百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察
百合花粉萌发的形态
百合花粉萌发的形态
百合花粉的萌发形态如下:
1.花粉外观特征:呈椭圆形或近球形,通常具有平滑而光泽的表面。
其大小约为25~50微米,不同品种和物种之间可能会有轻微的大小差异。
2.萌发沟:均为单萌发沟,萌发沟长达两端。
3.表面纹饰:网纹,网眼为不规则多边形至近圆形,大小不一。
网脊由瘤状或盘珠状颗粒较紧密排列而成,单排基柱,脊宽1.17~2.48微米,有时有断点。
网眼内有疣状、瘤状或棒状突起,有的种较多,有的种少。
如需了解更多信息,建议咨询园艺师或查阅园艺书籍。
百合种间杂交花粉管生长观察
胚珠 的情况 , 并进行显微摄影。
道较少。研究 旨在通 过对 百合 种间杂 交后花粉 管生 长 情况的观察 , 步判 断其杂交 亲 和性 , 初 为克 服百 合杂 交 前育性障碍 的原 因提供有效的解 决方法 。
2 结 果与分析
在荧光显微镜 下观察 不 同百合 种间杂 交及 自交后 花粉管在花柱内的生长情况 , 于大部分 杂交组合花粉 对 基本 都能萌发 , 萌发 后花粉管穿过柱头 , 延伸入 花柱 , 在
摘
要: 通过对百合杂交授粉后 不 同时间的母 本花柱进行 采样 , 观察花粉 管的生长情 况 , 分
析百合种间杂交、 自交中亲和及 不亲和的原 因, 于杂交组合 布鲁拉 诺 ×兰州百合 , 对 无论 是否 进 行切 割花 柱处理 , 可观察到大量的花粉 萌发现 象和成束 向子房方 向生 长的花粉 管 , 均 授粉后 4 8h
花粉 管大约生长 l5c 卷 丹 自交后 , _ m; 花粉粒的萌发较 晚, 且数量较 少, 在授粉后 4 8h观察到花粉 管生长停滞的现 象。
关键词 : 百合 ; 间杂交 ; 种 花粉管 中图分类 号 : 8. 文献标识码 : 文章编 号 : 0 -00 (080 —09 —0 S62 2 A 1 1 0920 )6 12 2 0 百合属 内远缘杂交障碍有两 种类型 , 杂交前期育性 障碍 和杂交后期育性障碍 , 通过荧光显微镜 观察花粉萌 发及 花粉管生长 的情况 , 可初步分 析百合 种问杂交前期
百合花粉的形态特征观察及温度对其萌发率的影响
百合花粉的形态特征观察及温度对其萌发率的影响作者:张静左丹唐道城来源:《江苏农业科学》2014年第01期摘要:以兰州百合、普瑞头、波安娜、白天堂、耀眼等百合品种的成熟花粉粒为材料,在显微镜下观察各花粉粒形态结构,并分别将5种花粉粒置于5、10、15、20、25、30 ℃下培养,观察其萌发状况。
结果表明,白天堂极轴和赤道轴长度最长,几个品种间差异极显著,但所有花粉粒极轴长/赤道轴长的值不存在极显著差异;兰州百合和耀眼在20 ℃时萌发率最高,普瑞头的最适萌发温度则是25 ℃,波安娜、白天堂的萌发率在30 ℃时最高。
关键词:百合;花粉粒;形态结构;温度;花粉萌发中图分类号: S682.2+65.01文献标志码: A文章编号:1002-1302(2014)01-0148-03收稿日期:2013-05-15基金项目:青海省国际合作项目(编号:2011-H-806)。
作者简介:张静(1988—),女,四川合江人,硕士研究生,研究方向为园林植物栽培生理。
E-mail:jingzhangyx@。
通信作者:唐道城(1954—),男,四川南充人,硕士,教授,博士生导师,主要从事花卉遗传育种及栽培生理研究工作。
E-mail:tangdaocheng6333@。
百合是百合科百合属多年生草本球根植物,具有很高的观赏价值和经济价值[1],全世界共有百合属植物约94个种,起源于我国的有47个种、18个变种,其中36个种、15个变种为我国特有种[2],丰富的野生资源为我国百合的育种提供了材料基础。
现在百合的育种多采用常规杂交,虽然生殖隔离是限制育种成功的根本原因,但了解杂交花粉的形态特征和生理习性对育种工作具有重要意义。
近些年,张彦妮等分别对百合花粉粒进行了电镜扫描,得到了清晰的百合花粉粒的表观结构[3-4]。
周蕴薇等分别研究了花粉粒的贮藏条件[1,5],说明贮藏温度对百合花粉生命力有很大的影响,低温(-18、-20、-80 ℃)更有利于保持花粉活性。
百合的花粉形态和传粉特性
百合的花粉形态和传粉特性百合(学名:Lilium)是一类受人们喜爱的花卉,其美丽的花朵和独特的花粉形态使其成为研究对象。
本文将讨论百合的花粉形态和传粉特性,以进一步了解这种迷人的花卉。
花粉形态是衡量一种植物传粉特性的重要指标之一。
百合的花粉是由雄蕊的花药产生的。
在百合的花药内部,花粉以小颗粒的形式存在。
百合花粉的形状呈圆锥体或椭圆形,外观呈黄色或橙色。
这种形态使百合花粉在传递时更容易被昆虫或大气中传播。
百合的花粉生产在花药内部进行。
当花药发育成熟时,花药裂开,释放出花粉。
这种开裂方式被称为花药开裂。
花药开裂时,花粉会散布在周围环境中。
由于百合的花粉颗粒较小,所以在空气中很容易被风吹散。
这种散布方式被称为风媒传粉。
百合花朵的形态也适合昆虫的传粉,其花瓣颜色鲜艳,散发出诱人的花香,吸引着昆虫的注意。
除了花粉生产和散布的方式,百合还有一些独特的传粉特性。
首先,百合的花朵通常是单性花,即雌雄花器官分开存在于同一个花朵上。
这种雌雄异位的特性使得百合既可以自花传粉,也可以异花传粉。
对于自花传粉,花粉可以直接从雄蕊传到雌蕊,从而实现花粉的授粉和受精。
而对于异花传粉,昆虫在觅食或寻找配偶时,会经过百合花朵,将雄蕊上的花粉带到其他花朵的雌蕊上,实现异花授粉。
这种双重传粉方式为百合的繁殖提供了更多的机会。
其次,百合的花粉对外界环境的条件较为敏感。
首先,花粉在干燥条件下较为脆弱,容易破裂。
因此,在干燥的日子里,百合花粉很容易因为风力或其他外力的作用而破碎。
其次,百合花粉需要适宜的温度和湿度才能保持活力。
在高温或干燥的环境中,花粉会失去活力,无法发芽或完成授粉过程。
这说明百合在选择传粉时也会考虑外界环境的条件。
最后,百合花粉的传播距离相对较短。
由于百合的花粉较为重,不如轻盈的花粉粒那样容易飘散,因此通常只能在近距离范围内传播。
这也意味着百合很大程度上依赖于生长环境周围的昆虫或风力来传播花粉。
在自然条件下,百合花粉的传播范围通常在数米到数十米之间。
百合不同品种间花粉萌发活力检测分析
收稿日期:2017-05-10基金项目:北京市科技计划项目(D161100001916003);北京市属高等学校创新团队建设与教师职业发展计划资助项目(IDHT20150503);林果业生态环境功能提升协同创新中心资助项目(PXM2017-014207-000043)第一作者:于金平(1990-),女,硕士研究生,从事园林植物与观赏园艺研究,E-mail :2285956482@ 通信作者:王文和(1964-),男,博士,教授,从事园林植物与育种研究,E-mail :wwhals@百合是一种从古至今都受人喜爱的世界名花。
世界上共发现百合属(Lilium )植物大约115种,多数来自北半球的温带及高山地区,尤其是在亚洲东部地区。
中国拥有丰富的百合种质资源,共分布有55种,其中35种为百合不同品种间花粉萌发活力检测分析于金平,王媛媛,张琪,王文和,冷平生,赵祥云(北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206)摘要:以不同类型百合的花粉为研究对象,探讨不同品种百合花粉萌发的特点以及不同类型百合花粉的萌发是否具有一定的规律性,旨在为百合杂交育种中父本材料的选择以及授粉方法的改良提供依据。
以百合5个类型共43个品种的花粉为材料,利用离体萌发法,探讨不同品种百合花粉萌发活力,筛选适用于大部分品种的最佳培养基,结果表明,在蔗糖100g ·L -1、硼酸20mg ·L -1、琼脂10g ·L -1的固体培养基上可以较好地萌发。
大多数百合品种都能在12h 内达到最大萌发率,也有少数品种在24h 还处于萌发状态。
百合会因自身遗传特性导致萌发率不同,其中,TR 类百合总体萌发活力最强,平均萌发率80.98%;LA 类百合萌发率最低,平均为13.49%;OT 类、A 类和AT 类萌发率居中,分别为49.06%,46.05%和50.06%。
百合花粉管自身寿命也存在明显差异,在43个百合品种中,发现有18个品种在培养后期花粉萌发率明显下降,这主要是由于培养后期花粉管自身破裂所导致的。
花粉粒的萌发和花粉管通道法简述
花粉粒的萌发和花粉管通道法简述高中生物选修三中讲到基因工程操作程序中,将目的基因导入植物细胞时提到了花粉管通道法;在高中生物必修一组成生物体的化学元素中讲元素的重要作用时,教师一般会举例微量元素硼(B)的生理功能是促进花粉粒的萌发和花粉管的伸长。
高中学生对花粉粒和花粉管的知识了解得很少,而对于花粉管通道法的具体内容中学教师也知之甚少。
下面将通过文字配图简述之,以期对中学师生学习相关内容有所帮助。
1 花粉粒的萌发和花粉管的伸长1.1 花粉粒的萌发植物授粉是受精的前提。
具有生活力的花粉粒落到雌蕊的柱头上,被柱头表皮细胞分泌的黏液吸附后,花粉壁中的识别蛋白与柱头乳突细胞表面的特异蛋白质表膜相互识别。
如果二者是亲和的,则花粉粒可得到柱头的滋养并从周围吸收水分,代谢活动加强,体积增大。
吸水后的花粉粒呼吸作用迅速增强,细胞中多聚核糖体数量增多,蛋白质的合成也有显著的提高,其营养细胞的液泡化增强,细胞内部物质增多,细胞的内压增大,这就迫使花粉粒的内壁向着一个(或几个)萌发孔突出并继续伸长,形成花粉管,这一过程称作花粉粒的萌发(图1)。
实验证明此过程中,硼(B)元素起着重要作用,硼元素可以减少花粉的破裂,提高花粉的萌发率,并促使花粉管生长。
1.2 花粉管的伸长由于花粉粒的外壁性质坚硬,包围着内壁的四周,只有在萌发孔的地方留下伸展余地,所以花粉的原生质体和内壁,在膨胀的情况下,一般向着一个萌发孔突出,形成一个细长的管子,称为花粉管。
有些植物的花粉具有几个萌发孔,可同时长出几个花粉管,但其中只有一个能继续生长下去,其余都停止生长。
花粉管必须伸长才能进入胚囊(图2)。
花粉管实际上是一种有多个核的单细胞结构。
花粉粒萌发后,花粉管进入柱头,穿过花柱而到达子房。
当花粉管生长时,花粉粒中的内容物几乎全部集中在花粉管的亚顶端。
如果是三核期花粉粒,则包括1个营养核和2个精细胞、细胞质和细胞器。
如果是二核期花粉粒,生殖细胞在花粉管中再分裂一次,形成2个精细胞。
百合花卉种间杂交种的培育
文章编号:1002-1728(2002)02-0020-05百合属植物的种间杂交研究进展✷孙晓梅1,罗凤霞1,王萍2,董胜君1,祝鹏芳3,孙龙生1(1.沈阳农业大学园林系,辽宁沈阳110161;2.大连市开发区绿化实业有限公司,辽宁沈阳116600;3.辽宁省农业科学院花卉研究所辽宁沈阳110161)中图分类号:S 682.203.51文献标识码:B百合属(L i l i u m )植物属于百合科(L i l i -a c e a e),全世界约有130种,我国有40多种[1,2]。
百合栽培的历史悠久,自古西方人就把百合作为圣洁的象征。
百合作为切花已有2000年以上的历史。
百合属植物资源之丰富,栽培历史之悠久,栽培区域之广泛,切花装饰之精美与艺术内涵之丰富,使其早已成为花卉中的佼佼者。
百合属植物的种间杂交早在20世纪20~30年代国外就有研究。
20世纪80年代以来,我国亦开始了百合的种间杂交育种工作,并利用远缘杂交获得了百合种间杂种。
目前,世界上百合花卉的品种已达1000种以上[3],由于百合杂交常有明显的不亲和性,不同组的百合要进行种间杂交是很困难的。
因此,必须采用切割花柱授粉、幼胚离体培养等方法来克服受精前障碍和受精后胚发育不良等障碍,并且在得到杂种幼苗和开花植株后要进行杂种的鉴定和评选。
!种间不亲和性及其原因种间不亲和性指不同种的植物由于基因型的差异和生理上的不协调,使它们在相互传粉和受精方面受到障碍,导致不能产生有生活力的杂种后代的现象。
百合属植物种间不亲和性的原因较为复杂,可发生在不同的阶段。
在正常情况下,百合属植物从开花到产生成熟种子,大约需60~80d,经历了授粉、花粉萌发、花粉管生长、花粉管穿越柱头、通过花柱到达胚囊、配子融合和胚及胚乳的发育成熟等过程,只要其中一个环节发生障碍便可导致不育。
杂交不亲和的程度在种、组、品种之间具有明显的差异,一般来说同种内易杂交,种间较困难,不同组甚至不同种与栽培品种之间存在着明显的杂交不育障碍。
紫斑百合远缘杂交亲和性分析及杂交障碍克服
(7个品种)和OT百合(5个品种)为材料,采用切割花柱(CS)和常规授粉(NP)两种方法进行远缘杂交,分析紫斑百合
与东方百合和OT百合的远缘杂交亲和性,通过荧光显微技术观察花粉萌发及花粉管生长动态,并通过染色体法鉴定
F1代的倍性。【结果】常规授粉方式下,紫斑百合作母本的12个杂交组合中仅紫斑百合×索邦(NP)、紫斑百合×西诺红
南方农业学报 Journal of Southern Agriculture 9IS期SN 2095-1191;CODEN NNXAAB
DOI:10.3969/j.issn.2095-1191.2019.09.03
2019,50(9):1903-1912
·1903·
GUO Peng-hui,WU Jing-zhi,WANG Yu-ying,ZHENG Ran-ran,WU Hong-zhi*
(College of Landscape and Horticulture,Yunnan Agricultural University,Kunming 650201,China)
Abstract:【Objective】The study aimed to explore compatibility and the way to overcome the difficulties from distant hybridization of wild Lilium nepalense to provide a theoretical reference for the development of wild lily resources and the breeding of new lily varieties with good characteristics such as green,fragrance and resistance.【Method】Wild L. nepalense in Yunnan and cultivated lines Oriental hybrids(seven varieties),OT hybrids(five varieties)were used as experimental materials,pollination was carried out by cut-style method(CS)and normal pollination(NP)to analyze the distant hybridization compatibility between L. nepalense and Oriental hybrids,OT hybrids. Pollen germination and pollen tube growth were observed by fluorescence microscopy method,ploidy of F1 hybrid progeny were identified by chromosome method.【Result】Under conventional pollination style,in the 12 combinations of interspecific hybridization which wild L. nepalense was as female parent,only three combinations of L. nepalense×Sorbonne(NP),L. nepalense×Viviana(NP)and L. nepalense×Bacardi(NP)had relatively good cross compatibility,but the other nine combinations(NP)with L. nepa-
百合花粉萌发的形态特征_概述及解释说明
百合花粉萌发的形态特征概述及解释说明1. 引言1.1 概述百合花(Lilium)是一种重要的观赏植物,其美丽的花朵和迷人的香气使其受到广泛关注。
而百合花粉作为重要的生殖细胞,对于保证百合植株繁衍生息具有重要意义。
因此,探究百合花粉萌发过程中的形态特征变化以及相关机制成为了研究领域中的一个热点问题。
1.2 文章结构本文将分为五个主要部分来探讨百合花粉萌发的形态特征及其解释。
首先,在引言部分进行了综述和概述,介绍了该研究领域的背景和意义,并简要描述了文章结构。
接下来,在第二部分将详细阐述百合花粉萌发过程中的形态特征、外观特征以及其背后可能存在的解释机制。
第三部分将介绍我们所采用的研究方法和实验设计,包括样本采集和处理、显微镜观察与记录以及数据分析方法。
在第四部分中,我们将呈现并讨论研究结果,包括花粉外观形态特征分析结果、萌发过程观察结果及其解释以及形态特征与萌发之间的关系探讨。
最后,在第五部分给出结论,总结研究中得出的重要论点,并对研究的意义和未来展望进行讨论。
1.3 目的本文旨在系统概述和解释百合花粉萌发的形态特征。
通过对百合花粉外观特征和萌发过程进行详细描述,并结合所采用的研究方法和实验设计,引出相关解释机制以及形态特征与萌发之间的关系探讨。
通过本文的阐述,希望能够深入了解百合花粉萌发过程中形态特征的重要性,为进一步研究百合花粉相关问题提供参考和指导。
2. 百合花粉萌发的形态特征2.1 花粉外观特征百合花粉在形态上表现出一些独特的外观特征。
首先,百合花粉呈椭圆形或近球形,并且通常具有平滑而光泽的表面。
其大小约为25-50微米,不同品种和物种之间可能会有轻微的大小差异。
在颜色方面,百合花粉一般呈黄色或浅黄色,但也有少数品种呈红色或褐色。
这种颜色对于吸引传粉媒介如昆虫和风起到重要作用。
此外,百合花粉还具有一定数量的花粉壳和外壳膜。
这些壳和膜通常是透明或半透明的,并能保护花粉内部细胞免受损伤和干扰。
2.2 萌发过程描述百合花粉在适宜条件下可以迅速进行萌发,实现从静止状态到活跃生长状态的转变。
百合花人工辅助授粉的实验报告
百合花人工辅助授粉的实验报告摘要:
本实验旨在探究百合花的人工辅助授粉对其繁殖效果的影响。
通过手动收集花粉,并将其应用于雌蕊上,观察不同处理组的受精率和种子产量变化。
结果显示人工辅助授粉显著提高了受精率和种子产量,验证了该方法的有效性。
材料与方法:
实验材料:百合花(品种自选)、絮状物、小画笔、标签纸、标签笔。
实验步骤:
步骤1:选择开放的百合花进行实验,确保花朵完全开放但未萎缩。
步骤2:根据需要,将花粉从花药中轻轻刷下,并收集在干净的容器中。
步骤3:使用细小的画笔,将收集到的花粉均匀地涂抹在同一花序的雌蕊上。
步骤4:在授粉后的花序位置附近贴上标签纸,并记录相应的授粉日期和处理组别。
步骤5:观察百合花的受精情况,包括花粉管的发育和胚珠的生长。
步骤6:待种子成熟后,进行收获并记录每个处理组的种子数量。
结果与讨论:
受精率:通过观察花粉管的发育和胚珠的生长情况来评估受精率。
实验结果显示,人工辅助授粉组的受精率明显高于对照组(自然授粉)。
种子产量:实验中,人工辅助授粉组的种子产量显著增加,相对于对照组有着更多的成熟种子。
结论:
本实验结果表明,人工辅助授粉对百合花的繁殖效果具有积极影响。
通过手动应用花粉到雌蕊上,可以显著提高受精率和种子产量。
卷丹百合基因组原位杂交探针构建与应用
卷丹百合基因组原位杂交探针构建与应用卷丹百合又称虎皮百合是分布最广泛的一种野生百合,在中国的江苏、浙江、安徽、江西、湖北、西藏、陕西、山东、辽宁和吉林等省区以及朝鲜半岛、日本等区域都有分布。
卷丹具有长势强健、大花、抗病毒、抗镰刀菌等优良性状,可直接应用于园林绿化、庭院和盆栽,其种球可食用和药用,可用于深加工以获得淀粉,种球内的膳食纤维还有降糖作用。
由于卷丹百合有如此广阔的应用空间,因而极具研究价值。
目前国际上对卷丹百合的研究以韩国、日本和中国为主,研究方向主要集中在遗传和育种领域。
卷丹百合属于多倍体复合体,有三倍体和二倍体两种倍性的野生种。
代表种是较早发现的三倍体。
关于二倍体类型的报导出现稍晚。
三倍体主要分布在内陆地区,沿海地区也有少量分布。
二倍体卷丹的自然分布只局限在朝鲜半岛南端到日本对马海峡的沿海地区,未在内陆地区发现,二倍体对濒海环境的依赖和三倍体对经常受干扰的内陆环境(如路边、田间或河边)的强适应能力可能是造成这种地理分布特点的原因。
中国尚未有关于发现二倍体卷丹的报导。
三倍体卷丹和二倍体卷丹之间的进化关系一直是研究者关注的热点之一。
除了在日本对马岛发现的二倍体变种黄花卷丹的花色较特殊以外,二倍体卷丹和三倍体卷丹在形态特征上没有明显区别。
而另外一个野生种大花卷丹在形态特征上也与卷丹高度相似,唯一的区别是大花卷丹上部叶腋间不具珠芽,因而也曾被置于卷丹的进化路线中。
有研究认为三倍体卷丹是由二倍体卷丹与其近缘种大花卷丹杂交后产生的异源三倍体。
但也有学者指出卷丹原种为三倍体,二倍体卷丹是变种。
最近的基因组原位杂交研究发现,以生物素标记的二倍体卷丹基因组作为探针,可以在三倍体卷丹上获得强烈的杂交信号,而以大花卷丹基因组作为探针则没有获得明显的杂交信号,因此认为三倍体卷丹来源于二倍体卷丹而非大花卷丹。
二倍体卷丹和三倍体卷丹都是高度自交不育,而二倍体卷丹株间杂交的结实率则高达76.5%,因此二倍体卷丹既可以采取有性繁殖也可以采用无性繁殖,三倍体卷丹只能采取无性繁殖[13]。
百合不同品种间花粉萌发活力检测分析
百合不同品种间花粉萌发活力检测分析于金平;王媛媛;张琪;王文和;冷平生;赵祥云【期刊名称】《沈阳农业大学学报》【年(卷),期】2018(049)001【摘要】以不同类型百合的花粉为研究对象,探讨不同品种百合花粉萌发的特点以及不同类型百合花粉的萌发是否具有一定的规律性,旨在为百合杂交育种中父本材料的选择以及授粉方法的改良提供依据.以百合5个类型共43个品种的花粉为材料,利用离体萌发法,探讨不同品种百合花粉萌发活力,筛选适用于大部分品种的最佳培养基,结果表明,在蔗糖100g?L-1、硼酸20mg?L-1、琼脂10g?L-1的固体培养基上可以较好地萌发.大多数百合品种都能在12h内达到最大萌发率,也有少数品种在24h还处于萌发状态.百合会因自身遗传特性导致萌发率不同,其中,TR类百合总体萌发活力最强,平均萌发率80.98%;LA类百合萌发率最低,平均为13.49%;OT类、A类和AT类萌发率居中,分别为49.06%,46.05%和50.06%.百合花粉管自身寿命也存在明显差异,在43个百合品种中,发现有18个品种在培养后期花粉萌发率明显下降,这主要是由于培养后期花粉管自身破裂所导致的.因此,在进行杂交育种的过程中,可根据育种目的有针对性地选择父本材料,其中,TR类百合是非常好的父本材料;其他萌发率低于50%的资源做父本时可加大授粉量、采取二次授粉或切割花柱等方式提高授粉成功率;本试验中花粉不能萌发的资源建议不做父本应用.【总页数】6页(P14-19)【作者】于金平;王媛媛;张琪;王文和;冷平生;赵祥云【作者单位】北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206;北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206;北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206;北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206;北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206;北京农学院园林学院/北京林果业生态环境功能提升协同创新中心,北京102206【正文语种】中文【中图分类】S682.2.9【相关文献】1.不同授粉方式对亚洲百合与东方百合种间杂交结实的影响 [J], 雷家军;贺卫丽;赵艳2.不同授粉处理对百合花粉萌发生长及坐果率的影响 [J], 杨晓苓;杨利平;尚爱芹;刘凤栾3.马尾松花粉萌发性状和不同林分马尾松花粉生活力的初步研究 [J], 高爱新;秦国峰;欧阳彤;何玉友;王舟莲;范辉华4.崇左金花茶花粉萌发及在不同贮藏条件下活力变化的研究 [J], 周兴文;杨乐;黄肇宇;张凤兰;王辉5.台湾青枣不同品种花粉萌发和生活力测定 [J], 李颖岳;续九如;史良;李福荣因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察
西北植物学报,2007,27(9):1790-1794Acta Bot.Boreal.2Occident.Sin. 文章编号:100024025(2007)09217902053百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察王文和,王树栋,赵祥云,李小英,于建军,陈之欢(北京农学院,北京102206)摘 要:利用荧光显微镜对百合远缘杂交组合‘Bernini’בPollyanna’花粉萌发及花粉管生长过程进行观察研究,结果显示,授粉后3~30h内花粉萌发形成花粉管,且花粉管生长速度由快到慢,48~51h内花粉管停止生长,花粉管最后深入到花柱的1/3处,并观察到一些异常的花粉管形态;花粉管生长过程中还伴随着一系列的胼胝质反应,出现的部位依次是乳突细胞、花粉管、花柱通道细胞、胚珠中的胚囊.结果表明该杂交组合不亲和.研究认为‘Berni2 ni’柱头乳突细胞是阻碍‘Pollyanna’花粉管生长的第一道屏障,花柱通道细胞是抑制花粉管在花柱内生长的第二道屏障.关键词:远缘杂交;花粉萌发;花粉管生长;百合中图分类号:Q944.58文献标识码:AProcess of Pollen Sprouting and Pollen TubeG row th on the Lily Distant H ybridizationWAN G Wen2he,WAN G Shu2dong,ZHAO Xiang2yun,L I Xiao2ying,YU Jian2jun,C H EN Zhi2huan(Beijing University of Agriculture,Beijing102206)Abstract:This article st udied t he process of pollen sprouting and pollen t ube growt h on t he lily distant hy2 bridization combination‘Bernini’בPollyanna’by t he fluorescence microscope.We observed t hat pollen sp routing formed t he pollen t ube after pollination in3~30h.The speed of pollen t ube growt h from quick to slow,t hen stopped growing between48~51h,finally penet rated into1/3of style.Besides,we also ob2 served some unusual pollen t ube shapes.During t he pollen t ube growt h,it was companied wit h a series of callose responses,which was happened in t he pollen t ube,papilla,canal cell,embryo sac in ovule.The re2 sult s indicated t hat t his hybrid combination was incompatible.We suggested t hat t he‘Bernini’papilla of stigma is t he first hindrance which preventing t he‘Pollyanna’pollen t ube f rom growing and t he canal cell is t he second barrier t hat p reventing t he pollen t ube from growing in stylar canal.K ey w ords:distant hybridization;pollen sprouting;pollen t ube growing;lily 远缘杂交是培育新品种的主要途径,但在百合杂交中存在远缘杂交不亲和现象,使得杂交的成功率非常低.因此,探讨百合远缘杂交不亲和的原因,寻求克服办法,提高杂交成功率,是培养百合品种中亟待解决的问题.杂交亲和性的障碍可能发生在生殖过程的不同阶段,如花粉粒不能萌发、花粉管不能进入柱头、不能到达子房、不能完成受精、胚发育不良及杂种死亡或不育等[1].早在1991年Amaki[2]就利用荧光显微镜技术观察百合花粉在柱头上萌发以及花粉管在花3收稿日期:2007204202;修改稿收到日期:2007207217基金项目:北京市教委基金资助项目(KM200610020006);北京市委组织部基金资助项目(20041D0502109);北京市属市管高校人才强教计划资助项目作者简介:王文和(1964-),男(汉族)、博士、副教授,主要从事植物生殖生物学和植物资源学研究.E2mail:wwhals@柱内生长过程.国内利用荧光显微镜对沙田柚自交和异交亲和性[3]、沙梨自花和异花授粉后花粉在柱头上的萌发及花粉管在花柱内的生长动态和形态变化[4]、甘蓝自交单株的不亲和性[5]、中国樱桃和甜樱桃自花和异花花粉在柱头上萌发的情况[6]、梨与远缘果树杂交不亲和研究[7]、梨不同品种自花授粉和异花授粉花粉管生长动态[8]等进行研究,均取得良好效果.刘春等[9]对麝香百合品种‘白狐’(Wite Fex )的花粉粒在铁亚杂种系品种‘达诺’(Ceb Daz 2zle )柱头上萌发及生长状况进行了观察.本研究运用荧光显微技术,对东方百合品种‘Bernini ’和亚洲百合品种‘Pollyanna ’杂交后,花粉粒的萌发和生长过程进行观察,以期确定百合远缘杂交不亲和发生的阶段及部位,为百合的远缘杂交提供理论依据.1 材料和方法1.1 材 料以东方百合品系‘Bernini ’(伯尼)为母本,亚洲百合品系‘Pollyanna ’(波利亚娜)为父本进行杂交.1.2 方 法将‘Pollyanna ’新鲜的花粉授在母本‘Bernini ’去雄的柱头上,套袋.于授粉后3、6、9、12、15、18、21、24、27、30、33、36、39、42、45、48、51h ,分别采集雌蕊用卡诺固定液固定,固定24h 后,将雌蕊转移到70%的酒精中,4℃冰箱中保存.用1mol !L -1NaO H 溶液进行透明和软化,之后,0.1%的苯胺蓝溶液染色,德国蔡氏Axioskop40荧光显微镜观察和测量,美国的CoolSNA P 摄像系统拍照.2 观察结果2.1 花粉管生长动态授粉3h 后大部分花粉粒萌发,而且花粉管长到了一定长度,表现正常(图版Ⅰ,1),但其均附着在柱头乳突细胞表面;授粉后6h ,多数花粉管仍缠结在柱头表面,花粉管中出现有胼胝质反应(图版Ⅰ,2);9h 后,花粉管深入到柱头单列的乳突细胞之间(图版Ⅰ,3);12h 后,乳突细胞有胼胝质反应(图版Ⅰ,4);15h 后,大量花粉管通过柱头缝隙伸入到花柱组织(图版Ⅰ,5),在距花粉管前端下面的一定距离的花柱道通道细胞开始有胼胝质反应;授粉18h 后,花粉管中多处出现胼胝质塞(图版Ⅰ,6),而且通道细胞胼胝质反应更加强烈(图版Ⅰ,7);30h 后,伸入到花柱组织中的花粉管深达1.45cm (图版Ⅰ,8);授粉后33~45h 内花粉管生长缓慢;授粉后48~51h 内花粉管停止生长,在柱头2.0cm 以下的花柱中没有观察到花粉管.经测量母本‘Bernini ’柱头和花柱总长度平均约为5.5cm ,即花粉管深入花柱的最深度达花柱的1/3.授粉后其花粉管的生长状况见图1.从图1可以看出,授粉后30h之前花粉管生长图1 授粉后花粉管生长过程Fig.1 The growth process of pollen tube after pollination速度较快,平均速度约10.1μm/min ,另外从图1中也可清楚地看出花粉管的长度比花粉管深入花柱的深度大,这是由于部分花粉管附着和缠结在柱头表面而不能伸入花柱的缘故.在观察花粉管生长的过程中,发现一些生长异常的花粉管,其中主要有3种类型:一是在花粉粒中出现较大的胼胝质块,导致花粉管生长和形态异常(图版Ⅰ,9);二是伸长的花粉管在顶部或近顶部出现异常膨大(图版Ⅰ,10);三是少量花粉管螺旋状缠绕在单列的乳突细胞上(图版Ⅰ,11).19719期 王文和,等:百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察2.2 胚珠内部的反应授粉48h后的胚珠中,胚囊的两端即卵器和反足细胞出现胼胝质反应(图版Ⅰ,12);授粉51h后,胚珠的珠孔处有明显的胼胝质反应(图版Ⅰ,13).3 结果与分析(1)绝大部分‘Pollyanna’的花粉粒都可在‘Bernini’柱头上萌发,花粉管开始生长速度较快,约10.1μm/min,但并没有按照正常的生长方向进入花柱道,而是缠结在柱头表面,与柱头的乳突细胞缠绕在一起.据报道在自交亲和的百合花柱中,花粉管的生长速率可以达到45μm/min[10],显然,本试验中花粉管生长速度和正常相比较慢.(2)柱头的胼胝质反应可以作为在一定亲缘范围内检验亲和性或不亲和性的结果[11].百合品种‘Pollyanna’的花粉管在品种‘Bernini’的柱头和花柱中生长过程还伴随着一系列的胼胝质反应,出现的部位依次是乳突细胞、花粉管、花柱通道细胞、胚珠中的胚囊、珠孔.可见‘Bernini’柱头乳突细胞是阻碍‘Pollyanna’花粉管生长的第一道屏障.随后,少量花粉管虽然进入了花柱道内,但向下生长速度缓慢,最后停止生长.花粉管最深达1.5~2.0cm.(3)在花粉管还未到达,大约上部1/3花柱中的花柱道通道细胞就开始有明显的胼胝质反应.这也许是花粉管刺激通道细胞产生了某种抑制花粉管生长物质的结果.本研究初步认为花柱道通道细胞是抑制花粉管在花柱道生长的第二道屏障.(4)远离花粉管的胚珠后期也出现排异性表现,是否可看作是抑制花粉管进入的第三道屏障,有待进一步证实.从试验结果看,‘Bernini’בPollyanna’杂交组合不亲和属于配子体不亲和.由于二者亲缘关系较远,杂交不易成功,但也有成功的报道[12].4 讨 论被子植物双受精的识别是多位点的[13],可分为花粉与柱头、花粉管与花柱及雌雄配子之间3个层次,任何一个部位不能识别都会导致生殖障碍.其中花粉与柱头之间,更确切地说是花粉壁与柱头表膜之间的作用是识别至关重要的第一步.前人研究证明,在传粉受精过程中,花粉壁蛋白与雌蕊组织间的识别反应决定花粉能否萌发以及二者亲和与否[14],在传粉过程中,高分辨率的透射电镜证实花粉壁蛋白在柱头表面的结合发生在乳突细胞的表膜[15].前人研究发现,花粉管尖端有大量钙离子通道分布,它们的开放会导致花粉管尖端的钙离子浓度增高,从而在花粉管前端形成钙离子的浓度梯度,这一梯度控制着花粉管伸长生长的速度和方向[16218].本试验中花粉粒能够萌发,‘Pollyanna’花粉壁蛋白和‘Bernini’柱头乳突细胞表膜能够顺利结合,并从柱头上吸水,在渗出液中开始萌发,但百合远缘杂交花粉管生长速度缓慢,且大量花粉管不能沿着正确的方向生长,是否和花粉管尖端内部原生质中自由钙离子浓度有关,有待研究.孢子体自交不亲和性中,花粉被抑制发生在柱头,而配子体自交不亲和性中,花粉管生长在花柱中被抑制[19].本试验中花粉可在母本柱头上萌发,花粉管生长的抑制发生在花柱中,属于配子体不亲和.在百合花柱中已经成功分离出引起花粉管和引导组织表皮(t ransmitting tissue epidermis,T TE)之间粘附的分子[20,21].这些分子包括一种果胶多聚糖和一种肽———SCA(柱头/花柱中的富含半胱氨酸的粘附分子).在一定的p H条件下,这两种分子连接在一起,并与T TE细胞表面相结合,花粉管细胞和T TE细胞表面即发生粘附作用[20].在本试验中,花粉管在引导组织表面生长速度慢,最后停止,而且在花粉管顶端下面一定距离的通道细胞出现明显的排异反应,最后这种排异反应可深达胚珠内部.那么这一杂交组合中花粉管停止生长是由于花粉管和母本引导组织表皮(即通道细胞)缺少SCA等物质,还是花粉管刺激了通道细胞产生某种抑制花粉管生长的物质,需进一步研究.参考文献:[1] 孟金陵.植物生殖遗传学[M].北京:科学出版社,1995:303.[2] AMA KI2W,HIGUCHI2H.Effect s of stylar exudates collected from pollinated pistils on pollen tube growt h in L ili um longi f lorum[J].Scientia2Horticult urae,1991,46:1-2,147-154.[3] XU E M N(薛妙男),CH EN T T(陈藤土),YAN G J H(杨继华).Observation on self and cross2compatibility in Shatinyu[J].A cta Horti2cult urae S inica(园艺学报),1995,22(2):127-132(in Chinese).[4] CH EN D X(陈迪新),ZHAN G SH L(张绍铃),TAO SH T(陶书田).Characteristics of pollen germination and pollen tube growt h inin vivor sand pear styles[J].J ournal of N anj ing A g ricult ural Universit y(南京农业大学学报),2004,27(3):34-37(in Chinese).2971西 北 植 物 学 报 27卷[5] WU N B (吴能表),XU G D (徐光德),TAN G Y T (唐于婷),ZH L Q (朱利泉),WAN G X J (王小佳).Pollen germination and change ofprotective enzyme activity in style of self incompatible B rassica oleracea L.[J ].J ournal of S out hwest China N ormal Universit y (Nat.Sci.Edi.)(西南师范大学学报!自然科学版),2004,29(5):848-851(in Chinese ).[6] L I X (李 晓),ZHAN G SH L (张绍玲),TAO SH T (陶书田),et al .The differences of pollen germination and pollen tube growt h betweenChinese cherry and sweet cherry[J ].A cta B ot.B oreal.2Occi dent.S in.(西北植物学报),2007,27(3):429-434(in Chinese ).[7] WU J Y (吴巨友),ZHAN G SH L (张绍玲),J IAN G D H (蒋大华),WU J (吴 俊),L IU L M (刘连妹).In situ germination and pollen tubegrowt h of distant pollens in pear[J ].A cta B ot.B oreal.2Occi dent.S in.(西北植物学报),2006,26(11):2197-2201(in Chinese ).[8] DUAN J H (段经华),ZHAO S D (赵思东),et al .Micro 2dynamic pollination and fertilization of t he pear variety banndainiitaka (Py rusp y ri f olia Nakai cv.Banndainiitaka )[J ].A ct a B ot.B oreal.2Occi dent.S i n.(西北植物学报),2006,26(7):1363-1368(in Chinese ).[9] L IU CH (刘 春),MU D (穆 鼎),MIN G J (明 军),DON G L (董 玲).The pre 2fertilization barriers research of L ili um interspecifichybridization[J ].A cta Horticult urae S inica (园艺学报),2006,33(3):653-656(in Chinese ).[10] 胡适宜.被子植物胚胎学[M ].北京:人民教育出版社,1982:129.[11] J AU H G Y ,LORD E M.Movement of t he tube cell in t he lily style in t he absence of t he pollen grain and t he spent pollen tube[J ].S exPlant Rep rod ,1995,8:168-172.[12] Van TU Y L J M ,et al .Breakt hroughs in interspecific hybridization of lily[J ].A cta Horticurae ,2000,508:83-88.[13] XU H P (徐恒平),CAO T H (曹宗巽).Recent progress on t he study of angiosperm gametes and t he specific surface proteins[J ].Ex plo 2ration of N at ure (大自然探索),1995,14(3):50-55(in Chinese ).[14] KNOX R R.Cell.Recognition and pattern for mation in plant s[A ].The development biology of plant and animals[M ].(Graham ,C.F.eds.)W.B.Saunders Company ,Philadelphia ,1976:141.[15] MA T TSON O ,KNOX R B ,H ESLOP 2HARRISON J ,H ESLOP 2HARRISON Y.Protin pellicle of stigmatic papillae is a probable recogni 2tion site in incompatibility reactions[J ].N at ure ,1973,247:298-300.[16] MILL ER D D ,CALL A HAM D A ,et al .Free Ca 2+gradientin growing pollen tubes of L ili um [J ].J .Cell Sci.,1992,101:7-12.[17] MAL HO R ,TREWAVAS A J.Localized apical increases of cytosolic free calcium control pollen tube orientation[J ].Plant Cell ,1996,8:1935-1949.[18] PIERSON E S ,MILL ER D D ,CALLA HAM D A ,et al .Pollen tube growt h is coupled to t he extracellelur calciumion flux and t he int ra 2cellular calcium gradient :Effect of BAP TA 2type buffers and hypertonic media[J ].Plant Cell ,1994,6:1815-1828.[19] 胡适宜.被子植物生殖生物学[M ].北京:高等教育出版社,2005:150.[20] WOL TERS 2AR TA M ,L USH W M ,et al .Lipids are required for directional pollen tube growt h[J ].N at ure ,1998,392:818-821.[21] MOLL ET J C ,PAR K S Y ,NO T HNA GEL EA ,et al .A lily stylar pectin is necessary for pollen tube adhesion to an in vit ro stylar martrix[J ].Plant Cell ,2000,12:1737-1750.图版说明:图版Ⅰ 1.3h 后大多数萌发的花粉粒,×520;2.6h 后花粉管仍在柱头表面,×350;3.花粉管深入到柱头单列的乳突细胞之间,×350;4.12h 后,乳突细胞有胼胝质反应,×600;5.15h 后大量花粉管通过柱头缝隙伸入到花柱组织,×220;6.授粉18h 后,花粉管中多处出现胼胝质塞,×400;7.通道细胞胼胝质反应,×350;8.30h 后,伸入到花柱组织中的花粉管,×350;9.花粉粒中较大的胼胝质块,×600;10.花粉管近顶部异常膨大,×520;11.花粉管螺旋状缠绕在单列的乳突细胞上,×520;12.48h 后胚囊中卵器和反足细胞出现胼胝质反应,×400;13.授粉51h 后,胚珠的珠孔处有明显的胼胝质反应,×180.Explanation of plates :Plate Ⅰ Fig.1.After pollination in 3h ,most of pollen grains sprouting ,×520;Fig.2.After 6h ,pollen tube still exsist on surface of stig 2ma ,×350;Fig.3.Pollen tube stick in among t he single line papillas ,×350;Fig.4.After 12h ,callose responses was in papillose cells ,×600;Fig.5.After 15h ,t he large number of pollens stick in t he stylar cannal t hrough crevice of stigma ,×220;Fig.6.After pollination in 18h ,many part s of pollen tube have callose corks ,×400;Fig.7.Cannal cells have callose responses ,×350;Fig.8.After 30h ,pollen tubes stick in stylar cannal ,×350;Fig.9.Callose block in t he pollen ,×600;Fig.10.Near top of pollen tube abnormal expand ,×520;Fig.11.Pollen tube spiral wind round a papilla cell ,×520;Fig.12.After 48h ,egg apparatus and antipodes in t he embryo sac have arisen callose responses ,×400;Fig.13.After pollination in 51h ,micropyle in ovule clear has callose responses ,×180.39719期 王文和,等:百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察图版Ⅰ PlateⅠ4971西 北 植 物 学 报 27卷。
百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察
百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察王文和;王树栋;赵祥云;李小英;于建军;陈之欢【期刊名称】《西北植物学报》【年(卷),期】2007(27)9【摘要】利用荧光显微镜对百合远缘杂交组合'Bernini'×'Pollyanna'花粉萌发及花粉管生长过程进行观察研究,结果显示,授粉后3~30 h内花粉萌发形成花粉管,且花粉管生长速度由快到慢,48~51 h内花粉管停止生长,花粉管最后深入到花柱的1/3处,并观察到一些异常的花粉管形态;花粉管生长过程中还伴随着一系列的胼胝质反应,出现的部位依次是乳突细胞、花粉管、花柱通道细胞、胚珠中的胚囊.结果表明该杂交组合不亲和.研究认为'Bernini'柱头乳突细胞是阻碍'Pollyanna'花粉管生长的第一道屏障,花柱通道细胞是抑制花粉管在花柱内生长的第二道屏障.【总页数】5页(P1790-1794)【作者】王文和;王树栋;赵祥云;李小英;于建军;陈之欢【作者单位】北京农学院,北京,102206;北京农学院,北京,102206;北京农学院,北京,102206;北京农学院,北京,102206;北京农学院,北京,102206;北京农学院,北京,102206【正文语种】中文【中图分类】Q944.58【相关文献】1.OT型百合与东方百合远缘杂交后代的细胞学观察 [J], 郑思乡;吴嘉垲;毛伟伟;王利龙;张琳;廖晓珊;宋志伟;林庆丹;龙彬;胡颂平2.野生厚朴花粉萌发及花粉管生长过程观察 [J], 王洁;杨志玲;杨旭;檀国印;何正松3.青扦花粉萌发及花粉管生长过程中的钾离子流及BaCl2和TEA的影响 [J], 房克凤;张卿;曹庆芹;秦岭4.桃、李种间杂交花粉萌发及花粉管行为的观察 [J], 曹后男;朴日子;宗成文;赵成日;朱波5.芍药与牡丹远缘杂交花粉萌发与花粉管生长行为观察 [J], 刘建鑫;于晓南因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
百合(Lilium)生物学特性及远缘杂交不亲和性的研究
百合(Lilium)生物学特性及远缘杂交不亲和性的研究百合(Lilium)花是世界名花之一,适合用作切花、盆花和园林布景,深受人们的喜爱。
具有很高的商业价值和观赏价值,还有食用和药用价值。
在我国花卉市场上,无论是芳香醉人的东方(Oriental hybrids)、麝香系列(Longiflorum hybrids),还是朴素大方的亚洲百合(Asiatic hybrids)几乎都是国外培育的,在我国的高寒地区露地栽植的品种和生产用切花品种更是有限。
在百合育种中的抗寒性育种,多年来一直没有新的突破,诸多问题尚未能解决。
在黑龙江省存在野生种卷丹(ncifolium)因其具有栽培百合所不具备的特殊的性状(主要是耐低温)而倍受关注。
本试验是在了解百合生物学特性基础上,对卷丹、亚洲百合与东方百合几个不同系列品种的远缘杂交亲和性进行研究,探索百合远缘杂交生理和遗传机制力求得到抗寒优质的百合品种,为解决百合育种难题提供了基本的理论依据。
通过研究表明: 1.百合形态特性百合远缘杂交种子与百合杂交亲本的种子形态特征无明显差异。
在电镜下观察,卷丹的柱头为不开裂型,而亚洲百合和东方百合的柱头均为开裂型。
2.东方百合系列花粉离体萌发培养基最佳组分构成为:蔗糖为13%、硼酸143mg/kg、琼脂1%。
3.卷丹与东方百合的6个品种杂交(正反交)都不亲和。
正反交不亲和均发生在花粉萌发和花粉管伸长过程中,花粉授到柱头上后萌发率较低,而且伸进花柱的花粉管平均是长到花柱1/3和1/2处就是因为胼胝质沉积停止生长,说明花粉管未能达到柱头基部,不能完成受精作用。
4.亚洲百合与东方百合杂交(正反交)是可以亲和的,但是二者的亲和程度要比二者分别自交过程要推迟3~4天,整个过程要比自交推迟10天左右。
5.在杂交后幼胚离体培养时,以MS培养基加0.01mg/l的NAA为最佳。
幼胚培养时,40天就可诱导成活,但诱导成活率低,龄期越长,诱导成活率越高;胚培养时龄期对真叶及根的分化无显著差异,但对鳞茎形成数量有影响,随着龄期的增加,鳞茎的数量逐渐增加。
OT型百合与O型百合远缘杂交试验
OT型百合与O型百合远缘杂交试验张朝君;郑思乡;许超【摘要】为获得OTO远缘杂交新材料,以OT型百合黄天霸(L.manissa)和东方百合品种西伯利亚(L.siberia)为试材,采用离体受精方法,不同授粉方式,结合胚挽救技术进行远缘杂交试验.结果表明:采用非常规授粉方法授粉后,获得了较高的子房膨大率;而常规授粉方法授粉后15~20 d花瓣便枯萎,没有子房膨大的现象.黄天霸×西伯利亚采用子房切断的方法子房膨大率达到50%,西伯利亚×黄天霸采用柱头嫁接的方法,子房膨大率仅为14%.在正反交试验中,黄天霸×西伯利亚杂交效果比西伯利亚×黄天霸好,成功获得了OTO远缘杂交材料.【期刊名称】《贵州农业科学》【年(卷),期】2010(038)004【总页数】3页(P17-18,22)【关键词】OT型百合;东方百合;离体受精;远缘杂交【作者】张朝君;郑思乡;许超【作者单位】贵州省园艺研究所,贵州省园艺工程技术研究中心,贵州,贵阳,550006;贵州省园艺研究所,贵州省园艺工程技术研究中心,贵州,贵阳,550006;贵州省园艺研究所,贵州省园艺工程技术研究中心,贵州,贵阳,550006【正文语种】中文【中图分类】S682.2;S603.2百合(Lilium)是百合科百合属所有种的总称,其花大色艳,花姿奇特,是世界名花之一。
我国的百合研究因起步晚,技术落后,无自主知识产权品种,长期受到国外的制约,这也成为我国百合产业发展的瓶颈。
远缘杂交育种是创造百合新类型的有效途径,在百合育种中有着重要的现实意义,但其远缘杂交受精障碍是百合育种面临的一个难题。
郑思乡等[1]利用离体受精和胚挽救技术成功获得淡黄花百合与东方百合的远缘杂交种,但OT型与O型百合的远缘杂交研究未见相关报导。
以OT 型百合黄天霸(L.manissa)和东方百合品种西伯利亚(L.siberia)为试材,采用离体受精方法,并研究不同授粉方式,结合胚挽救技术进行远缘杂交试验,旨在获得OOT或OTO型新杂交品系或中间材料,为选育O×OT新品种奠定基础。
科学观察百合花花粉作文
科学观察百合花花粉作文
口语化观察百合花花粉。
哇塞,看看这百合花,花粉真的超美!我拿起放大镜,一探究竟。
花粉颗粒在放大镜下看起来就像是小星星,闪闪发光的。
它们
不是完全圆的,有点弯曲,感觉像是小宇宙里的奇特生物。
我轻轻碰了一下花蕊,花粉就微微颤动,好像在跟我说,“嘿,你看到我了吗?”我立马拿出小瓶子,收集了一些花粉。
在显微镜下,花粉的纹理看得一清二楚,就像是小地图一样复杂。
大自然真的太神奇了,能创造出这么美的东西!
我把花粉放进培养皿里,看它们怎么生长。
刚开始啥都没变,
但过了几天,它们就开始发芽了!真的超酷!
这次观察让我对生命有了新的认识。
每个小生命都这么独特,
这么美,我们要好好保护它们才行!下次我还要观察更多有趣的东西!。
被子植物双受精的基本过程介绍
被子植物双受精的基本过程介绍被子植物双受精的基本过程介绍⑴花粉萌发和花粉管在花柱中生长花粉由各种媒介传到雌蕊的柱头上后,马上与雌蕊发生相互作用。
在亲和的情况下,花粉萌发长出花粉棉花双受精管并钻入柱头。
花粉管进入柱头后,连续在花柱中生长。
不同样植物的花柱在结构上是不同样的。
主要有两种形式:①花柱中有宽广的中空花柱道(如百合 );②花柱是实心的,中央常有特其他引导组织 (如棉花、番茄 )。
花粉管经过中空的花柱道时,一般是沿着通道表面及在通道细胞分泌的物质中生长。
在实心花柱中,花粉管平时是在引导组织充满基质的细胞缝隙中穿行。
一般认为胞缝隙中的基质成分是碳水化合物,主若是果胶物质。
其他,花粉管还可能穿过引导组织的细胞壁生长 (如棉花 ) 或从细胞壁与质膜之间穿行 (如菠菜 )。
花粉管依赖其尾端生长,当生长到必然长度后,原来在花粉中含有的物质全部集中到花粉管的前端。
在生长过程中花粉管除利用自己的储蓄物质外,同时也可能从花柱中吸取营养。
⑵花粉管进入胚囊和释放内容物花粉管伸入子房后,沿子房内壁或胎座连续生长,直达胚珠,经珠孔进入胚珠,最后到达胚囊。
关于花粉管沿必然道路生长的现象,一般认为是受化学物质的吸引,多数学者认为这种化学物质是由助细胞分泌的。
花粉管进入胚囊后的路子也有各种说法,如穿入一个助细胞、从卵与一助细胞之间或卵与胚囊壁之间经过等等。
经过对十多种植物,如棉花、玉米、矮牵牛等的电子显微镜研究,证明花粉管是从一个助细胞进入的,而且所进入的那个助细胞常常是在花粉管进入从前解体。
花粉管就在此助细胞的位置释放出内容物。
经过电子显微镜观察发现有些植物的花粉管的尾端(如矮牵牛、荠菜 )或尾端一侧 (如棉花 )拥有一孔,因此推测花粉管中的精子和其他内容物是经过此孔释放的。
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西北植物学报,2007,27(9):1790-1794Acta Bot.Boreal.2Occident.Sin. 文章编号:100024025(2007)09217902053百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察王文和,王树栋,赵祥云,李小英,于建军,陈之欢(北京农学院,北京102206)摘 要:利用荧光显微镜对百合远缘杂交组合‘Bernini’בPollyanna’花粉萌发及花粉管生长过程进行观察研究,结果显示,授粉后3~30h内花粉萌发形成花粉管,且花粉管生长速度由快到慢,48~51h内花粉管停止生长,花粉管最后深入到花柱的1/3处,并观察到一些异常的花粉管形态;花粉管生长过程中还伴随着一系列的胼胝质反应,出现的部位依次是乳突细胞、花粉管、花柱通道细胞、胚珠中的胚囊.结果表明该杂交组合不亲和.研究认为‘Berni2 ni’柱头乳突细胞是阻碍‘Pollyanna’花粉管生长的第一道屏障,花柱通道细胞是抑制花粉管在花柱内生长的第二道屏障.关键词:远缘杂交;花粉萌发;花粉管生长;百合中图分类号:Q944.58文献标识码:AProcess of Pollen Sprouting and Pollen TubeG row th on the Lily Distant H ybridizationWAN G Wen2he,WAN G Shu2dong,ZHAO Xiang2yun,L I Xiao2ying,YU Jian2jun,C H EN Zhi2huan(Beijing University of Agriculture,Beijing102206)Abstract:This article st udied t he process of pollen sprouting and pollen t ube growt h on t he lily distant hy2 bridization combination‘Bernini’בPollyanna’by t he fluorescence microscope.We observed t hat pollen sp routing formed t he pollen t ube after pollination in3~30h.The speed of pollen t ube growt h from quick to slow,t hen stopped growing between48~51h,finally penet rated into1/3of style.Besides,we also ob2 served some unusual pollen t ube shapes.During t he pollen t ube growt h,it was companied wit h a series of callose responses,which was happened in t he pollen t ube,papilla,canal cell,embryo sac in ovule.The re2 sult s indicated t hat t his hybrid combination was incompatible.We suggested t hat t he‘Bernini’papilla of stigma is t he first hindrance which preventing t he‘Pollyanna’pollen t ube f rom growing and t he canal cell is t he second barrier t hat p reventing t he pollen t ube from growing in stylar canal.K ey w ords:distant hybridization;pollen sprouting;pollen t ube growing;lily 远缘杂交是培育新品种的主要途径,但在百合杂交中存在远缘杂交不亲和现象,使得杂交的成功率非常低.因此,探讨百合远缘杂交不亲和的原因,寻求克服办法,提高杂交成功率,是培养百合品种中亟待解决的问题.杂交亲和性的障碍可能发生在生殖过程的不同阶段,如花粉粒不能萌发、花粉管不能进入柱头、不能到达子房、不能完成受精、胚发育不良及杂种死亡或不育等[1].早在1991年Amaki[2]就利用荧光显微镜技术观察百合花粉在柱头上萌发以及花粉管在花3收稿日期:2007204202;修改稿收到日期:2007207217基金项目:北京市教委基金资助项目(KM200610020006);北京市委组织部基金资助项目(20041D0502109);北京市属市管高校人才强教计划资助项目作者简介:王文和(1964-),男(汉族)、博士、副教授,主要从事植物生殖生物学和植物资源学研究.E2mail:wwhals@柱内生长过程.国内利用荧光显微镜对沙田柚自交和异交亲和性[3]、沙梨自花和异花授粉后花粉在柱头上的萌发及花粉管在花柱内的生长动态和形态变化[4]、甘蓝自交单株的不亲和性[5]、中国樱桃和甜樱桃自花和异花花粉在柱头上萌发的情况[6]、梨与远缘果树杂交不亲和研究[7]、梨不同品种自花授粉和异花授粉花粉管生长动态[8]等进行研究,均取得良好效果.刘春等[9]对麝香百合品种‘白狐’(Wite Fex )的花粉粒在铁亚杂种系品种‘达诺’(Ceb Daz 2zle )柱头上萌发及生长状况进行了观察.本研究运用荧光显微技术,对东方百合品种‘Bernini ’和亚洲百合品种‘Pollyanna ’杂交后,花粉粒的萌发和生长过程进行观察,以期确定百合远缘杂交不亲和发生的阶段及部位,为百合的远缘杂交提供理论依据.1 材料和方法1.1 材 料以东方百合品系‘Bernini ’(伯尼)为母本,亚洲百合品系‘Pollyanna ’(波利亚娜)为父本进行杂交.1.2 方 法将‘Pollyanna ’新鲜的花粉授在母本‘Bernini ’去雄的柱头上,套袋.于授粉后3、6、9、12、15、18、21、24、27、30、33、36、39、42、45、48、51h ,分别采集雌蕊用卡诺固定液固定,固定24h 后,将雌蕊转移到70%的酒精中,4℃冰箱中保存.用1mol !L -1NaO H 溶液进行透明和软化,之后,0.1%的苯胺蓝溶液染色,德国蔡氏Axioskop40荧光显微镜观察和测量,美国的CoolSNA P 摄像系统拍照.2 观察结果2.1 花粉管生长动态授粉3h 后大部分花粉粒萌发,而且花粉管长到了一定长度,表现正常(图版Ⅰ,1),但其均附着在柱头乳突细胞表面;授粉后6h ,多数花粉管仍缠结在柱头表面,花粉管中出现有胼胝质反应(图版Ⅰ,2);9h 后,花粉管深入到柱头单列的乳突细胞之间(图版Ⅰ,3);12h 后,乳突细胞有胼胝质反应(图版Ⅰ,4);15h 后,大量花粉管通过柱头缝隙伸入到花柱组织(图版Ⅰ,5),在距花粉管前端下面的一定距离的花柱道通道细胞开始有胼胝质反应;授粉18h 后,花粉管中多处出现胼胝质塞(图版Ⅰ,6),而且通道细胞胼胝质反应更加强烈(图版Ⅰ,7);30h 后,伸入到花柱组织中的花粉管深达1.45cm (图版Ⅰ,8);授粉后33~45h 内花粉管生长缓慢;授粉后48~51h 内花粉管停止生长,在柱头2.0cm 以下的花柱中没有观察到花粉管.经测量母本‘Bernini ’柱头和花柱总长度平均约为5.5cm ,即花粉管深入花柱的最深度达花柱的1/3.授粉后其花粉管的生长状况见图1.从图1可以看出,授粉后30h之前花粉管生长图1 授粉后花粉管生长过程Fig.1 The growth process of pollen tube after pollination速度较快,平均速度约10.1μm/min ,另外从图1中也可清楚地看出花粉管的长度比花粉管深入花柱的深度大,这是由于部分花粉管附着和缠结在柱头表面而不能伸入花柱的缘故.在观察花粉管生长的过程中,发现一些生长异常的花粉管,其中主要有3种类型:一是在花粉粒中出现较大的胼胝质块,导致花粉管生长和形态异常(图版Ⅰ,9);二是伸长的花粉管在顶部或近顶部出现异常膨大(图版Ⅰ,10);三是少量花粉管螺旋状缠绕在单列的乳突细胞上(图版Ⅰ,11).19719期 王文和,等:百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察2.2 胚珠内部的反应授粉48h后的胚珠中,胚囊的两端即卵器和反足细胞出现胼胝质反应(图版Ⅰ,12);授粉51h后,胚珠的珠孔处有明显的胼胝质反应(图版Ⅰ,13).3 结果与分析(1)绝大部分‘Pollyanna’的花粉粒都可在‘Bernini’柱头上萌发,花粉管开始生长速度较快,约10.1μm/min,但并没有按照正常的生长方向进入花柱道,而是缠结在柱头表面,与柱头的乳突细胞缠绕在一起.据报道在自交亲和的百合花柱中,花粉管的生长速率可以达到45μm/min[10],显然,本试验中花粉管生长速度和正常相比较慢.(2)柱头的胼胝质反应可以作为在一定亲缘范围内检验亲和性或不亲和性的结果[11].百合品种‘Pollyanna’的花粉管在品种‘Bernini’的柱头和花柱中生长过程还伴随着一系列的胼胝质反应,出现的部位依次是乳突细胞、花粉管、花柱通道细胞、胚珠中的胚囊、珠孔.可见‘Bernini’柱头乳突细胞是阻碍‘Pollyanna’花粉管生长的第一道屏障.随后,少量花粉管虽然进入了花柱道内,但向下生长速度缓慢,最后停止生长.花粉管最深达1.5~2.0cm.(3)在花粉管还未到达,大约上部1/3花柱中的花柱道通道细胞就开始有明显的胼胝质反应.这也许是花粉管刺激通道细胞产生了某种抑制花粉管生长物质的结果.本研究初步认为花柱道通道细胞是抑制花粉管在花柱道生长的第二道屏障.(4)远离花粉管的胚珠后期也出现排异性表现,是否可看作是抑制花粉管进入的第三道屏障,有待进一步证实.从试验结果看,‘Bernini’בPollyanna’杂交组合不亲和属于配子体不亲和.由于二者亲缘关系较远,杂交不易成功,但也有成功的报道[12].4 讨 论被子植物双受精的识别是多位点的[13],可分为花粉与柱头、花粉管与花柱及雌雄配子之间3个层次,任何一个部位不能识别都会导致生殖障碍.其中花粉与柱头之间,更确切地说是花粉壁与柱头表膜之间的作用是识别至关重要的第一步.前人研究证明,在传粉受精过程中,花粉壁蛋白与雌蕊组织间的识别反应决定花粉能否萌发以及二者亲和与否[14],在传粉过程中,高分辨率的透射电镜证实花粉壁蛋白在柱头表面的结合发生在乳突细胞的表膜[15].前人研究发现,花粉管尖端有大量钙离子通道分布,它们的开放会导致花粉管尖端的钙离子浓度增高,从而在花粉管前端形成钙离子的浓度梯度,这一梯度控制着花粉管伸长生长的速度和方向[16218].本试验中花粉粒能够萌发,‘Pollyanna’花粉壁蛋白和‘Bernini’柱头乳突细胞表膜能够顺利结合,并从柱头上吸水,在渗出液中开始萌发,但百合远缘杂交花粉管生长速度缓慢,且大量花粉管不能沿着正确的方向生长,是否和花粉管尖端内部原生质中自由钙离子浓度有关,有待研究.孢子体自交不亲和性中,花粉被抑制发生在柱头,而配子体自交不亲和性中,花粉管生长在花柱中被抑制[19].本试验中花粉可在母本柱头上萌发,花粉管生长的抑制发生在花柱中,属于配子体不亲和.在百合花柱中已经成功分离出引起花粉管和引导组织表皮(t ransmitting tissue epidermis,T TE)之间粘附的分子[20,21].这些分子包括一种果胶多聚糖和一种肽———SCA(柱头/花柱中的富含半胱氨酸的粘附分子).在一定的p H条件下,这两种分子连接在一起,并与T TE细胞表面相结合,花粉管细胞和T TE细胞表面即发生粘附作用[20].在本试验中,花粉管在引导组织表面生长速度慢,最后停止,而且在花粉管顶端下面一定距离的通道细胞出现明显的排异反应,最后这种排异反应可深达胚珠内部.那么这一杂交组合中花粉管停止生长是由于花粉管和母本引导组织表皮(即通道细胞)缺少SCA等物质,还是花粉管刺激了通道细胞产生某种抑制花粉管生长的物质,需进一步研究.参考文献:[1] 孟金陵.植物生殖遗传学[M].北京:科学出版社,1995:303.[2] AMA KI2W,HIGUCHI2H.Effect s of stylar exudates collected from pollinated pistils on pollen tube growt h in L ili um longi f lorum[J].Scientia2Horticult urae,1991,46:1-2,147-154.[3] XU E M N(薛妙男),CH EN T T(陈藤土),YAN G J H(杨继华).Observation on self and cross2compatibility in Shatinyu[J].A cta Horti2cult urae S inica(园艺学报),1995,22(2):127-132(in Chinese).[4] CH EN D X(陈迪新),ZHAN G SH L(张绍铃),TAO SH T(陶书田).Characteristics of pollen germination and pollen tube growt h inin vivor sand pear styles[J].J ournal of N anj ing A g ricult ural Universit y(南京农业大学学报),2004,27(3):34-37(in Chinese).2971西 北 植 物 学 报 27卷[5] WU N B (吴能表),XU G D (徐光德),TAN G Y T (唐于婷),ZH L Q (朱利泉),WAN G X J (王小佳).Pollen germination and change ofprotective enzyme activity in style of self incompatible B rassica oleracea L.[J ].J ournal of S out hwest China N ormal Universit y (Nat.Sci.Edi.)(西南师范大学学报!自然科学版),2004,29(5):848-851(in Chinese ).[6] L I X (李 晓),ZHAN G SH L (张绍玲),TAO SH T (陶书田),et al .The differences of pollen germination and pollen tube growt h betweenChinese cherry and sweet cherry[J ].A cta B ot.B oreal.2Occi dent.S in.(西北植物学报),2007,27(3):429-434(in Chinese ).[7] WU J Y (吴巨友),ZHAN G SH L (张绍玲),J IAN G D H (蒋大华),WU J (吴 俊),L IU L M (刘连妹).In situ germination and pollen tubegrowt h of distant pollens in pear[J ].A cta B ot.B oreal.2Occi dent.S in.(西北植物学报),2006,26(11):2197-2201(in Chinese ).[8] DUAN J H (段经华),ZHAO S D (赵思东),et al .Micro 2dynamic pollination and fertilization of t he pear variety banndainiitaka (Py rusp y ri f olia Nakai cv.Banndainiitaka )[J ].A ct a B ot.B oreal.2Occi dent.S i n.(西北植物学报),2006,26(7):1363-1368(in Chinese ).[9] L IU CH (刘 春),MU D (穆 鼎),MIN G J (明 军),DON G L (董 玲).The pre 2fertilization barriers research of L ili um interspecifichybridization[J ].A cta Horticult urae S inica (园艺学报),2006,33(3):653-656(in Chinese ).[10] 胡适宜.被子植物胚胎学[M ].北京:人民教育出版社,1982:129.[11] J AU H G Y ,LORD E M.Movement of t he tube cell in t he lily style in t he absence of t he pollen grain and t he spent pollen tube[J ].S exPlant Rep rod ,1995,8:168-172.[12] Van TU Y L J M ,et al .Breakt hroughs in interspecific hybridization of lily[J ].A cta Horticurae ,2000,508:83-88.[13] XU H P (徐恒平),CAO T H (曹宗巽).Recent progress on t he study of angiosperm gametes and t he specific surface proteins[J ].Ex plo 2ration of N at ure (大自然探索),1995,14(3):50-55(in Chinese ).[14] KNOX R R.Cell.Recognition and pattern for mation in plant s[A ].The development biology of plant and animals[M ].(Graham ,C.F.eds.)W.B.Saunders Company ,Philadelphia ,1976:141.[15] MA T TSON O ,KNOX R B ,H ESLOP 2HARRISON J ,H ESLOP 2HARRISON Y.Protin pellicle of stigmatic papillae is a probable recogni 2tion site in incompatibility reactions[J ].N at ure ,1973,247:298-300.[16] MILL ER D D ,CALL A HAM D A ,et al .Free Ca 2+gradientin growing pollen tubes of L ili um [J ].J .Cell Sci.,1992,101:7-12.[17] MAL HO R ,TREWAVAS A J.Localized apical increases of cytosolic free calcium control pollen tube orientation[J ].Plant Cell ,1996,8:1935-1949.[18] PIERSON E S ,MILL ER D D ,CALLA HAM D A ,et al .Pollen tube growt h is coupled to t he extracellelur calciumion flux and t he int ra 2cellular calcium gradient :Effect of BAP TA 2type buffers and hypertonic media[J ].Plant Cell ,1994,6:1815-1828.[19] 胡适宜.被子植物生殖生物学[M ].北京:高等教育出版社,2005:150.[20] WOL TERS 2AR TA M ,L USH W M ,et al .Lipids are required for directional pollen tube growt h[J ].N at ure ,1998,392:818-821.[21] MOLL ET J C ,PAR K S Y ,NO T HNA GEL EA ,et al .A lily stylar pectin is necessary for pollen tube adhesion to an in vit ro stylar martrix[J ].Plant Cell ,2000,12:1737-1750.图版说明:图版Ⅰ 1.3h 后大多数萌发的花粉粒,×520;2.6h 后花粉管仍在柱头表面,×350;3.花粉管深入到柱头单列的乳突细胞之间,×350;4.12h 后,乳突细胞有胼胝质反应,×600;5.15h 后大量花粉管通过柱头缝隙伸入到花柱组织,×220;6.授粉18h 后,花粉管中多处出现胼胝质塞,×400;7.通道细胞胼胝质反应,×350;8.30h 后,伸入到花柱组织中的花粉管,×350;9.花粉粒中较大的胼胝质块,×600;10.花粉管近顶部异常膨大,×520;11.花粉管螺旋状缠绕在单列的乳突细胞上,×520;12.48h 后胚囊中卵器和反足细胞出现胼胝质反应,×400;13.授粉51h 后,胚珠的珠孔处有明显的胼胝质反应,×180.Explanation of plates :Plate Ⅰ Fig.1.After pollination in 3h ,most of pollen grains sprouting ,×520;Fig.2.After 6h ,pollen tube still exsist on surface of stig 2ma ,×350;Fig.3.Pollen tube stick in among t he single line papillas ,×350;Fig.4.After 12h ,callose responses was in papillose cells ,×600;Fig.5.After 15h ,t he large number of pollens stick in t he stylar cannal t hrough crevice of stigma ,×220;Fig.6.After pollination in 18h ,many part s of pollen tube have callose corks ,×400;Fig.7.Cannal cells have callose responses ,×350;Fig.8.After 30h ,pollen tubes stick in stylar cannal ,×350;Fig.9.Callose block in t he pollen ,×600;Fig.10.Near top of pollen tube abnormal expand ,×520;Fig.11.Pollen tube spiral wind round a papilla cell ,×520;Fig.12.After 48h ,egg apparatus and antipodes in t he embryo sac have arisen callose responses ,×400;Fig.13.After pollination in 51h ,micropyle in ovule clear has callose responses ,×180.39719期 王文和,等:百合远缘杂交花粉萌发及花粉管生长过程观察图版Ⅰ PlateⅠ4971西 北 植 物 学 报 27卷。