高效液相色谱法测定8个彩色马铃薯品种中花青素种类和含量
食品中花青素的含量测定与分析
食品中花青素的含量测定与分析食品中的花青素,作为一类天然色素,不仅能为食品增添色彩,提升观赏性,还具有多种对人体健康有益的功效。
而如何准确测定食品中花青素的含量,对于产品质量控制和营养价值评估具有重要意义。
一、花青素的简介花青素是一类存在于植物中的天然色素,在生命界中分布广泛,具有深浅不一的紫红色。
它们是由芳香稠环结构苯丙基酮环和醌环的结构单元通过茄乙酸途径合成的。
花青素具有很强的抗氧化作用,对预防心血管疾病、癌症以及抗衰老等方面具有积极作用。
二、花青素含量测定方法介绍测定食品中的花青素含量可以利用多种分析方法,常用的包括高效液相色谱法(HPLC)、紫外光谱法、比色法等。
这些方法各有优缺点,需要根据实际需要和样品特性选择适合的方法。
1. 高效液相色谱法(HPLC)HPLC是目前应用较广的分析方法之一,其原理是利用色谱柱对样品进行分离和纯化,并通过检测器检测某一波长下的吸光度或荧光强度。
这种方法具有分离效果好、灵敏度高、准确性高等特点,但需要较专业的设备和技术来操作。
2. 紫外光谱法紫外光谱法是利用不同波长下的吸收光谱来测定花青素含量的方法。
通过对设置不同波长下的吸光度进行测定,可以得到样品中花青素的含量。
这种方法简单易行,但对于含量较低的样品灵敏度较低,且无法区分不同种类的花青素。
3. 比色法比色法是利用花青素与一定试剂发生反应后形成有色产物,通过测定其吸光度来测定花青素的含量。
这种方法操作简便,成本较低,适用范围广,但受样品干扰较大,精确度相对较低。
三、花青素含量测定实验步骤为了更好地测定食品样品中花青素的含量,下面简要介绍一下实验步骤。
1. 样品制备:将待测样品进行制备和处理,如搅拌、研磨、加热等操作,以获得均匀的样品溶液或提取物。
2. 适当稀释:根据样品的浓度和分析方法的需求,适当稀释样品,并留取适量的样品溶液。
3. 实验操作:根据选择的分析方法,进行相应的实验操作,如HPLC的进样、流动相选择和梯度 elution,紫外光谱法和比色法的试剂添加和颜色反应等。
超高效液相色谱―高分辨质谱法快速筛查土豆中的多种农药残留
超高效液相色谱―高分辨质谱法快速筛查土豆中的多种农药残留1引言农药残留问题一直受到全球关注,各国在严格限制高毒农药使用的同时,加强了农药残留限量标准的制定。
我国最新颁布的GB 27632012《食品中农药最大残留限量》在食品品种及限量方面均提出了更高要求。
尽管如此,我国出口农产品常因农药残留超标而影响国际贸易。
而且,因农药残留引起的食物中毒事件时有发生[1,2]。
因此,建立农产品中农药多残留的快速筛查方法十分必要。
目前,常采用多残留分析技术开展食品及农产品中农药残留检测[3],应用的主要方法有气相色谱/质谱法[4~6]及液相色谱/质谱法[7~9],且为保证检测方法的特异性,多采用串联质谱技术。
但是,由于食物样品基质的复杂性,在多组分残留分析中,低分辨质谱常出现假阳性,造成结果误判。
四级杆飞行时间质谱(Q TOF)和静电场轨道阱高分辨质谱(Orbitrap)的发展在很大程度上弥补了这个缺陷,被广泛应用于农药残留的快速筛查[10~13]。
普通高分辨质谱虽能降低假阳性结果,但其定量灵敏度不及三重四级杆质谱。
Q Exactive高分辨质谱是将四级杆与Orbitrap相结合,在一定程度上改善了高分辨质谱的定量效果,因此,采用这一技术不仅提高了农药残留定性筛查的可靠性,同时可以获得具有较高灵敏度的定量结果[14]。
目前,Q Exactive主要应用在蛋白质组学的研究领域[15,16],在小分子化学污染物的分析应用上还相对较少,其良好的应用前景值得关注[12,17]。
本研究以欧盟2013年土豆考核样品(EUPTFV15)中规定的175种农药组分为对象,采用Q Exactive高分辨质谱作为筛查手段,建立了农药多残留的快速筛查方法。
2实验部分2.1仪器与试剂Q Exactive四级杆静电场轨道阱高分辨质谱系统及Dionex UltiMate 3000快速高效液相色谱系统(美国ThermoFisher公司);氮吹仪(美国Organomation公司);涡旋混合器(美国Scientific Industries公司);旋转蒸发仪(日本Eyela公司)。
彩色马铃薯品种块茎花色苷HPLC-MS分析
A b s t r a c t : P i g m e n t e d p o t a t o( S o l a n u m t u b e r o s u m L . ) w h i c h c o n t a i n s p l e n t i f u l a n t h o c y a n i n s i s a p o t e n t i a l
Y u n n a n p r o v i n c e w e r e a n a l y z e d b y t h e j o i n t me t h o d s o f H i g h P e r f o ma r n c e L i q u i d C h r o ma t o g r a p h y a n d Ma s s S p e c t r o m e t r y( H P L C — MS ) . T h e r e s u l t s i n d i c a t e d t h a t t h e m a i n c o m p o s i t i o n o f a n t h o c y a n i n s i n l a n d r a c e J C H
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高效液相色谱快速检测8种合成着色剂的改进方法
高效液相色谱快速检测8种合成着色剂的改进方法摘要】建立了高效液相色谱法同时测定食品中8种合成着色剂(柠檬黄、新红、苋菜红、胭脂红、日落黄、诱惑红、亮蓝、赤藓红)的方法。
样品经乙醇.氨水.水溶液前处理,经ZORBAXSB.C18(250mm×4.6mm,5μm)色谱柱分离,以甲醇和0.02mol/L的乙酸铵为流动相,进行梯度洗脱,用紫外检测器设定波长程序,分别在450nm、490nm、600nm波长处检测,8种物质的线性相关系数大于0.999,方法检出限为0.026~0.090μg/mL。
8种合成着色剂的回收率范围在63.4%~101.2%之间,RSD(n=6)范围在1.14~6.26之间,满足食品中合成着色剂含量的检测需要。
【关键词】高效液相色谱法[合成着色剂[食品[检测为了改善食品的色泽,人们常常在加工食品的过程中添加着色剂,以改善感官性质,增加食欲[1]。
与天然色素相比,合成着色剂具有色泽鲜艳、着色力强、性质稳定和价格便宜等优点,但人工合成着色剂多为偶氮化合物,具有一定毒性,若使用不当会危害人体健康。
许多国家和地区已对其使用范围、限量及相关的检测方法做了明确的规定[2.3]。
目前,我国已批准使用的合成食用色素有21种,常用的有苋菜红、胭脂红、诱惑红、新红、柠檬黄、靛蓝、日落黄及亮蓝等,这些合成着色剂被广泛应用于饮料、雪糕、糖果、糕点、果酱、调料、火腿、罐头等食品[4]。
但是,在经济利益驱使下,我国食品中人工合成着色剂的超标、超范围使用现象屡禁不止。
目前国家标准中给出的最佳方法是高效液相色谱法[5],但其样品前处理技术是聚酰胺粉的吸附与解吸附方法,步骤繁琐,易造成损失[6],样品经乙醇.氨水.水溶液提取后,蒸干耗时过长。
并且使用紫外检测器于254nm波长下测定,无法顾及到不同组分的最大吸收波长[7],且在紫外区域很多杂质都有吸收,干扰严重。
本文采用快速液相色谱、VWD多波长检测法,在可见光区域进行测定,不仅缩短了检测时间,提高了灵敏度,扩大了检测范围,而且大大简化了前处理方法。
花青素检测内容和方法
花青素检测内容和方法花青素是一类存在于植物中的天然化合物,主要包括类黄酮和花色素。
它们在植物生长和发育过程中起着重要的作用,同时也赋予了植物丰富多彩的颜色。
花青素不仅是植物界的重要色素,在医学和食品工业中也有广泛的应用。
因此,准确地检测花青素成分以及其含量是很重要的。
本文将介绍花青素检测的内容和方法。
花青素的检测内容主要包括两个方面:一是对花青素种类进行鉴定和分析,二是对花青素的含量进行测定。
花青素种类的鉴定和分析是通过不同的分析技术来实现的,包括高效液相色谱法、气相色谱法、质谱法等。
这些技术能够对花青素分子的结构进行分析,确定其种类和含量。
而花青素的含量测定则是通过比色法、分光光度法、高效液相色谱法等方法来实现的。
花青素的含量测定是花青素分析的重要环节之一。
其中,比色法是最常用的一种方法。
它基于花青素的分子结构中具有强吸收光谱特性的特点,通过测定花青素溶液的吸光度来确定其含量。
这种方法简单、快速、准确,适用于大多数花青素的含量测定。
分光光度法也是常用的一种方法,通过比较样品与对照样品的吸光度来确定花青素的含量。
这种方法对样品要求较高,但具有较高的灵敏度和准确性。
而高效液相色谱法是一种较为复杂的方法,它通过测定样品中花青素的相对峰面积来计算花青素的含量。
这种方法适用于含有多种花青素的样品,对花青素种类和含量的鉴定和测定更为准确。
花青素检测的方法是根据不同的检测目的和样品条件选择的。
常用的方法有以比色法为基础的光度法、分光光度法和高效液相色谱法等。
下面将详细介绍这几种方法的原理和操作步骤。
比色法是最常用的方法之一,它是通过测定花青素溶液对特定波长的光吸收来确定花青素的含量。
其基本原理是,花青素分子中的色团使溶液对特定波长的光具有吸收能力,通过测量溶液的吸光度来确定花青素的含量。
具体操作步骤如下:1. 准备样品和对照溶液。
样品溶液是待测花青素样品的溶液,对照溶液是不含花青素的纯溶剂。
两者的浓度应相同。
彩色马铃薯新品种(系)品比试验
彩色马铃薯新品种(系)品比试验吴承金;宋威武;陈火云;颜学明【摘要】2018年在湖北省恩施市进行彩色马铃薯(Solanum tuberosum L.)新品种(系)比较试验,以黑美人品种为对照,对8个新品种(系)的主要农艺性状、抗病性、花青素含量及营养物质含量进行对比分析评价.结果表明,新品系11AO52-58、11AO54-3、13AO2-3的产量、营养物质含量、植株抗病性等综合性状表现较好,可在恩施州高山及二高山地区进行多点生产试验和示范种植.新品系11AO54-31花青素含量高达92.2 mg/100 g,可作为高花青素含量品种选育的亲本加以利用.【期刊名称】《湖北农业科学》【年(卷),期】2019(058)010【总页数】6页(P13-17,21)【关键词】彩色马铃薯(Sola numtuberosum L.);品种(系);品比试验;花青素【作者】吴承金;宋威武;陈火云;颜学明【作者单位】湖北恩施中国南方马铃薯研究中心,湖北恩施 445000;农业部华中薯类科学观测实验站,湖北恩施 445000;湖北省农业科技创新中心鄂西综合试验站,湖北恩施 445000;湖北恩施中国南方马铃薯研究中心,湖北恩施 445000;农业部华中薯类科学观测实验站,湖北恩施 445000;湖北省农业科技创新中心鄂西综合试验站,湖北恩施 445000;湖北恩施中国南方马铃薯研究中心,湖北恩施 445000;农业部华中薯类科学观测实验站,湖北恩施 445000;湖北省农业科技创新中心鄂西综合试验站,湖北恩施 445000;湖北恩施中国南方马铃薯研究中心,湖北恩施 445000;农业部华中薯类科学观测实验站,湖北恩施 445000;湖北省农业科技创新中心鄂西综合试验站,湖北恩施 445000【正文语种】中文【中图分类】S532彩色马铃薯(Solanum tuberosum L.)是一类表皮或薯肉为红色、紫色、黑色等颜色较深的马铃薯类型。
气相色谱法测定土豆中8种有机氯农药残留
由于 土豆 生长在 地下 土壤 中 ,残 留 于土壤 的农 药会被 土 豆吸 收 ,同时 土 豆 病 虫害 的防 治在 一 定 程 度 上 也依 赖 于 农 药 ,其残 留给 大 气 和 土壤 带 来 了 严 重 的影 响【 。因 此 ,建 立 一 种 快速 、准 确 测 定 土 豆 中有 机 氯 多农 药 残 留 检测 方 法 具 有 重要 意义 。 1 材 料 与方法 1.1 仪 器 与 试 剂
0.05—1.00 mgCL f or 8 orga nochlorine pesticides with correlation coef icients not less tha n O.999 57.The spiked recoveries ranged from 83.1% to 106.5% with RSD s(n=7)in the range of 2.8%-9.7%.Th e method was quick,sensitive an d easy in operation.
column after being extracted with acetonitrile and cleaned up by solid-phase f lorisil column. nle pesticides were detected with ECD detector.A matr ix
彩色马铃薯块茎花色素苷分析测定
彩色马铃薯块茎花色素苷分析测定胡艳梅;孟然然;李周;王兆富;郝大海;李灿辉【摘要】彩色马铃薯是天然色素的潜在来源之一.本试验综合利用紫外/可见光谱法和pH示差法,初步定性和定量分析了6个彩色马铃薯品种块茎的花色素苷.结果表明,不同颜色马铃薯块茎花色素苷的类型和含量不同.紫色马铃薯师大6号和小乌洋芋的主要花色素苷为锦葵色素-3-葡萄糖苷,含量分别为1.086和0.376 mg/g·FW.红色品种的主要花色素苷为天竺葵色素-3-葡萄糖苷,含量为0.159 ~0.873mg/g· FW.同一品种块茎不同组织的花色素苷含量存在明显差异.基于上述结果,对花色素苷的简易测定方法进行了简要的分析和讨论.%The colorful potato is one of the potential resources of natural colorants.The anthocyanin in six colorful potato cultivars/landraces were qualitatively and quantitatively analyzed by a combination of spectrophotometric method and pH differential method.The results showed that the type and content of anthocyanins was different among the different potatocultivars/landraces.Malvidin-3-glycoside was the major component of anthocyanins in the purple-fleshed cultivars including the Shida No.6 and the little black potato,which the amount was 1.086and 0.376mg/g · FW,respectively.Pelargonidin-3-glycoside was the major component of anthocyanins in the red-skin/fleshedcultivars/landraces,which the amount was ranged from 0.159 to 0.873mg/g· FW.In addition,anthocyanin contents was significant difference in the different parts of one tuber.Based on the above results,a rapid and simple method for anthocyanin determination was discussed at the last.【期刊名称】《西南农业学报》【年(卷),期】2013(026)003【总页数】7页(P950-956)【关键词】彩色马铃薯;花色素苷;定性分析;定量分析【作者】胡艳梅;孟然然;李周;王兆富;郝大海;李灿辉【作者单位】云南师范大学薯类作物研究所,云南昆明650500;云南师范大学薯类作物研究所,云南昆明650500;云南师范大学薯类作物研究所,云南昆明650500;云南师范大学薯类作物研究所,云南昆明650500;云南师范大学薯类作物研究所,云南昆明650500;云南师范大学薯类作物研究所,云南昆明650500【正文语种】中文【中图分类】S532马铃薯(Solanum tuberosum L.)是仅次于水稻、玉米和小麦的第4 大农作物。
高效液相色谱法测定花青素的原理
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彩色马铃薯花青素研究进展
彩色马铃薯花青素研究进展彩色马铃薯是一种富含天然花青素的食物,其研究受到了人们的广泛关注。
花青素是一类天然色素,具有抗氧化、抗炎、抗肿瘤等多种生物活性。
彩色马铃薯中含有丰富的花青素,对人体健康有着重要的保健作用。
近年来,关于彩色马铃薯花青素的研究也在不断取得新的进展,本文将对彩色马铃薯花青素研究的进展做一简要介绍。
彩色马铃薯花青素的种类及其作用彩色马铃薯中富含的花青素种类主要有花青素和类黄酮。
花青素包括花青苷、芹菜素和花椒素等,类黄酮主要有山奈酚、槲皮素等。
这些花青素具有多种生物活性,如抗氧化、抗炎、抗菌、抗肿瘤、降血糖、降血脂等作用,对人体健康有着重要的影响。
1. 彩色马铃薯花青素的营养价值彩色马铃薯中富含的花青素具有很高的营养价值,人们通过研究发现,花青素可以抑制肿瘤细胞的增殖,对预防癌症具有一定的作用。
花青素还可以降低血糖、降低血脂,对预防糖尿病和心血管疾病有重要的意义。
彩色马铃薯花青素的营养价值备受关注。
彩色马铃薯中富含的花青素具有多种生物活性。
花青苷是一种非常有效的抗氧化剂,可以清除体内自由基,延缓细胞老化,预防多种疾病。
芹菜素和花椒素等成分也具有抗菌、抗炎、抑制肿瘤等作用,对人体健康有着重要的保健作用。
近年来,彩色马铃薯花青素的应用研究也取得了一定的进展。
科研人员通过提取彩色马铃薯中的花青素,制备成各种保健食品和保健品,在降血糖、降血脂、抗氧化、抗炎等方面发挥作用。
彩色马铃薯花青素还可以用于食品加工,增加食品的营养价值,提高食品的抗氧化能力,受到了食品行业的重视。
尽管彩色马铃薯花青素具有多种生物活性,但其安全性一直是科研人员关注的焦点之一。
近年来,越来越多的研究表明,适量摄入彩色马铃薯花青素对人体健康是安全的,不会对人体产生不良影响。
在使用彩色马铃薯花青素相关产品时,还需注意合理用量,选择正规渠道购买,以确保产品的安全性。
彩色马铃薯花青素研究进展
彩色马铃薯花青素研究进展彩色马铃薯是指颜色不同于传统土豆的马铃薯品种,其颜色主要来源于其所含的花青素。
花青素是一类重要的鲜艳色素,广泛存在于植物中,对人类健康具有多种益处。
近年来,研究人员对彩色马铃薯和花青素进行了广泛研究,取得了一系列的成果。
本文将对此进行综述。
一、彩色马铃薯的分类和营养特点彩色马铃薯可分为紫色、蓝色、红色和黄色四种类型。
其中,紫色马铃薯是指外皮呈深紫色或紫红色,内部为浅黄色或白色,富含花青素;蓝色马铃薯指外皮呈蓝色或青灰色,内部为浅黄色或白色,同样含有花青素;红色马铃薯指外皮为红色,内部为黄色或白色,也含有花青素;黄色马铃薯则是指外皮和内部都呈黄色,花青素含量较低。
与传统土豆相比,彩色马铃薯具有更高的抗氧化性能和营养价值。
其所含的花青素具有降低胆固醇、保护心血管和神经系统、预防肿瘤等多种作用。
此外,彩色马铃薯还富含多种维生素和矿物质,如维生素C、钙、钾、镁等,能够滋补身体,增强免疫力,预防多种疾病。
二、彩色马铃薯花青素的生物学活性彩色马铃薯中的花青素包括紫薯花青素、芸香花青素和花叶花青素等。
这些色素不仅在植物中具有生物学功能,在人类体内也被广泛研究。
目前已知的彩色马铃薯花青素主要生物学活性如下:1. 抗氧化性彩色马铃薯中的花青素具有强大的抗氧化能力,能够清除体内的自由基,减轻氧化应激对细胞的损伤。
由于氧化应激是导致多种疾病的主要原因之一,因此花青素对人类健康具有非常重要的保护作用。
2. 降低血糖彩色马铃薯中的花青素在人类体内可以抑制α-葡萄糖苷酶(α- glucosidase)的活性,从而减缓肠道中糖类的吸收速度,降低血糖。
这对2型糖尿病患者具有非常重要的意义。
3. 保护心血管彩色马铃薯中的花青素可以降低血清胆固醇和三酰甘油的水平,增加高密度脂蛋白胆固醇的水平,从而减少心血管疾病的危险。
此外,花青素还能抑制血管内皮细胞的凋亡和氧化应激,保护血管功能。
4. 预防癌症彩色马铃薯中的花青素可以通过多种途径预防肿瘤的发生和发展。
彩色马铃薯花青素研究进展
彩色马铃薯花青素研究进展彩色马铃薯花青素是一种天然的植物色素,在食品工业中被广泛应用于调色剂和营养强化剂。
它被发现具有多种生物活性,包括抗氧化、抗炎、抗癌等。
近年来,对彩色马铃薯花青素的研究取得了一系列进展。
在彩色马铃薯花青素的提取和纯化方面取得了重要进展。
研究人员采用不同的提取方法,如溶剂萃取、超临界流体萃取等,提取出了彩色马铃薯花青素。
通过使用色谱技术,成功地分离和纯化了不同类型的花青素,如花青素3-O-glycosides和花青素4-O-glycosides,为进一步研究和应用提供了基础。
彩色马铃薯花青素在食品领域的应用研究不断深入。
研究人员通过添加彩色马铃薯花青素,成功地开发出了一系列具有抗氧化和抗癌活性的新型食品产品。
将彩色马铃薯花青素添加到饮料中,不仅增加了产品的色彩和口感,还有效地提高了抗氧化能力。
彩色马铃薯花青素还被用于制备功能性食品,如抗氧化饼干、抗炎冰淇淋等。
彩色马铃薯花青素的生物活性研究也取得了重要进展。
研究发现,彩色马铃薯花青素具有显著的抗氧化活性,可以中和自由基、清除活性氧分子,从而减少细胞的氧化损伤。
一些实验研究还表明,彩色马铃薯花青素对癌细胞具有较强的抑制作用,可以促进肿瘤细胞的凋亡和抑制肿瘤细胞的增殖。
将来的研究方向和挑战也值得关注。
虽然已经取得了许多重要的研究进展,但彩色马铃薯花青素的成分和机制仍然不完全清楚。
将来的研究应该进一步深入研究彩色马铃薯花青素的化学成分、生物活性和作用机制。
为了更好地应用彩色马铃薯花青素,还需要进一步研究马铃薯的品种选择、生产工艺等方面的问题。
彩色马铃薯花青素是一种具有广泛应用前景的天然植物色素。
通过进一步的研究,我们可以更好地理解其化学成分和生物活性,并探索其在食品工业和药物研发中的潜在应用。
这将有助于提高食品的营养价值和功能性,并为开发新型药物提供新的思路。
高效液相色谱法同时测定复杂食品基质中8种合成色素的含量
回收率(/ %) 84.5 85.4 86.1 97.1 98.0 99.1 92.1 93.5 95.6 88.3 91.8 95.1 95.8 96.5 98.7 91.2 94.2 96.8 92.1 94.2 96.8 94.5 95.1 97.1
RSD(/ %) 2.2 2.1 2.4 1.6 1.7 2.2 2.4 1.4 2.0 1.7 2.0 2.5 2.2 2.4 1.4 2.3 2.4 2.3 2.2 2.4 2.2 1.6 1.9 1.8
传统检测方法存在种种缺陷,难以满足实际检测准确
性需要,因此有必要加强对高效液相色谱法合成色素检测分
析,更好地保食品安全。
1 材料与方法 1.1 试验仪器
高效液相色谱仪,型号为岛津 LC-2030C;真空脱气机, 型号为岛津 LC-2030C 系列,与高效液相色谱仪配套;自动 进样器;二极管阵列检测器(PDA);ProElut PWA-2 固相 萃取柱,规格为 150 mg/6 mL。 1.2 试验试剂
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分析检测
色素 赤藓红 亮蓝 酸性红 诱惑红 日落黄 胭脂红 苋菜红 柠檬黄
表 1 精密度与回收实验结果(n=6)
加标量 /(mg/kg) 0.79 1.61 8.10 0.59 1.2 6.0 0.25 0.49 2.5 0.25 0.49 2.5 0.7 1.3 6.9 0.7 1.5 8.0 0.61 1.2 5.9 0.4 0.8 3.9
乙酸铵溶液,浓度为 0.02 mol/L;提取溶剂;质量浓度 为 0.500 g/L 的日落黄、柠檬黄、胭脂红、苋菜红、亮蓝标 准溶液,质量浓度为 1.00 g/L 的赤藓红、诱惑红标准溶液, 质量浓度为 93.5% 的酸性红标准品。 1.3 试验方法
高效液相色谱法测定8个彩色马铃薯品种中花青素种类和含量
高效液相色谱法测定8个彩色马铃薯品种中花青素种类和含量殷丽琴;彭云强;钟成;付绍红;杨进;黄敏;余勤;韦献雅;牛应泽【期刊名称】《食品科学》【年(卷),期】2015(036)018【摘要】采用高效液相色谱法,以表皮和薯肉为研究对象,定量分析8个彩色马铃薯品种块茎中花青素的种类和含量.研究发现,彩色马铃薯块茎中最多含有6种花青素,即飞燕草色素、矢车菊色素、矮牵牛色素、天竺葵色素、芍药色素和锦葵色素.紫色马铃薯块茎中主要花青素为矮牵牛色素、芍药色素和锦葵色素,红色马铃薯块茎中主要花青素是天竺葵色素和芍药色素.飞燕草色素和芍药色素广泛存在于彩色马铃薯(紫色和红色)块茎的表皮中,而红色马铃薯块茎中未检测到锦葵色素.品种之间差异显著(P<0.05),其中紫云1号的总花青素含量最高.块茎表皮的花青素含量约是薯肉的6~176倍,且大部分品种的表皮花青素种类比薯肉多.彩色马铃薯块茎的表皮富含丰富的花青素,是天然色素和抗氧化剂的重要来源.【总页数】5页(P143-147)【作者】殷丽琴;彭云强;钟成;付绍红;杨进;黄敏;余勤;韦献雅;牛应泽【作者单位】成都市农林科学院作物研究所,四川成都 611130;成都市农林科学院作物研究所,四川成都 611130;中化化肥有限公司西南分公司,四川成都 610100;成都市农林科学院作物研究所,四川成都 611130;成都市农林科学院作物研究所,四川成都 611130;成都市农林科学院作物研究所,四川成都 611130;成都市农林科学院作物研究所,四川成都 611130;四川农业大学农学院,四川成都 611130;四川农业大学农学院,四川成都 611130【正文语种】中文【中图分类】S532【相关文献】1.高效液相色谱法测定蓝莓干中的原花青素含量 [J], 刘连新;刘郁;何伟平;田龙2.高效液相色谱法测定蓝莓酒中六种花青素含量 [J], 王欢; 谯顺彬; 田辉; 石瑞丽; 彭小东3.高效液相色谱法测定不同开花时期大马士革III玫瑰(Rosa damascene tyigintipetala)花青素种类及含量 [J], 刘雷;陈黎;李华;黄怡;牟秋雨;缑芸莎;李志鹏4.HPLC法测定不同种类水果中的花青素含量 [J], 白沙沙;吕品鑫;顾海华;乔子纯;孔凡华;唐洪涛;崔亚娟;李东5.超高效液相色谱法测定绿茶中花青素的含量 [J], 丁华;顾见勋;王婧;赵明明;刘姣;严伟;杨洁因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
高效液相色谱法同时测定复杂食品基质中8种合成色素的含量
高效液相色谱法同时测定复杂食品基质中8种合成色素的含量刘谦;李熙;吴新欣;刘丽丽;刘萍【摘要】采用固相萃取-高效液相色谱法同时测定复杂食品基质中的柠檬黄、日落黄、苋菜红、胭脂红、诱惑红、酸性红、赤藓红、亮蓝等8种合成色素的含量.样品经乙醇-乙腈-甲醇-氨水(3+3+3+1)混合液超声提取3次后,提取液采用ProElut PWA-2固相萃取柱净化,净化液在AgilentEclipse XDB-C18色谱柱上分离,以乙腈-0.02 mol·L-1乙酸铵溶液为流动相进行梯度洗脱,采用二极管阵列检测器,检测波长为254 nm.8种合成色素的峰面积与其质量浓度在1.0~50.0 mg·L-1内呈线性关系,检出限(3S/N)在0.25~0.80 μg·kg-1之间.加标回收率为84.6%~99.0%,测定值的相对标准偏差(n=6)在1.4%~2.5%之间.%HPLC combined with solid phase extraction was applied to the simultaneous determination of 8 kinds of synthetic colorants,including tartrazine,sunsetyellow,amaranth,carmine,allura red,azorubin,erythrosine and brilliant blue in complex food matrix.The sample was extracted ultrasonically with a mixture of ethanol-acetonitrile-methanol-arnrnonia (3+3+3+1) for 3 times.The extract was cleaned up by using a ProElut PWA-2 solid phase extraction column.The purified solution was seperated on an Agilent Eclipse XDB-C18 column,with a mixture of acetonitrile and 0.02 mol · L-1 ammonium acetate solution as the mobile phase for gradient elution.The analytes were detected by using diode array detector at the wavelength of 254 nm.Linear relationships were found between the peak areas and the mass concentrations of the 8 kinds of synthetic colorants in the range of1.0-50.0 mg · L-1,with detection limits in the range of 0.25-0.80 μg · kg-1.Recovery rates obtained by standard addition method were in the range of 84.6%-99.0% and RSDs (n=6) were in the range of 1.4%-2.5%.【期刊名称】《理化检验-化学分册》【年(卷),期】2017(053)006【总页数】4页(P693-696)【关键词】高效液相色谱法;固相萃取;合成色素;食品【作者】刘谦;李熙;吴新欣;刘丽丽;刘萍【作者单位】河北出入境检验检疫局检验检疫技术中心保定分中心,保定071051;河北出入境检验检疫局检验检疫技术中心保定分中心,保定071051;河北出入境检验检疫局检验检疫技术中心保定分中心,保定071051;河北出入境检验检疫局检验检疫技术中心保定分中心,保定071051;河北出入境检验检疫局检验检疫技术中心保定分中心,保定071051【正文语种】中文【中图分类】O657.7近年来,一些食品生产厂商为了提高食品的商业价值,利用合成色素即人工色素对食品进行着色,使其更加鲜艳美观,促进消费[1-10]。
高效液相色谱法测定彩色马铃薯中维生素C含量
高效液相色谱法测定彩色马铃薯中维生素C含量王辉;刘永翔;刘辉;刘嘉;吕都;李俊;陈朝军;董楠;唐健波;陈中爱【摘要】建立高效液相色谱法快速测定彩色马铃薯黑美人、红宝石中维生素C含量的方法.样品采用2%草酸提取,利用高效液相色谱技术,以0.05 mol/L,pH2.5的磷酸-甲醇(90:10)缓冲液为流动相,通过C18色谱柱分离,采用紫外检测器,在245 nm波长下测定维生素C的吸光值,将吸光值与标准品进行比较,保留时间可以对其进行定性,以峰面积进行定量.结果表明,方法的线性范围0.02 g/L~0.1 g/L,检出限为0.002 g/L,线性回归方程为yb=5622000x+69538,相关系数为0.9999.通过回收实验,黑美人与红宝石马铃薯VC测定回收率分别为97.61%~99.81%,97.28%~99.82%,相对标准偏差分别为0.90%、1.02%.用高效液相色谱法、紫外分光光度法、碘滴定法分别测定黑美人中VC含量分别为(21.27±0.19)、(19.92±0.13)、(23.31±0.11)mg/100 g,红宝石中VC含量分别为(18.28±0.19)、(17.68±0.14)、(21.76±0.09)mg/100 g.与甘肃省农业科学院农业测试中心检测结果相比较(黑美人21.73 mg/100 g;红宝石18.74 mg/100 g),表明高效液相色谱法获得结果更准确可靠.本研究所建立的高效液相色谱法可快速、灵敏、准确、稳定的对彩色马铃薯中的维生素C进行测定,同时适用于其它同类果蔬(草莓、刺梨、青菜等)中VC含量的测定.%A rapid method for determination of vitamin C in colorful potato species Solanum tuberosum black beauty and red ruby was established by high performance liquid chromatography(HPLC). Vitamin C in potatoes was extracted by 2 % oxalic acid, then separated through a C18 chromatographic column with the phosphoric acid-methanol buffer (0.05 mol/L,pH2.5) as the mobile phase. Thereafter, the vitamin C was detected by ul traviolet-visible detector atthe wavelength of 245 nm. The absorbance in samples was compared with the standard substance, which qualitative determination was according to the retention time, and quantitative determination was according to the peak area. The results showed that the linear range of the present method was 0.02 g/L-0.1 g/L, the detection limit was 0.002 g/L, and the linear equation was yb=5622000x+69538, the related co-efficient was 0.9999. After the recovery experiment, the recoveries were 97.61%-99.81%,97.28%-99.82%, respectively, and the relative standard deviation were 0.90 %,1.02 %,respectively. The VC content in black beautywas(21.27±0.19),(19.92±0.13),(23.31±0.11) mg/100 g by HPLC, UV spectrophotometry, Iodomet-ric method, respectively. And(18.28±0.19),(17.68±0.14),(21.76±0.09) mg/100 g in red ruby, respectively. Compared with the results from agricultural test center of Gansu academy of agricultural sciences(21.73 mg/100 g in black beauty;18.74 mg/100 g in red ruby), the results of HPLC was preciser than the other two methods. The method can well be applied in the determination of vitamin C content with the features of rapid, sensitive, exact and stable, and applicable to detection of vitamin C in fruits and vegetables, such as strawberry, roxburgh rose and green vegetables.【期刊名称】《食品研究与开发》【年(卷),期】2017(038)012【总页数】5页(P130-134)【关键词】高效液相色谱;黑美人土豆;红宝石土豆;维生素C【作者】王辉;刘永翔;刘辉;刘嘉;吕都;李俊;陈朝军;董楠;唐健波;陈中爱【作者单位】贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006;贵州省农业科学院贵州省生物技术研究所,贵州贵阳550006【正文语种】中文通常所说的彩色马铃薯一般是指块茎的皮或肉为红、蓝、紫、橙色等的马铃薯品种[1]。
彩色马铃薯色素相关基因座的种类、功能与染色体定位
彩色马铃薯色素相关基因座的种类、功能与染色体定位赵昶灵;李孙文;张维明【期刊名称】《广西植物》【年(卷),期】2010(30)3【摘要】综述了与彩色马铃薯色素产生与分布相关基因座的观念起源、种类、功能和染色体定位.与彩色马铃薯色素相关基因座的观念起源于试图解释四倍体和二倍体马铃薯块茎和其他部位颜色呈现遗传行为的两个遗传模式.与彩色马铃薯色素相关的13个基因座可划分为4类,第1、第2和第3类分别与马铃薯花色苷的合成、酰化和分布有关,第4类与马铃薯类胡萝卜素的产生相关.基因座I,P,R和Y分别编码一个MYB结构域转录因子、类黄酮3′,5′-羟化酶、二氢黄酮醇4-还原酶和β-胡萝卜素羟化酶.基因座之间复杂多样的互作综合决定了彩色马铃薯色素特别是花色苷的产生与分布.基因座D和R定位在马铃薯的2号染色体上,E,F,I和PSC在10号染色体上,P在11号染色体上,Y在3号染色体上.可为彩色马铃薯颜色呈现的遗传机理探索提供参考.【总页数】9页(P377-385)【作者】赵昶灵;李孙文;张维明【作者单位】云南农业大学,农学与生物技术学院,昆明,650201;云南农业大学,农学与生物技术学院,昆明,650201;云南农业大学,农学与生物技术学院,昆明,650201【正文语种】中文【中图分类】Q343.1【相关文献】1.高效液相色谱法测定8个彩色马铃薯品种中花青素种类和含量 [J], 殷丽琴;彭云强;钟成;付绍红;杨进;黄敏;余勤;韦献雅;牛应泽2.彩色马铃薯块茎花色素苷分析测定 [J], 胡艳梅;孟然然;李周;王兆富;郝大海;李灿辉3.不同施肥种类毛竹叶片色素含量及反射光谱相关性研究 [J], 孔振;施晓灯;何安国;何仁华;张汝民;高培军4.西班牙黑色素瘤患者中HLA-Ⅱ的多态现象:HLA-DQA1基因座的纯合性可能为黑色素瘤的一个潜在危险因素 [J], Planelles; D.; Nagore; E.; Moret; A.5.彩色马铃薯块茎色素研究进展 [J], 李先平;包丽仙;李山云;杨琼芬;隋启君因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
高效液相色谱法分析不同品种紫甘薯中花青素组分及其含量
紫甘薯是甘薯特有品种类型,它不仅营养丰富,而且还富含具有显著生理功能作用的花青素类物质。
花青素,又称花色素,是自然界一类广泛存在于植物中的水溶性天然色素,属多酚类黄酮化合物[1]。
花青素的基本结构单元是2-苯基苯并吡喃型阳离子,即花色基元。
现已知的花青素有20多种,主要存在于植物中的有:天竺葵色素(Pelargonidin)、矢车菊色素或芙蓉花色素(Cyanidin)、翠雀素或飞燕草色素(Delphindin)、甲基花青素或芍药色素(Peonidin)、牵牛花色素(Petunidin)及锦葵色素(Malvidin)。
它具有抗氧化性[2],清除自由基[3],抗突变及抗肿瘤[4],减轻肝机能障碍[5,6],预防心血管疾病和Ⅱ型糖尿病[7]等功能。
高效液相色谱法分析不同品种紫甘薯中花青素组分及其含量*刘超,王征,李鑫,贺炜(湖南农业大学生物科学技术学院,长沙410128)摘要:利用高效液相色谱法分析不同品种紫甘薯中花青素组分及其含量。
结果表明,除川山紫不含C、E、F三种组分外,其它品种紫甘薯均含十种花青素组分;在各个品种紫甘薯中,紫A4,浙紫及京薯6号花青素产率相对较高,川山紫和鄂紫花青素产率较低,紫A1居中。
花青素总含量中,E、F、G、H、I、J六个组分的含量占89%以上,对花青素总含量起主导作用。
关键词:紫甘薯;花青素;高效液相色谱*项目资助:湖南省教育厅青年基金(07B035)和湖南农业大学稳定人才基金(05WD11)资助课题。
作者简介:刘超(1982~),男,湖南长沙人,在校硕士研究生,研究方向为天然产物开发与应用。
通讯作者:王征中国食物与营养Food and Nutrition in ChinaNo.8,20082008年第8期法进行油脂氧化的评价是不全面和不可靠的。
因此,常常采用多种方法检测、分析,从不同的角度进行油脂氧化程度的评价。
◇参考文献[1]姚妙爱.油脂的饲用价值及其氧化酸败的防止措施.粮食加工,2004,1: 68-71.[2]王宪青,余善鸣,刘妍妍.油脂的氧化稳定性与抗氧化剂.肉类研究,2003,3:18-21.[3]中华人民共和国国家标准,GB2716-88,GB9848-88,GB9849-88,GB9850—88,GB8937-88.[4]刘一军,俞晔.进口油脂游离脂肪酸产生及影响测定因素分析.粮食与油脂,2001,12:43-415.[5]孙丽芹,董新伟,刘玉鹏.脂类自动氧化机理.中国油脂,1998,23(5):56-57.[6]谢守华.油脂的自动氧化和氧化稳定性及检测方法.四川粮油科技,1998,4:53-55.[7]周华龙,等.不饱和油脂氧化机理的研究与技术开发(II).中国皮革,2003,32(13):4-8.[8]韩玉莲.油脂氧化常用检测方法及其评价.中国食品卫生杂志,1994,6(1):57-60.[9]Isbell TA.Oxidatie stability index of vegetable oilsin binary mixture with meadow foamoil.Industrialcrops and products,1999,9:115-123.[10]王新芳,朱沛华,孙同山,等.差示扫描量热法测定食用油脂的热氧化稳定性及氧化寿命.化学分析与计量,2001,10(4):17-19.[11]李久盛,王大璞,杜上鉴.油脂氧化安定性几种分析方法的比较.分析测试学报,1999,18(5):24-27.目前对Ⅱ型糖尿病的治疗研究也引起了世界各国的广泛关注。
高效液相色谱法同时测定调味料中的8种合成着色剂
高效液相色谱法同时测定调味料中的8种合成着色剂朱虹;佘晓麒;黄让明【摘要】建立一种同时测定调味料中8种合成着色剂的高效液相色谱分析方法.样品经30%甲醇水溶液提取,采用Diamonsil-C18柱(250 mm×4.6 mm),以甲醇-1.55 g/L乙酸铵为流动相,在最佳梯度洗脱条件下对8种合成着色剂进行分离,二极管阵列检测器检测,外标法定量.8种合成着色剂的线性范围为0.5~10.0 μg/mL,回收率为95.0%~101%.对样品进行6次重复测定,峰面积测定结果的相对标准偏差为0.84%~ 3.51%(n=6).%A high performance liquid chromatographic method was developed for the simultaneous determination of 8 synthetic colours in condiment. The sample was extracted with methanol water solution, separated on Diamonsil-C18(250 mm x 4.6 mm) column with methanol-1.55 g / L ammonium acetate as mobile phase by gradient elution. The target compounds were confirmed by diode-array detection and quantified by the external standard method. The results showed that the linear range of 8 synthetic colours was 0.5-10.0 μ/mL and recovery was 95.0%-101.0%. The relative standard deviation of six times repeated measurements of the peak area was 0. 84%-3.51 %(n=6).【期刊名称】《化学分析计量》【年(卷),期】2012(021)004【总页数】3页(P47-49)【关键词】调味料;合成着色剂;高效液相色谱法【作者】朱虹;佘晓麒;黄让明【作者单位】广东省汕头市质量计量监督检测所,广东汕头 515041;广东省汕头市质量计量监督检测所,广东汕头 515041;广东省汕头市质量计量监督检测所,广东汕头 515041【正文语种】中文【中图分类】O657.7食品着色剂(食用色素)是以给食品着色为主要目的的添加剂。
高效液相色谱法同时测定糕点及糖果中八种合成色素的方法
高效液相色谱法同时测定糕点及糖果中八种合成色素的方法魏刚;王成梅
【期刊名称】《食品安全导刊》
【年(卷),期】2015(000)033
【摘要】建立高效液相色谱法同时,测定糕点及糖果中新红、柠檬黄、苋菜红、胭脂红、日落黄、诱惑红、赤藓红和亮蓝八种合成色素的方法。
选用Symmetry
C18(3.9mm*150mm,5μm),通过对流动相的选择最终确定以0.02mol/L乙酸铵-乙腈为流动相进行梯度洗脱,通过紫外检测器进行检测。
该方法在0.
【总页数】3页(P126-128)
【作者】魏刚;王成梅
【作者单位】山东中质华检测试检验有限公司;山东中质华检测试检验有限公司【正文语种】中文
【相关文献】
1.高效液相色谱法同时测定糕点中4种食用合成色素
2.高效液相色谱法同时测定食品中多种合成色素的方法探究
3.高效液相色谱法同时测定糖果中的6种合成色素
4.高效液相色谱法同时测定糖果中喹啉黄等9种禁限用合成色素
5.阴离子交换固相萃取-高效液相色谱法快速测定中成药中10种合成色素的方法研究
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量 。研 究发现 ,彩色马铃薯块茎 中最 多含有6种花青 素,即飞燕草色素 、矢车菊 色素、矮牵牛色素、天竺葵色素 、 芍药色素和锦葵色素 。紫色 马铃薯块茎 中主要花青素为矮牵牛色素 、芍药色素和锦葵色素 ,红色马铃薯块茎 中主要 花青素是天竺葵色素和芍 药色 素。飞燕 草色素和芍药色素广泛存在于彩色马铃薯 ( 紫色和红色 )块茎 的表皮 中,而
红 色 马 铃 薯 块 茎 中 未检 测 到 锦 葵 色 素 。 品种 之 间差 异 显 著 ( P <0 . 0 5 ) ,其 中紫 云 1 号 的 总 花 青 素 含 量 最 高 。 块 茎 表
皮 的花 青素含量约是 薯肉的6 ~1 7 6倍 ,且 大部分 品种 的表 皮花青素种类 比薯 肉多 。彩色 马铃 薯块茎 的表皮 富含 丰 富 的花青素 ,是天然色素和抗氧化剂 的重要来源 。
a n t h o c y ni a d i n s i n p u r p l e - c o l o r e d p o t a t o e s , wh i l e p e l a r g o n i d i n a n d p e o n i d i n we r e t h e ma i n a n t h o c y a n i d i n s i n r e d - c o l o r e d
※成分分析
食 品 科 学
2 0 1 5 , V o i . 3 6 , N o . 1 8 1 4 3
高效 液相色谱 法测 定8个彩色 马铃 薯 品种 中 花 青素种 类和含量
殷 丽琴 ,彭云 强 ,钟 成 ,付绍 红 ,杨 进 ,黄 敏 ,余 勤 ,韦献雅。 ,牛应泽 ’ 丰
2 . S i n o c h e m F e r t i l i z e r Co . L t d . , S o u t h we s t B r nc a h , Ch e n g d u 6 1 01 0 0 , Ch i n a ;
3 . C o l l e g e o f Ag r o n o my , S i c h u n a A g r i c u l t u r a l Un i v e r s i t y , C h e n g d u 6 1 1 1 3 0 , C h i n a )
d e l p h i n i d i n , c y a n i d i n , p e t u n i d i n , p e l rg a o n i d i n , p e o n i d i n a n d ma l v i d i n . P e a mi d i n , p e o n i d i n nd a ma l v i d i n we r e he t d o mi n nt a
l i q u i d c h r o ma t o g r a p h y( H P L C ) . R e s u l t s s h o we d ha t t p i m e g n t e d p o t a t o t u b e r s c o n t a i n e d u p t o s i x a n t h o c y a n i d i n s , n a me l y ,
( 1 . 成都市农林科学院作物研 究所 ,四川 成都 6 1 1 1 3 0 ;2 . 中化化肥有限公司西南分公司, 四川 成都 6 1 0 1 0 0 ; 3 . 四川农业大 学农 学院,四川 成都 6 1 1 1 3 0 ) 摘 要 :采用 高效液相色谱法 ,以表皮和薯 肉为研究对象 ,定量分析8个彩色 马铃薯 品种块茎 中花青素 的种类和含
YI N Li qi n , PEN G Yu nq i a n g , ZHON G Ch e ng , FU Sha o ho ng , Y AN G J i n。HU A NG Mi n , Y U Qi n , WE I X i a n y a 3 , NI U Yi n g z e ,
关键词 :彩色马铃薯 :高效液相色谱法 ;花青素 ;表皮 ;薯 肉
D e t e r mi n a i t o n o f An t h o c y a n i d i n C o mp o s i t i o n o f Di f e r e n t P i g me n t e d P o t a t o ( S o l a n u m t u b e r o s u m L . ) C u l t i v a r s b y HP L C
Ab s t r a c t : T h e nt a h o c y ni a d i n c o mp o s i t i o n o f t h e t u b e r o f e i g h t p i g me n t e d p o t a t o c u l t i v a r s wa s na a l y z e d b y h i g h p e r f o r ma n c e
,
( 1 . C r o p Re s e d u Ac a d e my o f Ag r i c u l t u r e a n d F o r e s t r y S c i e n c e s , Ch e n g d u 6 1 1 1 3 0 , Ch i n a ;