一种新的微卫星PAGE显带方法

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微卫星产物变性与非变性PAGE-银染方法比较

微卫星产物变性与非变性PAGE-银染方法比较

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基因在染色体上定位的基本方法

基因在染色体上定位的基本方法

基因在染色体上定位的基本方法1.遗传连锁分析:遗传连锁分析是通过对家族中的基因型和表型进行检测和分析,确定基因与染色体的位置关系。

这种方法通过比较不同的亲代和子代之间的遗传关系,可以推测基因位点在染色体上的相对位置。

2.染色体显带技术:染色体显带技术是将染色体进行染色处理后,通过显微镜观察染色体的特殊带状分布来确定基因或基因组的位置。

常用的染色体显带技术有吉姆萨染色法和Q-带染色法等。

3.倒位和缺失:倒位和缺失是指染色体片段的倒转和丢失,这种染色体异常通常说明被倒转或丢失的区域内含有对其中一基因的局部作用。

通过研究倒位和缺失的病人或动物模型,可以确定被破坏的基因在染色体上的位置。

4.分子标记和杂交技术:分子标记和杂交技术是基于DNA分子间的互补配对原理,通过标记和杂交技术可以在染色体上定位基因。

常用的分子标记技术包括PCR、限制性片段长度多态性(RFLP)、微卫星标记和单核苷酸多态性(SNP)等。

这些标记可以通过杂交技术与染色体上的特定区域发生互补配对,从而确定目标基因的位置。

5.整合遗传和物理图谱:整合遗传和物理图谱是一种将遗传信息与物理距离相连的方法。

遗传图谱是根据遗传连锁分析得到的基因距离关系,而物理图谱则是根据染色体的物理特性和DNA序列的物理位置建立的。

通过整合遗传和物理图谱,可以更准确地确定基因在染色体上的位置。

6.定位克隆技术:定位克隆技术主要利用染色体上已知的标记序列或已离体的基因进行探针筛选和杂交实验,进而确定目标基因的精确位置。

常见的定位克隆技术包括克隆定位、转录映射和比较基因组定位等。

7.基因组测序:基因组测序技术的发展为基因在染色体上的定位提供了新的工具和方法。

通过高通量测序技术,可以对染色体上的DNA序列进行全面的测定,从而获得准确的基因位置信息。

综上所述,基因在染色体上定位的基本方法包括遗传连锁分析、染色体显带技术、倒位和缺失、分子标记和杂交技术、整合遗传和物理图谱、定位克隆和基因组测序等。

Genemapper-微卫星分析中文操作指南

Genemapper-微卫星分析中文操作指南

Genemapper-微卫星分析中文操作指南GeneMapper 软件 微卫星分析中文简易操作手册微卫星分析流程:软件术语介绍:术语 定义Analysis Parameters 软件中分析样品所使用的特定设置;用于计算片段大小和基因 型,这些特定设置包括analysis method, size standard 和panel bin在marker 内设定等位基因的片段大小和颜色 bin set 等位基因特定实验条件下一组binmarker 微卫星标记,通过位点名称、片段大小、荧光标记和重复长度 进行设定 panel Marker 组合 kitpanel 组合设定微卫星分析方法:1. 登录软件2. 创建分析所需kit 、panel 和marker 等参数;3. 创建新文件,导入数据;4. 设置分析参数;5. 执行初始分析;5. 创建Bin 以及Bin Set ;分析并检查结果: 1. 编辑分析方法; 2. 分析数据; 3. 查看结果;打印并导出数据(可选): 1. 打印结果; 2. 导出结果。

一.设定微卫星分析方法:1.登录GeneMapper软件:1.1选择开始 -- All Programs -- Applied Biosystems --GeneMapper--GeneMapper ;或双击桌面快捷方式打开软件;1.2登录GeneMapper软件:用户名默认为gm,在Passwprd中输入密码,点击OK进入GeneMapper软件2创建分析所需kit、panel和marker等参数:2.1 点击软件上方工具栏Tools,选择Panel Manager;2.4 选中1 STR panel,点击2新建Marker,在3位置依次输入Marker Name(Marker名称) ,Dye Color (荧光标记种类) ,Min Size,Max Size (片段最小值和最大值) ,Marker Repeat (重复次数) ;2.5重复2.4步骤,完成所有Marker设置,点击OK保存;3. 创建新文件,导入数据:3 .1 点击1 新建文件夹,在2 Project Type中文件夹类型选择Microsatellite ,点击OK;3.2 导入数据:点击1 Add Samples To Project 添加数据,在弹出的对话框中选择待分析数据,通过3Add To List 添加到右边的面板中,点击4 Add 完成数据添加;4. 设置分析参数:4.1 完成数据添加后,在1 位置,Analysis Method中选择New Analysis Method新建分析方法;在弹出的对话框中选择分析类型2Microsatellite,点击OK确认;4.2 设置分析参数:在Analysis Method Editor中,点击1General,填写2Name(分析方法名称);之后点击3 Allele,在将4 Bin Set选择none;其它参数为软件默认,不需要修改;点击OK确认;4.3 选定好之前设定的分析方法,在后续的栏目中设定Panel 和SizeStandard(分子量内标);4.4 完成分析参数设定后,选中Analysis Method,Panel和Size Standard栏目,点击1File,选择2Fill Down;此时,Analysis Method,Panel 和Size Standard栏目会使用之前选定的分析参数;也可以使用鼠标分别选择;4.5 保存分析文件:点击File,选择Save Project,输入文件夹名称:5. 执行初始分析:5.1 点击分析按钮1,分析数据:5.2 在1 Genotypes中查看初步分析结果,或通过2 Display Plots选项查看样品分型图:5.3 在样品分型图界面中,Plot Setting选择 Microsatellite Default;通过软件上方的快捷按钮编辑数据显示方式:6 创建Bin Set:6.1 打开Tools—Panel Manager,选中1 STR Kit,点击2 新建Bin Set,在弹出的New Bin Set 对话框3中输入Bin Set名称:6.2 添加参考数据:6.2.1 确保1 Bin Set已选择新建的Bin Set,选中2 STR Panel,此时会显示出之前新建的每个Marker,点击3 Add Reference Data 添加参考数据;6.2.3 在Add Microsatellite Reference Data对话框中,选择1 参考数据,通过2 Add To List 添加至右面的面板中,点击3 Add,完成添加:6.3 生成Bin Set:完成参考数据添加后,点击1 Auto Bin,之后使用软件默认参数,点击2 OK,自动生成Bin Set:6.4 编辑Bin Set:分别选中每个Marker 1 查看其对应的Bin,选中2 Bin,右键进行Bin的编辑或者删除,也可通过软件3处的快捷图标进行Bin 的编辑;完成后点击OK生成Bin Set;二.分析并检查结果:1.编辑分析方法:点击软件上方快捷图标1 Analysis Method Editor,将Allele中的2 Bin Set修改为之前新建的Bin Set,其他参数保持默认,点击OK;2.点击分析按钮再次分析数据,通过Genotypes查看分型结果,或选中数据通过Display Plots查看样品分型图;选中需要查看的数据,否则无法查看Samples Plot:查看样品分型图:三.打印并导出数据(可选):1.在View中选择不同的界面(Samples,Genotypes等),再通过File—Export/Print导出或者打印相应的数据:2.在Analysis 中选择不同的界面(Display Plots,Report Manager等),再通过File—Export/Print 导出或者打印相应的数据:。

微卫星检测方法

微卫星检测方法

微卫星DNA简单重复序(SSR)也称微卫星DNA,也可称为SSRP(Simple Sequence Repeat Polymorphisms),STMS (Sequence-tagged microsatellites)。

其串联重复的核心序列为1一6 bp,其中最常见是双核昔酸重复,即(CA) n和(TG) n每个微卫星DNA的核心序列结构相同,重复单位数目10一60个,其高度多态性主要来源于串联数目的不同。

SSR标记的基本原理:根据微卫星序列两端互补序列设计引物,通过PCR反应扩增微卫星片段,由于核心序列串联重复数目不同,因而能够用PCR的方法扩增出不同长度的PCR产物,将扩增产物进行凝胶电泳,根据分离片段的大小决定基因型并计算等位基因频率。

SSR具有以下一些优点:(l)一般检测到的是一个单一的多等位基因位点;(2)微卫星呈共显性遗传,故可鉴别杂合子和纯合子;(3)所需DNA量少。

显然,在采用SSR技术分析微卫星DNA多态性时必须知道重复序列两端的DNA序列的信息。

如不能直接从DNA数据库查寻则首先必须对其进行测序。

1 微卫星DNA的构成及特点微卫星又称简单序列重复(Simple Se-quence Repeats,SSR)。

一般以1-6个碱基为核心序列,首尾相连组成的串联重复序列。

这种序列存在于几乎所有真核生物的基因组中,含量丰富,且呈随机均匀分布。

它们不仅大量分布于基因的间隔区和内含子中,而且还分布于基因的外显子和调控区(如启动子、增强子),真核生物平均每50-150 kb就存在一个微卫星位点,如在人类基因组中每6 kb就有1个微卫星,禽类基因组中约89 kb出现1个微卫星。

微卫星DNA 数目巨大,人类基因组中约有5×104-1×105个(CA)n重复序列,重复次数一般为15-60次,重复单位相同,其长度一般小于200 bp,但也有的更长。

每个特定位点的微卫星DNA均由两部分构成:中间的核心区和外围的侧翼区。

微卫星检测方法

微卫星检测方法

微卫星DNA简单重复序(SSR)也称微卫星DNA,也可称为SSRP(Simple Sequence Repeat Polymorphisms),STMS (Sequence-tagged microsatellites)。

其串联重复的核心序列为1一6 bp,其中最常见是双核昔酸重复,即(CA) n和(TG) n每个微卫星DNA的核心序列结构相同,重复单位数目10一60个,其高度多态性主要来源于串联数目的不同。

SSR标记的基本原理:根据微卫星序列两端互补序列设计引物,通过PCR反应扩增微卫星片段,由于核心序列串联重复数目不同,因而能够用PCR的方法扩增出不同长度的PCR产物,将扩增产物进行凝胶电泳,根据分离片段的大小决定基因型并计算等位基因频率。

SSR具有以下一些优点:(l)一般检测到的是一个单一的多等位基因位点;(2)微卫星呈共显性遗传,故可鉴别杂合子和纯合子;(3)所需DNA量少。

显然,在采用SSR技术分析微卫星DNA多态性时必须知道重复序列两端的DNA序列的信息。

如不能直接从DNA数据库查寻则首先必须对其进行测序。

1 微卫星DNA的构成及特点微卫星又称简单序列重复(Simple Se-quence Repeats,SSR)。

一般以1-6个碱基为核心序列,首尾相连组成的串联重复序列。

这种序列存在于几乎所有真核生物的基因组中,含量丰富,且呈随机均匀分布。

它们不仅大量分布于基因的间隔区和内含子中,而且还分布于基因的外显子和调控区(如启动子、增强子),真核生物平均每50-150 kb就存在一个微卫星位点,如在人类基因组中每6 kb就有1个微卫星,禽类基因组中约89 kb出现1个微卫星。

微卫星DNA 数目巨大,人类基因组中约有5×104-1×105个(CA)n重复序列,重复次数一般为15-60次,重复单位相同,其长度一般小于200 bp,但也有的更长。

每个特定位点的微卫星DNA均由两部分构成:中间的核心区和外围的侧翼区。

微卫星技术及其应用

微卫星技术及其应用
3.4 构建指纹图谱
基因组中各微卫星位点除重复数不同外,其碱基组成和结构是相似的,因此可以以微卫星的核心序列如(AC)n、(TG)n等作为多位点探针,在基因组中同时检测多个位点。由于不同个体、品种(系)或群体在被检测位点上存在一定的差异,通过电泳及杂交,这些差异将表现为杂交带的有无,即产生微卫星DNA指纹图。B.Beyerman等通过DNA指纹印迹技术,利用简单重复序列(GATA)1和(GTG)5作探针,证实了大麦和甜菜DNA指纹印迹区带的显著差异。
2.3 通用性与保守性
微卫星DNA所在区域在生物的基因组中是比较保守的,某一物种的微卫星引物可在相关密切的物种中使用,这使得减少获取微卫星的工作量和加快比较基因组作图的工作进度成为可能。
2.4 共显性遗传
微卫星DNA呈孟德尔共显性遗传模式,可以区别纯合显性个体和杂合显性个体,这为遗传研究提供了更多的可供分析的信息。
1.微卫星DNA的特点及分类
微卫星DNA具有丰富的多态性,主要表现在核苷酸重复单位数目的多态性和重复序列中核苷酸的替换多态性。一般认为,一个微卫星DNA核心序列重复数目越高,其等位基因数目也就越多,多态性就越丰富。微卫星DNA遵循孟德尔遗传规律,能够稳定地从上一代传给下一代,且等位基因间呈现共显性遗传。除此以外,微卫星标记还具有DNA用量少、反应速度快、操作简易、结果重复性好等特点。
3.6 分子标记辅有很大的潜力,它改变了从表型值推断基因型值的选择过程。分子标记辅助选择相对于传统的表型选择来说,可以获得更大的遗传进展,尤其对于低遗传力性状、限制性状和后期表达的性状,能增大选择强度,缩短世代间隔,提高选择的准确性。Zhang等利用微卫星标记来预测产量和估计杂种优势。
微卫星DNA分子标记及其应用

DNA分子标记的研究进展及几种新型分子标记技术_关强

DNA分子标记的研究进展及几种新型分子标记技术_关强

黑龙江农业科学2008(1):102~104 Heilong jiang Ag ricultural Sciences综述 102 黑龙江农业科学DNA 分子标记的研究进展及几种新型分子标记技术关 强1,张月学2,徐香玲1,孙德全2,李绥艳2,林红2,潘丽艳2,马延华2(1.哈尔滨师范大学生命与环境科学学院,哈尔滨150080;2.黑龙江省农业科学院草业研究所,哈尔滨150086)摘要:分子标记是继形态标记、细胞标记和生化标记之后发展起来的一种比较理想的遗传标记技术。

综述了DN A 分子标记的类型,基本原理和特点,同时还对几种最新出现的分子标记技术作了简要的介绍。

关键词:新型DN A 分子标记;RG A s 标记;RM A P D ;SRA P ;T RAP中图分类号:Q 78 文献标识码:A 文章编号:1002-2767(2008)01-0102-03Development of DNA Molecular Marker and SeveralNew Types of Molecular MarkersGUAN Qiang 1,ZHANG Yue -xue 2,XU Xiang -ling 1,SUN De -quan 2,LI Sui -yan 2,LIN Hong 2,PAN Li -yan 2,MA Yan -hua2(1.Life and Environmental Co lleg e ,H arbin No rm al U niversity ,H arbin 150080;2.Pratacultural Science Institute ,Heilongjiang Academy of Ag ricultural Sciences ,H arbin 150086)Abstract :DN A molecular mar ke r is a compar atively ideal g enetic mar ker s develo ped after the shape ma rker ,cellu -lar ma rker and biochemical mar ke r .I n this pape r ,the ty pe s ,basic principles a nd cha racte rs we re summarized ,meanw hile ,several new ty pes of mo lecular ma rkers we re intro duced w hich appea red rece ntly .Key words :DN A mo lecular marker ;RGA s marker s ;RM A PD ;SRA P ;T RA P收稿日期:2007-05-29第一作者简介:关强(1982-),男,黑龙江人,在读硕士,从事遗传学研究。

微卫星DNA非变性PAGE银染法的分析探讨

微卫星DNA非变性PAGE银染法的分析探讨
Abta tNo sr c: n—d n trn oy cya d e eemp oei o c stlt NA i akn fme o hc e aua tplarlmieg l l t h rs f s Mir aeleD o i ido t dw ih s h
i o tn u e e f n e aa eD s f s d t v r y a d s p r t NA a d i a l t e aa et e mio rg n s o e 0 i . n s be 0 s p r t h n rf me t f a .S i es s i ig o s v r t nn l a
关键词 : 卫星 D A;C ; 微 N P R 非变 性聚丙烯酰胺凝胶; 银染
中图分类号 :12 S 3
文献 标识码 : A
文章编号 :0 1 3020 ) 10 —43 (06 0 45 4 6—05 —0
An l ss a d Ex l r to s o i e t i i g Te to n — e a u a t a y i n p o a i n fS l r S a n n s f No —d n t r n v
me o d eme o e i h ra cet i rsac esn es o d gae . we e . h r r f n t dma et t d b n tebod sinic eerh p r n l’g பைடு நூலகம் rcs Ho v r te ea e ot h h h f o e
A r u ueo i in r ut nadC nt c o rs S i o e n ̄'y S i o e82 0 . hn gi l r fXna gPo co n osut nC p , h h ̄ i s 。 hh t 30 3 C i ct i' d i r i o h U ' i t hz a)

微卫星方法简介

微卫星方法简介

微卫星方法简介关键词微卫星分子生态应用80年代以来,分子生物学技术与方法已成为进化生物学、保护遗传学、生态学等诸多领域非常重要和崭新的研究工具。

而摆在人们面前可供选择的分子生物学方法又有许多种,如同工酶(allozymes)、限制性片断长度多态性(Ristriction Fragment Length Polymorphism, RFLP)、多位点或单位点小卫星(Multi-locus or Single-locus Minisatellites)以及随机扩增多态DNA(Randomly Amplified Polymorphic DNA, RAPD)。

其中每种方法都具有自己明显的不足之处,比如:同工酶标记物由于位点多态性低、变异低而不能很好地被用来估计群体内部个体之间的亲缘关系,这在研究濒危物种时显得尤为突出;小卫星探针由于其片断长而难以获得;RAPD方法稳定性和重复性较差。

目前,随着人们对微卫星(Microsatellites)方法认识的不断深入,这一技术和手段越来越为研究者们所青睐。

微卫星(又名简单序列)是由串联重复序列组成,每单元长度在1~10bp之间,如(TG)n或(AAT)n[1~3],广泛分布于真核基因组中[4],因重复单元数目不同而呈现高度多态性[5]。

1 微卫星的产生历程生物学家在20世纪70年代就已经知道真核基因组中存在着短串联重复位点,但直至1982年Hamada等[6]发现从酵母到脊椎动物中的多拷贝多聚(dT-dG)时,这些序列的数目之大和存在之广泛才显现出来。

这一发现后来被Tautz和Renz[7]所证实:他们用不同微卫星序列与不同有机体中的基因组DNA杂交,发现存在着许多类型的简单序列。

1985年,Jeffreys等[8]发现了人基因组中有更长重复单元的超变串联重复序列,即小卫星DNA(Mini-satellite)。

与微卫星一样,小卫星的串联重复单位的数目也显示出可变性,因此二者被统称为可变数目串联重复位点(Variable Number of Tandem RapeatsVNTRs)[2]。

微卫星序列分析GeneMapper 使用教程(中文版)

微卫星序列分析GeneMapper 使用教程(中文版)

ABI PRISM® GeneMapper™ Software Version 3.0微卫星分析使用教程(中文版)SSR条带读取设置向导© Copyright 2002, Applied Biosystems. All rights reserved.For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.Information in this document is subject to change without notice. Applied Biosystems assumes no responsibility for any errors thatmay appear in this document. This document is believed to be complete and accurate at the time of publication. In no event shallApplied Biosystems be liable for incidental, special, multiple, or consequential damages in connection with or arising from the useof this document.Notice to Purchaser: License DisclaimerPurchase of this software product alone does not imply any license under any process, instrument or other apparatus,system, composition, reagent or kit rights under patent claims owned or otherwise controlled by Applera Corporation,either expressly, or by estoppel.TRADEMARKS:ABI PRISM and its design, Applied Biosystems, GeneScan, Genotyper, SNaPshot, LIZ, and VIC are registered trademarks ofApplera Corporation or its subsidiaries in the U.S. and certain other countries.AB (Design), ABI, Applera, GeneMapper, NED, PET, ROX, and 6-FAM are trademarks of Applera Corporation or its subsidiariesin the U.S. and certain other countries.Macintosh is a registered trademark of Apple Computer, Inc.All other trademarks are the sole property of their respective owners.Part Number 4335525 Rev. B09/2002目录:第一章总论关于微卫星分析使用教程------------------------1-1数据提供---------------------------------------------1-2操作流程---------------------------------------------1-3第二章创建Custom Kits,Panels,and Markers 操作流程--------------------------------------------2-1创建Kits,Panels,and Markers----------------2-2第三章运用Panels,Bins进行数据分析操作流程--------------------------------------------3-1导入Panels------------------------------------------3-2导入和设定相关数据------------------------------3-3创建Bits---------------------------------------------3-4附录:Panel,Bin结构认识总论本章内容主要包括:关于微卫星分析使用教程-----------------------1-1数据提供--------------------------------------------1-2操作流程--------------------------------------------1-3关于微卫星分析使用教程概述:微卫星分析方法可以让您高效快速的运用ABIPRISM®GeneMapper™ Software Version 3.0.对微卫星进行分析目标:通过学习微卫星分析方法,您可以●建立GeneMapper 分析项目●导入样本文件进行数据分析●利用自动bin功能创建bin如何使用此教程:当您按照后面几个章节中的流程操作时,切记:●按照顺序进行每一步操作●不要导入其他无关样本和bins所有的操作过程都按照菜单操作方式编写,如:选择Tools > GeneMapper Manager当然您也可以点击工具菜单上的快捷按钮教程中的术语:教程中使用以下术语表格1-1 术语和定义表格1-1 术语和定义数据提供概述:GeneMapper Software Version 3.0包括以下数据Panel 信息:主要提供:●LMS-HD5 Version 2.5 and LMS-MD10 Version 2.5 kits●GeneScan™ Installation Standard DS-33 (6-FAM™, VIC®,NED™, and PET™ dyes)●GeneScan™ Installation Standard DS-30 (6-FAM™, HEX™,NED™, and ROX™ dyes)●This tutorial注意:更多信息请阅读您说使用的Kit所对应Panel信息,若要需要创建Custom Kit,请阅读第二章Bin 信息:Bin 信息对应GeneScan Installation Standard DS-33, 采用GeneScan™ 500LIZ_3730 标准,只用于Applied Biosystems3730/3730xl DNA Analyzer默认设置:提供下列默认设置表1-2 默认设置带型标准设置:为微卫星数据分析提供下列带型标准:●GeneScan™ 400HD size standard●GeneScan™ 500 size standard●GeneScan™ 500 (-250) size standard●GeneScan™ 500 (-250) LIZ® size standard●GeneScan™ 500 LIZ® size standard注意:可以设定用户带型标准,阅读ABI PRISM® GeneMapper™Genotyping Software User’s Manual (PN 4335526). 样本文件:本教程提供四种微卫星样本文件,它们均采用5个客户PETmarker ,利用LMSMD-10 panel 9在3100型仪器上产生操作流程:分析微卫星数据:以下表格为运用GeneMapper 软件分析微卫星数据的流程概述,请链接相关章节,阅读详细流程。

微卫星位点获取方法的研究进展

微卫星位点获取方法的研究进展

微卫星位点获取方法的研究进展微卫星位点获取方法是一种基因分型和遗传分析的重要手段,它可以通过测定微卫星位点的多态性来研究个体间的遗传差异和进化关系。

研究者们一直致力于发展更加高效、准确和便捷的微卫星位点获取方法。

本文将介绍微卫星位点获取方法的研究进展,并分析不同方法的优劣势。

传统的微卫星位点获取方法主要依赖于聚丙烯酰胺凝胶电泳(Polyacrylamide Gel Electrophoresis, )或琼脂糖凝胶电泳(Agarose Gel Electrophoresis)技术。

这些方法需要进行反应体系的优化和样品处理的多个步骤,操作繁琐且费时。

此外,这些方法对于微卫星序列扩增反应的选择性和敏感性有一定的限制,导致了低位点数目和较大的测定误差。

近年来,随着高通量测序技术的发展,研究者们开始采用下一代测序(Next Generation Sequencing, NGS)平台进行微卫星位点的获取和分型。

这些方法不仅可以获得更多的位点信息,还可以提高测定精度和准确性。

NGS方法的主要优势在于其高通量性和多样性,可以同时对多个样品进行测定,并且可以对微弱突变进行敏感检测。

其中,常用的NGS方法包括基因组重测序(Whole Genome Sequencing, WGS)、基因组库构建和目标区域测序(Targeted Re-Sequencing)等。

此外,研究者们还开发了一些基于多聚酶链反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)的位点获取方法,如多重微卫星分型法(Multiplex PCR)和简化微卫星-PCR方法(Simplified Microsatellite-PCR, SMP)。

这些方法通过引入多个引物或优化反应体系,提高了微卫星位点的扩增效率和选择性,并减少了操作的复杂性。

此外,通过引入荧光标记和电泳分离等技术,可以实现高通量的微卫星位点分型。

除了上述方法外,近年来还涌现了一些新的位点获取技术,如基于DNA芯片(DNA microarray)的方法和全基因组关联分析(Genome-Wide Association Study, GWAS)。

胞外基因展示方法酵母菌表面展示的步骤

胞外基因展示方法酵母菌表面展示的步骤

胞外基因展示方法酵母菌表面展示的步骤酵母菌是一种常见的微生物,被广泛应用于分子生物学和生物工程研究中。

胞外基因展示是一种将目标基因表达在酵母菌表面的方法,使其易于检测和筛选。

本文将介绍胞外基因展示方法在酵母菌中的步骤。

胞外基因展示的步骤大致分为以下几个部分:构建展示载体、选择适合的表面展示蛋白、构建目标基因亲和化的融合载体、转化酵母菌、筛选和鉴定展示蛋白。

首先,构建展示载体是胞外基因展示的第一步。

展示载体通常由一个信号肽和一个附着基因构成。

信号肽用于将目标蛋白定向到酵母菌表面,而附着基因则用于与目标基因进行融合。

通常选择具有高表达水平和适合胞外分泌的载体,以确保目标基因能够在酵母菌表面进行展示。

第二步是选择适合的表面展示蛋白。

目前常用的表面展示蛋白主要包括酵母菌表面蛋白A(AgA)、酵母菌表面蛋白B(AgB)和酵母菌细胞壁蛋白1(Cwp1)等。

选择合适的表面展示蛋白是根据目标基因的性质和实验目的来决定的。

第三步是构建目标基因亲和化的融合载体。

将目标基因与展示载体进行融合,利用亲和化标记在酵母菌表面展示。

常用的亲和化标记包括FLAG标记、HA标记和菌糖标记等。

融合载体的构建主要通过基因克隆技术来完成。

第四步是将构建好的载体转化到酵母菌中。

转化是将外源DNA引入到酵母菌细胞中的过程。

目前常用的转化方法有化学转化法、电转化法和冷冻转化法等。

最后一步是筛选和鉴定展示蛋白。

筛选过程是通过对转化后的酵母菌进行培养,并利用适当的选择压力来筛选出具有展示蛋白的菌株。

鉴定过程则涉及对展示蛋白的表达、定位和功能的检测。

常用的鉴定方法包括免疫检测、荧光显微镜观察和功能性酶活性测定等。

总结起来,胞外基因展示方法酵母菌表面展示的步骤主要包括构建展示载体、选择表面展示蛋白、构建融合载体、转化酵母菌以及筛选和鉴定展示蛋白。

胞外基因展示方法在酵母菌中具有广泛的应用前景,可以用于蛋白质相互作用研究、抗原筛选、抗体库的构建等领域。

一种新的微卫星PAGE显带方法

一种新的微卫星PAGE显带方法

一种新的微卫星PAGE显带方法刘梦培1,田敏2,傅大立1*,傅建敏1,王彩霞2(1.国家林业局泡桐研究开发中心,河南郑州 450003;2.中国林科院亚热带林业研究所,浙江富阳 311400)摘要:文章提出了微卫星PAGE荧光染料显带法,并将其与琼脂糖凝胶荧光染料显带法与PAGE银染显带法进行了对比,结果发现该法分辨率高、快速高效、简单易行、背景清晰、兼具后两种方法的优点,是一种成功的DNA显带技术。

关键词:微卫星DNA;聚丙烯酰胺凝胶电泳;荧光染料显影;银染A new method of microsatellite PAGE bandingLIU Meng-pei1,TIAN Min2,FU Da-li1*,FU Jian-min1,WANG Cai-xia2(1.Non-timber Forestry Research and Development Center ,CAF,Zhengzhou 450003,Henan,China;2. Research Institute 0f Subtr0pical Forestry,CAF,Fuyang 311400,Zhejiang,China )Abstract: This paper proposes microsatellite PAGE fluorescent imaging method, compared with agarose gel fluorescent imaging method and PAGE silver staining method , The results showed that the method of high resolution, fast, efficient, simple clear background, both the advantages of the latter two methods, is a successful DNA banding.Key words: microsatellite DNA;PAGE(polyacrylamide gel electrophoresis);Fluorescent imaging;silver staining微卫星DNA又称简单序列重复(simple sequence repeats,SSR ),是由1-6个碱基多次串联重复组成的核苷酸序列,在基因组间广泛分布,具有共显性、重复性好、多态性高、扩增结果稳定、检测手段简便易行等优点[1],成功应用在物种的遗传多样性(genetic diversity)[2、3]、遗传图谱构建(genetic mapping)[4、5]、系谱分析(Pedigree analysis)[6、7]、遗传育种(Genetics and Breeding)[8、9]等方面。

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一种新的微卫星PAGE显带方法刘梦培1,田敏2,傅大立1*,傅建敏1,王彩霞2(1.国家林业局泡桐研究开发中心,河南郑州 450003;2.中国林科院亚热带林业研究所,浙江富阳 311400)摘要:文章提出了微卫星PAGE荧光染料显带法,并将其与琼脂糖凝胶荧光染料显带法与PAGE银染显带法进行了对比,结果发现该法分辨率高、快速高效、简单易行、背景清晰、兼具后两种方法的优点,是一种成功的DNA显带技术。

关键词:微卫星DNA;聚丙烯酰胺凝胶电泳;荧光染料显影;银染A new method of microsatellite PAGE bandingLIU Meng-pei1,TIAN Min2,FU Da-li1*,FU Jian-min1,WANG Cai-xia2(1.Non-timber Forestry Research and Development Center ,CAF,Zhengzhou 450003,Henan,China;2. Research Institute 0f Subtr0pical Forestry,CAF,Fuyang 311400,Zhejiang,China )Abstract: This paper proposes microsatellite PAGE fluorescent imaging method, compared with agarose gel fluorescent imaging method and PAGE silver staining method , The results showed that the method of high resolution, fast, efficient, simple clear background, both the advantages of the latter two methods, is a successful DNA banding.Key words: microsatellite DNA;PAGE(polyacrylamide gel electrophoresis);Fluorescent imaging;silver staining微卫星DNA又称简单序列重复(simple sequence repeats,SSR ),是由1-6个碱基多次串联重复组成的核苷酸序列,在基因组间广泛分布,具有共显性、重复性好、多态性高、扩增结果稳定、检测手段简便易行等优点[1],成功应用在物种的遗传多样性(genetic diversity)[2、3]、遗传图谱构建(genetic mapping)[4、5]、系谱分析(Pedigree analysis)[6、7]、遗传育种(Genetics and Breeding)[8、9]等方面。

微卫星DNA条带的鉴别常采用聚丙烯酰胺凝胶电泳(Polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)银染法,PAGE由Raymends和Weintraub 1959年创建,具有不易扩散、灵敏度高、分辨率高等优点[10]。

银染技术是其常用的显影方法,常用的有Bassam银染法[11]、Sanguinetti银染法以及在其基础上改良的一系列银染法,但银染法缺陷是步骤繁琐、耗时长、背景模糊、条带不清等,极易造成DNA 条带错判,从而产生分析误差。

许多研究者针对这些问题做了大量研究,但只能达到改良的效果,并不能从根本上解决问题。

本研究提出了微卫星PAGE的荧光染料显影法,试图从一个新的思路解决PAGE显带的问题。

1 材料和方法1.1 材料1杏属不同品种幼嫩叶片;SSR引物UDP98-405,正向引物序列:5′-ACGTGATGAACTGACACCCA-3′,反向引物序列:5′-CCTACCGTCTCGTTTCTGAG-3′;GelRed核酸荧光染料。

1 基金项目:国家十一五科技支撑项目资助(2006BAD01A1703-2)作者简介:刘梦培(1984—),女,中国林业科学研究院硕士研究生,研究方向:林木遗传育种。

Email:mengpei0402@*通讯作者:傅大立,男,博士,中国林业科学研究院研究员,从事林木种质资源与遗传育种研究1.2 PCR反应体系和程序PCR反应体系总体积20μL,其中10×PCR Buffer 2.0μL、25mmol/LMgCl21.2μL、10mmol/LdNTPs MiX 0.4μL、5U/μL Taq DNA聚合酶0.3μL、10μmol/L的上下游引物各0.5μL、DNA模板0.5μL、ddH2O 14.6μL。

PCR反应在Bio-Rad C1000T M Thermal Cycler型号的扩增仪上进行。

ISSR扩增程序为94℃预变性5min,94℃变性45s,60℃退火45s,72℃延伸90s,35个循环,72℃延伸10min,4℃保存。

试验于中国林科院亚热带林业研究所植物细胞工程实验室内完成。

1.3琼脂糖凝胶电泳显带PCR产物在浓度为1.2%的琼脂糖凝胶上分离。

核酸荧光染料采用GelRed ,采用前染的方法,GelRed 核酸荧光染料加到溴酚蓝上样缓冲液中,4μL PCR产物与2μL含有gelred的溴酚蓝上样缓冲液PCR管中混合均匀,取3μL上样,80V电压下电泳1.5h。

电泳结束后,直接放入上海FR-200A全自动紫外与可见分析装置拍照和分析。

剩余PCR 产物等分2管,分别进行改良PAGE银染法和PAGE荧光染料显影法试验。

1.4 改良的微卫星PAGE凝胶银染法显带PCR产物在8%(29:1)聚丙烯酰胺凝胶上分离,胶片大小为195mm(长)x120mm(宽)x1mm(厚),8μLPCR产物与2μL溴酚蓝上样缓冲液在PCR管中混合均匀,取3μL上样,120V 电压下电泳3h。

电泳结束后,自来水冲洗玻璃板双面,预冷,剥下凝胶,固定液(0.5%冰醋酸、10%无水乙醇)中固定20min,ddH2O洗涤2次,银染液(0.15%硝酸银)中渗透15min,ddH2O洗涤2次,显影液(1.5%氢氧化钠、1%甲醛)中显影10-15min,直至出现清晰的DNA条带为止,显影后立刻用ddH2O洗涤1次,全自动紫外与可见分析装置拍照和分析。

1.5 PAGE凝胶荧光染料显影法显带凝胶配制同1.4,核酸荧光染料采用GelRed ,同琼脂糖凝胶电泳前染方法一样, 8μL PCR 产物与2μL含有gelred的溴酚蓝上样缓冲液PCR管中混合均匀,取3μL上样,120V电压下电泳3h。

电泳结束后,自来水冲洗玻璃板双面,预冷,剥下凝胶,清水冲洗后,直接放入全自动紫外与可见分析装置拍照和分析。

2 结果与分析2.1 琼脂糖凝胶电泳法图1琼脂糖凝胶电泳检测结果Fig. 1 Results of agarose gel electrophoresis test1-66分别代表杏属的66个品种。

琼脂糖凝胶电泳检测结果见图1,目的条带清晰明亮,大小在100bp左右,无非特异性扩增条带。

由于琼脂糖凝胶电泳分辨率低,只能区分约相差100bp的DNA片段,所以琼脂糖凝胶电泳结果只能显示出一条清晰的目的条带,无法判定品种间差异。

2.2 改良的微卫星PAGE银染法银染结果如图2所示,图片背景、分辨率、目的条带相对清晰,指纹图谱可以有效进行鉴定品种间差异。

但由于银染步骤繁琐,固定、银染、显影时间难以掌握,部分物种仍出现染色深、背景模糊的现象,如品种1、5、42、53、54的指纹图谱,也出现主带跟非特异性条带区分不明显的现象,如品种29、33、46、51、56、57的指纹图谱。

图2改良银染方法显影结果Fig. 2 Results of improved silver-stained method2.3 PAGE凝胶荧光染料显影法PAGE凝胶荧光染料显色结果如图4,我们可以看出,每一品种显色的条带同银染结果完全一致,并且图片背景、分辨率、目的条带清晰度比PAGE凝胶银染图片更高,甚至那些微弱的非特异性条带同银染结果也完全一致,但这种染色方法主带与非特异性条带区分更加明显。

关键是PAGE凝胶荧光染料显色法简单易行,不会出现时间控制不好导致染色深或染色失败的现象。

图3 凝胶荧光染料法显影结果Fig. 3 Results of gel fluorescent imaging method3讨论DNA显带通常使用的技术有Southern杂交、琼脂糖凝胶电泳和PAGE凝胶电泳[13]。

Southern 杂交存在使用放射性同位素具有放射性污染的缺陷,很少被人使用。

琼脂糖凝胶电泳可快速分别、纯化和判定DNA,但其分辨率低,无法区分微卫星DNA条带。

本文研究结果也正好说明了这一点。

聚丙烯酰胺凝胶电泳因其分辨率高(理论上可以分开长度相差0.1%的DNA分子),以银染技术代替同位素放射技术而独占优势,在微卫星分子标记分析方面应用广泛。

但其银染技术有步骤繁琐、耗时长、显色时间不易控制、背景模糊等缺陷,普通的银染技术需要2-3h,本实验采用改良的银染技术也需要30min-60min。

相比之下,PAGE荧光染料显带法独具优势,既具有琼脂糖凝胶电泳快速分别、纯化和判定DNA的优点,又具有PAGE分辨率高的优点,简单易行,快速高效,是一种值得推广的显带技术。

近些年关于银染技术的改良进行了大量研究,关海涛等[14]比较了Bassam和银染法Sanguinett银染法显影效果;梁宏伟等[15]对缩短银染时间进行了研究;杜爽等[15]对聚丙烯酰胺凝胶的种类、浓度及其银染方法进行了优化;许丽等[16]对银染温度和显色温度进行了研究。

但PAGE原理是利用银离子和核苷酸结合,在碱性环境下甲醛能使阴离子还原从而使凝胶中的DNA得以显现。

所以不可能避免步骤繁琐、背景不清晰、甲醛危害等这些问题。

另外操作过程中,银染后漂洗过度可能造成DNA带不清晰或无带,AgNO3浓度高、银染时间长、银染后漂洗时间短、显色时间长有可能造成凝胶背景发黄、颜色过深,摇晃不均匀又可能造成显影不均匀等等,这些问题是银染技术很难避免的缺陷。

琼脂糖电泳能快速分离、纯化和判定DNA,优势在于核酸荧光染料的利用,如EB、SYBR 系列染料、UltraPower核酸染料、GelRed和GelGreen等,原理是荧光染料以非共价键的方式与DNA/RNA结合,在紫外线的照射下发出明亮的橙色荧光,达到DNA条带显示。

利用相同的原理,在PAGE凝胶中使用核酸荧光染料,同样可达到高分辨率、快速判定DNA的目的。

而这一方法至今没人采用。

张玉魁等[17]认为EB毒性大,PAGE会淬灭EB的荧光,使EB检测的灵敏度降低。

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