转基因番木瓜检测方法的建立
转基因番木瓜PCR检测技术的研究的开题报告
转基因番木瓜PCR检测技术的研究的开题报告一、选题背景随着生物科技的发展,转基因技术被广泛应用于植物、动物等领域,但是其安全性问题一直备受关注。
转基因番木瓜是近年来广泛应用的转基因植物之一,其具有提高产量、增强抗病性和延长果实保存期等优点。
然而,其可能对环境和人类健康带来潜在危害,因此需要开展监测和评价工作。
PCR检测技术已经被广泛应用于转基因物质的检测,本项目旨在研究转基因番木瓜的PCR检测技术,为安全监管提供技术支持。
二、研究目的本项目旨在建立转基因番木瓜PCR检测技术,并对转基因番木瓜进行检测和分析,以便进一步掌握其分布情况和安全性。
三、研究内容1.收集转基因番木瓜材料,并进行DNA提取和纯化。
2.设计引物和探针,建立转基因番木瓜的PCR检测体系。
3.优化PCR检测条件,包括反应体系和PCR程序等。
4.扩增PCR产物,并进行电泳检测和测序鉴定。
5.建立检测标准和方法,确定检测灵敏度和特异性。
6.对不同来源的番木瓜进行PCR检测,分析其转基因情况和含量。
四、研究意义该研究可为转基因番木瓜的检测提供技术方法和标准,有助于建立针对其的安全监管体系。
同时,该研究的结果也可为转基因食品的检测提供重要的技术支持和参考。
五、研究方法1.收集转基因番木瓜材料,进行DNA提取和纯化。
2.设计引物和探针,建立PCR检测体系。
3.优化PCR反应条件,包括反应体系、PCR程序和PCR产物纯化等。
4.扩增PCR产物,进行电泳检测、测序鉴定和分析。
5.建立检测方法和标准,分析检测灵敏度和特异性。
六、预期结果建立转基因番木瓜的PCR检测技术,并确定其检测灵敏度和特异性,分析其转基因情况和含量。
同时,确定转基因番木瓜的安全性和潜在风险,为此类转基因作物的安全监管提供科学依据和技术支持。
七、参考文献1.聂方.转基因食品的检测方法和标准[J].环境卫生,2006(5):231-236.2.刘刚.转基因植物的PCR检测技术研究[J].中国生物工程杂志,2012(2):34-38.3.Andy Harkin, Darren Krampe.基于PCR扩增的转基因农产品检测方法[J].中国生物技术,2004(4):56-61.4.颜琛.转基因技术与农产品安全[J].食品科学,2007(12):279-283.。
转番木瓜环斑病毒复制酶基因番木瓜的多重定性检测
21 0 0年 1 2月
湖 南农业 大学 学报 ( 冉然 科 学 版 )
J u n l fHu a rc l r l i est Nau a ce c s o r a n nAg iut a v ri o u Un y( tr lS i h e st i ft e sn l e e wa × 1 g . h r l— e e P o6 T e s n i vt o i g eg n s 5 i y h 0 T e T i e g n — CR ee t n s se wa r a e o p d t ci y tm s c e t d t o d tc r ec mb n t n g n so NPTH、 p n a V3 S o T、 , p a dNo ; r T珏 , p a dPa a n An ee t h e o ia i e e f t o Re a d C M 5 ;r NP \ Re n s o NP Re n p i . d
中 图分 类 号 :Q 3 75
文章编 号: 10. 3(000— 2. 071 22 1)60 60 0 6 4
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转 番 木 瓜环 斑 病 毒 复 制酶 基 因番 木瓜 的多重 定 性检 测
阮小蕾 ,马丽娟 2 李 华平
转基因番木瓜技术流程
转基因番木瓜技术流程嗨,亲爱的朋友!今天咱们来聊聊转基因番木瓜的技术流程。
这可不是什么特别神秘的事儿,不过呢,确实也有一些关键的步骤需要注意。
首先呢,得选好番木瓜的品种。
你知道吗?不是所有的番木瓜品种都适合做转基因的。
要选择那种健康、生长状况比较好的品种。
我觉得啊,这就像是盖房子要选好地基一样重要呢!当然啦,这一步可能需要你多花点时间去观察和挑选。
接下来就是获取目的基因啦。
这个目的基因呢,是能够给番木瓜带来我们想要的特性的基因。
比如说抗病虫害之类的。
这一步有点复杂哦,不过现在有很多科学的方法可以做到。
根据经验,找专业的实验室或者研究机构帮忙会更好一些,毕竟他们更有经验嘛!然后呢,要把这个目的基因导入到番木瓜细胞里面去。
这可怎么导呢?有好几种方法呢,像农杆菌介导法就比较常用。
不过这一步操作起来得小心翼翼的,因为一旦出了差错,可能整个转基因的效果就达不到我们预期啦!这个环节可以根据实际情况自行决定一些具体的操作细节哦。
在基因导入之后呀,就需要对这些细胞进行培养啦。
让它们慢慢生长、分裂,形成新的植株。
刚开始的时候,你可能会觉得这一步特别麻烦,要一直关注着细胞的生长状态,但是习惯了就好了。
小提示:别忘了给它们合适的营养和生长环境哦!再接下来呢,要对这些新长出来的植株进行筛选。
怎么筛选呢?就是要找出那些真正成功导入了目的基因的植株。
这一步可不能马虎呀!这就像是在一堆沙子里找金子一样,要仔细认真。
最后就是对筛选出来的转基因番木瓜植株进行检测和评估啦。
看看它们是不是真的具备了我们想要的特性呢?这个过程可能会花点时间,不过这是确保转基因番木瓜质量的重要一步哦!小提示:别忘了最后一步哦!好啦,这就是转基因番木瓜大概的技术流程啦。
虽然看起来有点复杂,但只要一步一步来,还是可以做好的。
希望这篇文章能给你一些帮助呀!不过要注意哦,转基因技术是一个比较严肃的科学技术,在操作过程中一定要遵循相关的法律法规和安全规范呢!。
番木瓜环斑病毒CP基因dsRNA原核表达载体的快速构建
番 木 瓜 环 斑 病 毒 CP基 因 d R A原 核 sN 表 达 载体 的快 速 构 建
陈 瑶 , 沈文涛 言 普 黎小瑛 周 鹏 , , ,
(. 1 海南大学 农学 院 , 海南 儋州 5 13 ;. 7 7 7 2 中国热带农 业科 学院 热带生物技术研 究所/ 分析测试 中心 , 海南 海 口 5 10 ) 7 11
UC 2一X UC 4—8 UC 4—4 LC I 4—2
U C3 一 C
1 4 原核 表 达载体 的构 建 . 14 1 P R反应 以含 P S .P基 因 c N 的质粒 为模 板 ,I1—8 LC .. c R VC D A LC ,I1—4 LC ,II一2与 LC I2一X 引 物 的扩增 产物 为 P R产物 1 LC C ;I4—8 Uc 4 LC 2与 LC , 4— ,I4— I3一C引物 的 扩增 产 物 为 P R产 物 2 C 。反 应条 件 :5℃ 预变性 2mi 9 n后进 入循 环 ,5℃ 2 s 5 9 0 , 4℃ 2 ,2o 0S循 环 数 为 3 。循 环 完 成后 7 0s7 3 , C 0 2 c延 伸 3mi。 【 = n
骤 4产物 转 化 大 肠 杆 菌 T p0 ol 感受 态 细 胞 , 性 为 2 g・ 抗 5m L 卡那 霉 素 , g・ 1 霉 5m L-氯
素, 3 7℃培养 l 2 , 6— 0h 挑取 单菌 落培 养 。 14 3 酶 切鉴 定 1 B mH I .. )a 和 S cI双酶 切 连 接 成 功 的质 a
作者简 介 : 陈瑶 ( 96一) 女 , 18 , 重庆大足人 , 海南大学农学 院 2 0 09级硕士研究生. 通信作者 : 周鹏 ( 93一) 男 , 16 , 安徽人 , 研究员 , 士生导师 , — alzp3 1 2 .o 博 Em i h6 0 @16 cr : n
番木瓜种质资源圃转基因成分快速检测体系的建立与应用_张颖聪
2 结果与分析 2.1 已知资源的检测结果 “小白皮日升”是资源圃从海南收集到的转基因抗 病番木瓜资源;“红日5号”是资源圃利用杂交育种技 术培育的转基因抗病番木瓜资源;“红铃2号”是资源 圃利用杂交育种技术培育的非转基因番木瓜资源。使用 检测体系对以上3份资源进行检测的结果表明,“小白 皮日升”和“红日5号”呈阳性反应,“红铃2号”呈阴 性反应(见图1)。 “小白皮日升”、“红日5号”及阳性对照样品中 扩增出唯一的清晰DNA条带,比500bp条带略小,可以 确定是464bp的目标条带。而“红铃2号”与阴性对照没 有扩增出条带。 2.2 番木瓜种质资源的转基因成分检测 到目前为止,番木瓜种质资源圃”表示阴性
正反向引物各0.3μL,DNA模版2μL,加3蒸水至 25μL。
PCR扩增程序:94℃预变性3min;94℃变性1min, 54℃退火40sec,72℃延伸1min,循环40次;74℃保温 3min;最后16℃保温。
电泳及结果观察:取PCR产物10μL,在加有 0.5μL/mL溴化乙锭的1%的琼脂糖凝胶上以90V恒压电 泳1h,通过凝胶成像系统观察结果。
作者简介:张颖聪(1982—),男,助理农艺师,主要从事番木瓜种质资源保护及新品种选育工作。 通讯作者:谭耀文
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2012. 3 总第46期
试验研究
资源进行了转基因成分检测,其中有20份资源呈阳性 反应,其余资源呈阴性反应,检测结果与资源大田种 植表现情况对应一致。为了进一步确保检测结果的准 确性,我们委托农业部转基因植物及植物用微生物环境 安全监督检验测试中心(广州)对其中13份具有市场 推广潜力的资源进行了抽样复检,其结果与资源圃检 测结果一致(见表2)。
试验研究
番木瓜种质资源圃转基因成分 快速检测体系的建立与应用
食品中转基因成分检验流程与技术研发
食品中转基因成分检验流程与技术研发食品中转基因成分检验流程与技术研发随着生物技术的发展,转基因食品的出现已经成为人们关注的重要话题。
转基因食品是指通过基因工程技术将外源基因导入食品生产中,使得食品植物具有某种特殊功能或者抗性。
然而,由于转基因食品与传统食品在成分上的差异,其安全性与是否符合消费者需求备受争议。
因此,建立一套科学化、标准化的转基因食品检验流程与技术研发显得尤为重要。
一、食品中转基因成分检验流程1. 样品采集:从市场上购买一定数量的食品样品,根据样品特点选择合适的采集方法,确保样品的全面性和代表性。
2. 样品处理:将所采集的样品进行样品预处理,主要包括样品的混匀、分离等工作。
3. DNA提取:利用DNA提取试剂盒或者其他方法,从样品中提取出所需的DNA物质。
4. PCR扩增:利用特定引物和酶,在PCR扩增仪中进行PCR反应,扩增出转基因物质的特异片段。
5. 扩增产物检测:将PCR扩增后的产物通过电泳等方法进行检测,确定是否存在转基因物质。
6. 数据分析:根据扩增产物分析数据,判断样品中是否存在转基因物质,计算其含量及比例。
7. 结果报告:将检测结果编制成报告,以便进一步的科学研究和监管工作。
二、技术研发1. 引物设计:通过分析转基因食品的外源基因序列,设计特异性引物,确保能够准确、快速地检测转基因物质。
2. 标准物质制备:根据转基因物质的特性,合成转基因DNA标准物质,用于标定和校准分析仪器。
3. 验证实验:利用已知含量的转基因物质标准品,对所研发的检测方法进行验证实验,确保方法的准确性和可靠性。
4. 自动化技术:引入自动化技术,提高样品处理和检测效率,减少人为操作错误的可能性。
5. 快速检测方法研发:针对食品中转基因物质的检测需求,研发新的快速检测方法,提高转基因物质的检测效率和准确性。
6. 大规模样品处理技术:研发高通量、自动化的样品处理技术,提高样品处理能力,适应大规模样品检测的需求。
转基因作物安全评价及检测技术
转基因作物安全评价及检测技术自从1983年首例抗病毒转基因作物(GMC)问世以来,转基因作物的开发就成为了科学界研究的热点。
1986年,转基因作物首次被批准在田间试验,1993年底,美国的第一批延迟成熟期番茄获得上市批准。
其后,转基因作物的发展更为迅速。
截止1997年10月,全世界转基因作物的田间试验已达25000多例,开发了具有抗除草剂、抗虫、抗病毒、延长成熟期等不同性状的转基因油菜、玉米、棉花、水稻、番茄、南瓜等新品种。
近年来,各国在原有的转基因作物研究基础上取得了大量成果,除了上述的抗虫、抗除草剂以及抗病毒作物外,还出现了氮、磷肥高效利用,耐旱、耐盐碱、耐铝毒等转基因作物,蒸煮和食味品质明显改善的水稻及富含昏胡萝卜素的…金米”稻等。
2007年,张启发院士提出开展“绿色超级稻”培育的构想。
重点围绕水稻抗病虫、抗旱、营养高效利用、优质、高产等五大重要性状进行改良,使水稻生产实现“少打农药、少施化肥、节水抗旱、优质高产”。
基于转基因作物优良的特性,越来越多的国家批准转基因作物的商业化种植。
据国际农业生物技术应用服务组织f ISAAA)统计,2009年全球共有25个国家种植转基因作物,种植面积达到1.34亿hm2。
是1996年的80倍,全球市场价值达到105亿美元。
目前商业化种植的主要转基因作物是大豆、玉米、棉花和油菜等,其中转基因大豆和玉米的种植面积占全球转基因作物种植面积的80%以上。
我国目前主要种植的是转基因棉花、杨树、番茄和甜椒等,种植面积从2002年的200万hm 2增加到2009年的370万hm2,年均增长15%。
2009年我国抗虫转基因棉花种植面积约占总种植面积的90%,转基因棉花的广泛种植有效的降低了棉花种植成本,给我国带来了巨大的经济效益。
2009年12月,我国又为转植酸酶基因玉米和两个转基因抗虫水稻品系“华恢1号”和“Bt汕优63”颁发了生物安全证书,使转基因玉米和水稻的商业化进程向前迈进了一大步。
用于转基因检测的番木瓜基因组DNA提取方法的比较
改进 C AB法和试剂盒法都能提取得到纯度较 高的 D T NA,适合普通和荧光 P R反应 的要求,适用于外源基 因的检测 。改进 C A C TB
法提取的 D A浓度要 高于试剂盒法,而试剂盒法提取 D A 所用的时间较短 ,更为方便 ,但成本较 高。同时材料取样部位最好是果 N N
皮和果 肉,果皮和果肉为材料提取得到的 D A纯度很 高,适用于荧光 P R的要求。 N C
Ab ta t M o i e sr c : df dCr i ABme o n NAe ta td ykt . t e  ̄ a t no g n mi t da dD h xrce b if rh o e ci f e o cDNA f m p r ap p l n e s f a a af i o r o ei r , upa ds d o p p y r t c e u we ec mp r d P a t h o o ls b L g n n a a a s e is s e i cPa i e ewe ed t ce yc mmo CR d f o e c n r o a e . ln lr p a t c e ea d p p y p ce ・p cf pa ng n r e e td b o c r i nP n l a u rse t
现代 食品科技
Mo enF o ce c n eh oo y d r o dS in e dT c n lg a
2 1 , o. , . 0 0 V 1 6 No 2 2
用于转基 因检测 的番木瓜基 因组 D A 取方法的 比较 N提
赵琳娜 ,胡凤月 ,吴孝槐 ,路 勇
转基因食品安全管理制度
转基因食品安全管理制度第一章总则第一条为了加强转基因食品的安全管理,保障人民群众身体健康和生命安全,促进农业科技发展,根据《中华人民共和国食品安全法》、《中华人民共和国种子法》等法律法规,制定本制度。
第二条本制度适用于我国境内转基因食品的生产、经营、使用、检验、监管等活动。
第三条转基因食品安全管理应当坚持科学、严格、规范、公开的原则,确保转基因食品的安全性。
第四条国家建立转基因食品安全监督管理体系,实行转基因食品安全全程监管,确保转基因食品的安全。
第二章转基因食品生产管理第五条转基因食品生产应当遵循科学规范、安全可靠的原则,确保转基因食品的生产过程安全。
第六条转基因食品生产者应当具备相应的生产条件,包括独立的研发机构、生产设施、检测设备等。
第七条转基因食品生产者应当建立健全生产记录制度,详细记录转基因食品的生产过程、原料来源、生产数量、销售去向等信息。
第八条转基因食品生产者应当对其生产的转基因食品进行安全性评价,并向有关部门提交安全性评价报告。
第三章转基因食品经营管理第九条转基因食品经营者应当具备相应的经营条件,包括独立的经营场所、设施设备、仓储运输等。
第十条转基因食品经营者应当对其经营的转基因食品进行标签标识,明确标注转基因食品的名称、生产日期、保质期、生产者名称和地址、食用方法等信息。
第十一条转基因食品经营者不得经营未取得安全证书的转基因食品。
第四章转基因食品检验管理第十二条转基因食品检验机构应当具备相应的检验条件和能力,确保检验结果的准确性和可靠性。
第十三条转基因食品检验机构应当建立健全检验记录制度,详细记录检验过程、检验方法、检验结果等信息。
第十四条转基因食品生产者、经营者应当依法接受转基因食品检验机构的检验,并对其提供的转基因食品进行检验。
第五章转基因食品监管管理第十五条有关部门应当加强对转基因食品的监管,定期对转基因食品生产、经营、使用等活动进行监督检查。
第十六条有关部门应当建立健全转基因食品安全信息发布制度,及时向社会公布转基因食品安全信息。
转基因番木瓜检测方法的建立
江苏农业学报(JiangsuJ.ofAgr.Sci.)ꎬ2018ꎬ34(5):1198~1200http://www.jsnyxb.com王恒波ꎬ余泽怀ꎬ肖乃衍ꎬ等.转基因番木瓜检测方法的建立[J].江苏农业学报ꎬ2018ꎬ34(5):1198 ̄1200.doi:10.3969/j.issn.1000 ̄4440.2018.05.032转基因番木瓜检测方法的建立王恒波1ꎬ2ꎬ㊀余泽怀3ꎬ㊀肖乃衍1ꎬ2ꎬ㊀张㊀华1ꎬ2ꎬ㊀陈平华1ꎬ2(1.福建农林大学国家甘蔗工程技术研究中心ꎬ福建福州350002ꎻ2.农业部甘蔗及制品质量监督检验测试中心转基因检测室ꎬ福建福州350002ꎻ3.福建农林大学金山学院ꎬ福建福州350002)收稿日期:2018 ̄05 ̄04基金项目:国家标准化管理委员会标准制修订项目(20100644 ̄T ̄326㊁20100643 ̄T ̄326)作者简介:王恒波(1982 ̄)ꎬ男ꎬ陕西乾县人ꎬ硕士ꎬ助理研究员ꎬ主要从事分子检测研究ꎮ(Tel)0591 ̄83789177ꎻ(E ̄mail)wang ̄hengbo_0354@126.com通讯作者:陈平华ꎬ(Tel)0591 ̄83789177ꎻ(E ̄mail)50088945@qq.com㊀㊀关键词:㊀转基因番木瓜ꎻ筛选ꎻ定性聚合酶链式反应(PCR)ꎻ检测中图分类号:㊀S667.9㊀㊀㊀文献标识码:㊀A㊀㊀㊀文章编号:㊀1000 ̄4440(2018)05 ̄1198 ̄03EstablishmentofdetectionmethodfortransgenicpapayaWANGHeng ̄bo1ꎬ2ꎬ㊀YUZe ̄huai3ꎬ㊀XIAONai ̄yan1ꎬ2ꎬ㊀ZHANGHua1ꎬ2ꎬ㊀CHENPing ̄hua1ꎬ2(1.NationalEngineeringResearchCenterofSugarcaneꎬFujianAgricultureandForestryUniversityꎬFuzhou350002ꎬChinaꎻ2.GMOsLABofQualitySu ̄pervisionInspection&TestingCenterforSugarcaneandDerivedProductsꎬMinistryofAgricultureꎬFuzhou350002ꎬChinaꎻ3.JinshanCollegeofFujianAgricultureandForestryUniversityꎬFuzhou350002ꎬChina)㊀㊀Keywords:㊀transgenicpapayaꎻscreeningꎻqualitativepolymerasechainreaction(PCR)ꎻdetection㊀㊀番木瓜(Caricapapaya)是一种有较高食用和药用价值的草本果树ꎬ番木瓜蛋白酶广泛应用于医药㊁美容㊁日化品等行业[1]ꎮ番木瓜环斑花叶病毒(PRSV)是危害番木瓜生产的一种世界性病毒ꎬ植株受到侵染后ꎬ无法进行有效治疗ꎬ目前的化学杀菌剂不能有效控制其蔓延[2]ꎮ培育抗病品种是防治环斑花叶病毒最紧迫的任务之一ꎬ但番木瓜栽培品种中缺乏有效抗病基因资源[3]ꎮ直到1986年ꎬAbel等[4]报道了病毒基因转入寄主植物ꎬ导致植物产生抗性的现象ꎬ受此启发ꎬ育种家们开始使用转基因技术解决番木瓜抗环斑花叶病毒问题ꎬ抗环斑病毒的转基因番木瓜应运而生ꎮ目前ꎬ有3个转基因番木瓜转化事件存在ꎮ第一ꎬ20世纪90年代初夏威夷大学的Fitch等[5]ꎬ将一种环斑花叶病毒(PRSV)编码的外壳蛋白(CP)基因转入番木瓜ꎬ经过逐步杂交育种ꎬ得到了转基因番木瓜Rainbow[6]ꎬ1998年5月在夏威夷正式投入商业化生产[7]ꎮ第二ꎬ利用PRSV优势毒株Ys的复制酶(RP)基因ꎬ获得高抗Ys㊁Vb㊁Sm等株系的转基因番木瓜华农一号ꎬ于2006年获得农业部的安全生产证书[8 ̄9]ꎮ第三ꎬ将PRSVYK毒株的CP基因转入栽培品种台农2号ꎬ于2001年开始进行田间试验和生产安全评估试验[10 ̄11]ꎮ目前ꎬ针对番木瓜转基因成分筛查ꎬ还没有形成统一的检测方法ꎬ在检测相关标准中ꎬ关于胭脂碱合成酶基因启动子(NOS ̄P)和CP基因检测引物筛选和验证的相关报道较少ꎮ本研究拟针对世界上现有转基因番木瓜的CP基因和NOS ̄Pꎬ设计相应的检测引物ꎬ建立适合番木瓜转基因成分筛查的方法ꎬ为转基因标识制度的顺利执行提供技术支撑ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀试验材料转基因番木瓜(GMYK系列的16 ̄0 ̄1和Rainbow㊁华农一号)㊁转基因水稻(科丰6号㊁TT51 ̄1)㊁转基因大豆(GTS40 ̄3 ̄2㊁MON89788㊁A2704㊁A5547 ̄127)㊁转基因玉米(MON810㊁MON863㊁NK603㊁T25㊁TC1507㊁Bt11㊁Bt176㊁GA21)和非转基因番木瓜(红妃2号)等试验材料ꎬ均由农业部甘8911蔗及制品质量监督检验测试中心保存ꎮ1.2试验方法1.2.1㊀试剂㊀PCR反应试剂SYBRPremix㊁ExTaq酶㊁dNTPs㊁Buffer均购自TaKaRa公司ꎬ100bpLadderDNAmark ̄er和植物基因组提取试剂盒(DP305)购自天根生化科技(北京)有限公司ꎮ1.2.2㊀PCR检测引物㊀查阅NCBI网站上GenBank数据库中CP相关的核苷酸序列(编号为FJ467933.1㊁AF196839.1和YKX78557.1)ꎬ利用Primer5.0软件分别设计番木瓜环斑病毒CP基因和NOS ̄P的特异性检测引物ꎮ内源基因Papa ̄in检测引物采用文献[12]所述方法进行设计ꎮ试验中所用引物均由南京金丝瑞生物工程有限公司合成ꎮ1.2.3㊀PCR反应体系与程序㊀定性和定量PCR反应体系以及扩增程序参照文献[13]的方法进行设计ꎮ退火温度的优化:在梯度PCR仪上设置10个退火温度ꎬ分别为50 2ħ㊁50 7ħ㊁51 6ħ㊁52 7ħ㊁54 0ħ㊁55 4ħ㊁56 8ħ㊁58 1ħ㊁59 2ħ㊁60 0ħꎮ2㊀结果与分析2.1㊀内源基因Papain的特异性PCR扩增番木瓜果实中富含多糖㊁果胶㊁酚类等物质ꎬ极易对Taq酶的活性产生影响ꎮ通过对番木瓜内源基因Papain的检测ꎬ来判断提取DNA的质量ꎮ所有番木瓜样品均能获得与预期大小(211bp)相符的扩增产物ꎬ表明番木瓜DNA适合PCR检测ꎮ2.2㊀利用定量PCR染料法对CP基因和NOS ̄P检测引物进行验证基于CP基因的保守序列ꎬ设计5对检测引物ꎬ在相同反应条件下ꎬ依据Ct值的大小㊁熔解曲线形状及熔解曲线高度ꎬ筛选出转基因番木瓜最佳的检测引物ꎮCP ̄4引物起峰最早ꎬCt值为24.87ꎬCP ̄2引物㊁CP ̄1引物㊁CP ̄3引物㊁CP ̄5引物的Ct值分别为28.60㊁27.02㊁26.62㊁25.76ꎮ分析5对引物熔解曲线的形状ꎬ只有引物CP ̄4是典型的单峰型曲线ꎬ最适合用作CP基因的检测引物ꎬ其他引物都存在多峰现象ꎬ表明存在多个非特异性扩增片段ꎮ同时ꎬ基于NOS ̄P序列ꎬ设计了1对检测引物ꎬ进行定量PCR扩增ꎬNOS ̄P引物的熔解曲线也是典型的单峰型曲线ꎬ适合作为NOS ̄P的检测引物ꎮ2.3㊀不同退火温度下Papain、CP基因和NOS ̄P的PCR检测条件优化同种引物在不同退火温度下产生的条带间存在强弱变化ꎮ随着温度的逐渐升高ꎬPapain基因产生的特异性目的条带没有发生任何变化ꎬ说明该引物设计合理且扩增效率高ꎮNOS ̄P检测引物产生的特异性条带ꎬ随着温度的逐渐升高ꎬ目的条带逐渐减弱ꎬ当退火温度达到58.1ħ时ꎬ目的条带消失ꎬ说明该引物退火温度范围窄ꎬ扩增效率低ꎮCP基因检测引物产生的特异性目的条带ꎬ随着温度的升高逐渐增强ꎬ当退火温度为56.8~60.0ħ时ꎬ产生的目的条带亮度最强ꎮ为了防止低含量的转基因番木瓜在实际检测过程中漏检ꎬ本研究经过筛选得出ꎬPapain基因㊁CP基因和NOS ̄P的最佳退火温度分别为54.0ħ㊁58.0ħ㊁54.0ħꎮ2.4㊀CP基因和NOS ̄P检测引物特异性的PCR验证针对CP基因的特异性检测ꎬ只有转基因番木瓜16 ̄0 ̄1和Rainbow出现了预期的368bp的目的片段ꎬ华农一号未检测出目的条带ꎮ针对NOS ̄P的特异性检测ꎬ转基因番木瓜16 ̄0 ̄1㊁Rainbow和华农一号均出现了预期的173bp的目的片段ꎬ其他测试材料均未检测到任何片段ꎮ本研究的检测结果与韩建勋等[14]的结果相符ꎬ表明本研究设计与筛选的引物在不同转基因材料中具有较高的特异性ꎮ2.5㊀检测引物的灵敏度将转基因番木瓜16 ̄0 ̄1和非转基因番木瓜红妃2号的DNA溶液(初始浓度均为100ng/μl)按不同比例混合ꎬ配制成转基因番木瓜DNA相对含量为20 0%㊁5 0%㊁1 0%㊁0 5%㊁0 1%的样品ꎬ在CP基因和NOS ̄P已经优化好的退火温度58 0ħ㊁54 0ħ下进行PCR扩增ꎮ本研究筛选出的检测引物具有很高的灵敏度ꎬ在相对含量为0 1%以上的样品中均能检测出特异性目的条带ꎮ3㊀讨论中国对转基因生物及产品实行强制标识制度ꎬ因此ꎬ需要检测机构对市场上的番木瓜进行转基因成分例行监测ꎬ以维护中国消费者的选择权和知情权[15]ꎮ根据检测的靶序列差异㊁外源基因与质粒载体上的组合以及植物基因组上的整合位点ꎬ检测方法分为筛选检测㊁基因特异性检测㊁结构特异性检测㊁转化事件特异性检测[9]ꎮ一般情况下ꎬ筛选检测以启动子㊁终止子等通用元件为检测对象ꎬ初步判断是否含有外源基因ꎮ番木瓜转基因成分筛查通常以CaMV35S启动子㊁NOS ̄P㊁NOS终止子等元件为靶序列ꎮ基因特异性检测以转入的外源基因为靶基因ꎬ例如常见的目的基因㊁标记基因和抗性基因(CP㊁RP㊁GUS㊁NPTⅡ)ꎮ对于转基因番木瓜ꎬ除了华农一号转入的是RP基因外ꎬ其他转基因番木瓜转入的都是CP基因ꎬ未见关于NOS ̄P和CP基因检测引物筛选和验证的相关报道ꎮ因此ꎬ本研究对转基因番木瓜CP基因和NOS ̄P分别进行序列比对ꎬ在其保守序列上设计引物ꎬ扩大检测的覆盖范围ꎬ更好地执行转基因生物标识制度ꎮ目前ꎬ中国的转基因检测方法大部分是通过定性PCR方法对转基因生物进行判定ꎬ部分检测引物存在特异性差㊁灵敏度低的问题ꎮ加之ꎬ琼脂糖凝胶电泳分离技术的局限性ꎬ这就要求制定检测标准和筛选PCR检测引物的科研人员ꎬ不能仅停留在原有的筛选定性PCR引物上ꎬ需要向科学化㊁实用化的方向进行验证ꎮ本研究通过定量PCR染料法ꎬ对CP基因和NOS ̄P的定性检测引物进行熔解曲线分析ꎬ对9911王恒波等:转基因番木瓜检测方法的建立筛选到的引物进行特异性验证ꎬ检测结果与姜大刚等[9]㊁Wall等[12]㊁韩建勋等[14]描述的质粒载体结构相同ꎮ同时ꎬ以5种不同相对含量的转基因番木瓜为对照ꎬ检测灵敏度可以达到0 1%水平ꎮ综上所述ꎬ本研究建立的转基因番木瓜检测引物筛选方法ꎬ为现有商业化转基因番木瓜的外源基因和元件筛查检测奠定了基础ꎮ同时ꎬ也构建了转基因番木瓜的基础检测体系与方法ꎬ为转基因番木瓜标识制度的顺利执行提供了技术支撑ꎮ但是ꎬ随着转基因番木瓜转化事件的逐渐增多ꎬ现有检测方法也存在着检测参数多㊁操作繁琐㊁灵敏度低等缺点ꎮ因此ꎬ需要逐步建立起各种转基因番木瓜转化事件定性和定量的检测体系ꎬ满足未来监管的需要ꎮ参考文献:[1]㊀高艳梅ꎬ翟金玲ꎬ徐远峰ꎬ等.抗PRSV转基因番木瓜研究进展[J].安徽农学通报ꎬ2009ꎬ15(3):36 ̄38.[2]㊀张雨良ꎬ黄启星ꎬ朱丽娣ꎬ等.海南地区番木瓜花叶病病原的分子鉴定与多样性分析[J].植物研究ꎬ2014ꎬ34(5):694 ̄699. [3]㊀饶雪琴ꎬ李华平.转基因番木瓜研究进展[J].中国生物工程杂志ꎬ2004ꎬ24(6):38 ̄42.[4]㊀ABELPPꎬNELSONRSꎬDEBꎬetal.Delayofdiseasedevelop ̄mentintransgenicplantsthatexpressthetobaccomosaicviruscoatproteingene[J].Scienceꎬ1986ꎬ232(4751):738 ̄743. [5]㊀FITCHMMMꎬMANSHARDTRMꎬGONSALVESDꎬetal.TransgenicpapayaplantsfromAgrobacterium ̄mediatedtransforma ̄tionofsomaticembryos[J].PlantCellReportsꎬ1993ꎬ12(5):245 ̄249.[6]㊀方静平.基因枪遗传转化对番木瓜基因组结构和功能的影响[D].福州:福建农林大学ꎬ2016.[7]㊀TENNANTPꎬFERMINGꎬFITCHMMꎬetal.PapayaringspotvirusresistanceoftransgenicRainbowandSunUpisaffectedbygenedosageꎬplantdevelopmentꎬandcoatproteinhomology[J].EuropeanJournalofPlantPathologyꎬ2001ꎬ107(6):645 ̄653. [8]㊀RUANXꎬLIHꎬZHOUG.EvaluationofPRSVresistanceofT2transgenicpapayawithreplicasegene[J].JournalofSouthChinaAgriculturalUniversityꎬ2004ꎬ25(4):12 ̄15.[9]㊀姜大刚ꎬ周㊀峰ꎬ姚㊀涓ꎬ等.转基因番木瓜 华农一号 事件特异性定性PCR检测方法的建立[J].华南农业大学学报ꎬ2009ꎬ30(1):37 ̄41.[10]CHENGYHꎬYEHSD.Constructionandevaluationoftransgenictobaccoplantsexpressingthecoatproteingeneofpapayaringspotviruswithdifferenttranslationleaders[J].BotanicalBulletinofAcademiaSinicaꎬ2000ꎬ41:1 ̄10.[11]BAUHJꎬCHENGYHꎬYUTAꎬetal.Fieldevaluationoftrans ̄genicpapayalinescarryingthecoatproteingeneofPapayaringspotvirusinTaiwan[J].PlantDiseaseꎬ2004ꎬ88(6):594 ̄599. [12]WALLEMꎬLAWRENCETSꎬGREENMJꎬetal.DetectionandidentificationoftransgenicvirusresistantpapayaandsquashbymultiplexPCR[J].EuropeanFoodResearchandTechnologyꎬ2004ꎬ219(1):90 ̄96.[13]王恒波ꎬ陈平华ꎬ陈如凯.转基因植物及其产品PCR检测引物的筛选研究[J].热带农业科学ꎬ2010ꎬ30(11):10 ̄14. [14]韩建勋ꎬ陈红运ꎬ邓婷婷ꎬ等.抗病毒转基因番木瓜的实时PCR检测[J].检验检疫学刊ꎬ2010ꎬ20(1):15 ̄20.[15]王立平ꎬ王㊀东ꎬ龚熠欣ꎬ等.国内外转基因农产品食用安全性研究进展与生产现状[J].中国农业科技导报ꎬ2018ꎬ20(3):94 ̄103.(责任编辑:王㊀妮)0021江苏农业学报㊀2018年第34卷第5期。
转基因番木瓜55-1品系的环介导等温扩增检测方法的建立
番木 瓜 又称 木瓜 、乳 瓜 、万 寿果 ,是 常见 的 热 带 水果 ,具有 丰 富 的 营养价 值 。然 而 ,由于番 木瓜 易 受 到 环 斑 病 毒 (papaya ring spot virus,PRSV)的 感 染影 响 产 量 ,从 而严 重制 约 了番 木瓜 的产业 化 发 展 。Event 55一l 品 系是 美 国康 奈 尔 大 学 、夏威 夷 大学 同 UpJohn公司合作 ,将 PRSV HA5—1株系的 衣壳蛋 白(coat protein,cp)基因转入番木瓜 中 ,培 育 出 的 对 PRSV 具 抗 性 的 转 基 因 番 木 瓜 品 系 ¨1]。
Abstract The purpose of the study is to develop an loop-mediated isothermal amplification(LAMP)technique for the detection of genetically modified papaya line 55-1.Five sets of L A MP pr imers were designed according to the specif ic sequences of genetically modified papaya line 55-1, and pr imers with high amplif ication ef i ciency were screened.The LAMP reaction temperature and reaction system of the set of pr imers were optimized, and the specif icity, sensitivity and stability of the LAMP method were deter m ined.The results indicated that the set of LAMP primers could detect genetically modified papaya line 55—1 specif ically and stably, with a sensitivity of 0.05% and a detection result within 30 min.Therefore. the LAMP method can efectively detect the genetically modif ied papaya line 55—1, which not only simplifies the detection steps, but also sho ̄ens the detection time, and provides technical suppo ̄ for the rapid detection of transgenic papaya. Key words genetically modified papaya line 55-1; loop mediated isothermal amplif ication; specif ic detection doi 10.3969 ̄.issn.1000—2561.2018.02.015
医药学-抗环斑病毒转基因番木瓜55-1的PCR检测
医药学-抗环斑病毒转基因番木瓜55-1的PCR检测作者:杨冬燕,杨永存,邓平【关键词】 ,转基因;番木瓜55-1;摘要: 目的建立对抗环斑病毒转基因番木瓜55-1进行品系鉴定的检测方法。
方法采用改良十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)法及试剂盒方法进行番木瓜基因组DNA 提取,根据番木瓜管家Papain基因和抗环斑病毒转基因番木瓜55-1品系的外源结构基因(35S-GUS)和调控基因(NOS-35S)序列设计合成特异性检测引物,采用PCR技术对抗环斑病毒转基因番木瓜55-1进行品系鉴定。
结果内源Papain基因PCR扩增结果表明,改良CTAB法及试剂盒方法都可用于番木瓜种籽及果肉的DNA提取。
实验中合成的引物及建立的PCR反应体系、反应参数能特异性地扩增转基因番木瓜55-1的外源基因35S-GUS序列和NOS-35S序列。
该方法的绝对检测低限为815×10-2ng,相对检测低限为014,。
结论本检测方法有较高的稳定性,能有效地对转基因番木瓜55-1进行品系鉴定,该方法的检测灵敏度可完全满足转基因食品标识管理定性检测的需要。
关键词: 转基因;番木瓜55-1;PCRPCR for event-specific detection of transgenic virus resistant papaya 55-1Abstract: Objective PCR assay was developed for event-specific detection of transgenic virus resistant papaya 55-1.Methods A developed Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide(CTAB) method and Qiagen DNeasy plant mini kit were used to extract DNA from papaya seed and fruit.Specific primers for PCR detection of papaya 55-1 were designed to amplify endogenous papain gene sequence and external segments,35S-GUS and NOS-35S,and corresponding detection methods were developed.Results Results of PCR amplification of papain gene indicated that both the developed CTAB method and Qiagen DNeasy plant mini kit were useful for DNA extraction from papaya seed and fruit.Results of amplification of the external segments (35S-GUS and NOS-35S) indicated that the developed method was useful to detect the transgenic virus resistant papaya line 55-1,and the absolute and relative limit of detection (LOD)of the method got to 8.15×10-2 ng and 0.14% respectively.Conclusion The developed PCR method can detect transgenic virus resistant papaya 55-1 specially and detective sensitivity can satisfy the need of qualitative detection for genetically modified foods.Key words: genetically modified;papaya 55-1;PCR 番木瓜属热带亚热带重要水果,为有效控制番木瓜环斑病毒(PRSV)对番木瓜产业的威胁,1998年世界上第1个转基因番木瓜品系――抗环斑病毒转基因番木瓜55-1在美国和加拿大获准商业种植〔1,2〕。
数字_PCR_和荧光定量PCR_检测转基因番木瓜中外源基因拷贝数方法的建立及其应用
热带作物学报2024, 45(4): 663 673Chinese Journal of Tropical Crops数字PCR和荧光定量PCR检测转基因番木瓜中外源基因拷贝数方法的建立及其应用谢秀菊1,2,夏启玉1*,刘帅4,麦贤俊3,贾瑞宗1,郭安平1,徐志胜2,李峰4,孔祥义3**,赵辉1**1. 中国热带农业科学院三亚研究院/中国热带农业科学院热带生物技术研究所/海南省南繁生物安全与分子育种重点实验室,海南三亚 572024;2. 南京农业大学,江苏南京 210095;3. 三亚市热带农业科学院,海南三亚 572022;4. 山东舜丰生物科技有限公司,山东济南 250300摘要:传统的检测转基因植物中外源基因拷贝数的方法是Southern杂交,该方法成本高、周期长,难以满足高通量检测外源基因拷贝数的育种需求,因此,本研究旨在建立快速且高通量检测转基因番木瓜中外源基因拷贝数的方法。
本研究从番木瓜基因组中筛选出2个单拷贝基因Cpa03g018830和Cpa03g018770,以已知外源基因为单拷贝整合的转基因番木瓜为参照,利用数字PCR鉴定其拷贝数,进一步以其为内参基因,以番木瓜转基因育种常用的筛选标记基因NPTⅡ为外源目的基因,建立利用数字PCR和荧光定量PCR技术检测转基因番木瓜中外源基因拷贝数的方法。
结果表明:Cpa03g018830和Cpa03g018770均为单拷贝基因;建立的数字PCR方法对转基因番木瓜中的外源基因拷贝数的检测准确可靠,而荧光定量PCR对转基因番木瓜中外源基因单低拷贝整合的检测准确度较高,对外源基因多拷贝整合的检测准确度则较低,因此,荧光定量PCR适合用来在大量转基因植株中初筛出单低拷贝整合的植株。
本研究鉴定的单拷贝基因Cpa03g018830和Cpa03g018770可作为转基因番木瓜中外源基因拷贝数检测的内参基因,且建立的利用数字PCR和荧光定量PCR技术检测转基因番木瓜中外源基因拷贝数的方法,操作简单,速度快,适合批量检测,可为番木瓜转基因抗病育种中单低拷贝株系的选育提供新的方法。
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转基因番木瓜检测方法的建立
作者:王恒波余泽怀肖乃衍张华陈平华
来源:《江苏农业学报》2018年第05期
关键词:转基因番木瓜;筛选;定性聚合酶链式反应(PCR);检测
中图分类号:S667.9
文献标识码:A
文章编号: 1000-4440(2018) 05-1198-03
番木瓜(Carica papaya)是一种有较高食用和药用价值的草本果树,番木瓜蛋白酶广泛应用于医药、美容、日化品等行业。
番木瓜环斑花叶病毒(PRSV)是危害番木瓜生产的一种世界性病毒,植株受到侵染后,无法进行有效治疗,目前的化学杀菌剂不能有效控制其蔓延。
培育抗病品种是防治环斑花叶病毒最紧迫的任务之一,但番木瓜栽培品种中缺乏有效抗病基因资源。
直到1986年,Abel等报道了病毒基因转入寄主植物,导致植物产生抗性的现象,受此启发,育种家们开始使用转基因技术解决番木瓜抗环斑花叶病毒问题,抗环斑病毒的转基因番木瓜应运而生。
目前,有3個转基因番木瓜转化事件存在。
第一,20世纪90年代初夏威夷大学的Fitch 等,将一种环斑花叶病毒(PRSV)编码的外壳蛋白(CP)基因转入番木瓜,经过逐步杂交育种,得到了转基因番木瓜Rainbow,1998年5月在夏威夷正式投入商业化生产。
第二,利用PRSV优势毒株Ys的复制酶(RP)基因,获得高抗Ys、Vb、Sm等株系的转基因番木瓜华农一号,于2006年获得农业部的安全生产证书。
第三,将PRSV YK毒株的CP基因转入栽培品种台农2号,于2001年开始进行田间试验和生产安全评估试验。
目前,针对番木瓜转基因成分筛查,还没有形成统一的检测方法,在检测相关标准中,关于胭脂碱合成酶基因启动子(NOS-P)和CP基因检测引物筛选和验证的相关报道较少。
本研究拟针对世界上现有转基因番木瓜的CP基因和NOS-P,设计相应的检测引物,建立适合番木瓜转基因成分筛查的方法,为转基因标识制度的顺利执行提供技术支撑。
1 材料与方法
1.1 试验材料
转基因番木瓜(GMYK系列的16-0-1和Rainbow、华农一号)、转基因水稻(科丰6号、TT51-1)、转基因大豆(GTS40-3-2、MON89788、A2704、A5547-127)、转基因玉米(MON810、MOIN863、NK603、T25、TC1507、Btll、Bt176、GA21)和非转基因番木瓜(红妃2号)等试验材料.均由农业部甘蔗及制品质量监督检验测试中心保存。
1.2 试验方法
1.2.1 试剂 PCR反应试剂SYBR Premix、ExTaq酶、dNTPs、Buffer均购自TaKaRa公司,100 bp Ladder DNA mark-er和植物基因组提取试剂盒(DP305)购自天根生化科技(北京)有限公司。
1.2.2 PCR检测引物查阅NCBI网站上GenBank数据库中CP相关的核苷酸序列(编号为FJ467933.1、AF196839.1和YK X78557.1),利用Primer5.O软件分别设计番木瓜环斑病毒CP 基因和NOS-P的特异性检测引物。
内源基因Papa-in检测引物采用文献所述方法进行设计。
试验中所用引物均由南京金丝瑞生物工程有限公司合成。
1.2.3 PCR反应体系与程序定性和定量PCR反应体系以及扩增程序参照文献的方法进行设计。
退火温度的优化:在梯度PCR仪上设置10个退火温度,分别为50.2℃、50.7℃、
51.6℃、52.7℃、54.0℃、55.4℃、56.8℃、58.1℃、59.2℃、60.O℃。
2 结果与分析
2.1 内源基因Papain的特异性PCR扩增
番木瓜果实中富含多糖、果胶、酚类等物质,极易对Taq酶的活性产生影响。
通过对番木瓜内源基因Papain,的检测,来判断提取DNA的质量。
所有番木瓜样品均能获得与预期大小(211bp)相符的扩增产物,表明番木瓜DNA适合PCR检测。
2.2 利用定量PCR染料法对CP基因和NOS-P检测引物进行验证
基于CP基因的保守序列,设计5对检测引物,在相同反应条件下,依据Ct值的大小、熔解曲线形状及熔解曲线高度,筛选出转基因番木瓜最佳的检测引物。
CP-4引物起峰最早,Ct 值为24.87,CP-2引物、CP-1引物、CP-3引物、CP-5引物的Ct值分别为28.60、27.02、26.62、25.76。
分析5对引物熔解曲线的形状,只有引物CP-4是典型的单峰型曲线,最适合用作CP基因的检测引物,其他引物都存在多峰现象,表明存在多个非特异性扩增片段。
同时,基于NOS-P序列,设计了1对检测引物,进行定量PCR扩增,NOS-P引物的熔解曲线也是典型的单峰型曲线,适合作为NOS-P的检测引物。
2.3 不同退火温度下Papain、CP基因和NOS-P的PCR检测条件优化
同种引物在不同退火温度下产生的条带间存在强弱变化。
随着温度的逐渐升高,Papain基因产生的特异性目的条带没有发生任何变化,说明该引物设计合理且扩增效率高。
NOS-P检测引物产生的特异性条带,随着温度的逐渐升高,目的条带逐渐减弱,当退火温度达到58.1℃时,目的条带消失,说明该引物退火温度范围窄,扩增效率低。
CP基因检测引物产生的特异性目的条带,随着温度的升高逐渐增强,当退火温度为56.8~60.O℃时,产生的目的条带亮度
最强。
为了防止低含量的转基因番木瓜在实际检测过程中漏检,本研究经过筛选得出,Papain,基因、CP基因和NOS-P的最佳退火温度分别为54.O℃、58.0℃、54.0℃。
2.4 CP基因和NOS-P检测引物特异性的PCR验证
针对CP基因的特异性检测,只有转基因番木瓜16-0-1和Rainbow出现了预期的368 bp的目的片段,华农一号未检测出目的条带。
针对NOS-P的特异性检测,转基因番木瓜16-0-1、Rainbow和华农一号均出现了预期的173 bp的目的片段,其他测试材料均未检测到任何片段。
本研究的检测结果与韩建勋等的结果相符,表明本研究设计与筛选的引物在不同转基因材料中具有较高的特异性。
2.5 检测引物的灵敏度
将转基因番木瓜16-0-1和非转基因番木瓜红妃2号的DNA溶液(初始浓度均为100
ng/μl)按不同比例混合,配制成转基因番木瓜DNA相对含量为20.0%、5.0%、1.0%、0.5%、0.1%的样品,在CP基因和NOS-P已经优化好的退火温度58.0℃、54.0℃下进行PCR扩增。
本研究筛选出的检测引物具有很高的灵敏度,在相对含量为0.1%以上的样品中均能检测出特异性目的条带。
3 讨论
中国对转基因生物及产品实行强制标识制度,因此,需要检测机构对市场上的番木瓜进行转基因成分例行监测,以维护中国消费者的选择权和知情权。
根据检测的靶序列差异、外源基因与质粒载体上的组合以及植物基因组上的整合位点,检测方法分为筛选检测、基因特異性检测、结构特异性检测、转化事件特异性检测。
一般情况下,筛选检测以启动子、终止子等通用元件为检测对象,初步判断是否含有外源基因。
番木瓜转基因成分筛查通常以CaMV35S启动子、NOS-P、NOS终止子等元件为靶序列。
基因特异性检测以转入的外源基因为靶基因,例如常见的目的基因、标记基因和抗性基因(CP、RP、GUS、NPTⅡ)。
对于转基因番木瓜,除了华农一号转入的是RP基因外,其他转基因番木瓜转入的都是CP基因,未见关于NOS-P和CP基因检测引物筛选和验证的相关报道。
因此,本研究对转基因番木瓜CP基因和NOS-P分别进行序列比对,在其保守序列上设计引物,扩大检测的覆盖范围,更好地执行转基因生物标识制度。
目前,中国的转基因检测方法大部分是通过定性PCR方法对转基因生物进行判定,部分检测引物存在特异性差、灵敏度低的问题。
加之,琼脂糖凝胶电泳分离技术的局限性,这就要求制定检测标准和筛选PCR检测引物的科研人员,不能仅停留在原有的筛选定性PCR引物上,需要向科学化、实用化的方向进行验证。
本研究通过定量PCR染料法,对CP基因和NOS-P的定性检测引物进行熔解曲线分析,对筛选到的引物进行特异性验证,检测结果与姜大刚等、Wall等、韩建勋等描述的质粒载体结构相同。
同时,以5种不同相对含量的转基因番木瓜为对照,检测灵敏度可以达到0.1%水平。
综上所述,本研究建立的转基因番木瓜检测引物筛选方法,为现有商业化转基因番木瓜的外源基因和元件筛查检测奠定了基础。
同时,也构建了转基因番木瓜的基础检测体系与方法,为转基因番木瓜标识制度的顺利执行提供了技术支撑。
但是,随着转基因番木瓜转化事件的逐渐增多,现有检测方法也存在着检测参数多、操作繁琐、灵敏度低等缺点。
因此,需要逐步建立起各种转基因番木瓜转化事件定性和定量的检测体系,满足未来监管的需要。