植物的溶液培养及缺素培养
植物缺素培养实验报告范文
植物缺素培养实验报告范文实验一：玉米的溶液培养及缺素培养实验一、实验目的1、掌握种子发芽和无土栽培的实验技术以及配制贮备液的方法，了解氮、磷、钾等元素对植物生长发育的影响和学习判断缺素症状。
2、了解分光光度计的使用方法；掌握计算叶绿体各色素成分含量的方法。
3、学会AM-300手持式叶面积仪测定叶面积的方法二、实验原理1、植物在必需的矿物元素供应下正常生长，如缺少某一元素，便会产生相应的缺乏症。
用适当的无机盐制成营养液，即能使植物正常生长，称为溶液培养，如果用缺乏某种元素的缺素液培养，植物就会呈现缺素症状而不能正常生长发育。
将所缺元素加入培养液中，该缺素症状又可逐渐消失。
2、叶片中叶绿素含量的高低是反映植物叶片光合能力的一个重要指标。
另外，叶绿素的含量是植物生长状态的一个反映，一些环境因素如干旱、盐渍、低温、大气污染、元素缺乏都可以影响叶绿素的含量与组成，并因之影响植物的光合速率。
根据朗伯—比尔定律，某有色溶液的吸光度A与其中溶质浓度C和液层厚度L成正比，即A＝KCL式中：K比例常数。
当溶液浓度以百分浓度为单位，液层厚度为1cm时，K为该物质的吸光系数。
如果溶液中有数种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总吸光度等于各组分在相应波长下吸光度的总和。
这就是吸光度的加和性。
3、叶片性状特征直接影响到植物的基本行为和功能。
叶面积是植物研究中的一个常用指标,叶面积的大小决定着植物接收光合有效辐射(photoyntheticallyactiveradiation,PAR)的量,与干物质产量和地上净初级生产力有密切关系,反映了植物对其地理分布和养分条件等外界因素的适应策略。
同时,叶面积也是影响植物生长、果实发育和品质的重要生理和形态指标。
三、用品与材料1、材料：玉米种子；2、用品：培养缸、试剂瓶、容量瓶、烧杯、移液管、量筒、精密天平、棉花(或海绵)刻度尺、分光光度计、AM-300手持式叶面积仪；3、试剂：硝酸钙、硝酸钾、磷酸二氢钾、磷酸二氢铵、硫酸镁、氯化钾、氯化钙、硫酸锰、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、硼酸、硫酸锌、氯化锰、钼酸、硫酸铜。
植物生理学复习思考题答案
一、名词解释第一章植物的水分代谢1.水势：每偏摩尔体积的水的化学势称为水势。
2.渗透作用：溶液中的溶剂分子通过半透膜扩散的现象。
对于水溶液而言，是指水分子从水势高处通过半透膜向水势低处扩散的现象。
3.蒸腾作用：植物体内的水分以气态从植物体表散失到大气中去的过程。
4.蒸腾速率：又称蒸腾强度或蒸腾率，指植物在单位时间内、单位叶面积上通过蒸腾作用散失的水量。
第二章植物的矿质营养1.溶液培养：在含有全部或部分营养元素溶液中培养植物的方法2.载体运输学说：质膜上的载体蛋白属于内在蛋白，它有选择地与质膜一侧的分子或离子结合，形成载体－物质复合物，通过载体蛋白构象的变化，透过质膜，把分子或离子释放到质膜的另一侧。
第三章植物的光合作用5.光合作用：通常是指绿色细胞吸收光能，把二氧化碳和水合成有机物，同时释放氧气的过程。
从广义上讲，光合作用是光养生物利用光能把二氧化碳合成有机物的过程。
6.双光增益效应或爱默生增益效应：在用远红光照射时补红光(例如650nm的光)，则量子产额大增，比用这两种波长的光单独照射时的总和还要高。
这种在长波红光之外再加上较短波长的光促进光合效率的现象被称为双光增益效应，因这一现象最初由爱默生(Emerson)发现的，故又叫爱默生效应。
7.光合磷酸化：光下在叶绿体把ADP与无机磷合成ATP，并形成高能磷酸键的过程。
8.光补偿点：同一叶片在同一时间内，光合过程中吸收的CO2和呼吸过程释放的CO2等量时的光照强度。
9.光呼吸：植物的绿色细胞在光照下吸收氧气释放CO2的过程，由于这种反应仅在光下发生，需叶绿体参与，并与光合作用同时发生，故称作为光呼吸。
因为光呼吸的底物乙醇酸和其氧化产物乙醛酸，以及后者经转氨作用形成的甘氨酸皆为C2化合物，因此光呼吸途径又称为C2循环。
第四章植物的呼吸作用1.呼吸商：简称RQ，指植物在一定时间内，呼吸作用所释放的CO2的量与吸收的O2的量的比值。
2.温度系数：是指在生理温度范围内，温度每升高10 ℃所引起呼吸速率增加的倍数。
缺素培养实验报告
一、实验目的1. 了解植物生长所需的基本营养元素。
2. 掌握缺素培养实验的方法和步骤。
3. 分析植物在不同营养元素缺乏条件下的生长状况。
二、实验原理植物生长需要多种营养元素，包括大量元素和微量元素。
大量元素主要有氮、磷、钾、钙、镁等，微量元素主要有铁、硼、锌、铜、锰等。
这些元素对植物的生长发育具有重要作用。
本实验通过控制植物生长环境中营养元素的供给，观察植物在不同营养元素缺乏条件下的生长状况，从而了解植物对营养元素的需求。
三、实验材料1. 植物材料：小麦种子2. 培养基：Hoagland溶液3. 营养元素：氮、磷、钾、钙、镁、铁、硼、锌、铜、锰等4. 实验器具：培养皿、移液管、显微镜等四、实验步骤1. 准备培养基：按照Hoagland溶液的配方，将各种营养元素溶解于水中，配制成一定浓度的溶液。
2. 分组处理：将小麦种子分为若干组，每组代表一种营养元素的缺乏情况。
具体分组如下：A组：正常组，不缺任何营养元素；B组：缺氮组；C组：缺磷组；D组：缺钾组；E组：缺钙组；F组：缺镁组；G组：缺铁组；H组：缺硼组；I组：缺锌组；J组：缺铜组；K组：缺锰组。
3. 培养过程：将每组小麦种子均匀撒在培养皿中，加入适量的培养基，放入培养箱中，保持适宜的温度和湿度。
4. 观察记录：定期观察植物的生长状况，记录生长高度、叶片颜色、根系生长等指标。
5. 数据分析：对各组数据进行统计分析，比较不同营养元素缺乏条件下的植物生长差异。
五、实验结果与分析1. 正常组（A组）：植物生长良好，叶片绿色，根系发达。
2. 缺氮组（B组）：植物生长缓慢，叶片发黄，根系短小。
3. 缺磷组（C组）：植物生长缓慢，叶片发紫，根系短小。
4. 缺钾组（D组）：植物生长缓慢，叶片边缘发黄，根系短小。
5. 缺钙组（E组）：植物生长缓慢，叶片发黄，根系短小。
6. 缺镁组（F组）：植物生长缓慢，叶片发黄，根系短小。
7. 缺铁组（G组）：植物生长缓慢，叶片发黄，根系短小。
植物的溶液培养与矿质元素缺乏
-S
10 10 － 10 － 1 1 － 10 － － －
-Fe
10 10 10 10 － － 1 － － － － －
缺微量元素
10 10 10 10 － 1 － － － － － －
缺氮
N：是组成遗传物质、酶及细胞膜的重要元素
症状：常遍布整株，植株矮小，茎细而短，
基部叶片呈浅绿色或黄色，最后死亡
微量元素
H3BO3 2.860g，MnSO4 1.015g， ZnSO4 · 2O0.220g， 7H H2MoO4 0.090g ，CuSO4 · 2O 0.079g 5H
表2
贮备液/mL 贮备液
Ca(NO3)2 KNO3 MgSO4 KH2PO4 NaH2PO4 Fe-EDTA 微量元素 NaNO3 MgCl2 Na2SO4 CaCl2 KCl
缺微量
症状：
硼：顶芽和附件的嫩叶坏死， 生长矮化 锰：叶脉间黄化呈淡绿色 锌：叶脉间缺绿，出现白色 坏死斑 钼：植物矮小，表现为“花 而不实” 铜：新叶由叶尖沿叶缘逐渐坏 死，严重时整个叶片萎蔫
完全培养
长 势 良 好
蒸馏水培养
小结
1.每一种元素在植物生命活动中，均有其特殊的生 理作用，其他元素不能代替。 2.缺少任何一种必需的矿质元素都会引起相应的生 理症状。 3.掌握各元素对于植物的生长作用，对于今后作物 培育和植物的合理培养具有重要的作用
完全
10 10 10 10 － 1 1 － － － － －
-N
－ － 10 10 － 1 1 － － － 10 10
-P
10 10 10 － － 1 1 － － － － 4
-K
10 － 10 － 10 1 1 10 － － － －
植物缺素培养实验报告
植物缺素培养实验报告一、实验目的1、掌握种子发芽和无土栽培的实验技术以及配制贮备液的方法，了解氮、磷、钾等元素对植物生长发育的影响和学习判断缺素症状。
2、了解分光光度计的使用方法；掌握计算叶绿体各色素成分含量的方法。
3、学会AM-300手持式叶面积仪测定叶面积的方法二、实验原理1、植物在必需的矿物元素供应下正常生长，如缺少某一元素，便会产生相应的缺乏症。
用适当的无机盐制成营养液，即能使植物正常生长，称为溶液培养，如果用缺乏某种元素的缺素液培养，植物就会呈现缺素症状而不能正常生长发育。
将所缺元素加入培养液中，该缺素症状又可逐渐消失。
2、叶片中叶绿素含量的高低是反映植物叶片光合能力的一个重要指标。
另外，叶绿素的含量是植物生长状态的一个反映，一些环境因素如干旱、盐渍、低温、大气污染、元素缺乏都可以影响叶绿素的含量与组成，并因之影响植物的光合速率。
根据朗伯—比尔定律，某有色溶液的吸光度A与其中溶质浓度C和液层厚度L成正比，即A＝KCL式中：K比例常数。
当溶液浓度以百分浓度为单位，液层厚度为1cm时，K为该物质的吸光系数。
如果溶液中有数种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总吸光度等于各组分在相应波长下吸光度的总和。
这就是吸光度的加和性。
3、叶片性状特征直接影响到植物的基本行为和功能。
叶面积是植物研究中的一个常用指标,叶面积的大小决定着植物接收光合有效辐射(photosynthetically active radiation,PAR)的量,与干物质产量和地上净初级生产力有密切关系,反映了植物对其地理分布和养分条件等外界因素的适应策略。
同时,叶面积也是影响植物生长、果实发育和品质的重要生理和形态指标。
三、用品与材料1、材料：玉米种子；2、用品：培养缸、试剂瓶、容量瓶、烧杯、移液管、量筒、精密天平、棉花(或海绵)刻度尺、分光光度计、AM-300手持式叶面积仪；3、试剂：硝酸钙、硝酸钾、磷酸二氢钾、磷酸二氢铵、硫酸镁、氯化钾、氯化钙、硫酸锰、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、硼酸、硫酸锌、氯化锰、钼酸、硫酸铜。
植物生理学实验八、实验九
实验八植物溶液培养及缺素症的观察一、目的要求掌握植物必需兀素缺乏症状，熟悉溶液培养方法。
二、实验原理当植物有必需的矿物质元素的适量供应时，才能正常地生长发育，把这些必需的矿物质元素用适当的无机盐配成营养液，即能使植物正常生长，这就是溶液培养。
如缺少某一元素，便表现出缺素症。
三、材料与用品1. 材料：玉米（或小麦、番茄、向日葵、蓖麻）种子；2. 仪器：刻度吸管、量筒、黑色蜡光纸（或锡箔纸）、pH5〜6的精密pH试纸（或广泛pH指示剂）、搪瓷盘（带盖）、石英砂、5L大试剂瓶（7个）;1L培养缸（塑料广口瓶或陶质盆7个）3. 药品（分析纯）：硝酸钾、硫酸镁、磷酸二氢钾、硫酸钾、硫酸钠、磷酸二氢钠、硝酸钠、硝酸钙、氯化钙、硫酸亚铁、硼酸、氯化锰、硫酸铜、硫酸锌、钼酸、盐酸、乙二胺四乙酸二钠（EDTA-Na2）。
四、方法与步骤1. 培苗（粒小的种子，种子中的营养少，缺素症状容易出现；粒大的种子可将胚乳或子叶去掉。
）将已浸泡一夜的玉米等种子用5%漂白粉溶液消毒15min，无菌水冲洗数次后，均匀地排列在覆盖有石英砂或洁净的河沙的搪瓷盘上，再覆盖一层石英砂，保持湿润，然后放置在温暖处发芽。
第一片真叶完全展开后，选择生长一致的幼苗，小心地移植到各种缺素培养液中，移植时注意勿损伤根系2. 配置大量元素和微量元素（用蒸馏水按表3-1分别配制）微量元素贮备液按以下配方配制：称取H3BO4 2.86g、MnCI2 4H2O 1.8lg、CuSCk 5H2O 0.08g、ZnS04 7H2O 0.22g、H2M0O4 H2O 0.09g,溶于1L 馏水中。
按表3-2配成完全和缺素培养液；配置时，先计算并量取各培养液所需的相应的体积的蒸馏水，倒入大试剂瓶中，然后按表加入储备液，以免产生沉淀。
配好后，用稀酸碱调节pH至5-6之间。
表3-2完全培养液和各种缺素培养液配制表（每5L培养液中各种贮备液的用量/ ml）储备液完全缺N缺P缺K缺Ca缺Mg缺FeCa(NO3)225——2525——2525KNO325——25——252525MgSO42525252525——25KH2PO42525————252525K2SO4——255————————CaCI2——25——————————NaH2PO4——————25——————NaNO3——————2525————Na2SO4——————————25——EDTA-Fe252525252525——微里元糸55555553. 幼苗移栽与管理取7个1L的培养缸（塑料广口瓶或陶质盆），分别装入配制的完全培养液及各种缺素培养液900mL （放3株？），贴上标签，写明日期。
11级植物生理实验讲解内容
植物生理实验讲解内容实验一植物组织水势的测定（小液流法）1、原理（1）水分移动的总原则：从高水势到低水势。
当把植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，水势越大，越易失水；水势越小，越易得水；因此，会出现三种情况：植物组织的水势＜外液的水势，组织吸水，外液（a）浓度变大植物组织的水势＞外液的水势，组织失水，外液（b）浓度变小植物组织的水势＝外液的水势，组织既吸水又失水，外液（c）水分保持动态平衡（2）据比重大小判断小液流的移动方向：为判断以上三种情况，把侵有组织的溶液进行着色，当把着色的a、b、c三种外液用针管以小液流法放回对应的原溶液中，也出现三种情况：当浓度变大的外液（a）放入原溶液中↓，说明植物组织的水势＜外液的水势当浓度变小的外液（b）放入原溶液中↑，说明植物组织的水势＞外液的水势当水分保持动态平衡的外液（c）放入原溶液中≈（不动），说明植物组织的水势＝外液的水势2、材料：毛果含笑叶；梧桐树叶；丁香花或牵牛花4、方法（选用CaCl2溶液为外液）思考题1、试述小液流法测定植物组织水势的原理。
测定中应注意什么？（1）遵照两个原理：①水分移动的总原则—从高水势到低水势。
②根据比重大小判断小液流的移动方向。
（2）测定中应注意：①取材时尽量避开叶脉和伤口、部位要一致、要迅速（以免失水），材料要混匀；②母液要均匀，不能颠倒顺序；③放小液流时不能用力过大；④观察液流方向要细心等]。
2、某组实验出现了小液流法↓↑↑↓↑的情况，请分析出现错误的可能原因。
最有可能出错的应是第四支试管。
出错的原因有以下可能：(1)在配制甲组试管溶液时，试管没有充分的摇匀；(2)在配制甲组浓度梯度溶液时，第四支试管溶液不准确，浓度过低；(3)用注射器在甲组试管中挤出小液滴时，用力过猛。
3、测定水势的方法有：小液流法；电导仪法；折射仪法。
实验二植物组织中游离氨基酸总量的测定——茚三酮显色法（1.原理氨基酸(蛋白质)的游离-NH3可与水合茚三酮反应，生成蓝紫色的化合物；在一定范围内，颜色的深浅与游离氨基的含量成正比，因此，可用分光光度法测定其含量。
植物生理学答案
植物生理学实验思考题考试要求：1.口答部分，30分，主要包括课后思考题、实验原理、实验结果。
2.实验部分，50分，主要是仪器的操作，有分光光度计、CO2气体分析仪、电导仪、阿贝折射仪。
实验到达30分以上才能及格。
考试不会太难，但也希望大家能够好好复习。
实验一、植物组织培养技术及烟草叶组织培养中形态发生和器官形成烟草叶组织培养中的形态发生和器官形成1.植物组织培养的原理、培养基的种类、现象原理：（1）植物细胞具有全能性，即每个植物细胞包含着能产生完整植株的全部遗传基因。
（2）只要条件合适，包含着全部遗传基因的细胞都能分裂分化，产生完整的植株。
培养基成分中生长素和细胞分裂素的比例决定了根或芽的分化。
培养基的种类及现象：（1）MS（不加激素）无生长现象（2）MS+BA1mg/L+NAA2mg/L 生长出愈伤组织2.外植体为什么不能切太小？不易成活3.植物组织组织中卫生么出现发霉？在操作过程中出现了污染。
4.植物激素对愈伤组织形成及器官分化有何影响？生长素/细胞分裂素：（1）高不定根（2）中愈伤组织（3）低不定芽5.在组织培养过程中应注意什么？灭菌无菌操作实验二、叶绿体色素的提取、分离及其理化性质色素含量的测定（分光光度计）1.实验原理及现象（1）色素提取植物叶绿体色素一般由叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素等组成。
利用叶绿体色素不易溶于水而溶于有机溶剂的特性，可用80%丙酮、95%乙醇等有机溶剂提取。
（2）色素分离可用纸层析来分离叶绿体色素，当溶剂不断地从纸上流过时，由于混合物中各成分在两相（即流动相和固定相）间具有不同的分配系数，所以她们的移动速度不同，因而使样品混合物分离。
色素带分布:从上至下橙黄色（胡萝卜素）、鲜黄色（叶黄素）、蓝绿色（叶绿素a）、黄绿色（叶绿色b）。
（3）荧光现象叶绿素分子吸收光量子。
由基态上升到激发态，激发态不稳定，有回到基态的趋向，当由第一单线态回到基态时发射出的光称为荧光。
《植物生理学实验》实验04 植物的溶液培养和缺素培养
植物的元素缺乏症
• 植物的元素缺乏症，亦称养分缺乏症状，缺素症。 • 是指植物因缺乏某种或多种必需营养元素而出现的病状。 • 通常表现为：叶片失绿、黄化、发红或发紫；组织坏死，出现黑心、枯斑、生长点萎缩或死亡；株型异
思考题
你培养的植株缺元素症是否明显，为什么? 各种元素的生理功能和在玉米幼苗上的缺素症状是什么？
• 贴好缺素标签 • 配制时先取蒸馏
水900mL，然后 加入贮备液，最 后配成1 000mL， 以避免产生沉淀： 培养液配好后， 用稀酸、碱调节 至pH 5—6。
培养观察
• 选取大小一致的玉米幼秒，用泡沫塑料包裹茎 部，插人培养缸盖的孔中，每孔一株，将培养 缸移到温室中，经常注意管理并观察，用蒸馏 水补充缸中失去的水分，每隔一定时间(一周左 右，随植株大小而定)更换培养液，并测定换出 溶液的pH。植株长大后要通气，通气可用鱼缸 打气泵。注意记录植株株的生长情况，各种元 素缺乏症的症状及出现的部位。
元素缺乏症检索
数据测量
• 待植株症状表现明显后，将缺元素培养液换成 完全培养液，留下一株继续培养，观察植株症 状是否减轻甚至消失，其余植株测量根、茎的 长度、质量，叶子数目，大小和质量，节数和 节间长度，
注意事项
所用药品必须为分析试剂级(AR)，注意用具洁净。 培养期间需注意补充水分，补充的水分需使用蒸馏水 定期更换培养液，并有良好的通气
常，器官畸形，生长发育进程出现延迟或提前等。大部分缺素症都有叶部症状，最易出现的形态症状是 叶色变异。不同症状的出现，与所缺营养元素的功能有关。 • 缺乏氮、镁、铁、锰、锌等元素时，植物的叶绿素合成或光合作用受阻，因而叶片出现失绿、黄化现象。 缺乏磷、硼等元素，植物体内的糖类运输受阻而滞留于叶片中，从而产生较多的花青素，使叶片呈紫红 色斑；氮、磷元素的缺乏影响细胞生长和分裂，使植株生长滞缓、株形矮小；缺乏钙、硼元素则细胞质 膜不易形成，细胞正常的分裂过程受影响，植物生长点经常出现萎缩或死亡；缺硼还会影响作物花粉的 发育和花粉管的伸长，使受精过程不能正常进行，产生“花而不实”现象
植物缺素实验报告
一、实验目的1. 了解植物必需矿质元素及其作用。
2. 掌握溶液培养和无土栽培的实验技术。
3. 观察并分析植物在不同缺素条件下的生长发育变化。
4. 探讨植物对矿质元素的吸收和利用规律。
二、实验材料1. 实验植物：玉米种子2. 实验容器：培养皿、培养箱3. 实验溶液：完全营养液、缺素营养液（分别缺少氮、磷、钾、钙、镁、硫、铁、硼、锌、铜、锰等元素）4. 实验仪器：电子天平、显微镜、pH计、滴定仪等三、实验方法1. 种子发芽实验：将玉米种子在室温下浸泡12小时，然后均匀撒在培养皿中，用湿润的滤纸覆盖，置于培养箱中发芽。
每天观察发芽率，记录数据。
2. 溶液培养实验：将发芽后的玉米幼苗移入培养皿中，分别置于完全营养液和缺素营养液中培养。
每7天更换一次营养液，观察并记录植株的生长发育状况。
3. 观察实验：利用显微镜观察植物叶片、茎、根等部位的细胞结构变化，分析缺素对植物细胞的影响。
4. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较不同缺素条件下植物的生长发育差异。
四、实验结果与分析1. 发芽实验结果：玉米种子在完全营养液中发芽率为95%，在缺素营养液中发芽率为85%。
2. 溶液培养实验结果：（1）缺氮：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
（2）缺磷：植株矮小，叶片发紫，生长缓慢。
（3）缺钾：植株矮小，叶片边缘枯焦，生长缓慢。
（4）缺钙：植株矮小，叶片卷曲，生长缓慢。
（5）缺镁：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
（6）缺硫：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
（7）缺铁：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
（8）缺硼：植株矮小，叶片边缘枯焦，生长缓慢。
（9）缺锌：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
（10）缺铜：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
（11）缺锰：植株矮小，叶片黄化，生长缓慢。
3. 观察实验结果：（1）缺氮：叶片细胞核增大，叶绿体减少。
（2）缺磷：叶片细胞核增大，叶绿体减少。
（3）缺钾：叶片细胞核增大，叶绿体减少。
（4）缺钙：叶片细胞核增大，叶绿体减少。
(精)植物生理学实验讲义
植物生理学实验讲义目录目录 (I)实验一植物材料的无土培养及缺素症状观察（3 学时） (1)实验二植物组织水势的测定（小液流法）（3 学时） (2)实验三缺磷、缺铁对植物叶片中叶绿素含量影响（叶绿体色素的提取、分离及定量测定）及光合速率的测定（3 学时） (3)实验四：缺素培养对叶片质膜透性及过氧化物酶活性的影响（电导率的测定&愈创木酚法测定POD 酶活性）（3 学时） (5)Part Ⅰ缺素培养对叶片过氧化物酶活性的影响 (5)Part Ⅱ缺素培养对叶片质膜透性的影响 (6)实验五：设计性实验：逆境胁迫下植物的适应机制研究（6 学时） (7)PartⅠ蒽酮法测定可溶性糖 (7)Part Ⅱ植物体内可溶性蛋白质含量的测定（考马斯亮蓝法） (9)Part Ⅲ植物组织中丙二醛含量的测定 (11)实验一植物材料的无土培养及缺素症状观察（3 学时）【实验原理】只要满足植物正常生长发育的要求(光、温、水、气、必需元素)，植物可以在水中或砂中生长。
把必需矿质元素配制成培养液培养植物称溶液培养，而把培养液加于洁净的石英砂中培养植物则称砂基培养。
由于培养液中元素的种类和数量可以人为控制，因此当要了解某种元素是否为植物必需时，只要有意识地配制缺乏该种元素的培养液，根据植物在该培养液中所表现出来的症状，便可了解该元素的作用以及对植物生长发育的必要性。
【器材与试剂】器材:，贮液塑料桶（10 个)，量筒，移液管，石英砂或蛭石适量，水培设备 4个移液器，酸度计，电子天平，数码相机。
试剂：硝酸钙，硝酸钾，硫酸镁，磷酸二氢钾，硝酸钠，氯化镁，硫酸钠，磷酸二氢钠，氯化钙，氯化钾，EDTA-Na2，FeSO4，CuSO4，HBO3，KI，MnCl2，ZnCl2，Na2MoO4。
HCl，NaOH，Na2ClO4或CaClO4以上试剂均需分析纯。
【方法与步骤】1.准备工作1）幼苗准备:实验用种子用漂白粉溶液灭菌半小时，用灭菌水洗几次，然后放在干净的湿石英砂中发芽，加以蒸馏水培养长至一定高度(5cm 左右)。
植物缺素培养实验报告
植物缺素培养实验报告为了探究植物的缺素症状和缺素对植物生长的影响，我们进行了植物缺素培养实验。
本实验选用了十字花科植物甘蓝作为材料，以其为例进行实验。
实验方法：1.把甘蓝种子表面用药棉蘸消毒酒精擦拭干净。
2.在培养皿中加入1%琼脂和适量蔗糖，加入所需的微量元素液，分别为对照组和实验组。
实验组缺少铁、锰、锌、铜等微量元素中的一种或多种。
通过加入适量无机盐和微量元素液以及调整pH值后，将琼脂溶液煮沸。
待琼脂冷却时，将植物种子均匀撒在琼脂表面上。
3.将培养皿装在孵化器中，恒温、恒湿、恒光培养。
实验结果：经过两周的培养，我们观察到，对照组的甘蓝生长健壮，绿叶茂盛，没有明显的营养不良症状。
而缺铁组的甘蓝表现出明显的黄化症状，叶面出现黄色或白斑，叶片变薄，萎缩，生长缓慢。
缺锰组的甘蓝幼嫩叶片呈现银白色，黄化严重，甚至无法生长。
缺锌组的甘蓝叶片呈现红褐色或紫色，并且叶部出现干枯、老化等症状。
而缺铜组的甘蓝叶片边缘出现不规则的褶皱，叶绿素合成不足，叶片易脱落。
实验结论:通过这次实验，我们可以得出以下结论：缺铁会导致症状最为明显的黄化，主要是由于缺铁不利于叶绿素的合成。
缺锰会使叶片转为白色，影响甘蓝的光合作用和呼吸作用，甚至无法生长。
缺锌会导致甘蓝叶片颜色变化，肉质变差，严重时可导致死亡。
缺铜会破坏铜质蛋白的含量，影响抗氧化作用，导致叶片老化和脱落。
这些症状都是植物缺素的典型表现。
因此，在植物生长过程中，合理添加微量元素是有效解决植物营养不良的关键。
在进行实际生产或栽培中，应注意调整养分比例，保证植物的营养均衡，促进生长发育。
植物的缺素培养
植物的缺素培养（溶液法）一.实验目的熟悉植物的各种营养缺乏症的典型症状，掌握缺素培养的实验过程（通过缺镁营养液培养番茄幼苗，观察幼苗的生长情况）。
二.实验原理植物的生长发育，除需要充足的阳光和水分外，还需要矿质元素，否则植物就不能很好的生长发育甚至死亡。
运用溶液培养技术，可以观察矿质元素对植物生长的必须性；用溶液营养做植物的营养实验，可以避免土壤里的各种复杂因素。
近年来也已应用溶液培养进行无污染蔬菜的栽培生产。
三.器材与试剂1.实验仪器：分析天平培养缸量筒烧杯移液管烘箱2.实验试剂：储备液的配制硝酸钙82.07g/L 硝酸钾50.56 g/L 七水合硫酸镁61.62 g/L 磷酸二氢钾27.2 g/L 磷酸二氢钠24.00 g/L 硝酸钠42.45 g/L 氯化镁23.81 g/L 硫酸钠35.51 g/L 氯化钙55.50 g/L 氯化钾37.28 Fe-EDTA（Na2-EDTA7.45 g/L 七水合硫酸铁5.57 g/L）微量元素（H3BO32.860g/L MnSO41.015 g/L H2MoO40.090 g/L 五水合硫酸铜0.079 g/L 七水合硫酸锌0.220 g/L）3.实验材料：番茄种子四.实验步骤1.材料准备此实验用番茄种子作为实验材料，番茄种子粒小，从种子带来的营养元素少，容易出现缺乏症。
先将种子用蒸馏水培养发芽，等幼苗长出第一真叶是待用。
2.配制培养液A.完全培养液：硝酸钙溶液（82.07g/L）10mL 硝酸钾溶液（50.56g/L）10mL 硫酸镁溶液（61.62 g/L）10 mL 磷酸二氢钾（27.2 g/L）10 mL Fe-EDTA1 mL 微量元素溶液1 mLB.缺素培养液（缺镁）：硝酸钙溶液（82.07g/L）10mL 硝酸钾溶液（50.56g/L）10mL 磷酸二氢钾（27.2 g/L）10 mL Fe-EDTA1 mL 微量元素溶液1 mL 硫酸钠溶液（35.51 g/L）10mL配制时选取蒸馏水900mL，然后加入储备液，最后配成1000mL，以避免产生沉淀，培养液配制好后，用稀酸、碱调节至PH5—6。
植物的溶液培养及缺素培养
植物的溶液培养及缺素培养摘要:为探求各种主要元素对植物生长发育的作用，本次试验采用玉米幼苗为实验材料，用配制的各种缺乏某种矿质元素的培养液进行培养，根据2周的持续观察记录，进一步了解矿质元素的作用、特点及对植物生长发育的重要性。
关键词：玉米、培养液配制、缺素培养、定植培养。
前言溶液培养是德国植物生理学者Sachs和Knop在1860年试验成功的，它在阐明植物对养分的要求曾起过决定性作用，并奠定了施肥的理论基础。
近年来在世界各国重新受到重视，已成为一种切实可行的生产手段，美国已把溶液培养应用在生产上，我们有些单位已将溶液培养应用到水稻育苗及蔬菜生产上，估计溶液养在生产上的应用将日益广泛，这是植物营养的基本理论在生产实践上的新发展。
绿色植物在整个生活周期中除了通过叶片的光合作用外，只要满足正常生长发育所需的各种矿质元素和其他条件，植物不一定非在土壤中生长不可。
因此，在用蒸馏水及所需的几种元素配成的溶液中，植物同样可以正常生长发育，这种培养方法称作溶液培养。
由于溶液培养其元素的种类和数量可以控制，因此要了解某种元素是否为植物必需时，可有意识地配制缺乏某种元素的培养液，根据植物在该溶液中所表现出来的作用、特点以及对植物生长发育的重要性。
一、材料、仪器及药品1、实验材料华南农业大学作物栽培实验室提供的长势相当的玉米幼苗，生长发育均正常。
2、实验仪器⑴刻度吸管 5ml 12支；1ml 1支；⑵量筒1000ml 1个；⑶培养瓶2套；⑷海绵；⑸pH试纸（pH1-14或pH5.4-7.0）；⑹镊子，⑺玻璃管，⑻吸球；⑼标签纸；⑽黑色瓶套。
3、药品⑴Ca(NO3)2∙4H2O ⑵KNO3⑶MgSO4⑷KH2PO4⑸K2SO4 ⑹CaCl2⑺NaH2PO4 ⑻NaNO3⑼Na2SO4⑽MgCl2∙6H2O ⑾FeCl3⑿EDTA-Na2⒀FeSO4 ⒁H3BO3⒂MnCl2∙4H2O ⒃CuSO4∙5H2O ⒄ZnSO4∙7H2O ⒅H2MoO4∙H2O二、实验方法（一）、营养液的配制（用蒸馏水）1大量元素贮备液的配制2、(EDTA-Fe)=0.05mol·L-1贮备液的配制（1）c(EDTA-Na)=0.1mol∙L-1溶液：称EDTA二钠3.77克，加新煮沸刚冷的温热的蒸馏水约20ml，搅拌使之完全溶化，冷后加蒸馏水定容至100ml，保存于密闭聚乙烯塑料瓶中。
缺素对玉米幼苗生长的影响（生理学实验报告）
缺素对玉米幼苗生长的影响二师兄烟草摘要：玉米是我国主要栽培物之一，是改善人民生活，出口外贸的重要物质之一，对发展农业有重要意义。
为了提高玉米产量和品质，除农业栽培技术和作物育种的技术外，掌握作物生长发育中外界环境条件之一的营养物质对玉米影响十分重要【1】。
用水培法对玉米幼苗进行缺素(N、P、K、Ca、Mg、Fe)处理培养，缺素症状出现后进行症状观察与生长测量并进行生理生化指标测定，结果表明：玉米幼苗在六种缺素条件下分别明显表现出不同的缺素症状，其形态指标及生理指标均明显低于对照，各种缺素症状出现在不同的生长时期。
为研究其需肥特点及快速营养诊断提供参考和依据。
关键词：缺素培养色素含量根系活力营养液根冠比前言：N、P、K、Ca、Mg、Fe这6种植物必需的矿质元素，利用营养液培育方法，分析植物在缺乏相应的矿质元素时对其生理生化及生长发育的影响。
如缺乏这些元素可产生特有的缺素病症；生长速率下降；根冠比改变；根的活力及色素含量的改变等【2】。
在操作学习的基础上，对玉米植株的缺素症状以及生理指标的测量有更深入的认识。
实验材料及方法1.实验材料三叶期玉米幼苗2.试验方法2.1 缺素培养实验试验设7个处理。
分别为完全营养液、缺N营养液、缺P营养液、缺K营养液、缺Ca营养液、缺Mg营养液、缺Fe营养液，以这些缺素营养液作为水培材料，将三叶期玉米幼苗去胚后放入棕色培养瓶上培养。
培养液药品：Ca(NO3)2、K NO3、MgSO4、K H2PO4、CaCl2 、H2PO4、Na NO3、Na2 SO4、EDTA-Fe、微量元素表1：完全培养液和各种缺素培养液配置每100ml培养液中储备液的量（ml）储备液完全缺N 缺P 缺K 缺Ca 缺Mg 缺Fe Ca(NO3)2 2.5 – 2.5 2.5 – 2.5 2.5 KNO3 2.5 – 2.5 – 2.5 2.5 2.5 MgSO4 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5 – 2.5 KH2PO4 2.5 2.5 –– 2.5 2.5 2.5 CaCl2– 2.5 –––––NH4H2PO4––– 2.5 –––NaNO3––– 2.5 2.5 ––Na2SO4––––– 2.5 –EDTA-Fe 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5 –微量元素0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 2.2 根系活力的测定取待测植物根系用吸水纸将水吸干，在电子天平上称重。
植物生理生化实验
合分析。 1000ml 量筒1个；
实验 玉米苗水溶液培养和缺素培养及症状观察 实验 玉米苗水溶液培养和缺素培养及症状观察 ４、刚移栽的苗不宜直接放在阳光下，要等植株恢复正常生长后才能移置光照下培养； １、严防试剂污染和混杂; 第一轮需要完成的实验内容： 实验原理：
用植物必需的矿质元素按一定比例配成营养液来培养植物，可使植物长得与土壤中一样好。
植物生理生化实验
第一轮需要完成的实验内容： 实验 缺素培养 实验 膜透性鉴定 实验 小液流法测定植物组织 水势
第二轮需要完成的实验内容：综合性实验
(一) 目的要求： 利用《植物生理学》课堂理论—植物的矿质营养、植物的 光合作用、植物的逆境生理等相关知识综合分析“玉米或 烟草等植株完全液培养和缺素培养苗的生理差异”。 (二) 需要完成的实验内容： 实验四 植物水溶液和缺素培养症状观察,TTC法测根系活
植物材料：
高活力玉米苗（去胚乳）
仪器设备：
烧杯；移液管5ml、1ml若干支；1000ml 量筒1个；陶瓷 培养缽7个；精密pＨ试纸（pＨ5～6）或广泛pＨ指示剂；玻 璃棒；吸球；棉花。
试剂 ：
硝酸钾；硫酸镁；磷酸二氢钾；硫酸钾；硫酸钠；磷酸二氢 钠；硝酸钠；硝酸钙；氯化钙；硫酸亚铁；硼酸；氯化锰；
6.实验开始后每两天观察一次，并用精密pH试纸检查培养液 的pH值，如高于6，应用稀盐酸调整到5～6之间。 为了使根系氧气充足，每天定时向培养液中充气，或在盖与 溶液间保留一定空隙，以利通气。培养液每隔一周需更换一 次。注意记录缺乏必需元素时所表现的症状和最先出现症状 的部位。待各缺素培养液中的幼苗表现出明显症状后，可把 缺素培养液一律更换为完全培养液，观察症状逐渐消失的情 况，并记录结果。
植物生理学缺素培养实验报告
植物生理学缺素培养实验报告
实验题目:实验二:缺素培养
一、实验目的:
,学习配制溶液培养基原液，利用原液配制完全培养液和缺素培养液的方法。
,.了解验证矿质元素生理功能的原理与方法。
二、实验原理:
植物生长需要营养元素，当植物生长缺乏元素时，植物的生长发育会受到影响，表现出相应的缺乏症状。
应用溶液培养的方法可以人为地控制植物生长所需的营养元素，研究植物生长对矿质元素的需求和矿质元素在植物生长发育过程中的作用。
本实验使用完全培养液和缺素培养液培养植物，观察植物的生长状况。
当使用完全培养液培养植物时，植物生长正常，当使用缺氮、缺磷等培养液培养植物时，植物均不正常生长，由此可以证明必需营养元素对植物生长的重要性和必然性。
三、实验器材与试剂
1.实验仪器:容量瓶1000ml、烧杯、玻璃棒、移液管、电子天平、塑料瓶、锡纸。
2实验材料:绿豆苗
3.实验试剂:KNO、Ca(NO).4HO、NHHPO、MgSO.7HO、KHPO、CaCl、KCl、3 32242442242HBO、MnSO.7HO、ZnSO.7HO、CuSO.5HO、HMoO、NaFeDTPA(10%Fe)、NiSO.6HO、334242422442NaSiO.9HO 232
四、实验材料:
生长到7~8cm的绿豆苗
五、实验步骤:
1(培养幼苗。
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植物的溶液培养及缺素培养摘要:为探求各种主要元素对植物生长发育的作用，本次试验采用玉米幼苗为实验材料，用配制的各种缺乏某种矿质元素的培养液进行培养，根据2周的持续观察记录，进一步了解矿质元素的作用、特点及对植物生长发育的重要性。
关键词：玉米、培养液配制、缺素培养、定植培养。
前言溶液培养是德国植物生理学者Sachs和Knop在1860年试验成功的，它在阐明植物对养分的要求曾起过决定性作用，并奠定了施肥的理论基础。
近年来在世界各国重新受到重视，已成为一种切实可行的生产手段，美国已把溶液培养应用在生产上，我们有些单位已将溶液培养应用到水稻育苗及蔬菜生产上，估计溶液养在生产上的应用将日益广泛，这是植物营养的基本理论在生产实践上的新发展。
绿色植物在整个生活周期中除了通过叶片的光合作用外，只要满足正常生长发育所需的各种矿质元素和其他条件，植物不一定非在土壤中生长不可。
因此，在用蒸馏水及所需的几种元素配成的溶液中，植物同样可以正常生长发育，这种培养方法称作溶液培养。
由于溶液培养其元素的种类和数量可以控制，因此要了解某种元素是否为植物必需时，可有意识地配制缺乏某种元素的培养液，根据植物在该溶液中所表现出来的作用、特点以及对植物生长发育的重要性。
一、材料、仪器及药品1、实验材料华南农业大学作物栽培实验室提供的长势相当的玉米幼苗，生长发育均正常。
2、实验仪器⑴刻度吸管 5ml 12支；1ml 1支；⑵量筒1000ml 1个；⑶培养瓶2套；⑷海绵；⑸pH试纸（pH1-14或pH5.4-7.0）；⑹镊子，⑺玻璃管，⑻吸球；⑼标签纸；⑽黑色瓶套。
3、药品⑴Ca(NO3)2∙4H2O ⑵KNO3⑶MgSO4⑷KH2PO4⑸K2SO4 ⑹CaCl2⑺NaH2PO4 ⑻NaNO3⑼Na2SO4⑽MgCl2∙6H2O ⑾FeCl3⑿EDTA-Na2⒀FeSO4 ⒁H3BO3⒂MnCl2∙4H2O ⒃CuSO4∙5H2O ⒄ZnSO4∙7H2O ⒅H2MoO4∙H2O二、实验方法（一）、营养液的配制（用蒸馏水）1大量元素贮备液的配制2、(EDTA-Fe)=0.05mol·L-1贮备液的配制（1）c(EDTA-Na)=0.1mol∙L-1溶液：称EDTA二钠3.77克，加新煮沸刚冷的温热的蒸馏水约20ml，搅拌使之完全溶化，冷后加蒸馏水定容至100ml，保存于密闭聚乙烯塑料瓶中。
（2）c(FeSO4或FeCl3)＝0.1mol∙L-1溶液：称2.78克FeSO4∙7H2O(或2.703克FeCl3∙6H2O)用新煮沸刚冷的蒸馏水定容至100ml（亚铁易变，只能即配即用）。
（3）将（1）溶液和（2）溶液等量混合，即成c(EDTA-Fe)=0.05mol∙L-1贮备液，（其中EDTA-Fe①含FeSO4，EDTA-Fe②含FeCl3）。
3微量元素贮备液的配制称H3BO3 2.86克； MnCl2∙4H2O 1.81克；CuSO4∙5H2O 0.08克； ZnSO4∙7H2O 0.22克；H2MoO4∙H2O 0.09克溶于1升蒸馏水中。
（二）培养溶液的配制先测定培养瓶的容积（ml），确定培养液的用量（ml），以此用量在培养瓶的瓶外壁贴一小标签为标记，并作处理号标志，然后在培养瓶中加入约700ml蒸馏水，按下表各处理加入贮备液用量，注意按顺序加入，并且每加入一种贮备液后都要用玻璃管拌匀，直到加齐后用水定容至刻度线，搅拌均匀。
（三）定植培养选取生长一致的玉米幼苗作实验材料，每个培养瓶定植一株，首先小心将幼苗根部用水冲洗干净，记录幼苗的叶片数量和鲜苗重量（克），并把幼苗通过瓶盖的中央大孔用棉花固定在盖上，盖好瓶塞，使根系浸入培养液中，（尽量勿使根系受伤）并调整根茎基部离开液面1厘米；瓶外应套上遮光袋并贴好标签。
标签应包括：处理、专业、组别、培养者、培养日期。
同时在瓶盖的另一个小孔中装入一支带胶圈的玻璃管，要求玻璃管的下端离瓶底1～1.5厘米，以作通气用，把定植好的培养瓶放于温室培养。
（四）培养管理及观察实验开始后，要认真做好管理和观察记录，要求每天观察一次，及时补加蒸馏水，维持培养液水平；要及时补充空气，应用吸球通过玻璃管打入空气，每瓶打气15～20次，注意勿吸出培养液！每4～5天测定和调节培养液的pH值。
（用c(NaOH)=0.1mol∙L-1和c(HCl)=0.1mol∙L-1调节pH值至5.5~6.5）。
实验过程要认真观察各处理玉米的生长情况，对各元素缺乏症状的表现和发展作详细记录。
三、实验结果与分析（一）实验原始现象数据记录：1、叶天数完全缺N缺P缺K缺Ca缺Mg缺Fe缺S1 新老叶尖均先变黄，再在尖端部位泛淡红，其他部位未有明显异象。
老叶尖端中尖位出现暗黄，新叶正常，根茎未有明显异常。
从老叶的叶尖开始，逐渐向叶柄较大范围的变黄，主根长侧根少，茎正常。
老叶片尖端边缘出现淡黄色，新叶生长正常，新叶较软弱，不能直起（ED），茎部根部生长正常，未有明显异样。
新叶教软弱，其余一切正常。
主根开始发黑，其余正常。
从老叶开始，叶片很软弱，萎蘼，整叶的一边侧面变灰，新叶下垂不能直立，茎也较软。
老叶叶尖叶脉附近泛黄，其余正常。
2 正常一叶片发黄，另一叶片叶尖发黄两叶片叶尖发黄，叶较软两叶片叶尖发黄，新叶较软。
叶片软且黄，叶缘黄叶尖黄叶片黄叶尖黄3 第一片叶尖变黄第一片叶全变成黄紫色，所有叶尖变黄，叶心变紫第一片叶全变紫所有叶尖变黄第一片叶全变黄，所有叶尖变黄第一片叶尖有点黄第一片叶全变黄，所有叶尖有点黄第一片叶和第二片叶尖变黄4 长势中等，最大的那片叶子弯折，新叶变黄较重，根系长势良好，老叶叶尖略黄长势中等，一片新叶有明显发黄现象，一片老叶叶尖略有发黄。
根系长势良好。
叶缘由发黄现长势较好，一片新叶出现萎蔫。
一片老叶叶尖有发黄现象。
根系生长正常。
长势良好，一片新叶有变黄现象。
根系长势良好。
长势较弱，一片老叶和一片新叶均出现枯黄，叶脉中央出现斑点。
长势较好，无明显发黄现象。
根系长势也很良好。
长势一般，一片新叶出现枯黄现象，老叶状态良好，叶尖微有变黄现象。
叶脉有发白现象。
长势不错，根系生长正常。
一片新叶略有发黄现象。
象。
5 长势中等，有一片叶倒了，根系主根较多，叶尖有点黄叶片有黄斑出现，植株长势中等长势较健壮，有一叶片有些微紫色条纹出现长势较健壮，叶片也没倒伏，根系发达长势瘦弱，叶片有枯斑出现长势最强壮，根系发达，没有倒伏叶片长势瘦弱，不过叶片没有倒伏长势健壮，叶片较大，根系一般6 长势一般，两叶片发黄，一叶片完全枯萎。
瘦弱，叶尾发黄，一叶片完全枯萎。
一片叶片完全枯萎，老叶叶尾枯黄，叶尖开始发黄。
长势不好，叶子下垂，不能直立生长，叶片发黄，一叶片完全枯萎。
叶尖焦黄，叶边开始泛黄，叶尾发黄，一叶片完全枯萎。
植株长势不错，一片老叶稍微发黄，叶尖小部分开始泛黄，其他正常。
一片叶片完全枯萎，植株矮小，叶尖发黄。
植株长势不错，叶尾枯黄，新叶长势较好，叶宽，茎杆粗壮。
7 第一片叶焦黄，第二片叶倒伏，叶尖焦黄，第三片叶叶尖焦黄。
第一片叶整片都焦黄了，第二片叶尖焦黄，往叶基部方向颜色由深变浅，颜色向叶脉延伸。
第一片叶焦黄，第二片叶叶尖发黄第一片叶上端焦黄，第二片叶和第三片叶叶尖发黄，第三片叶和第四片叶结合处倒伏。
第一片叶完全焦黄，第二片叶尖焦黄延伸向叶缘。
第一片叶大部分焦黄，第二片叶叶尖发黄，第三片叶有两个折断点。
植株矮小，第一片叶焦黄，第二片叶叶尖焦黄第一片叶焦黄，第二片叶和第三片叶叶尖焦黄，第三片叶中部折断，第四片叶长势茂盛良好，但是有撕裂的痕迹且倒伏。
8 叶尖正常发黄老叶从叶尖的老叶从叶边缘某叶子有一边枯了老叶从叶边缘最下面的叶枯最下面的叶枯老叶从叶尖的叶脉开始枯了开始有些许枯开始有些许枯死死叶脉开始枯了9 正常老叶尖向里黄，中心叶脉变红，茎变红正常新叶顺叶脉有淡黄色条文叶尖黄，老叶黄新叶从叶柄来事变淡黄叶片顺叶脉有黄色条纹10 4片叶子，2片叶尖黄4片叶子，一落，一呈紫色，一叶脉紫，叶尖紫。
5片叶，一落5片叶，新叶软4片叶，一败落，一黄。
4片叶子，一落4片叶子，新野黄，2叶尖黄。
5片叶子，新叶整片黄。
11 第一片叶全黄，第二片叶尖变黄，所有叶有黄斑点第一和第二片叶全变黄，第三片叶尖变紫，叶心变紫第一片叶全黄，第二和第三片叶尖变黄，叶心变紫第一片叶尖变黄第一片叶全黄，第二片叶的叶尖变黄并有斑点第一片叶全黄，第二和第三片叶尖变黄，并有黄斑点第一片叶全黄，第二片叶尖变黄，所有叶片都发黄第二片叶尖变黄121314 叶片基本呈绿色，长势良好，第一片叶叶尖发黄，植株大小适中植株直立，但十分瘦弱，第一片叶焦黄，第二片叶叶尖焦黄，共三片叶。
茎杆粗壮，第二片叶从叶尖向叶基部大面积发黄，且是从叶缘向叶脉延伸，第三片叶基部与茎杆的连接处倒伏，植株看起来很没精神，叶片都已倒伏，第一片叶发黄，两片新叶长势良好，叶较宽。
从下到上，叶尖发黄程度递减。
第一片叶焦黄，从下到上，叶尖都发黄，第三片叶弯折，第二、四片叶发黄程度较第三片叶深茎杆粗壮，新叶颜色浅叶宽。
第二片叶有少量成长条形的斑点，叶尖焦黄。
第三片叶叶尖很小部分黄了。
:植株矮小,第二片叶尖发黄,新叶颜色很浅,呈淡黄绿色.第一片叶大部分发黄，叶尖已焦黄。
第二、三、四、五片叶都有弯折现象。
第二三片叶叶尖发黄，两片新叶长势良叶尖发黄，新叶长得十分茂盛。
好，叶较宽，茎杆较粗。
2、5月28日（最后一天）的根系情况缺Mg ：较长缺Fe ：很少，不发达。
缺P ：发达，长且跟须多。
缺S ：特别发达，大、多。
缺Ca ：较细缺N ：瘦长，不发达。
缺K ：一般，不是很长。
完全：一切正常。
3、茎杆情况粗壮：P 、 S一般：Ca 、K 、Mg 瘦弱：Fe 、N 刚好：完全二、实验结果分析 1、缺素症状缺N ：老叶发黄，干枯两片，无斑，生长点完好，根系茂但很细。
缺P ：老叶发黄，干枯一片，无斑，生长点完好，根系茂但较纤细。
鲜重（g ） 完全 缺S缺Mg缺N缺Ca欠K缺P缺Fe初值1.631.92 1.42 1.56 1.99 1.77 1.81 1.45终值 7.25 8.33 5.93 3.22 4.10 4.96 7.82 2.50完全 缺S 缺Mg 缺N 缺Ca 欠K 缺P 缺Fe 总叶片数 6 6 6 4 4 6 6 4 枯死叶片数111 2111缺Ca：全部干枯，枯叶上有褐斑，根短而少、生长点略微缺损、停止生长。
缺Mg：老叶发黄，干枯一片，二叶上有褐斑，生长点完好，根系弱小。
缺Fe：新叶呈黄绿色，边缘干枯，无斑，根系相对植株弱小。
缺S：老叶发黄，干枯一片，生长点完好，茎杆粗壮，根系茂盛。
缺K：老叶发黄，干枯零片，无斑，生长点完好，根系茂盛2 植物生长前后鲜重对比由前后鲜重对比表可以看出，与完全培养相比，缺素培养的植株重量基本降低，干物质的积累明显减少。