动物实验常用手术器械
生理科学实验常用手术器械和家兔实验基本操作PPT课件
➢ 给药方法
• 灌胃法 • 皮下注射法：背部或腿部皮下 • 肌内注射法：后肢大腿部 • 腹腔注射法：腹中线左侧1cm • 静脉注射法：
耳缘静脉、颈外静脉、股静脉等
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耳缘静脉给药法操作要点：
1. 用酒精棉球擦拭或用水湿润局部 2. 左手绷紧皮肤，右手持注射器进针 3. 从远心端平行刺入血管内，顺血管平行方向
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1. 颈外静脉位于颈部两侧皮下 2. 钝性分离一段静脉（不要绷太紧） 3. 穿2根丝线 4. 先用静脉夹夹住近心端，再丝线结扎远心端 5. 剪开静脉、插管、结扎固定 6. 松开静脉夹
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1. 备皮（下腹部，耻骨联合上） 2. 切开皮肤（耻骨联合上3~5cm） 3. 沿腹白线剪开腹膜，暴露膀胱 4. 玻璃分针分离出输尿管，穿2根线 5. 结扎近膀胱端，剪开一小口 6. 向肾脏方向插入插管，结扎固定
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家兔的基本操作
➢ 捉拿方法、秤重
➢ 麻醉、固定 ➢ 给药方法 ➢ 取血方法 ➢ 处死方法
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家兔各种常用急性手术方法
➢ 颈部手术
切开、分离、止血
• 气管插管
缝合、打结
• 颈总动脉插管
• 颈外静脉插管
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➢ 腹部手术
• 输尿管插管
• 膈小肌的分离（P86）
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➢ 股部手术
• 股动脉插管 • 股静脉插管
• 大量放血法
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1. 家兔麻醉，仰卧固定于手术台上 2. 颈部备皮（剪毛） 3. 切开皮肤（甲状软骨下缘正中线向下切3~5 cm） 4. 血管钳钝性分离筋膜肌肉，暴露气管 5. 气管下穿一棉线备用 6. 第3或4软骨环上切开气管的1/3，倒T切口 7. 向下插入气管插管，结扎固定
动物医院常用专用设备
1 动物血液分析仪 用于动物血细胞分析临床诊断
2 半自动生化分析仪 血液生化分析临床诊断
3 电解质分析仪 K、Na、Cl的检测
4 X光机 骨胳、脏器疾病诊断
5 监护仪 重症、手术过程的监护
6 动物B型超声诊断仪 胸、腹腔脏器疾病的诊断
7 生物显微镜 用于（皮肤、粪便检查等）疾病的诊断
16 细菌培养箱 用于动物药敏实验诊断
17 离心机 用于分离样本
18 洗片机 X光片的显影定影
19 三次预真空高温灭菌器 手术器械消毒
20 高频电刀 组织切开和电凝
手术台 手术固定
22 体重称 称重
23 紫外线消毒灯 手术室消毒
24 咽喉镜 咽部疾病检查及气管插管使用
25 尿比重仪 尿比重分析
26 保定笼 动物保定
27 普通冰箱 保存样本及试剂
67壁挂式诊断系统 检眼、检耳
29 器械柜 摆放器械
30 药品柜 药品储存
31 空调 维持技能操作的环境
8 尿液分析仪 用于动物尿液分析诊断
9 动物呼吸麻醉Байду номын сангаас 用于动物全身麻醉
10 动物心电图机 循环系统疾病诊断
11 内窥镜 用于动物器官病变的诊断
12 观片灯 用于读取X光片
13 整体反射无影灯 用于动物手术过程的照明
14 鱼跃雾化仪 用于动物呼吸道疾病的治疗
15 输液泵 用于静脉输液
实验十二 家兔手术技术训练实验报告
实验十二家兔手术技术训练一．实验目的1．学习和掌握家兔的常用手术技术和麻醉技术；2．掌握家兔的气管插管术3．实践家兔的腹部手术技术，并找到输尿管4．学习家兔的开颅术。
二．实验原理1．麻醉在慢性实验或急性在体实验中，施行手术之前必须将动物麻醉。
麻醉可使动物在手术或实验过程中减少疼痛，保持安静，保证实验的顺利进行。
麻醉剂的种类繁多，作用原理不尽相同，在应用时需根据动物的种类以及实验或手术的性质慎重加以选择。
麻醉必须适度，过深或过浅均会给手术或实验带来不良影响。
麻醉的深浅可从呼吸，某些反射的消失，肌肉的紧张程度和瞳孔的大小加以判断。
常用刺激角膜以观察角膜反射。
适宜的麻醉状态是呼吸深慢而平稳，角膜反射与运动反应消失，肌肉松弛。
本实验中家兔的麻醉采用耳缘静脉注射法。
兔耳的外缘血管为静脉，中央的血管为动脉。
注射前需在注射部位剪毛，用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端，使其充血（亦可用动脉夹夹住），并用左手拇指和无名指固定兔耳。
用右手持注射器将针头顺血管方向刺入静脉，刺入后再将左手食指和中指移至针头处，协同拇指将针头固定于静脉内，便可缓缓注射。
如注射阻力过大或局部肿胀，说明针头未刺入血管，应拔出重新刺入。
首次注射应从静脉的远心端开始，以便进行反复注射。
2．动物的固定急性在体实验的手术过程中，必须将麻醉动物固定，以限制动物的活动，保证实验或手术的顺利进行。
实验中最常使用的动物固定方法有两种：背位固定法和腹位固定法，其中关键性的固定部位是头部和四肢。
本次家兔的实验使用背部固定法：（1）头部的固定因为无动物头夹，取线绳代替，即将线绳拉紧动物的门齿，固定于手术台前端的直棒上，以达到固定头部的目的。
（2）四肢的固定在头部固定之后，固定四肢。
四肢用绑带固定，先将绑带打结，再进动物前肢的腕关节和后肢踝关节，将绑带收紧，后肢的绑带可直接拉紧分别扎于手术台两侧的木钩上。
除特殊要求外，前肢的固定方法应为：将两前肢平放在胸部的两侧，再把捆绑前肢的两条绑带从动物背部交叉穿过，并压在对侧前肢的前臂上，最后拉紧绑带，固定于手术台两侧的木钩上。
《机能实验学》手术操作(专科)课件(1)
的1/5，且须经一定时间后才能补充。
6、因麻醉药的作用，可使动物体温缓
慢下降，所以，特别是寒冷季节应注意动
物保温。
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【兔仰卧位固定法】P47
--四肢及两只上门牙固定
将缚绳打活结→绑在兔前肢腕关节上部和后肢踝关节
上部→将两后肢分开拉直，用缚绳缠绕固定于手术台
后缘的钩上→将两前肢平直放在两侧，绑两前肢的左
于喉头下方至胸骨
上缘之间作颈正中
切口4-5cm。
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【颈部手术】P62
切口方法及注意事项：
＆根据实验需要确定切口的位置和大小
必要时要作出标志。切口大小以便于手
术操作为宜。
＆用拇指和食指绷紧皮肤，另一手持手
术刀以适当力量一次切开皮肤及皮下组
织，直到肌层。肌层可用组织剪先剪一
小口，再顺肌纤维用组织钳钝性分离。
两环，中指放在无名指的前
外方剪柄上，食指轻压在剪
柄和刀口交界的轴节处。
.
4
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
﹠止血钳
除用于止血外，有齿的用于
提捏皮肤，无齿的分离皮下
组织。蚊式止血钳适于分离
小血管及小神经周围的结缔
组织。执钳方法与持剪方法
相同。关闭止血钳时，两手
动作相同，但打开止血钳时
则是用拇指和食指持住止血
上和向下剪开腹壁3～5cm → 用手将膀胱翻
至体外→在膀胱底部左右侧仔细辨认输尿管
（注意围绕输尿管横向走行的白色管，为输精
管，与膀胱无联系；输尿管略呈粉红色，自膀
胱底部向腹腔深部延伸）→
.
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【膀胱插管】P65
在输尿管下方穿线→ 将膀胱上翻→结扎尿
手术器械使用与动物手术方法
6. 探针(Touch needle)
分金属探针、玻璃分针 用于对精细部位、组织 的分离和游离，如分离 血管间的结缔组织、游 离神经等。血管插管时， 剪开血管壁后往往先用 金属探针将切口挑起， 再插入导管
二、动物手术的基本过程
1、捉拿动物 2、麻醉动物 3、固定动物 4、手术区备皮——剪毛 5、切开皮肤 6、分离皮下组织与肌肉 7、分离血管、输尿管等 8、插管与固定 9、缝合皮肤 或 术后处死动物
3. 止血钳(Hemostat)
用于止血和分离组织
基本结构：头部、关节活动部、柄 部和套扣。分大、中、小3种规格， 每一规格中又分为直、弯2种类型 使用方法：拇指、无名指分别套入 套扣内，控制展开的力度，食指置 于关节部位，控制方向和准确度
切忌左右手分别抓住套扣部位，用 两手的合力进行止血或分离组织
6
9 30 60 90
一、摄入法给药 1.自动口服给药 2.强制灌胃给药:小鼠3cm,大鼠5cm, 家兔15cm,犬20cm 3.经直肠给药:7-9cm为宜 二、注射法给药 1.皮下注射(需迅速达到药效、不能或不宜经口服给药时采用;局部麻醉用药或
术前供药;预防接种。 部位 :上臂三角肌下缘、上臂外侧、腹部、后背及大腿外侧方 用于各种药物过敏试验，以观 察局部反应；预防接种；局部麻醉的先驱步骤。 部位 ：皮肤试验 取前臂内侧下段；
手术器械 ： 手术刀、止血钳、组织剪、组 织镊、持针器、缝合针、缝线等
常用手术器械
组织剪 组织镊 眼科剪 眼科镊 止血钳
粗剪刀
1. 手术刀 (Scalpel)
刀片和刀柄组成，分为大、中、小号不同类型
大号：主要用于切开皮肤
家兔基本手术实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔的基本解剖结构和生理特点；2. 掌握家兔手术的基本操作技术；3. 培养动手能力和实验操作规范。
二、实验原理家兔作为实验动物，具有解剖结构和生理特点与人类相似，因此在家兔上进行手术实验可以帮助我们更好地了解人体手术操作。
本实验通过对家兔进行基本手术操作，使学生掌握手术基本技能。
三、实验器材1. 实验动物：家兔一只；2. 手术器械：手术刀、手术剪、眼科剪、组织钳、止血钳、手术镊、玻璃分针、插管、动脉夹、棉线等；3. 麻醉药品：1%普鲁卡因、3%戊巴比妥钠；4. 其他用品：注射器、酒精棉球、生理盐水、消毒液等。
四、实验步骤1. 家兔抓取、固定和麻醉（1）将家兔放在实验台上，用右手抓住家兔的后颈部皮肤，左手抓住兔的双脚，将家兔倒立；（2）用酒精棉球擦拭家兔的耳缘静脉，使血管充盈；（3）用注射器抽取1%普鲁卡因5ml，进行局部麻醉；（4）将家兔放在手术台上，用手术钳固定四肢。
2. 手术切口（1）用手术刀在颈部正中线切开皮肤，长约5-7cm；（2）用手术剪剪开皮肤，暴露肌肉组织；（3）用止血钳钳夹肌肉组织，用手术刀分离肌肉组织。
3. 神经、血管分离（1）用眼科剪剪开颈动脉鞘，暴露颈总动脉；（2）用组织钳夹住颈总动脉，用手术刀分离颈总动脉；（3）用手术镊分离颈外静脉，用手术刀分离颈外静脉。
4. 插管技术（1）将颈总动脉插入动脉夹，用手术剪剪口大小为颈总动脉直径的1/3-1/2；（2）将动脉导管插入颈总动脉，插入长度约1cm；（3）用动脉夹固定动脉导管。
5. 术后处理（1）用消毒液消毒手术切口；（2）用手术线缝合皮肤；（3）观察家兔术后恢复情况。
五、实验结果与分析1. 实验结果通过本次实验，学生掌握了家兔的基本解剖结构和生理特点，熟悉了家兔手术的基本操作技术，包括抓取、固定、麻醉、切口、分离、插管等。
2. 实验分析（1）在手术过程中，应严格遵守无菌操作原则，避免手术感染；（2）在分离神经、血管时，要轻柔操作，避免损伤神经、血管；（3）在插管过程中，要掌握好插管深度，避免插管过深或过浅；（4）术后观察家兔恢复情况，确保手术成功。
动物实验基本操作技术新
2. 家兔
• 一手抓住兔颈部的被毛与皮肤，另一手托其臀部 或腹部，使其躯干的重量大部分集中在手上。
兔手术固定台
二、实验动物的给药方法
1. 注射法给药：家兔耳缘静脉注射 大、小鼠尾静脉注射
2. 摄入法给药： 家兔、大鼠、小鼠灌胃法 3. 涂布法给药
摄入法给药
• 自动口服给药 • 强制灌胃给药：大鼠 小鼠 家兔 • 经直肠给药
手术剪
用于剪线和剪开、分离组 织。有直、弯、尖头、圆 头、大、小之分，根据不 同用途选用。手术操作中 用于沿组织间隙进行分离 和剪断组织者称组织剪， 一般为弯形，尖端较钝圆； 用于剪断缝扎线、引流物 或敷料等用品者称剪线剪， 为直形。
眼科剪
主要用于剪血管或神经等柔软 组织，眼科剪也有直头与弯头之 分，正确的执剪姿势与手术剪相 同，即用拇指与无名指持剪，食 指置于手术剪上方。
动物实验基本操作技术
实验动物的捉拿和固定方法 实验动物的给药方法 实验动物的麻醉方法 实验动物的编号方法 实验动物的去毛方法 实验动物的取血方法 实验动物的处死方法
一、实验动物的捉拿和固定方法 1. 小鼠
捉拿时先用右手将鼠尾抓住提起，放在较粗糙的台面 或鼠笼上， 在其向前爬行时，右手向后拉尾，用左手拇指 和食指抓住小鼠的两耳和头颈部皮肤，将其固定于左手手 心中，拉直四肢并用左手无名指压紧尾和后肢，右手即可 作注射或其他实验操作。取尾血及尾静脉注射时，可将小 鼠固定在金属或木制的固定器上。
管里的药全部冲入胃内，以保证灌入 药的剂量准确。灌胃完毕后，先退出 胃管，后退出开口器。
兔灌胃法
关键词：固定，插入（沿上颚壁），检查
家兔耳缘静脉注射
• 将动物固定于实验台上， 剪去耳缘部位的被毛，用 乙醇轻轻擦拭，耳缘静脉 即清晰可见。用左手食指 和中指夹住静脉近心端， 拇指和小指夹住耳缘部分， 以左手无名指和小指放在 耳下作垫，待静脉充盈后， 右手持注射器使针头尽量 由静远心端刺入，顺血 管方向平行、向心端刺入 约1cm。
实验一 生理学实验常用仪器及使用方法
课程名称生理学实验地点科技楼113 实验日期性质：基础
生理学实验常用仪器及使用方法
一、实验目的：
1、生理学实验报告的撰写和要求；
2、学习生理学实验的基本方法和基本技术；
3、生理学常用仪器的原理、使用方法及注意事项
二、实验原理：
三、仪器与试剂（材料）：
常用手术器械、 BL-420、张力传感器、压力传感器
四、实验方法与步骤：
1、常用手术器械的握持使用方法
手术刀手术剪血管钳手术镊玻璃分针咬骨钳颅骨钻动脉夹
2、活体解剖技术
1）动物的选择
2）动物的麻醉
3）动物的固定
4）急性动物实验的操作技术：取血
5）动物的处死
3、生理学仪器组成：
刺激系统探测系统信号调节系统记录系统
4、BL-420N生理机能实验系统
五、结果与分析
六、思考题：
试述BL－420N如何开始实验、实验结果的保存、实验结果的反演。
生理实验指导
实验1 生理学综合实验基本操作训练【实验目的】学习哺育动物手术器械的使用方法实验器械兔手术器械(哺乳类手术器械)1)．手术刀用于切开皮肤和脏器。
2)．手术剪刀弯形剪用于剪毛，其余同蛙手术器械。
3)．镊子同蛙手术器械．4)．止血钳用于止血，分离和牵拉组织。
5)．骨钻6)．动脉夹用于阻断动脉血流。
7)．气管插管用以插入气管，以保证呼吸道通畅。
8)．血管插管用以插入血管，供实验使用。
【实验步骤】（一）术前准备1、麻醉与固定：取家兔一只，称重，耳缘静脉缓慢注射1％戊巴比妥钠3ml/kg 体重进行麻醉。
注射时速度要慢，并注意观察动物情况。
当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
将动物背位固定于手术台上2、备皮（1）剪毛法常用于急性实验。
用一般弯剪刀帐号皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。
勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。
（2）拔毛法适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。
（3）剃毛法用于大动物的慢性实验。
3、消毒常用于慢性实验，一般用碘伏（或强力碘等）或75%酒精常规消毒，但一般碘伏（或强力碘等）的效果较好。
（二）手术1．切开皮肤先用左手拇指和食指绷紧皮肤，右手持手术刀切开皮肤，切口大小以便于手术操作为宜。
2．分离组织有钝性和锐性分离两种。
钝性分离不易损伤神经和血管等，常用于分离肌肉包膜、脏器和深筋膜等；锐性分离要求准确、范围小，避开神经、血管或其他脏器。
（1）颈动脉分离术暴露气管，分别在颈部左右侧用止血钳拉开肌肉，于胸头肌与胸舌骨肌之间，可看到与气管平行的颈总动脉。
它与迷走神经、交感神经、减压神经伴行于颈动脉鞘内（注意颈动脉有甲状腺动脉分支）。
用玻璃分针小心分离颈动脉鞘，并分离出颈总动脉3cm 左右，在其下面穿两条线，一线在近心端动脉干上打一虚结，供固定动脉套管用，另一线准备在头端结扎颈总动脉。
（2）迷走神经、交感神经、减压神经分离术按上法找到颈动脉鞘，先看清3 条神经走行后用玻璃分针小心分开颈动脉鞘，切勿弄破动脉分支。
医疗器械动物实验方案
医疗器械动物实验方案一、实验目的本实验旨在评估一种新型医疗器械在动物模型上的安全性和有效性，以验证其在临床应用前的可行性。
二、实验设计1.实验动物的选择选择符合实验要求的健康成年动物，如大鼠、小鼠或猪等。
动物的体重、年龄、性别应尽量相似，并分为实验组和对照组。
2.实验组和对照组的分配将实验动物随机分为实验组和对照组。
实验组将使用新型医疗器械进行处理，对照组将接受传统的医疗处理。
3.实验操作a.训练：在进行正式实验之前，对实验组和对照组的动物进行训练，以熟悉医疗器械、操作步骤和评估指标等。
b.实验操作：根据所研究的医疗器械的使用方法和临床应用场景，在动物模型上进行操作。
比如，如果是一种用于心脏手术的器械，可以通过在动物心脏上进行开叉手术，并使用该器械进行手术操作。
c.观察和记录：对实验组和对照组的动物进行观察和记录，包括手术过程中的血压、心率、呼吸等生理指标，以及手术后的恢复情况、疼痛指标、并发症等。
4.数据分析对实验数据进行统计分析，包括对比实验组和对照组的差异，以及器械的治疗效果和安全性等。
三、伦理考虑1.实验动物的使用应符合伦理要求，并获得相关伦理委员会的批准。
2.为了减少动物痛苦和苦难，应尽量使用无痛操作和麻醉方法。
麻醉应根据实验需要选择正确的麻醉药物和剂量。
四、安全措施1.操作人员应受过相关培训，熟悉实验操作流程和安全操作规范。
2.实验室应具备必要的安全设备和应急措施，如急救药品和设备。
五、预期结果和可能影响通过本实验，预期可以评估新型医疗器械在动物模型上的安全性和有效性，发现可能存在的问题，并提出改进建议。
这些结果可为临床前的测试和上市前评估提供重要参考。
六、实验难点和风险1.实验操作的技术难度：对于一些复杂的医疗器械，操作难度可能较大，需要操作人员具备相关的专业知识和技能。
2.动物模型的选择：选择适合研究的动物模型是关键，需要综合考虑动物的解剖、生理特性以及疾病模型的相似度。
3.伦理和安全风险：在动物实验中，需要尽量减少动物痛苦，确保动物的福利，并遵守伦理规范。
动物医疗器械分类
动物医疗器械分类
一、诊断器械
诊断器械是用于诊断动物疾病的器械，包括听诊器、血压计、体温计、内窥镜等。
这些器械可以对动物进行初步的生理参数测量和内部检查，帮助医生判断病情和制定治疗方案。
二、治疗器械
治疗器械是用于治疗动物疾病的器械，包括注射器、输液器、导管、扩张器等。
这些器械可以帮助医生进行药物的注射、引流、扩张等操作，以协助治疗动物疾病。
三、手术器械
手术器械是用于进行动物外科手术的器械，包括手术刀、手术剪、手术钳、缝合针线等。
这些器械具有锋利、耐用、易于消毒等特点，是进行动物外科手术的重要工具。
四、实验室设备
实验室设备是用于动物实验和检测的设备，包括生化分
析仪、血液分析仪、尿液分析仪等。
这些设备可以对动物体液进行化验和分析，以协助医生了解病情和评估治疗效果。
五、影像设备
影像设备是用于观察动物内部结构和病变的设备，包括X光机、B超、CT等。
这些设备可以提供高清晰度的图像，帮助医生准确地诊断疾病和制定治疗方案。
六、监测设备
监测设备是用于监测动物生命体征的设备，包括心电图机、呼吸机、血氧仪等。
这些设备可以实时监测动物的生理参数，及时发现异常情况并采取相应措施。
七、急救设备
急救设备是用于动物急救和紧急处理的设备，包括氧气面罩、复苏器、除颤器等。
这些设备可以在紧急情况下提供及时的急救措施，挽救动物生命。
八、麻醉设备
麻醉设备是用于对动物进行麻醉的设备，包括麻醉机、
呼吸麻醉机等。
这些设备可以对动物进行安全的麻醉操作，使医生能够进行手术或诊断检查。
动物实验手术实验报告
一、实验目的1. 了解动物实验手术的基本步骤和方法。
2. 掌握动物实验手术器械的使用。
3. 培养实验操作者的动手能力和观察力。
二、实验材料1. 实验动物：家兔一只，体重2-3kg。
2. 实验器械：手术刀、剪刀、镊子、针线、止血钳、手术剪、手术巾、注射器、注射针、酒精、碘伏、生理盐水等。
3. 实验药品：普鲁卡因、生理盐水、抗生素等。
三、实验方法1. 实验动物处理：将家兔放入实验室内，适应环境，观察其生理状态。
然后，将家兔进行麻醉，采用腹腔注射的方式注射普鲁卡因，剂量为40mg/kg体重。
2. 手术部位：选择家兔的背部作为手术部位。
3. 手术步骤：（1）消毒：用酒精和碘伏对手术部位进行消毒。
（2）切口：用手术刀在手术部位做一长约3cm的切口，注意深度要适中，避免损伤深层组织。
（3）止血：用止血钳夹住切口附近的血管，然后用镊子将血管夹住，剪断血管，结扎止血。
（4）分离组织：用手术剪将切口附近的组织进行分离，暴露出内脏器官。
（5）手术操作：根据实验要求进行相应的手术操作，如器官切除、吻合等。
（6）缝合：用针线将切口附近的组织进行缝合，注意层次分明，结扎牢固。
4. 术后处理：将家兔放回实验室内，观察其恢复情况。
术后给予抗生素预防感染，每日观察切口愈合情况。
四、实验结果1. 手术过程中，实验动物生命体征平稳，未出现不良反应。
2. 手术切口愈合良好，无明显感染迹象。
3. 实验动物术后恢复顺利，食欲、活动正常。
五、实验讨论1. 动物实验手术过程中，应严格遵守无菌操作原则，确保手术部位清洁，防止感染。
2. 在手术过程中，应注意手术器械的清洁和消毒，避免交叉感染。
3. 手术操作要熟练，避免损伤重要组织器官。
4. 术后观察动物恢复情况，及时发现并处理可能出现的问题。
六、实验总结本次实验通过对家兔进行手术操作，使实验者掌握了动物实验手术的基本步骤和方法。
在实验过程中，实验者提高了动手能力和观察力，为今后从事动物实验研究奠定了基础。
蟾蜍心脏观察实验报告
一、实验目的1. 了解蟾蜍心脏的解剖结构。
2. 观察蟾蜍心脏的搏动规律。
3. 分析蟾蜍心脏的起搏点及心搏曲线。
4. 掌握蟾蜍心脏生理实验的基本操作。
二、实验原理蟾蜍属于两栖动物，其心脏结构相对简单，由两心房和一心室组成。
心脏的起搏点位于静脉窦，节律最高，心房次之，心室最低。
正常情况下，心脏活动节律服从静脉窦的节律，其活动顺序为：静脉窦、心房、心室。
这种有节律的活动可以通过传感器或计算机采集系统记录下来，称为心搏曲线。
三、实验工具1. 常用手术器械2. 蟾蜍一只3. 蛙板4. 蛙心夹5. 计算机采集系统6. 张力传感器7. 支架8. 双凹夹9. 秒表10. 滴管11. 培养皿（或小烧杯）12. 纱布13. 棉线14. 任氏液四、实验步骤1. 暴露蟾蜍心脏取蟾蜍一只，用剪刀剪断蟾蜍的头部，暴露出脊髓。
将蟾蜍背部朝上置于蛙板上，用手术镊提起胸骨后方的皮肤，用金冠剪剪开一个小口，然后将剪刀由开口处伸入皮下，向左、右两侧下顿角方向剪开皮肤。
将皮肤掀向头端，再用手术镊提起胸骨后方的腹肌，在腹肌上剪一口，将金冠剪紧贴体壁向前伸入（勿伤及心脏和血管），并沿皮肤切口方向剪开体壁，剪断左右乌喙骨和锁骨，使创口呈一倒三角形。
2. 暴露心脏一手持眼科镊，提起心包膜，另一手用眼科剪剪开心包膜，暴露心脏。
3. 连接仪器将蛙心夹夹住少许心尖部肌肉，将蛙心夹的系线与张力传感器的应变梁相连，并将张力传感器的输出端与计算机采集系统相连。
4. 观察心脏搏动开启计算机采集系统，观察蟾蜍心脏的搏动规律，记录心搏曲线。
5. 分析心脏起搏点通过观察心搏曲线，分析蟾蜍心脏的起搏点。
6. 观察期外收缩与代偿间歇在实验过程中，观察并记录蟾蜍心脏的期外收缩与代偿间歇现象。
五、实验结果与分析1. 心脏搏动规律观察到蟾蜍心脏搏动规律为：静脉窦、心房、心室。
心搏曲线呈规律性波动，表明心脏搏动规律稳定。
2. 起搏点分析通过观察心搏曲线，发现蟾蜍心脏的起搏点位于静脉窦。
兔子胃切开实验报告
一、实验目的1. 学习和掌握兔子胃切开手术的操作步骤。
2. 了解兔子胃部解剖结构及其生理功能。
3. 增强对手术器械使用的熟练度，提高手术操作技能。
二、实验原理胃切开术是一种常用的外科手术，通过对胃壁进行切开，达到检查、治疗或手术的目的。
本实验采用家兔作为实验动物，通过胃切开手术，观察兔子胃部解剖结构，了解胃部生理功能，并掌握胃切开手术的操作步骤。
三、实验材料1. 实验动物：家兔1只2. 实验器材：手术刀、组织剪、手术剪、镊子、止血钳、缝合针、缝合线、碘酒、棉球、纱布、生理盐水、注射器、手术衣、手套等。
四、实验步骤1. 实验动物准备（1）将家兔放入实验动物笼中，适应环境。
（2）对家兔进行麻醉，确保其在手术过程中处于无痛苦状态。
2. 手术操作（1）皮肤消毒：用碘酒对家兔腹部皮肤进行消毒。
（2）切口：在兔子腹部正中，距离腹白线约3cm处，用手术刀纵向切开皮肤，切口长度约5cm。
（3）肌肉层切开：用组织剪将腹直肌切开，暴露胃壁。
（4）胃壁切开：在胃壁上找到胃小弯侧，用手术刀沿胃小弯侧切开胃壁，切口长度约3cm。
（5）探查胃腔：将胃壁切开，观察胃内情况，包括胃内容物、胃壁结构等。
（6）缝合胃壁：用缝合针和缝合线将胃壁进行间断缝合，确保缝合牢固。
（7）缝合肌肉层：用手术剪将腹直肌闭合，用缝合针和缝合线进行间断缝合。
（8）缝合皮肤：用手术剪将皮肤结节缝合，用缝合针和缝合线进行间断缝合。
3. 术后处理（1）用碘酒棉球消毒皮肤两侧。
（2）用纱布包住腹部。
（3）注射消炎药。
（4）器械护士检查清点器械、敷料，无误后与主刀核对。
五、实验结果与分析1. 实验结果实验成功完成兔子胃切开手术，手术过程中，家兔生命体征平稳，术后恢复良好。
2. 实验分析（1）胃切开手术是临床常用手术，通过对胃壁进行切开，可以达到检查、治疗或手术的目的。
（2）手术过程中，注意无菌操作，避免感染。
（3）手术过程中，注意止血，防止术后出血。
（4）术后加强护理，确保动物恢复。
动物实验常用手术器械
3.1 动物生理实验常用手术器械3.1.1 常用手术器械动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同,但也有一些专用器械.现仅介绍常规的手术器械。
(1)手术刀手术刀主要用来切开皮肤和脏器。
手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。
刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。
可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。
持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。
其动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
(2)手术剪和粗剪刀手术剪分钝头剪、尖头剪。
其尖端有直、弯之分。
主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。
也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。
另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。
一般说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。
剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。
正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。
粗剪刀，为普通的剪刀。
在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。
(3)手术镊手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。
有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。
但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。
无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。
正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。
(4)血管钳血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。
主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。
也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。
正确持钳和持剪方法相同（图3.1-6）。
开放血管钳的方法是利用右手已套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。
(5) 骨钳在打开颅腔和骨髓腔时，用于咬切骨质。
[临床医学]机能实验
![[临床医学]机能实验](https://img.taocdn.com/s3/m/151524acfc0a79563c1ec5da50e2524de518d0bf.png)
机能实验基本知识和基本操作一、常用手术器械及执拿方法的介绍手术剪：手术镊：血管钳（止血钳）爱丽丝钳（Alice钳，组织钳，鼠齿钳）：二、家兔手术的基本操作练习捉拿称重麻醉▪麻药：乌拉坦1g/Kg (20%, 5mL/Kg)▪给药途径：耳缘静脉注射▪麻醉标准：角膜反射消失、肌张力下降、痛反射减弱或消失固定剪毛切口分离气管并进行气管插管辨认并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减压神经辨认并分离颈外静脉腹腔注射注意事项：1、备皮时不要将皮肤提起来；2、手术要仔细柔和，尽量不要损伤小血管；3、静脉注射麻醉药时注射速度要适当；4、分离神经时首先要辨别三根神经的走向和位置，使用玻璃针进行神经分离。
生物信号采集与处理的基本知识坐骨神经-腓肠肌标本的制备课程性质：《机能实验学》是以生理学、病理生理学、药理学为基础，通过对三学科实验教学优化、融合、重组形成的一门独立的综合性实践课，是机能学教学的重要组成部分和重要的医学基础课程。
课程内容《机能实验学》包括三部分，第一部分，机能学科实验基本知识和技能；第二部分，经典生理学、药理学、病理生理学实验；第三部分，按系统、方法将正常机能活动、异常病理模型、代表性药物的作用有机结合起来的综合性实验。
教学目的通过技能训练和经典实验，培养学生基本的实验操作能力；通过综合性实验，培养学生运用已学的知识观察、综合、分析和解决实际问题的能力；通过了解科学研究的一般过程和具体的科研实践，培养学生的科学思想，开拓学生的知识视野，激发学生的创新意识，帮助学生树立严肃认真、实事求是、理论联系实际的优良的科学工作态度和作风。
学时安排及考核：总学时为80个学时，本学期32学时，下学期48学时。
该课程的考核方式为：平时成绩占总成绩的30%，实验操作考试占总学时的30%，实验理论笔试占总学时的40%。
对学习《机能实验学》课的基本要求课前认真预习相关内容；课中正规操作，做好实验记录；对实验中重要现象积极思考，并尽可能的做出合理的解释；课后认真完成实验报告，并对实验中出现的“异常现象”通过查阅教科书等进行深入研究和讨论；严格遵守实验室规则。
常用实验动物的了解和解剖器械的使用
常用实验动物的了解和解剖器械的使用一、常用实验动物常用的实验动物有蟾蜍、小白鼠、大白鼠、豚鼠、猫、兔和狗等。
在医学实验中，常常根据不同的实验目的而选用不同的动物进行实验研究。
例如，蟾蜍可以用于观察离体心脏搏动情况的实验，小白鼠常用于样本很大的实验(如药物的半数致死量的测定等)，猫常用于测定脑内电位的实验，而狗是局解手术中常用的实验动物。
在我们细胞生物学实验中，除应用培养细胞外，最常用的动物是蟾蜍和小白鼠，下面对其特点及基本处置做一简单的介绍。
蟾蜍蟾蜍是两栖类动物，由于其取材方便，常用于各种实验。
其细胞较哺乳类动物的细胞大得多，因此常用于观察细胞形态的实验。
1．雌雄鉴别通常雄性蟾蜍较雌性的为小，且在其前肢的l～3趾基部有被称为婚垫的黑疣。
2．捉拿及处死方法：常用捣髓法处死蟾蜍，即用解剖针捣毁其脑组织和脊髓。
具体方法是，左手握住蟾蜍的身体和四肢，使其腹部贴着掌心，食指压住蟾蜍头部前端使其尽量腹屈。
在头与躯干之间可触及一凹陷(即枕骨大孔所在处)，右手持解剖针直插入此凹陷约l～2mm，随即将针尖转向头侧插入颅腔捣毁脑组织。
然后将解剖针抽回并转向尾侧刺入脊椎管内捣毁其脊髓。
如此直至其四肢松软，呼吸消失为止。
小白鼠小白鼠是哺乳动物，是最为常用的实验动物。
1．捉拿方法：将小白鼠放在鼠笼盖铁网上，用右手持其尾巴向后拉，小鼠则会尽力向前蹬。
用左手的拇指和食指抓住其头顶部皮肤，然后用左手小指与手掌之间夹住其尾巴。
2．处死方法：处死应以安乐死为原则，即使之无痛苦而迅速死亡。
常用的方法有颈椎脱位法，断头法和二氧化碳吸入法等。
断头法需用特殊的断头器，二氧化碳吸入法则将小鼠放入盛有二氧化碳的容器内即可。
颈椎脱位法的具体方法是：左手拇指和食指按住小白鼠的头部，左手捉住其尾巴迅速向后猛拉，使其颈椎脱位而立即死亡。
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3.1 动物生理实验常用手术器械
3.1.1 常用手术器械
动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同,但也有一些专用器械.现仅介绍常规的手术器械。
(1)手术刀手术刀主要用来切开皮肤和脏器。
手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。
刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。
可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。
持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。
其动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
(2)手术剪和粗剪刀手术剪分钝头剪、尖头剪。
其尖端有直、弯之分。
主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。
也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。
另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。
一般
说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。
剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。
正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。
粗剪刀，为普通的剪刀。
在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。
(3)手术镊手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。
有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。
但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。
无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。
正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。
(4)血管钳血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。
主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。
也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。
正确持钳和持剪方法相同（图3.1-6）。
开放血管钳的方法是利用右手已套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。
(5) 骨钳在打开颅腔和骨髓腔时，用于咬切骨质。
(6)颅骨钻用于开颅时钻孔。
(7)气管插管急性动物实验时，插入气管，以保证呼吸通畅，或做人工呼吸。
将一端接气鼓或换能器，可记录呼吸运动。
(8)血管插管有动脉插管和静脉插管。
一些小型动物的动脉插管可用16号输血针头磨平来替代。
在急性实验时插入动脉，另一端接压力换能器或水银检压计，以记录血压。
静脉插管插入静脉后固定，以便在实验过程中随时用注射器向静脉血管中注入药物和溶液。
(9)金属探针专门用来毁坏蛙类脑和脊髓。
(10)玻璃分针专用于分离神经与血管等组织。
(11)蛙心夹使用时将夹的前端在蛙心室舒张时夹住心室尖，尾端用线系在换能器（或扛杆）上。
(12)动脉夹用于阻断动脉血流。
(13)蛙板一块20 cm×15 cm的木板，用于固定蛙类。
各种手术器械使用后，都应及时清洗，齿间、轴间的血迹也应用小刷刷洗干净。
洗净后用干布擦拭干，忌用火烤烘干或重击。
久置不用的金属器械应檫油保护。
3.1.2手术器械的消毒方法
在慢性实验中，手术器械必须进行事前消毒。
常用的灭菌和消毒方法有煮沸消毒法、高压蒸汽消毒法和化学药品消毒法。
(1)煮沸消毒法是比较简单方便的消毒方法，除要求速干的物品外，可广泛地应用于多种物品的消毒。
一般用蒸馏水加热，水沸3-5分钟后将器械放到消毒锅内，等到第二次水沸时计算时间，15分钟可以将一般的细菌杀灭，但不能杀灭具有顽强抵抗力的细菌芽胞。
对怀疑有芽胞污染的器械，必须煮沸60分钟以上。
有时为了提高消毒效果，可在水中加入2% 碳酸氢钠，可以提高水的沸点至102～105 ℃左右。
这样，既可以加强灭菌能力，并能防止金属器械生锈（但对橡胶制品有害）。
煮沸灭菌时，器械或物品应放在水面以下，煮沸器的盖子应关闭严密，以保持沸水的温度。
(2)高压蒸汽灭菌高压蒸汽灭菌法需要特制的灭菌器。
通常用蒸汽压15～20
lb/in2，温度可达121.6～126.6 ℃，维持30分钟左右，能杀灭所有的细菌，包括具有顽强抵抗力的细菌芽胞，因此是比较可靠的灭菌方法。
更高的压力或更长的时间，并无必要，相反有可能损坏物品的质量，尤其不宜于橡胶制品和锐利器械的灭菌。
(3)化学药品消毒法做为灭菌的手段，化学药品消毒法，并不理想，其消毒的能力受药物的浓度、温度、作用时间等因素的影响。
但化学药品消毒法不需特殊设备，使用方便，尤其对于某些不宜用热力灭菌的用品的消毒，仍不失为一个有用的补充手段。
器械在浸泡入化学消毒剂之前，应该将沾染污物洗净，尤其是油脂覆盖的器械，妨碍化学药品对器械的消毒作用，所以应该事先仔细将油脂擦净。
为了避免化学消毒剂对组织的有害作用，消毒后的器械在使用前应该用开水冲洗干净。
常用的化学消毒剂有：①LJ-强化戊二醛（加入亚硝酸钠可防锈），②70%酒精（不适宜金属器械的消毒），③0.1%新洁而灭(加入亚硝酸钠可防锈)，④酶皂溶液,⑤甲醛溶液等。
浸泡金属器械的时间不应小于30 min,除酒精、新洁尔灭外，其它消毒剂消毒的器械在使用前应注意用无菌盐水冲洗干净。