cancel F5
反应的延伸阶段,Taq酶会把5’端的荧光分子切下,使其与 3’端吸收或淬灭荧光的分子分开,仪器就会检测到荧光信号。 每一个循环,随着PCR扩增产物的增加,荧光信号会增强,从 而根据荧光信号的增强来计算PCR产物扩增量的增加。
Part IV 荧光定量PCR原理
5’
3’
5’ 3’
Excitation Excitation
其次,传统PCR 都是在PCR 到达平台期后进行检测。PCR 经过指 数期后,对反应条件的变化十分敏感,扩增到达平台期的信号强度重现 性很差。实时PCR 方法则在指数扩增的开始阶段进行检测,此时样品间 的细小误差尚未放大,因此具有重复性。
Part IV 荧光定量PCR原理
定量PCR技术的产生
1992年由Higuchi等人第一次报告:使用EB内插染料法