引物设计教程课件
引物设计ppt
辅助软件:DNASIS
•回顾PCR原理
PCR的六大要素
• • • • • • 引物 DNA聚合酶 dNTPs 模板 缓冲液 Mg2+
DNA的表示方法
DNA有方向性,5’-------3‘ 大肠杆菌基因组大小:460万碱基对(bp)
基因的表示方法
• CDS:complement(4189888..4190658)‘板书 • CDS: (4189888..4190658)
原则4
预测引物自身的二级结构,3‘末端必须游离
在DNA聚合酶和dNTP存在的情况下,引物以自身为模 板,沿着3‘末端延伸
允许
允许
原则5
正反向引物之间不能互补配对
正向引物与正向引物也不能互补配对
反向引物与反向引物也不能互补配对
如何检查正反向互补配对
• 取正向引物的3’末端的四个碱基,反向互补 后,在正反向引物中查找 • 若查找得到说明有互补配对的情况存在, 引物要重新设计(删减或增加3’碱基数量)
基因是有方向性的,有时在这条链上,而有时在反向互补链上
起始密码子atg,编码甲硫氨酸
终止密码子:taa,tag,tga,不编码氨基酸
引物设计软件介绍
• DNASIS的功能:
• • • • 1.获得反向互补序列 2.搜索限制性内切酶位点 3.翻译情况 4.预测二级结构
• 引物:
• 要扩增模板DNA,首先要设计两条寡核 苷酸引物,实际上就是两段与待扩增靶DNA 序列互补的寡核苷酸片段,两引物间距离 决定扩增片段的长度,两引物的5’端决定扩 增产物的两个5’末端位置。由于引物是决定 PCR扩增片段长度、位置和结果的关键, 因此,引物设计也就更为重要。
Tm值的计算
《PCR引物设计》课件
04
pcr引物的应用与案例分 析
pcr引物在基因克隆中的应用
01
pcr引物用于基因克隆的目的是为了获得目的基因的序列信息, 进而进行后续的基因功能和表达研究。
02
设计特异性引物,通过pcr技术,从基因或基因组中筛选出目的基因。
引物设计需考虑基因序列的特异性、扩增效率和避免非特异性
03
扩增等因素。
引物特异性优化
避免引物间的互补
引物之间不应存在互补序列,以避免形成引物二聚体或发夹 结构。
避免引物与模板扩增 和产物。
引物扩增效率的优化
引物与模板的匹配度
引物的3'端应与模板完全匹配,以提 高引物的扩增效率。
引物之间的匹配度
两个引物之间应有良好的匹配度,以 保证PCR反应的顺利进行。
引导合成
引物作为合成子链的起点,通过与 DNA聚合酶的结合,引导合成与 模板互补的DNA链。
决定产物长度
引物的设计决定了PCR产物的长度 ,通过选择合适的引物,可以控制 产物的大小和特异性。
pcr引物设计的基本原则
特异性
长度和序列
引物应与模板DNA具有高度的特异性,避 免与其他非目标DNA序列发生非特异性结 合。
pcr引物的未来发展方向与挑战
引物设计的自动化
随着生物信息学的发展,未来引物设计 可能更加自动化,减少人工干预和误差
。
标准化和质量控制
建立引物设计的标准化流程,加强引 物设计的质量控制,确保实验结果的
可靠性和可重复性。
新型引物设计策略
针对特定需求,开发新型引物设计策 略,提高PCR反应的特异性和灵敏度 。
引物灵敏度测试
03
测试引物在不同模板浓度下的扩增效率,选择灵敏度较高的引
《引物设计教程》课件
适当提高退火温度有助于减少引物二 聚体的形成,因为较高的温度下二聚 体形成的概率降低。
引物特异性不高的解决策略
引物特异性验证
在引物设计完成后,应通过实验验证其特异性,确保引物只对目标序列有反应。
避免引物间的交叉反应
在设计引物时,应确保引物之间不存在交叉反应,避免与非目标序列的结合。
引物3’端的选择
Primer Premier
一款功能强大的引物设计软件,支持 多种PCR方法,可进行多参数搜索和 灵活的筛选功能。
Oligo
提供多种类型的寡核苷酸合成和设计 功能,包括引物、探针、适配体等。
GeneFisher
适用于已知序列的基因片段设计通用 引物。
BatchPrimer3
在线引物设计软件,支持多参数搜索 和灵活筛选功能。
02
引物设计的步骤
确定目标基因序列
目标基因序列的来源
可以是基因组、转录组、cDNA等。
目标基因序列的选择标准
选择基因序列时应考虑其功能、表达水平、变异程度等因素。
目标基因序列的获取方法
可以通过基因数据库、文献报道、实验测序等方法获得。
选择合适的引物序列
引物序列的设计原则
引物序列应具有特异性,避免与基因组其他序列发生非特 异性结合;长度一般在18-30bp之间;GC含量应适中, 一般在40%-60%之间。
引物长度一般在15~30碱基之间,过短可 能降低引物特异性,过长则可能导致引物 结合温度升高,不利于引物的特异性。
碱基分布均匀原则
避免二级结构原则
引物序列中的G+C含量在40%~60%之间 ,避免出现连续的4个以上的G或C。
引物自身及引物之间不能形成互补性二聚 体或发夹结构等二级结构。
第三章4 pcr引物设计 ppt课件
❖ 4、要设计两条链的引物,Sense链和AntiSense链,注意上下游引物: Sense链是上游 引物, Anti- Sense链是下游引物(如何判断)
❖ 5、序列前后可以加一下NNNNNN来满足引物 长度的需要,特别是酶切位点和保护碱基
❖ 其Tm值是寡核苷酸的解链温度,即在一定盐浓度条 件下,50%寡核苷酸双链解链的温度,
❖ 有效启动温度,一般高于Tm值5~10℃。若按公式 Tm=4(G+C)+2(A+T)估计引物的Tm值,则有效 引物的Tm为55~80℃,其Tm值最好接近72℃以使复 性条件最佳。
❖
❖ Tm温度过高过低会出现问题
❖ 7.引物之间
两引物之间不应不互补性,尤应避免3′端的 互补重叠以防引物二聚体的形成。一对引物 间不应多于4个连续碱基的同源性或互补性。
❖ 8.引物的3’端 引物的延伸是从3′端开始的,不能进行任何
修饰。3′端也不能有形成任何二级结构可能, 引物3′端不能发生错配。
❖ 9.引物的5′端 引物的5′端限定着PCR产物的长度,它对扩
第三章4 pcr引物设计 ppt课件
十条PCR引物的设计原则总述
❖ ① 引物应用核酸系列保守区内设计并具有特异性。 ❖ ② 产物不能形成二级结构。(如何避免) ❖ ③ 引物长度一般在15~30碱基之间。(太长和太短?) ❖ ④ G+C含量在40%~60%之间。 ❖ ⑤ 碱基要随机分布。 ❖ ⑥ 引物自身不能有连续4个碱基的互补。(引物二聚合体) ❖ ⑦ 引物之间不能有连续4个碱基的互补。 ❖ ⑧ 引物5’端可以修饰。 ❖ ⑨ 引物3’端不可修饰。 ❖ ⑩ 引物3’端要避开密码子的第3位。
第五章PCR引物设计-精选.ppt
引物与模板应具有较高的结合能量,这 样有利于引物与模板序列的整合。因此, 5´端与中间段的ΔG值应较高,引物3’端
的△G 值过高,容易在错配位点形成双链结构 并引发DNA 聚合反应。
算法:邻近热力学
例:ACGG 和其互补 TGCC 结合的ΔG: ΔG(ACGG)= ΔG(AC)+ ΔG(CG)+ ΔG(GG)
同时应预测将扩增的片段单链是否形二 级结构。如这个区域单链能形二级结构, 就避开它。如这一段不能形二级结构, 那就可以在这一区域设计引物。
若不能避开这一区域时,用7-deaza-2′脱氧GTP取代dGTP对扩增的成功是有帮 助的。
1、引物设计的原则
① 引物要跟模板紧密结合; ② 引物与引物之间不能有稳定的二聚体或发夹
引物设计要点(3)
引物的Tm值。Tm值最好接近72℃。过高(>72℃)
或过低(<37℃)都不利于引发反应。上下游引物的 Tm 不能相差太大。
长度为25mer以下的引物:Tm = 4℃(G + C)+ 2℃(A + T)
对于更长的寡聚核苷酸, Tm = 81.5 + 16.6 x Log10[Na+] + 0.41 (%GC) –
因密码子的第3位易发生简并,会影响扩增特 异性与效率。
引物的5′端
引物的5′端限定着PCR产物的长度,它对扩增特异性 影响不大。 引物5′端修饰包括:加酶切位点;标记生物素、荧光、 地高辛、Eu3+等;引入蛋白质结合DNA序列;引入 突变位点、插入与缺失突变序列和引入一启动子序列 等。
引物的GC含量一般为45-55%,过高或 过低都不利于引发反应。上下游引物的 GC含量不能相差太大。
《引物设计教程》课件
引物长度:通 常为15-30bp, 过长可能导致 非特异性扩增
引物GC含量: 尽量控制在 40-60%,避
免形成二级结 构
引 物 Tm 值 : 应接近目标序 列 的 Tm 值 , 以提高扩增效
率
引物3'端:避 免形成发卡结 构,以免影响
扩增效果
引物特异性: 确保引物与目 标序列具有高 度特异性,避 免非特异性扩
增效率和稳定性
引物3'端:避免3'端 出现连续3个或以上 的碱基,以降低错配
率
引物二级结构:使用 软件预测引物二级结 构,避免形成发卡结 构,提高扩增效率
引物特异性:通过 BLAST比对,确保引 物特异性,避免非特
异性扩增
引物浓度:优化引物 浓度,以提高扩增效
率和稳定性
引物纯度:确保引物 纯度,避免污染和降 解,提高扩增效率和
引物GC含量:尽量保持 50%左右,避免过高或 过低
引 物 Tm 值 : 确 保 引 物 Tm 值在55-65℃之间,以提 高扩增效率
引物特异性:确保引物与 目标序列具有高度特异性, 避免非特异性扩增
引物错配:避免引物内部 错配,以提高扩增效率和 准确性
引物设计软件:可使用 Primer3、OligoT等软 件辅助设计引物
引物设计不当导 致扩增失败
引物设计不当导 致非特异性扩增
引物设计不当导 致扩增效率低
引物设计不当导 致扩增产物长度 不均一
引物设计软件:选择 合适的引物设计软件, 如Primer3、Primer-
BLAST等
引物长度:确保引物 长度在18-25bp之间, 以提高特异性和扩增
效率
引物GC含量:保持 引物GC含量在4060%之间,以提高扩
手把手教你设计引物(图文并茂)
手把手教你设计引物(图文并茂)不知不觉几年下来自己也快毕业了,感谢丁香园这些年来的帮助。
没有什么可回报的东西,就发个帖教教新人如何设计引物吧,尽量做到手把手的教,图文并茂。
引物设计的帖子不少,以前很多战友会推荐Oligo、PrimerPremier、DNA man等等软件。
这些软件设计完最后还是要去BLAST比对下,所以我教大家一种易懂实用的在线设计方法,觉得好的话请投个票。
就以人的PTEN基因为例,首先你要找到他的基因序列,如果你要用的是cDNA,就找它的mRNA序列。
如果你要做的是DNA,就找DNA的序列。
以cDNA为例,普遍的一种方法是上PUBMED中GENE栏搜索找到cDNA那栏,但PUBMED导出序列不太方便,我介绍个网站/index.html1. 输入目的基因,进入2.在左侧栏选择TRANSCRIPT,选择后进入3. 选择PTEN-001中的TRANSCRIPT进入,点击左侧cDNA4. 然后点击CONFIGURE THIS PAGE进入设置你要显示的内容5. 除了第一栏SHOWEXONS选择YES外,其他的都选择NO,然后取个名字保存SAVE CONFIGURATION AS6. 然后在左侧栏点击DOWNLOADVIEW AS RTF可下载你要的cDNA序列,这个文件可以用WORD打开,不同的颜色代表一个外显子间断下载后打开的WORD7. 然后根据可以根据你感兴趣的序列设计引物了,比如我在分别在第6和第7外显子分别设计上下游引物。
选取并复制第6和第7外显子序列8. 登陆/tools/primer-blast/,粘贴这段序列,设置好RANGE和PCR产物的大小,然后在下面点击GET PRIMERS,可以在线设计并比对引物9.最后选择一个比较特异性的引物,条带大小要尽量单一,其他的基因序列尽量不要比对到。
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• 一般是用来区分同源性较高的模板序列或者使用 于产生一些突变位点
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• Tm值的计算 • 一般的公式 • Tm = 4 (G+C) + 2(A+T) • 对于长一些的引物可用更为准确的
• nearest-neighbor (Frier et al. (1986) )
(composition),等等。必要时还需对引物
进行修饰,如增加限制性内切酶位点,引进
突变等。
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一般原则
• 引物的长度一般为15-30 bp,常用的是18-24 bp, 但不应大于38。
• 引物过短又同时会引起错配现象,一般来说引物 长度大于16bp是必要的(不容易引起错配)。
• 例如:一个长度为12bp的引物在人类基因组上存 在200个潜在的退火位点(3 x 109/412=200 ).而一个 长度为20bp的引物在人基因组上存在的退火位点 只有1/400个.
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一般原则
6. 对引物的修饰一般是在5’端增加酶切位点, 应根据下一步实验中要插入PCR 产物的载 体的相应序列而确定。
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一般原则
7. 引物二级结构对PCR反应的影响。 尽可能少的引物二聚体。
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常用的引物设计软件
• Oligo 6 (引物评价)* • Primer Premier (自动搜索)* • Vector NTI Suit • Dnasis • Omiga • Dnastar • Primer3 (在线服务)*
7、脊椎动物线粒体(Vertebrate Mitochondrion)
8、酵母线粒体(Yeast Mitochondrion)
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Primer Premier 5.0使用介绍(1) Load sequence
Preimer Premier 启动界面
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基本信息
Original sequence
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一般原则
2. 引物序列在模板内应当没有相似性较高, 尤其是3’端相似性较高的序列,否则容易 导致错配。引物3’端出现3 个以上的连续 碱基,如GGG 或CCC,也会使错误引发机率 增加。
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一般原则
3,引物3’端的末位碱基对Taq 酶的DNA 合成效 率有较大的影响。不同的末位碱基在错配 位置导致不同的扩增效率,末位碱基为A 的错配效率明显高于其他3 个碱基,因此 应当避免在引物的3’端使用碱基A。另外, 引物二聚体或发夹结构也可能导致PCR 反 应失败。5’端序列对PCR 影响不太大,因此 常用来引进修饰位点或标记物。
1、纤毛虫大核(Ciliate Macronuclear)
2、无脊椎动物线粒体(Invertebrate Msma)
4、植物线粒体(Plant Mitochondrion)
5、原生动物线粒体(Protozoan Mitochondrion)
6、一般标准(Standard)
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一般原则
4. 引物序列的GC 含量一般为40-60%,过高或 过低都不利于引发反应。上下游引物的GC 含量不能相差太大。
不同的算法推荐45-55%或50-60%
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一般原则
5. ∆G 值是指DNA 双链形成所需的自由能,该 值反映了双链结构内部碱基对的相对稳定 性。应当选用3’端∆G 值较低(绝对值不超 过9),而5’端和中间∆G 值相对较高的引 物。引物的3’端的∆G 值过高,容易在错配 位点形成双链结构并引发DNA 聚合反应。 (能值越高越容易结合)
temperature),引物与模板形成双链的内部 稳定性(internal stability, 用∆G 值反 映),形成引物二聚体(primer dimer)及发夹
结构(duplex formation and hairpin)的
能值,在错配位点(false priming site)
的引发效率,引物及产物的GC 含量
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Primer Premier 5.0 的使 用技巧简介
主要功能: 1、即引物设计 2、限制性内切酶位点分析 3、DNA 基元(motif)查找 4、同源性分析
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简并引物设计
• 根据氨基酸序列来设计引物DNA引物
Premier Primer 5提供了8种生物遗传密码使 用的偏好选择
Sequence name
Choose a function
Use these two button to translate the DNA seq to a protein seq or a
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PCR引物设计
• 引物设计是PCR 技术中至关重要的一环。使 用不合适的PCR 引物容易导致实验失败:表 现为扩增出目的带之外的多条带(如形成引 物二聚体带),不出带或出带很弱,等等。 现在PCR 引物设计大都通过计算机软件进行。 可以直接提交模板序列到特定网页,得到设 计好的引物,也可以在本地计算机上运行引 物设计专业软件。
PCR引物设计及相关软件使 用
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主要内容
• 背景 • PCR引物设计原则 • 常用PCR引物设计软件 • Primer Premier 5.0 介绍 • Oligo 6.22 介绍 • 在线Primer3 介绍
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PCR
聚合酶链反应(Polymerase Chain Reaction ,PCR)是80年代中期发展起来的体 外核酸扩增技术。它具有特异、敏感、产率 高、快速、简便、重复性好、易自动化等突 出优点;能在一个试管内将所要研究的目的 基因或某一DNA片段于数小时内扩增至十万乃 至百万倍,使肉眼能直接观察和判断;可从一 根毛发、一滴血、甚至一个细胞中扩增出足 量的DNA供分析研究和检测鉴定。
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4
引物设计的原则
• 引物与模板的序列要紧密互补 • 引物与引物之间避免形成稳定的二聚体或发
夹结构 • 引物不能在模板的非目的位点引发DNA 聚合
反应(即错配)。
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具体因素
• 如引物长度(primer length),产物长度 (product length),序列Tm 值(melting