酵母实验操作方案
酵母制作馒头实验报告
酵母制作馒头实验报告实验目的本次实验旨在探究酵母在制作馒头过程中的作用，并比较不同参数下的馒头质地，以便寻找最佳制作条件。
实验材料和方法材料1. 高筋面粉300克2. 酵母10克3. 白糖10克4. 温水100克5. 盐适量方法1. 将面粉放入容器中，加入白糖和盐，充分搅拌均匀。
2. 在面粉中挖一个小坑，将酵母溶解在温水中。
3. 将溶解好的酵母水倒入面粉中，用筷子搅拌均匀。
4. 将面团放在桌面上，揉搓约10分钟，直到面团光滑且有弹性。
5. 将揉好的面团放入盆中，用湿布盖好，放置在温暖通风的环境中发酵1至2小时，直到面团体积明显增大。
6. 取出面团，揉搓排除气泡。
7. 将面团分割成适当大小的小块，搓圆。
8. 将搓好的小面团放在蒸锅中，蒸15至20分钟，直到馒头变得蓬松。
9. 取出馒头，稍稍晾凉后即可食用。
实验结果及分析在本次实验中，我们尝试了不同条件下制作馒头：实验一：发酵时间对馒头质地的影响在这一实验中，我们将发酵时间设置为1小时和2小时进行对比。
结果显示，发酵时间为2小时的馒头比发酵时间为1小时的馒头更加蓬松，质地更加绵软。
这是因为在较长时间的发酵过程中，酵母可以更充分地分解淀粉和蛋白质，产生更多的气体，从而使馒头发酵得更好。
实验二：酵母用量对馒头质地的影响在这一实验中，我们将酵母用量设置为5克、10克和15克进行对比。
结果显示，酵母用量为10克时的馒头比其他两组更加松软。
而酵母用量过多或过少，都会对馒头的质地造成不良影响。
过多的酵母会导致馒头过于发糖，而过少的酵母则会使发酵不充分，馒头质地较硬。
结论在本次实验中，我们发现馒头制作的关键因素是发酵时间和酵母用量。
较长时间的发酵和适量的酵母用量能够获得更加蓬松和绵软的馒头。
在实际制作中，我们可以根据自己的口味偏好和实际情况进行调整。
如果时间允许，可以选择较长的发酵时间以获得最佳的效果。
总之，酵母在馒头制作中起到了关键的作用，通过本次实验我们对制作馒头的原理和方法有了更深的了解。
酵母单杂交实验流程
酵母单杂交实验流程概述：酵母单杂交实验是一种常用的研究方法，用于确定基因的遗传方式和相互作用。
通过将两个不同的酵母菌株进行杂交，可以获得具有两个不同亲代特征的杂交子代。
本文将详细介绍酵母单杂交实验的流程。
实验材料和设备准备：1. 两个不同的酵母菌株，分别标记为A和B。
2. 酵母菌培养基。
3. 酵母菌培养皿。
4. 酵母菌细胞计数板。
5. 显微镜和显微镜玻片。
6. 移液器和移液管。
7. 离心机。
实验步骤：1. 预培养酵母菌株：将酵母菌株A和B分别接种到含有适宜培养基的培养皿中，分别培养过夜，以确保菌株处于最佳生长状态。
2. 制备酵母菌株的细胞悬液：用适量的酵母菌培养基将菌落转移到离心管中，用移液管充分混合。
然后，使用显微镜和细胞计数板计数酵母菌细胞的浓度。
调整浓度至所需的菌数。
3. 杂交：将菌株A和B的细胞悬液按照一定比例混合，然后在培养皿中滴加混合液。
确保混合液均匀分布在培养皿表面。
4. 孵育：将培养皿置于恒温培养箱中，培养一定时间，以便杂交子代形成。
5. 筛选杂交子代：从培养皿中挑选出杂交子代的克隆菌落。
使用显微镜检查克隆菌落的形态，选择具有两个亲代特征的菌落。
6. 单克隆培养：将所选菌落分别转移到新的培养皿中，培养过夜。
确保每个菌落都是来自单个细胞的纯系。
7. 验证杂交子代：对单克隆菌落进行遗传分析，以验证杂交子代的基因遗传方式。
可以使用多种遗传分析方法，例如基因重组实验、基因敲除实验等。
8. 结果分析：对杂交子代的遗传方式和相互作用进行统计和分析。
根据结果可以推断出酵母菌株A和B的基因遗传方式和相互作用。
实验注意事项：1. 实验过程中要保持无菌操作，避免外源性污染。
2. 实验室应保持干净整洁，设备要经过正确的消毒和清洗。
3. 实验过程中要注意安全，避免接触有害物质和操作过程中的伤害风险。
4. 实验结果应进行统计分析，并与控制组进行比较，以确保结果的准确性和可靠性。
总结：酵母单杂交实验是一种重要的遗传研究方法，通过将两个不同的酵母菌株进行杂交，可以获得具有两个不同亲代特征的杂交子代。
高中生物操作类实验教案
高中生物操作类实验教案
实验目的：通过观察酵母菌的呼吸作用，了解生物体呼吸过程中产生的能量来源以及呼吸产物。
同时培养学生动手能力和科学观察能力。
实验材料：
- 干酵母
- 盐水
- 试管
- 实验室天平
- 水槽
- 密闭容器
- 实验记录表
实验步骤：
1. 将干酵母加入盐水中搅拌均匀，制备成悬浮液。
2. 在试管中放入适量的悬浮液，并将试管放入水槽中。
3. 将密闭容器盖在试管口上方，确保试管内的气体不会泄露。
4. 观察一段时间后，记录观察到的现象和气泡的数量。
5. 将实验结果填写在实验记录表中。
实验原理：
酵母菌在呼吸作用中会消耗氧气，并释放二氧化碳和能量。
当酵母菌与水混合后，会在水中继续进行呼吸作用，产生气泡释放到空气中。
实验注意事项：
1. 操作时要小心，避免试管破裂或者溅出液体。
2. 注意实验室安全，勿将实验物品随意丢弃。
3. 实验结束后要清洗实验器材并归还。
实验结果分析：
通过观察气泡的数量和实验现象，可以了解酵母菌在呼吸作用中释放气体的过程和结果。
同时，可以进一步讨论生物体呼吸作用对环境的影响和生物体的生存条件。
酵母菌纯培养的实验步骤
酵母菌纯培养的实验步骤
酵母菌纯培养的实验步骤如下：
1. 取少量酵母菌样品，使用选择培养基（例如固体葡萄糖、面粉琼脂培养基，添加有特殊药液和增菌剂的选择培养基有利于酵母菌的筛选）进行分离纯化。
2. 筛选出发酵力良好的菌落并进行纯培养。
在酒精发酵实验中发现典型的酵母菌菌落可移种至综合生化管培养箱中进一步鉴定。
3. 使用液体培养基进行酵母菌扩大培养，准备好无菌吸管和无菌锥形瓶，将酵母菌从锥形瓶中转移到试管中。
4. 对酵母菌进行计数，准备血液培养皿和牛肉膏琼脂培养基，接种菌液到培养基中使其生长并繁殖，观察生长情况并进行计数。
通过以上步骤，就可以对酵母菌进行纯培养，请确保所有使用到的工具和试剂都经过灭菌处理。
以上步骤仅供参考，建议您咨询专业人士获取更具体的信息。
酵母单杂实验步骤
酵母单杂实验步骤酵母是一种微生物，常被用于食品发酵和酿酒过程中。
酵母单杂实验可以帮助我们更好地了解酵母的特性和行为。
下面是进行酵母单杂实验的步骤：第一步：准备所需要的实验器材和试剂。
包括培养皿、琼脂平板、酵母菌种、无菌的培养基、移液器等。
第二步：将培养皿和琼脂平板进行消毒处理。
使用高温和紫外线辐射等方法杀灭表面的微生物，保证实验的无菌环境。
第三步：准备酵母菌种。
从酒厂、面包店等地获取新鲜的酵母菌，用无菌的移液器将酵母悬液移到培养基的琼脂平板上。
第四步：将酵母菌培养在琼脂平板上。
将平板倒置放在恒温箱中，温度控制在30℃左右。
酵母菌在琼脂平板上生长，形成菌落。
第五步：观察菌落的形态和特征。
通过裸眼观察和放大镜观察菌落的大小、颜色、形状等，记录并比较不同菌落的特征。
第六步：选择出具有单一菌种的菌落。
用无菌的移液器将所选择的菌落转移到新鲜的琼脂平板上，以分离并纯化单一菌种。
第七步：进行酵母单杂实验。
在新鲜的琼脂平板上划线或者用无菌的吸管在培养基上进行划线，用已培养好的单一菌种接种。
第八步：观察和记录酵母菌的生长情况。
在指定的时间内，观察酵母菌在琼脂平板上的生长情况，包括生长速度和菌落的形态等，记录并分析实验结果。
第九步：对实验结果进行数据处理和分析。
根据实验结果，进行数据统计和图表绘制，比较不同菌落的差异。
酵母单杂实验是了解酵母菌的生长特性和行为的有效方法。
通过该实验，我们可以了解不同菌落的差异，为研究酵母菌的应用提供依据。
同时，该实验还可以培养学生的实验操作能力和科学观察能力，对培养科学素养有重要意义。
酵母实验操作方案
酵母实验操作方案一．质粒酶切及线性化1）用维特洁日常型小量DNA纯化试剂盒抽提9KSF2，可得到较纯的质粒10μg/3ml菌液，终体积80ul。
2）线性化质粒使用80μl酶切体系9KSF2质粒70μl内切酶（SacI，SalI，BglⅡ）2μl10 x buffer 8μl3）酶切3－16小时，一般3小时即可；二．乙醇回收酶切质粒1）2倍体积无水乙醇和0.1倍体积的3M NaAC（PH 5.2），混匀，沉淀DNA；2）－20℃数个小时（>2小时），13,200rpm离心10～20分钟，吸弃上清；3）300ul 70％乙醇洗一次，13,200rpm离心10分钟，吸弃上清（注意离心管位置，从含有DNA的离心管另一侧吸取）；4）37℃烘干水分和残留乙醇；5）用20μl ddH2O重溶；6）1ul样品电泳检测DNA量，计算DNA总量；三．电转化1．准备感受态细胞1）5ml YPD 接种GS115单菌落，250rpm，30℃，摇菌24 hours；2）100ml YPD，接种百分之一，同时留1ml空白YPD，30℃，250rpm，7～8 hours，直到OD600＝1.3～1.5；3）菌液转入500ml离心管，JA14，1500g，4℃离心5 min，弃上清；4）100ml冰水重悬，同上离心，弃上清；5）80～90ml冰水重悬【50ml】，同上离心，弃上清；6）20ml冰1M sorbitol 重悬【5ml】，然后转移到50ml 离心管中，同上离心，弃上清；7）约150μl 1M sorbitol重悬【250ul】，4℃备用，剩下的感受态细胞可以保存在－70℃冰箱大约3周。
2．转化1)100μl GS115感受态细胞加入＋20μl 线性化质粒，用枪打匀；2)冰浴5min，加入0.2cm转化杯中，轻轻将液体震到杯底，立即冰浴；3) 电转化，参数设定：电压1500V 电容25μF 电阻200欧姆，放电时间4～5ms4)立即加650μl 冰1M sorbitol 入转化杯，打匀；5) 迅速涂板，250μl/块MD板，共3块；6) 涂好的板放在30℃培养箱中培养4～5天，至菌落直径1mm即可。
酵母发酵实验
酵母发酵实验酵母是一种单细胞真菌，广泛应用于发酵过程中。
通过与酵母的接触，我们可以发现其在合适条件下，能够将糖分解为酒精和二氧化碳，产生酵母发酵现象。
本实验将介绍酵母发酵的基本原理和实验步骤。
一、实验目的本实验旨在探究酵母在不同条件下的发酵速度，并分析影响酵母发酵的因素。
二、实验材料- 干活性酵母- 白砂糖- 500毫升烧杯或容量瓶- 温水- 温度计- 塑料气球或气吹管- 实验记录表格三、实验步骤1. 准备工作a. 清洗和消毒烧杯或容量瓶，确保无细菌污染。
b. 准备适量的温水，并用温度计测量温度。
c. 准备记录表格，列出实验条件和观察结果的栏目。
2. 实验组设置a. 准备三组实验组。
b. 每组在一个烧杯或容量瓶中加入相同量的温水。
c. 将白砂糖按照不同浓度加入到三组实验组中，比如A组加入10克、B组加入20克、C组加入30克。
3. 酵母投放a. 每组实验组中加入相同量的干活性酵母，比如每组加入5克。
b. 快速搅拌，确保糖和酵母均匀混合。
4. 温度控制a. 使用温度计检测实验组中的温度，并保持恒温。
b. 调整温水的温度，分别为A组控制在25摄氏度、B组控制在30摄氏度、C组控制在35摄氏度。
5. 观察记录a. 开始观察并记录每组实验组的发酵情况。
b. 使用塑料气球或气吹管将实验组口部密封，以防二氧化碳逸出。
c. 每隔15分钟观察一次发酵结果，并记录到表格中。
6. 数据分析和讨论a. 对每组实验组的发酵速度进行比较，分析不同温度和糖浓度对发酵的影响。
b. 讨论可能的影响因素，例如温度、糖浓度、酵母菌量等。
c. 总结实验结果，得出结论。
四、实验注意事项1. 实验结束后，及时清理实验场地，并注意对实验器材进行清洗和消毒。
2. 在进行实验时，确保操作平稳，以避免酵母液溅出。
3. 在实验过程中，严格遵守实验室规章制度，确保安全操作。
五、实验结果与分析通过观察不同实验条件下的酵母发酵情况，我们可以看到以下结果：在较高温度下（35摄氏度），酵母的发酵速度更快，并且产生的气体量更大。
微生物实验教案：酵母培养的教学设计
微生物实验教案：酵母培养的教学设计酵母培养的教学设计一、实验目的通过酵母（葡萄酒发酵酵母）的培养实验，让学生了解酵母生长的条件、培养方式、菌落特征、代数增长等基本知识，提高其观察能力和实验操作能力。
二、实验原理酵母是一种微生物，即真菌类生物。
酵母是发酵工业和食品工业中的一个重要菌种。
在培养酵母时需要注意以下几个方面：1、生长基质的准备需要准备好的培养液可以是yeast extract peptone dextrose medium（YPDM），也可以是酵母液，基本配方为葡萄糖、酵母粉、肉汤粉和水。
其中，酵母粉是一个含有营养良好酵母的混合饲料，但不能单用酵母粉来制作培养基。
2、酵母的寿命酵母同样有寿命，它寿命短的原因是存在一定的基因缺陷和代谢毒物。
而以代谢产物进行培养则可以延长酵母的的寿命。
因此，在酵母孵育过程中，可以添加一定的异丙醇等代谢产物以延长酵母寿命。
3、培养条件对于酵母菌落的培养，需要选择适当的培养条件，包括适当的温度、适当的氧气浓度等。
4、培养时间培养时间是影响酵母的生长和代数增长的重要因素。
细胞分裂速度和代数增长速度与温度、细胞密度等有关，在适宜的条件下形成比较容易。
三、实验器材1、试管架2、移液管3、胶头针4、灭菌药水（70%酒精）5、生物安全柜6、显微镜7、光学显微镜8、培养盘四、实验步骤1、接种酵母从冰箱里用胶头针取一块酵母，将其在生物安全柜中接种到已经准备好的YPDM或酵母液中。
2、培养酵母将已经接种过的酵母培养于适宜的温度下，比如说30℃的恒温槽中。
3、鉴别酿酒酵母的特征观察酿酒酵母在YPDM或酵母液中生长的情况，可以根据它的菌落特征、质地等鉴别酿酒酵母。
4、计算酵母的代数增长可以通过观察酵母培养基中倒置培养盘中的菌落，计算酵母的代数增长。
五、实验注意事项1、实验前需要杀菌物品，防止菌群繁殖，保证实验安全性。
2、按操作规范进行实验操作，防止病菌交叉污染。
3、观察过程中需要光学显微镜，防止目光衰减造成伤害。
酵母发酵过程实验报告
一、实验目的1. 了解酵母发酵的基本原理和过程。
2. 掌握酵母发酵实验的操作方法。
3. 通过实验验证酵母发酵产生的气体主要是二氧化碳。
二、实验原理酵母发酵是一种生物化学过程，其中酵母菌利用糖类作为碳源，在无氧条件下进行无氧呼吸，产生酒精和二氧化碳气体。
在有氧条件下，酵母菌进行有氧呼吸，产生水和二氧化碳。
本实验主要研究酵母在无氧条件下的发酵过程。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：面粉、酵母粉、糖、水、锥形瓶、烧杯、滴管、橡皮塞、澄清石灰水等。
2. 实验试剂：葡萄糖、氯化钙、氢氧化钙等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将面粉、酵母粉、糖和水按一定比例混合，搅拌均匀，形成面团。
2. 分装面团：将面团平均分成两份，分别放入两个锥形瓶中。
3. 设置对照组和实验组：- 对照组：在锥形瓶中加入少量葡萄糖溶液，用橡皮塞封口，放入烧杯中。
- 实验组：在锥形瓶中加入面团，用橡皮塞封口，放入烧杯中。
4. 将两组锥形瓶置于37℃恒温培养箱中，分别培养24小时和48小时。
5. 观察并记录实验现象：- 对照组：观察锥形瓶内葡萄糖溶液的变化，记录溶液颜色、透明度等。
- 实验组：观察锥形瓶内面团的变化，记录面团体积、硬度等。
6. 将实验组锥形瓶中的气体导入澄清石灰水中，观察石灰水的变化。
五、实验结果与分析1. 对照组实验现象：24小时后，葡萄糖溶液颜色变浅，透明度降低；48小时后，葡萄糖溶液颜色消失，溶液浑浊。
2. 实验组实验现象：24小时后，面团体积明显增大，硬度降低；48小时后，面团体积继续增大，硬度进一步降低。
3. 实验组气体检验：将实验组锥形瓶中的气体导入澄清石灰水中，石灰水变浑浊，证明产生了二氧化碳气体。
六、实验结论1. 酵母发酵过程中，酵母菌利用糖类作为碳源，在无氧条件下进行无氧呼吸，产生酒精和二氧化碳气体。
2. 本实验通过观察面团体积变化和气体检验，验证了酵母发酵过程中产生了二氧化碳气体。
七、实验讨论1. 影响酵母发酵的因素有哪些？如何优化实验条件？2. 酵母发酵在食品工业中的应用有哪些？八、实验总结本实验通过观察酵母发酵过程中的面团体积变化和气体检验，验证了酵母发酵过程中产生了二氧化碳气体。
实验报告酵母的观察
实验报告酵母的观察引言酵母是一种单细胞真菌，广泛存在于自然界中。
它们具有重要的实验应用价值，尤其在食品发酵、酒精生产和生物学研究等领域。
本实验旨在观察酵母的生长情况和结构特征，通过实际操作探索酵母在不同环境条件下的生态适应和繁殖机制。
材料与方法材料：1. 酵母培养基2. 酵母菌液3. 显微镜4. 盖玻片5. 移液器6. 培养皿方法：1. 在培养皿中倒入酵母培养基，制备成0.5%的酵母悬浮液。
2. 准备好显微镜和盖玻片。
3. 使用移液器取一滴酵母菌液放在盖玻片上。
4. 在显微镜下观察酵母的形态和生长情况。
5. 记录观察结果。
结果与讨论结果经过观察，我们发现酵母细胞呈现圆形或椭圆形，大小约为5-10微米。
它们具有一个厚壁的细胞质，质地松软，呈浑浊的乳白色。
酵母细胞在显微镜下可以清楚地看到细胞壁和细胞质的各种细节结构。
讨论酵母是一种单细胞真菌，通过对于糖类物质的代谢而产生能量，并产生二氧化碳和乙醇等有机物质。
酵母在培养基中生长迅速，形成了很多的酵母菌群落。
在显微镜下观察，可以看到酵母细胞繁殖迅速，呈现出链状或团状的结构。
这些细胞通过分裂繁殖，形成新的酵母子细胞。
酵母细胞的细胞壁是一层坚韧的外壳，保护细胞不受外界环境的损害。
细胞壁主要由纤维素和蛋白质组成，可以提供细胞形态的稳定性和抗压强度。
酵母细胞在培养基中的生长是通过酵母菌液的代谢活动来完成的，它们摄取糖类物质，并通过发酵过程产生能量和二氧化碳。
这种代谢过程又进一步促进了酵母细胞的繁殖和生长。
酵母细胞的观察为我们提供了一种了解生物细胞结构和生命活动的途径。
通过对酵母细胞的观察和研究，我们可以更好地理解细胞的组成和功能，在食品和酒精等方面的应用也具有重要意义。
结论通过本次实验，我们观察了酵母细胞在显微镜下的结构和生长情况。
酵母细胞形态多样，大小均匀，细胞壁坚韧。
酵母细胞在培养基中生长迅速，形成了酵母菌群落。
这次实验为我们提供了一个了解酵母细胞结构和生态特征的机会，对于理解微生物生物学和相关应用有着重要的意义。
酵母小实验报告
一、实验目的1. 了解酵母菌的基本特性。
2. 探究酵母菌在不同环境条件下的生长情况。
3. 学习微生物实验的基本操作。
二、实验原理酵母菌是一种单细胞真菌，广泛存在于自然界中。
在适宜的条件下，酵母菌可以迅速繁殖。
本实验通过观察酵母菌在不同环境条件下的生长情况，了解酵母菌的生长规律和影响因素。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：酵母粉、葡萄糖、蔗糖、淀粉、氯化钠、硫酸铜、琼脂、无菌水、培养皿、试管、酒精灯、镊子、显微镜等。
2. 实验试剂：氢氧化钠、盐酸、乙酸、氢氧化钠溶液、氯化钠溶液、硫酸铜溶液等。
四、实验步骤1. 酵母菌活化：将酵母粉加入无菌水中，搅拌均匀，置于37℃水浴中活化30分钟。
2. 不同碳源对酵母菌生长的影响：a. 将葡萄糖、蔗糖、淀粉分别加入无菌水中，制成1%的溶液。
b. 将活化后的酵母菌均匀接种于各溶液中，置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
c. 观察并记录各溶液中酵母菌的生长情况。
3. 不同氮源对酵母菌生长的影响：a. 将氯化钠、硫酸铜分别加入无菌水中，制成0.1%的溶液。
b. 将活化后的酵母菌均匀接种于各溶液中，置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
c. 观察并记录各溶液中酵母菌的生长情况。
4. 不同温度对酵母菌生长的影响：a. 将活化后的酵母菌均匀接种于无菌水中，置于不同温度（25℃、37℃、45℃）的恒温培养箱中培养24小时。
b. 观察并记录各温度下酵母菌的生长情况。
5. 酵母菌形态观察：a. 将活化后的酵母菌涂片，进行革兰氏染色。
b. 使用显微镜观察酵母菌的形态。
五、实验结果与分析1. 不同碳源对酵母菌生长的影响：a. 葡萄糖溶液中酵母菌生长良好，菌落呈白色，边缘整齐。
b. 蔗糖溶液中酵母菌生长一般，菌落呈白色，边缘较模糊。
c. 淀粉溶液中酵母菌生长较差，菌落呈白色，边缘不整齐。
2. 不同氮源对酵母菌生长的影响：a. 氯化钠溶液中酵母菌生长良好，菌落呈白色，边缘整齐。
b. 硫酸铜溶液中酵母菌生长较差，菌落呈白色，边缘不整齐。
酵母实验教案设计方案模板
一、实验名称酵母发酵实验二、实验目的1. 了解酵母在发酵过程中的作用。
2. 掌握酵母发酵的基本原理和实验操作方法。
3. 培养学生的实验操作技能和观察能力。
三、实验原理酵母是一种单细胞真菌，在适宜的条件下，酵母能够将糖类物质转化为酒精和二氧化碳。
本实验通过观察酵母发酵过程中酒精和二氧化碳的产生，验证酵母的发酵作用。
四、实验材料与试剂1. 实验材料：酵母粉、葡萄糖、琼脂、蒸馏水、烧杯、试管、酒精灯、酒精、滴管、pH试纸、碘液、锥形瓶、玻璃棒等。
2. 实验试剂：酵母粉、葡萄糖、琼脂、蒸馏水、碘液、酒精等。
五、实验步骤1. 准备实验材料：将琼脂加入蒸馏水中，加热溶解后，冷却至室温备用。
2. 配制培养基：将葡萄糖加入琼脂溶液中，搅拌均匀，倒入锥形瓶中，待凝固后，制成固体培养基。
3. 接种酵母：用无菌滴管将酵母粉接种于固体培养基上，用玻璃棒轻轻搅拌，使酵母均匀分布。
4. 观察酵母发酵：将接种后的培养基置于37℃恒温培养箱中培养，每隔一定时间观察酵母菌的生长情况和酒精、二氧化碳的产生。
5. 测定pH值：用pH试纸测定发酵过程中培养基的pH值变化。
6. 验证二氧化碳产生：将装有发酵培养基的锥形瓶倒置，观察瓶底是否有气泡产生。
7. 验证酒精产生：用碘液检测发酵过程中酒精的产生。
六、实验注意事项1. 实验过程中要保持无菌操作，避免污染。
2. 实验过程中要严格遵守实验操作规程，确保实验结果准确。
3. 注意观察实验现象，做好实验记录。
七、实验报告要求1. 实验报告应包括实验目的、原理、材料与试剂、实验步骤、实验结果、实验讨论等内容。
2. 实验结果应包括酵母菌的生长情况、pH值变化、二氧化碳和酒精的产生情况等。
3. 实验讨论应结合实验结果，分析酵母发酵过程中的变化和原因。
八、实验拓展1. 探究不同温度、不同浓度的葡萄糖对酵母发酵的影响。
2. 研究其他微生物的发酵作用，如乳酸菌、醋酸菌等。
3. 了解发酵技术在食品、医药、化工等领域的应用。
生物实验作文教案模板初中
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一、实验名称：观察酵母发酵产生气体的情况
二、实验目的：通过观察酵母在不同条件下的发酵过程，了解酵母发酵产生气体的原理和
条件。
三、实验材料：酵母、砂糖、温水、试管、试管架、小瓶等。
四、实验步骤：
1. 准备实验材料，并用温水将酵母悬浮于试管中；
2. 向试管中加入适量的砂糖，并轻轻摇动试管使其充分溶解；
3. 将试管放置于试管架上，观察酵母在温水中产生气泡的情况；
4. 对照组实验：将不加入砂糖的酵母悬浮液放置在温水中观察其气泡产生情况。
五、实验结果分析：
1. 实验组：观察到酵母在加入砂糖后，产生大量气泡，说明酵母在砂糖的作用下进行了发
酵产生了气体；
2. 对照组：不加入砂糖的酵母悬浮液没有产生气泡，说明砂糖是酵母发酵的必要条件之一。
六、实验结论：酵母在砂糖的作用下发酵产生气体，砂糖是酵母发酵的必要条件之一。
七、实验注意事项：在实验过程中要注意安全，慎用火源，避免产生危险情况。
八、延伸实验：可以进一步研究不同的酵母种类对产生气体的影响，或者探究不同温度下
酵母发酵的情况。
以上为本次实验的教案模板，希望对您有所帮助。
祝您实验顺利！。
生物实验观察酵母发酵
生物实验观察酵母发酵一、实验目的通过观察实验，了解酵母的发酵过程，探究发酵过程中产生的气体和液体变化。
二、实验材料和器材1. 酵母2. 砂糖3. 酵母培养基4. 试管/玻璃烧杯5. 温度计6. 水槽/容器7. 水8. 手套、口罩和护目镜（注意安全）三、实验步骤1. 准备工作a. 穿戴好实验室防护装备（手套、口罩、护目镜）。
b. 将酵母、砂糖和酵母培养基准备好。
c. 准备试管或玻璃烧杯，清洗干净并消毒。
2. 实验操作a. 取一个清洗干净的试管或玻璃烧杯，加入适量的酵母培养基。
b. 向试管或玻璃烧杯中加入约1克的砂糖。
c. 轻轻摇晃试管或玻璃烧杯，使酵母和砂糖充分混合。
d. 在试管或玻璃烧杯的口部盖上气球（确保气球与试管或玻璃烧杯口紧密贴合）。
3. 观察实验a. 将装有酵母培养基和砂糖的试管或玻璃烧杯放置在温度适宜的水槽或容器中。
b. 观察实验开始后酵母发酵产生的气泡和气球的膨胀情况。
c. 记录实验开始后每隔一段时间对酵母发酵的观察结果。
四、实验结果在实验开始后，当酵母与糖分充分混合后，酵母开始进行发酵作用，观察到以下现象：1. 气泡产生：酵母发酵过程中产生二氧化碳气体，使试管内或玻璃烧杯中产生小气泡。
2. 气球膨胀：酵母发酵产生的大量气体充满气球，使气球膨胀。
五、实验原理酵母发酵是一种生物化学过程，主要作用是将糖类分解为乙醇和二氧化碳。
酵母为真菌类生物，能分解葡萄糖，产生能量和二氧化碳。
在适宜的环境温度和氧气供应下，酵母利用糖类进行呼吸作用，产生能量和二氧化碳。
实验中添加的砂糖为酵母提供能量，而酵母培养基则提供了酵母所需的营养物质。
当砂糖与酵母培养基充分混合后，在适宜的温度下，酵母开始进行发酵活动，并产生大量二氧化碳气体，导致气泡的产生和气球的膨胀。
六、实验注意事项1. 实验操作要穿戴好实验室防护装备，确保实验安全。
2. 注意保持实验区域的清洁，避免其他因素对实验结果的影响。
3. 在实验过程中注意温度的控制，确保水的温度适宜。
酵母细菌实验报告
一、实验目的1. 通过观察酵母细菌的形态特征，了解其基本结构和繁殖方式。
2. 掌握酵母细菌的分离纯化方法。
3. 鉴定所分离纯化的酵母细菌种类。
二、实验材料与试剂1. 实验材料：酵母细菌培养物、牛肉膏蛋白胨琼脂平板、牛肉膏蛋白胨液体培养基、无菌水、无菌接种环、酒精灯、显微镜等。
2. 试剂：10%氢氧化钾溶液、1%氯化钠溶液、0.9%氯化钠溶液、无菌生理盐水、革兰氏染色液、无菌封口膜等。
三、实验方法1. 酵母细菌的分离纯化（1）将酵母细菌培养物用无菌接种环取适量接种于牛肉膏蛋白胨琼脂平板上。
（2）将平板倒置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
（3）观察菌落特征，挑选单菌落进行纯化。
2. 酵母细菌的形态观察（1）将纯化后的酵母细菌培养物接种于牛肉膏蛋白胨液体培养基中，37℃恒温培养24小时。
（2）取少量培养物，用无菌生理盐水稀释至适宜浓度。
（3）用无菌接种环取适量稀释后的培养物，涂布于载玻片上。
（4）用无菌封口膜封好载玻片，放置于显微镜下观察。
3. 酵母细菌的鉴定（1）革兰氏染色：取少量培养物，滴加革兰氏染色液，用酒精脱色，水洗，番红复染，观察细菌的革兰氏染色结果。
（2）镜检：观察酵母细菌的形态、大小、排列等特征。
（3）生理生化反应：进行葡萄糖发酵、乳糖发酵、糖发酵等实验，观察细菌的生理生化反应。
四、实验结果与分析1. 酵母细菌的分离纯化经过分离纯化，成功分离出一株单菌落，菌落呈白色，表面光滑，边缘整齐。
2. 酵母细菌的形态观察在显微镜下观察，该酵母细菌为单细胞，呈椭圆形，大小约为2-4μm，排列呈链状。
3. 酵母细菌的鉴定（1）革兰氏染色：该酵母细菌革兰氏染色为阳性，说明其为革兰氏阳性菌。
（2）镜检：该酵母细菌为单细胞，呈椭圆形，大小约为2-4μm，排列呈链状，符合酵母细菌的形态特征。
（3）生理生化反应：该酵母细菌能发酵葡萄糖，但不能发酵乳糖，说明其为酵母菌。
五、实验结论通过本次实验，我们成功分离出一株酵母细菌，并对其进行了形态观察和鉴定。
高中生物实验方法运用教案
高中生物实验方法运用教案
实验目的：通过观察酵母在不同温度下的发酵作用，了解温度对生物活动的影响。
实验材料：
1. 酵母
2. 糖水溶液
3. 温度计
4. 试管
5. 实验器皿
6. 火柴
7. 倒计时器
实验步骤：
1. 将一定量的酵母置于实验器皿中，并加入适量的糖水溶液。
2. 将试管中的糖水溶液加热至不同温度，如25℃、35℃、45℃等，分别作为实验组的温度条件。
3. 将不同温度条件下的糖水溶液分别倒入含有酵母的实验器皿中，轻轻搅拌均匀后，立即开始计时。
4. 用火柴将实验器皿口封严，观察气泡产生情况，并记录反应持续时间。
5. 分别在不同温度条件下观察并记录酵母的发酵现象。
实验总结：
1. 对比不同温度条件下酵母的发酵作用，得出结论并做出相关实验数据图表。
2. 思考温度对酵母发酵活性的影响原因，提出进一步深入实验的可能性。
3. 总结实验中的操作技巧和注意事项，以及实验结果的分析和解释。
拓展思考：
1. 进一步研究酵母发酵的影响因素，如不同浓度的糖水溶液、不同pH值等。
2. 探究温度对其他生物活动的影响，如昆虫的活动、植物的生长等。
3. 尝试设计更多有关生物活动的实验，培养学生的观察力和实验技能。
实验注意事项：
1. 实验过程中要注意实验器皿的清洁，避免细菌的污染。
2. 火柴使用时要小心，避免烧伤。
3. 实验结束后要及时清理实验现场，将实验器材归还到指定位置。
期望成果：
通过本实验，学生能够了解温度对酵母发酵作用的影响，提高实验设计和数据处理能力，培养科学研究的兴趣和能力。
初二生物地理会考实验酵母菌
初二生物地理会考实验酵母菌
一、目的要求：
1、制作酵母菌的临时装片。
2、规范操作显微镜，观察酵母菌。
3、认识酵母菌的形态结构。
4、会画一个酵母菌细胞的结构图。
二、实验器材：
酵母菌培养液、吸管、稀释的碘液、吸水纸、镊子、载玻片、盖玻片、显微镜。
三、实验方案：
1、检查器材。
2、制作酵母菌的临时装片。
3、观察。
四、实验操作：
1、检查所需实验器材是否完备。
2、擦盖玻片和载玻片。
3、取一滴酵母菌培养液，滴在载破片中央。
4、用镊子夹起盖玻片，让盖玻片一侧先轻轻接触中央培养液，再缓缓放平。
注意不要出现气泡。
5、在盖玻片的一侧滴一滴碘液，用吸水纸从另一侧吸引，使碘
液均匀的染色。
6、调整显微镜，对光。
将玻片放置于载物台，用低倍镜观察。
7、绘图。
8、整理实验台，完成后举手示意。
酵母培养实验报告
一、实验目的1. 掌握酵母菌的培养方法。
2. 了解酵母菌在不同条件下的生长规律。
3. 培养无菌操作技能。
二、实验原理酵母菌是一种单细胞真菌，广泛分布于自然界中。
在适宜的条件下，酵母菌能够迅速繁殖，产生大量的子细胞。
本实验通过培养酵母菌，观察其在不同条件下的生长情况，了解酵母菌的生长规律。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：- 酵母菌（啤酒酵母）- 酵母菌培养基（葡萄糖酵母膏琼脂培养基）- 100ml三角瓶、无菌滴管、酒精灯、镊子、培养箱等2. 实验试剂：- 葡萄糖- 酵母膏- 琼脂- 蒸馏水四、实验步骤1. 培养基制备：- 称取20g葡萄糖、5g酵母膏、15g琼脂，加入100ml蒸馏水。
- 将混合物加热溶解，调整pH值为6.0-6.5。
- 分装至100ml三角瓶中，每瓶15ml。
- 121℃高压灭菌15分钟。
2. 酵母菌接种：- 将灭菌后的培养基冷却至50℃左右。
- 用无菌滴管吸取酵母菌，接种于培养基中。
- 每瓶接种量约为1ml。
3. 培养与观察：- 将接种后的培养基置于28℃培养箱中培养。
- 每天观察酵母菌的生长情况，记录菌落形态、颜色、大小等。
4. 不同条件下的酵母菌生长实验：- 调整培养基的pH值，观察酵母菌在不同pH值下的生长情况。
- 调整培养基的葡萄糖浓度，观察酵母菌在不同葡萄糖浓度下的生长情况。
- 调整培养基的琼脂浓度，观察酵母菌在不同琼脂浓度下的生长情况。
五、实验结果与分析1. 酵母菌在28℃培养箱中生长良好，菌落呈白色，圆形，表面光滑。
2. 酵母菌在不同pH值下的生长情况：- 在pH值为4.0时，酵母菌生长缓慢，菌落较小。
- 在pH值为6.0时，酵母菌生长旺盛，菌落较大。
- 在pH值为8.0时，酵母菌生长受到抑制，菌落几乎不生长。
3. 酵母菌在不同葡萄糖浓度下的生长情况：- 在葡萄糖浓度为2%时，酵母菌生长缓慢，菌落较小。
- 在葡萄糖浓度为5%时，酵母菌生长旺盛，菌落较大。
- 在葡萄糖浓度为10%时，酵母菌生长受到抑制，菌落几乎不生长。
八年级下生物实验教案范本
八年级下生物实验教案范本实验名称：观察酵母发酵作用实验目的：1.了解酵母的发酵作用2.观察酵母对面团的发酵影响3.加深对酵母发酵过程的理解实验材料：1. 酵母2. 面粉3. 糖4. 温水5. 活性炭酸饮料瓶6. 扎口袋或保鲜膜实验步骤：1. 将30g的面粉放入一个容器中，加入适量的温水搅拌均匀，直到面团形成。
2. 将10g的酵母和10g的糖分别与面团混合好。
3. 将混合好的酵母、糖和面团放入一个干燥的活性炭饮料瓶中。
4. 用扎口袋或保鲜膜将瓶口封好，确保温度和湿度适宜。
5. 将瓶子放在温暖的地方，观察并记录发酵的过程。
实验数据记录：时间（小时）发酵情况12345实验分析：1. 观察面团中的酵母经过一段时间的发酵后，面团体积是否增大？呈现什么样的变化？2. 你观察到的发酵过程是否产生气泡？气味是否发生变化？3. 此实验中发生的是什么类型的发酵作用？实验结果：1. 酵母会通过发酵作用使面团膨胀，体积增大。
2. 发酵过程中会产生气泡，并伴随着一种特殊的气味。
3. 此实验中发生的是酵母对糖的发酵作用。
实验讨论：1. 为什么酵母发酵后会产生气泡？2. 酵母发酵作用有哪些实际应用？延伸实验：1. 改变酵母、糖或者温度等条件，观察发酵过程的差异。
2. 研究不同类型面粉对酵母发酵的影响。
3. 观察酵母在不同溶液中的发酵情况，如盐水、酸性溶液等。
实验安全注意事项：1. 实验过程中要注意卫生，避免细菌或其他污染物的进入。
2. 实验结束后要将残留物和废弃物正确处理，避免对环境造成污染。
3. 实验过程中要注意温度和湿度控制，避免过高的温度和湿度对实验产生影响。
评估方法：1. 观察发酵过程中的变化，记录实验数据。
2. 对实验结果进行分析和讨论。
3. 回答延伸实验和安全注意事项的相关问题。
酵母菌表面展示实验步骤的详细操作说明
酵母菌表面展示实验步骤的详细操作说明实验目的：本实验旨在通过酵母菌表面展示技术，有效地展示目标蛋白质在酵母菌细胞表面的表达。
实验步骤：1. 制备酵母菌工作液：a) 取一支酵母菌存储线圈，用10 μL的酵母菌悬浮于1 mL的无营养培养基中。
b) 用洗涤的酵母菌菌液涂抹在选择性琼脂平板上（包含缺失所需营养物质的培养基），进行孵育。
c) 在28-30°C下，培养酵母菌至单个菌落形成。
2. 实验前处理：a) 酵母菌从琼脂平板上选择一个萌发的孢子（菌落）。
b) 将该孢子接种到10 mL的无营养培养基中，并在28-30°C的恒温摇床上培养过夜。
3. 酵母菌表面展示构建：a) 制备Plasmid DNA：通过PCR扩增目标基因并将其插入到酵母表达载体（例如pYX212）中。
使用合适的限制性内切酶剪切目标DNA，将其连接入线性化载体中。
利用大肠杆菌哺乳细胞（例如E. coli DH5α）进行转化。
b) 将构建好的酵母表达载体DNA转化到酵母菌中。
采用酵母菌电转化或者化学转化法均可。
c) 加入适量的选择性培养基将转化后的酵母菌接种，并在恒温摇床上培养。
4. 酵母菌培养：a) 在选择性培养基中培养转化后的酵母菌。
b) 恒温摇床上以220 rpm的速度，将酵母菌培养过夜，温度通常为28-30°C。
c) 直到培养基达到稀释和溶液相容性的酵母菌细胞浓度（通常为0.5-2A_600）。
5. 酵母菌表面展示结果观察：a) 从培养基中取出一定量的酵母菌细胞悬浮液，并在离心机上以5000 rpm离心10分钟。
b) 弃去上清液，将沉淀的酵母菌细胞重悬于PBS（磷酸盐缓冲液）中。
c) 使用荧光染料（例如荧光素酮或DAPI）染色，用荧光显微镜观察酵母菌细胞表面展示的目标蛋白质。
注意事项：- 实验室操作需保持清洁，严格按照无菌操作规范进行。
- 所使用的培养基、琼脂平板、溶液等应提前准备，严格遵守操作规程。
- 在每个步骤中，使用已经验证的方法和试剂进行，确保实验的可重复性和准确性。
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酵母实验操作方案
一．质粒酶切及线性化
1）用维特洁日常型小量DNA纯化试剂盒抽提9KSF2，可得到较纯的质粒10μg/3ml菌液，终体积80ul。
2）线性化质粒
使用80μl酶切体系
9KSF2质粒70μl
内切酶（SacI，SalI，BglⅡ）2μl
10 x buffer 8μl
3）酶切3－16小时，一般3小时即可；
二．乙醇回收酶切质粒
1）2倍体积无水乙醇和0.1倍体积的3M NaAC（PH 5.2），混匀，沉淀DNA；
2）－20℃数个小时（>2小时），13,200rpm离心10～20分钟，吸弃上清；
3）300ul 70％乙醇洗一次，13,200rpm离心10分钟，吸弃上清（注意离心管位置，从含有DNA的离心管另一侧吸取）；
4）37℃烘干水分和残留乙醇；
5）用20μl ddH2O重溶；
6）1ul样品电泳检测DNA量，计算DNA总量；
三．电转化
1．准备感受态细胞
1）5ml YPD 接种GS115单菌落，250rpm，30℃，摇菌24 hours；
2）100ml YPD，接种百分之一，同时留1ml空白YPD，30℃，250rpm，7～8 hours，直到OD600＝1.3～1.5；
3）菌液转入500ml离心管，JA14，1500g，4℃离心5 min，弃上清；
4）100ml冰水重悬，同上离心，弃上清；
5）80～90ml冰水重悬【50ml】，同上离心，弃上清；
6）20ml冰1M sorbitol 重悬【5ml】，然后转移到50ml 离心管中，同上离心，弃上清；7）约150μl 1M sorbitol重悬【250ul】，4℃备用，剩下的感受态细胞可以保存在－70℃冰箱大约3周。
2．转化
1)100μl GS115感受态细胞加入＋20μl 线性化质粒，用枪打匀；
2)冰浴5min，加入0.2cm转化杯中，轻轻将液体震到杯底，立即冰浴；
3) 电转化，参数设定：电压1500V 电容25μF 电阻200欧姆，放电时间4～5ms
4)立即加650μl 冰1M sorbitol 入转化杯，打匀；
5) 迅速涂板，250μl/块MD板，共3块；
6) 涂好的板放在30℃培养箱中培养4～5天，至菌落直径1mm即可。
注：
a）【】内为手册推荐量，相关文献报道，转化效率一般为103～104 / ugDNA，所需质粒量0.3－10ug不等；
b）放电是可好出现电击穿现象，原因有：酵母浓度不够；DNA溶液离子浓度过大；混合液体积不够；
c）MD板加入1M sorbitol ，转化时第2）步冰浴时间延长至1－2小时，均有利于提高转化效率
四．G418筛选多拷贝基因
1）取出长有克隆的3块板，可考虑先挑10－20个菌落先表达；
2）第一块加入2ml 灭菌的ddH2O，用涂布棒打匀，洗后，菌液吸入第二块；
3）第二块加入1ml，洗之，吸入第三块；
4）菌液吸入EP管，可适量补充ddH2o；
5）混匀后取适量稀释约50倍，4ul×50＝200ul每块G418板，G418浓度从0.25－4.0mg/ml 各一块；
6）注意涂布均匀，可适量补充ddH2O，
7）30℃烘箱培养，2－5day，其余菌液可4℃保存
注：
a）手册推荐方法：第4）步将菌液转入EP管中，振荡5－10秒，用分光光度计测菌体密度，1OD600＝5×107 cells/ml, 取一定体积稀释至200ul/每块G418板, 涂布～105 cells；注意agar的存在会干扰分光光度计的读数。
五．表达：
1）从G418板挑单克隆入4ml/管MGY接种，30℃，250rpm，2天左右至OD＝2－6，颜色乳白；
2）取1ml菌液于EP管中保种，余3ml菌液离心，1500g，5min，菌体换3ml BMMY，加千分之五甲醇，300ul/管；
3）每隔24小时加千分之五甲醇；
4）至表达之日起2天后每天取样80ul，留作电泳分析；
5）表达4天结束，1500g离心，5min，分别收集上清和沉淀；
6）上清用作蛋白分析，跑SDS-PAGE电泳，Western Blotting分析，ELISA分析，样品浓缩，纯化分析等
附录一
培养基
LB：
Tryptone 10g 1%
Yeast Extract 5g 0.5%
NaCl 5g 0.5%
【Agar】15g 1.5%（固体培养基另加）
dH2O稀释至1L，
高压灭菌
YPD：
Yeast Extract 10g 1%
Peptone 20g 2%
【Arga】20g 2％（固体培养基另加）
dH2O 900ml
高压灭菌，冷却至60度，加
10×Dextrose 100ml
YPD－G418：
250ml YPD加10×Dextrose后加适量G418，注意轻摇混匀，不要产生气泡，同时留空白对照板。
YNB 3.4g 0.34%
【Sorbitol】182.2g 1M
【Agar】15-20g 1.5%-2%
dH2O 800ml
高压灭菌，冷却至60度，加
10×(NH4)2SO4100ml 1%
500×biotin 2ml 4×10－5％
10×Dextrose 100ml 1％
MGY：
YNB 3.4g 0.34%
dH2O 800ml
高压灭菌，冷却至60度，加
10×(NH4)2SO4100ml 1%
10×Glycerol 100ml 1%
500×biotin 2ml 4×10－5％
BMMY：
Yeast Extract 10g 1%
Peptone 20g 2%
YNB 3.4g 0.34%
K2HPO4 3.013g
KH2PO4 11.813g (PH6.0 缓冲液)
dH2O 900ml
高压灭菌，冷却至60度，加
10×(NH4)2SO4100ml 1%
每次使用之前，分装后加2/1000体积500×biotin 2ml 4×10－5％
连接产物的质粒转化
1）－70℃取出Top10感受态细胞，50ul/管，取出后迅速分装城10ul或20ul/管；2）冰浴30min；
3）42℃，30秒（精确计时），置于冰水1－2min；
4）加等体积37℃预热的SOC培养基；
5）37℃，225rpm，培养45min；
6）100ul分别涂板，37℃培养；。