悬浮红细胞质量控制研究进展

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辐照后红细胞悬液在不同贮存期游离血红蛋白含量的比较

辐照后红细胞悬液在不同贮存期游离血红蛋白含量的比较
1分 。
2 成 分 制备 人员 操作 失误 例如 当 离心后 的血液 夹在 分 浆 夹 中 进行 分 离时 , 血浆 在 完 全 进 入 转
移袋 后没 有及 时用 夹 子夹 紧 转 移袋 段 的 转移 管 , 部分 红 细胞 流 入 转 移 使 袋 , 成 主袋 中红 细胞数 量 减 少 。还 有例 如 当 离心 后 的 血液 夹 在 分 浆 夹 造 中进 行分 离 时 , 保存 液端 的 阻塞 件 过 早 折断 , 工作 人 员 没有 及 时 发 现 , 而 血浆 在流 人转 移袋 的 同时流 人保 存液 袋 , 成血 浆不 足 量 , 存液 中混入 造 保
我 站质 管科 在对 用血 医 院做 满 意度 调 查 时发 现 , 的医 院反 映 红 细 有 胞 制品及 血 浆 的容量 多少 不均 匀 , 多 时少 。有 时 质管 科 也会 接 到 来 自 时
用 血医 院及 患者 方 面的投 诉 , 映 同样 的问题 。我们 向用 血 医院 及 患 者 反 做 出这样 的 解释 : 自不 同献 血 者 的血 液 在 采 集 时并 不 能绝 对 是 2 0 来 0 ml 或 40 , 0 ml而是根 据 实际情 况 有一个 士1 的 波动 范 围 , 0 因此所 制 备 的 红 细胞 悬液 及血 浆 的外 观容 量并 不相 同 。然而 我们 发现 有 的血 液制 品的 容 量远 远超 出 士1 的 范围 , 据《 血及 成分血 质 量要 求 》 血 液制 品的 容 O 根 全 , 量有 严格 的要 求 , 量过 少会 影 响治疗 效果 , 量 过多 会增 加 患者 的循 环 容 容 负担 。 因此我 们质 管科 对 血 液制 品 的 容量 问题 进行 深 入 调查 , 析 原 因 分
血浆 。
对策 : 分制 备人 员在 分 离过 程 中要注 意力 集 中 , 成 操作 及 时准 确 。如 果发 生操作 失误 , 部分红 细胞 流人 转 移袋 而影 响主 袋 红细 胞数 量 时 , 使 可 在血 浆制备 完 成后将 剩余 转 移袋 中的 红细 胞使用 无 菌接 口机再 加 入 主袋 中 。如 果发 生操 作失 误使 过 多血 浆流入 保存 液 袋 , 成血 浆不 足 量 , 血 造 此 浆必须 报废 。保 存液 中混 人过 多 血浆 , 响 主袋悬 浮 红细 胞容 量 时 , 将 影 可 此 保养 液袋 去 除 , 使用 无 菌接 口机 连接 新 的 保养 液 袋 。质 管科 经 计 算 得 出采集 2 0 血液 的容 量波 动 范围是 1 0 2 ml所 制备 的 红细 胞 悬 液 0 ml 8  ̄2 0 ,

红细胞保存液混悬洗涤红细胞质量控制动态观察

红细胞保存液混悬洗涤红细胞质量控制动态观察
长江大 学学 报 ( 自科 版) 2 0 1 3 年8 月号医学下旬刊 第 1 0卷 第 2 4 期
J o u r n a l o f Y a n g t z e U n i v e r s i t y( x a t S c i E d i t ) Au g . 2 0 1 3 ,Vo 1 . 1 0 No . 2 4
分 血浆 ,再 加入 5 O ml / U 的红 细胞 保存 液 ,制成 去 白细胞 红细 胞悬 液 。 1 . 1 . 2 五联 洗涤 袋 2 5 0 m1 氯 化 钠 注 射 液 ×3 、5 0 ml 或 1 0 0 ml MAP、2 0 0 m] 转移袋 ( 费 森 尤 斯 卡 比 ( 广州 ) 医疗 用 品有 限公 司产 品)。 1 . 1 . 3 仪 器、设备
红 细胞 保 存 液 混 悬 洗 涤 红 细胞 质 量控 制动 态 观 察
叶 汉泉 ,刘 志 泉 ,梁 丽 雯 德区中心血站质量管理科, 广东 顺德 5 2 8 3 0 5 )
[ 摘 要 ] 目的 : 确 认 红 细 胞 保 存 液 ( MAP ) 混 悬 洗 涤 红 细 胞 的 质 量 符 合 国 标 要 求 。 方 法 :将 制 备 好 的
注射 液加入 红 细胞 袋 内 ,1单 位 控 制 其 容 量 在 2 6 0 ~2 8 0 mi ,2单 位 控 制 在 4 6 0 ~4 8 0 ml 。混 匀 ,离 心 ( 3 2 0 0 转/ mi n ,7 mi n )后 ,将 上清 挤压 至转 移空 袋 ,重复 上 述步 骤 反 复洗 涤 3 ~4次 ,最 后 一 次分 出上 清液 后 ,以 MAP混悬 ,置 4 ℃冰箱 保存 。
[ 收稿 日期]2 0 1 3—0 3— 2 1 [ 作者简介]叶汉泉 ( 1 9 7 9一 ) ,男 。主管检验 师 ,主要从事输血技术研究与应用工作。

长航保存去白细胞悬浮红细胞储血袋三种放置方式的溶血性分析

长航保存去白细胞悬浮红细胞储血袋三种放置方式的溶血性分析

㊃军事医学㊃长航保存去白细胞悬浮红细胞储血袋三种放置方式的溶血性分析史大川,姚雪,刘伟,李燕,初慧,王晓婷,孙青菊㊀㊀[摘要]㊀目的㊀研究长航保存去白细胞悬浮红细胞储血袋3种不同的放置方式对游离血红蛋白含量和红细胞溶血率的影响,探讨长航保存去白细胞悬浮红细胞适合的储存方法㊂方法㊀采用垂直悬挂法㊁直立贴合法和平铺码放法,保存血样,对3种保存方式下游离血红蛋白含量和红细胞溶血率进行分析㊂结果㊀在保存终末期,3组的游离血红蛋白含量分别为(0.469ʃ0.088)g/L㊁(0.305ʃ0.074)g/L和(0.396ʃ0.111)g/L,差异有统计学意义(F=3.969,P=0.048),其中直立贴合组明显低于垂直悬挂组(P=0.016);3组的红细胞溶血率分别为(0.126ʃ0.022)%㊁(0.091ʃ0.017)%和(0.107ʃ0.025)%,差异有统计学意义(F=3.986,P=0.047),其中直立贴合组显著低于垂直悬挂组(P=0.015)㊂结论㊀在4 5级海况的条件下,长航对储血袋3种不同的放置方式具有一定的影响,组间差异具有统计学意义,而且直立贴合组明显优于垂直悬挂组㊂此次研究的试验结果,对进一步研究长航血液保障任务具有重要的临床意义㊂㊀㊀[关键词]㊀长航;游离血红蛋白;去白细胞悬浮红细胞;溶血率㊀㊀[中图分类号]㊀R331.14㊀㊀㊀[文献标志码]㊀A㊀㊀[DOI]㊀10.3969/j.issn.1009⁃0754.2021.03.002[基金项目]㊀全军后勤科研重大项目(AWS13J004);全军后勤科研重大项目(AHJ17J002)[作者单位]㊀266071㊀山东青岛,中国人民解放军海军第九七一医院输血科[通信作者]㊀孙青菊,电子信箱:forzhengcq@sina.comHemolyticanalysisonthe3kindsofdifferentstoragebagplacementofleukocytes⁃reducedredbloodcellpreservedonboardtheshipduringaprolongedvoyageShiDachuan,YaoXue,LiuWei,LiYan,ChuHui,WangXiaoting,SunQingju(TransfusionDepartment,No.971HospitalofNavy,PLA,Qingdao266071,China)㊀㊀[Abstract]㊀Objective㊀Tostudytheeffectsof3kindsofdifferentstoragebagplacementofleukocytes⁃reducedredbloodcellpreservedonboardtheshiponthecontentsoffreehemoglobin(FHb)andtherateofhemolysis,andalsotoexplorebeststoragemeth⁃odsforleukocytes⁃reducedredbloodcellsinadditivesolutionduringaprolongedvoyage.Methods㊀Thebloodsampleswerestoredbytheverticalhangingmethod,theuprightfittingmethodandthetile⁃layingmethodatthesameenvironmentalconditions.Then,thecon⁃tentsofFHbweredeterminedandtherateofredbloodcellhemolysiswasanalyzed.Results㊀Attheendofstorage,thecontentsofFHbinthe3groupswererespectively(0.469ʃ0.088)g/L,(0.305ʃ0.074)g/Land(0.396ʃ0.111)g/L,withstatisticalsignificance(F=3.969,P=0.048).Ofthe3groups,thecontentofFHbintheuprightfittinggroupwassignificantlylowerthanthatoftheverti⁃calhanginggroup(P=0.016).Theratesofhemolysisofthe3groupswere(0.126ʃ0.022)%,(0.091ʃ0.017)%and(0.107ʃ0.025)%,respectively,alsowithstatisticalsignificance(F=3.986,P=0.047),andthehemolysisrateoftheuprightfittinggroupwassignificantlylowerthanthatoftheverticalhanginggroup(P=0.015).Conclusion㊀Underthe4⁃5seaconditions,prolongedvoy⁃agehascertainimpactonthe3differentkindsofbloodstoragebagplacement.Statisticalsignificancecouldbeseen,whencomparisonsweremadebetweenthe3groups,withtheuprightfittingbeingobviouslysuperiortotheverticalhanging.Thisexperimentalstudyresultsareofimportantclinicalsignificanceforfurtherresearchonbloodsupplyduringprolongedvoyage.㊀㊀[Keywords]㊀Prolongedvoyage;Freehemoglobin;Leukocytes⁃reducedredbloodcellsinadditivesolution;Rateofhemolysis㊀㊀在现代医学发展中,输血技术是一种重要的支持手段,也是医学发展的重要载体,输血技术的发展能够提高治疗水平和医疗质量[1]㊂近年来,随着成分输血的应用推广,去白细胞悬浮红细胞是国内外临床应用最广泛的一种血液制品,在封闭条件下,过滤去除掉全血中的白细胞以及分离出大部分血浆,并加入红细胞营养添加液制成去白细胞的悬浮红细胞,成分血的输注能有效减少由于输注全血而引发过敏反应的可能性[2⁃4]㊂在陆地储血冰箱内,去白细胞悬浮红细胞储存都是直立方式放置,然而长航状态下,在船上的去白细胞悬浮红细胞的放置方式没有相关文献报道㊂因此,本试验将依托长航中血液保障任务,研究长航保存去白细胞悬浮红细胞储血袋3种不同的放置方式对游离血红蛋白含量和红细胞溶血率的影响,探讨长航船上去白细胞悬浮红细胞合适的储存方式㊂1㊀资料与方法1.1㊀材料1.1.1㊀长航区域海洋气象条件㊀天气晴转多云,偶有阵雨,气温24.2 27.1ħ,海水温度22.4 24.5ħ,浪高3 5m,海况4 5级,摇摆度平均3.5ʎ,累计长航时间40d㊂1.1.2㊀试验仪器与试剂㊀三洋储血冰箱(日本三洋集团),BeckmanJ6⁃HC型低温大容量离心机(美国贝克曼库尔特有限公司),600A白洋离心机(北京白洋医疗器械有限公司),生物安全柜HR40⁃IIA2(中国海尔集团),MindrayBC⁃5000全自动血液细胞析仪(深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司),南京德铁BS⁃1101酶标仪(南京德铁试验设备有限公司),自动温控运血箱(军事医学科学院卫生装备研究所),去白细胞悬浮红细胞保存液四联袋(四川南格尔生物医学有限公司),HemoglobinAssayKit(西格玛奥德里奇(上海)贸易有限公司)等㊂1.1.3㊀血液采集与分组㊀根据‘献血者健康检查要求“(GB18467⁃2011),于长航前1d,随机采集和制备去白细胞悬浮红细胞(redbloodcellsinadditivesolutionleukocytesreduced)5人份(1.5U)㊂每份血液等分为3份,标记为垂直悬挂组㊁直立贴合组和平铺码放组㊂1.2㊀方法1.2.1㊀试验标本处理与数据采集㊀试验血液储存于船上专用储血冰箱内,温度为(4ʃ2)ħ,分3种方式摆放储存(垂直悬挂㊁直立贴合和平铺码放)㊂试验血液在运输过程中,血液均置于运血箱内运输,温度为(4ʃ2)ħ㊂试验血液于储存终末期取样进行检测㊂1.2.2㊀试验标本检测㊀在无菌条件下,每袋试验血液分别取10ml至标本管中,标本管中血液使用MindrayBC⁃5000全自动血液细胞析仪检测红细胞比容和总血红蛋白浓度,然后3000r/min离心10min(离心半径r=17.5cm),取上清,用Hemoglo⁃binAssayKit检测游离血红蛋白含量㊂红细胞溶血率由红细胞比容㊁总血红蛋白浓度和游离血红蛋白浓度计算得到㊂计算公式为:溶血率(%)=(1-红细胞比容)ˑ游离血红蛋白浓度总血红蛋白浓度ˑ100%1.3㊀统计学处理检测数据采用SPSS18.0软件作统计处理㊂所有数据均以均数ʃ标准差(xʃs)表示,3组间采用单因素方差分析,两组间采用LSD进行分析㊂P<0.05表示差异具有统计学意义㊂2㊀结果2.1㊀3种方式储存红细胞中游离血红蛋白含量比较垂直悬挂组㊁直立贴合组㊁平铺码放组游离血红蛋白含量差异具有统计学意义(P=0.048),直立贴合组和平铺码放组的游离血红蛋白含量均比垂直悬挂组低,并且直立贴合组明显优于垂直悬挂组(P=0.016),但是平铺码放组与另2组的差异均没有统计学意义(P>0.05)㊂见表1㊂表1㊀3种储存方式游离血红蛋白检测结果(g/L)组别样本数血红蛋白浓度垂直悬挂组50.469ʃ0.088直立贴合组50.305ʃ0.074a平铺码放组50.396ʃ0.111㊀㊀注:与垂直悬挂组比较aP=0.0162.2㊀3种方式储存红细胞中红细胞溶血率比较垂直悬挂组㊁直立贴合组和平铺码放组中的红细胞溶血率差异比较明显(P<0.05),而且直立贴合组红细胞溶血率明显低于垂直悬挂组(P<0 05),但平铺码放组与另2组的差异均没有统计学意义(P>0.05)㊂见表2㊂表2㊀3种储存方式红细胞溶血率检测结果(%)组别样本数红细胞溶血率垂直悬挂组50.126ʃ0.022直立贴合组50.091ʃ0.017a平铺码放组50.107ʃ0.025㊀㊀注:与垂直悬挂组比较aP<0.053㊀讨论在现代输血技术中,成分输血在临床治疗中占有重要地位,需要补充红细胞的临床患者占80%以上[5]㊂因此,对储存期内去白细胞悬浮红细胞的质量评价就显得十分重要㊂血液采集后储存在含有全血保养液的储血袋中,通过运输和成分制备,红细胞最后保存在MAP保养液(每1000ml红细胞保存液含枸橼酸三钠1 5g㊁枸橼酸0.2g㊁葡萄糖7.93g㊁磷酸二氢钠0 94g㊁腺嘌呤0.14g㊁氯化钠4.97g㊁甘露醇14.57g)中,能够维持红细胞较低的溶血率,以及延长其输入患者体内的高存活率,但红细胞在保存过程中会发生变化[6],相关研究发现,去白细胞悬浮红细胞在储存过程中,红细胞从储存的第14天开始出现球形[7],第21天时80%变成棘形,第42天时95%变为棘形[8],最终由于脆性的增加,导致大部分红细胞破裂而发生溶血,溶血会引起去白细胞悬浮红细胞中的游离血红蛋白含量和红细胞溶血率升高㊂游离血红蛋白的含量是红细胞制品质量控制的重要指标之一,较高的游离血红蛋白含量可引起急性肾功能衰竭等严重副作用[9⁃11]㊂本试验着重研究了长航状态下船上保存去白细胞悬浮红细胞中血浆游离血红蛋白含量和红细胞溶血率的变化和影响因素㊂通过研究结果提示直立贴合放置储血袋可减少红细胞的破坏,上述结果与相关文献报道的不一致[12⁃13],可能是因为这2篇文献报道的研究结果均是在陆地上进行,而不是在海上进行的相关研究㊂海上运输和保存悬浮红细胞容易引起红细胞发生破裂,从而发生溶血,造成这种现象的主要原因是温度㊁保存时间㊁震荡和海上复杂的气候条件等㊂综上所述,3组是在相同试验条件下保存红细胞,在船上经过一段时间储存和一定频率的震动和晃动后,垂直悬挂储存容易导致血液溶血,血浆游离血红蛋白浓度和红细胞溶血率升高加快;而直立贴合储存降低了对红细胞的溶血破坏,说明储血袋直立贴合放置可减少对红细胞的破坏,更有利于舰船上红细胞的贮存;虽然平铺码放储存与垂直悬挂储存差异没有统计学意义,但平铺码放组的血浆游离血红蛋白含量和红细胞溶血率均高于垂直悬挂组㊂这对于今后进一步研究海上血液储存和血液保障任务等工作的开展具有重要的临床意义㊂[参考文献][1]㊀尹继梅.游离血红蛋白含量测定对悬浮红细胞质量影响的探讨[J].现代医用影像学,2011,20(6):378⁃380.[2]㊀王明芳,付建华.成分血的制备及其在妇产科的应用[J].国际妇产科学杂志,2015,42(4):429⁃431.[3]㊀林静霞,苏凡.成分输血的临床应用分析[J].医技诊疗,2016,16(5):694⁃697.[4]㊀刘书逊,唐大海,贺嘉蕾,等.航海条件下血液不同保存方法对红细胞表达黏附分子的影响[J].海军医学杂志,2016,37(4):332⁃334.[5]㊀GkoumassiE,Dijkstra⁃TiekstraMJ,HoentjenD,etal.Hemolysisofredbloodcellsduringprocessingandstorage[J].Transfusion,2012,52(3):489⁃492.[6]㊀王艳冰,徐凤梅,王钰,等.海上储运血液红细胞的能量代谢评价[J].军事医学,2017,41(9):730⁃734,741.[7]㊀王政军,宗玉鑫,谷立男,等.不同保存时间对4ħ储存全血凝血功能的影响[J].军事医学,2019,43(3):188⁃191.[8]㊀HovavT,YedgarS,MannyN,etal.Alterationofredcellag⁃gregabilityandshapeduringbloodstorage[J].Transfusion,1999,39(3):277⁃281.[9]㊀NightingaleMJ,NorfolkDR,PinchonDJ.Currentusesoftransfu⁃sionadministrationsets:acauseforconcern?[J].TransfusMed,2010,20(5):291⁃302.[10]赵绥民.溶血性输血反应的诊断与治疗[J].中国输血杂志,2000,13(2):133⁃137.[11]NatansonC,KernSJ,LurieP,etal.Cell⁃freehemoglobin⁃basedbloodsubstitutesandriskofmyocardialinfarctionanddeath:ame⁃ta⁃analysis[J].JAMA,2008,299(19):2304⁃2312.[12]丛硕,勾思思,曾小菁.储血袋两种摆放方式对红细胞保存质量的影响[J].贵阳医学院学报,2010,35(5):536⁃538.[13]张瑞君,段秉政,鞠春梅,等.去白细胞悬浮红细胞储血袋两种放置方式的溶血性分析[J].现代检验医学杂志,2015,30(4):120⁃122.(收稿日期:2020-03-12)(本文编辑:甘辉亮㊁樊梦雅)。

不同滤白时间对制备去白细胞悬浮红细胞的质量影响

不同滤白时间对制备去白细胞悬浮红细胞的质量影响

不同滤白时间对制备去白细胞悬浮红细胞的质量影响摘要:目的探讨不同滤器不同时间对制备去白细胞悬浮红细胞的质量差异分析。

方法选取三个不同厂家两种联袋(四联袋、五联袋各30个)的48小时标准滤器对我站2021年2月1日至2021年3月31日所采集的180袋血液在采集48小时内不同时间进行滤白处理后制备为去白细胞悬浮红细胞,分析比较不同厂家滤器在不同时间所制备的去白细胞悬浮红细胞血容量、血红蛋白含量、红细胞压积、白细胞残留量及红细胞体积。

结果三个不同厂家制备质量指标均符合2012版《全血及成分血质量要求》中去白细胞悬浮红细胞质量标准,但不同滤白时间对白细胞残留量、MCV有差异。

结论滤白制备工作中应加强对制备时间、制备过程进行质量控制,采用持续质量管理,保障血液质量。

关键词:不同滤白时间滤白制备过程控制持续质量管理去白悬浮红细胞是使用带有白细胞过滤器的多联塑料血袋采集全血,并通过白细胞过滤器清除全血中几乎所有的白细胞。

将该去除白细胞全血中的大部分血浆分离出后,向剩余物内加入红细胞添加剂制成的红细胞成分血[1]。

去白悬浮红细胞减少血液中的白细胞和高活性的氧自由基等,显著降低非溶血性发热反应、同种异体免疫反应、血小板输注无效、免疫抑制、移植物抗宿主病及病毒感染等输血相关疾病的发生[2]。

因此制备合格的去白悬浮红细胞是提高临床安全输血的重要保障。

现结合我站制备情况,进行相关研究如下:1材料与方法1.1材料三个厂家一次性白细胞滤器A、B、C;希森美康(Sysmex)K-4500全血细胞分析仪(日本);山东威高低温滤白柜;久保田9942型大容量低温高速离心机;普特LMB全自动血液成分分离机;电子秤。

1.2方法1.2.1制备方法2021年2月1日至2021年3月31日期间,选取三个不同厂家一次性白细胞滤器所采集的180袋血液进行制备,每个厂家两种联袋(四联袋、五联袋)各30袋血液在采集后分别在0天(d0)、第二天(d2)早上9:00内进行滤白处理,将其置于本站山东威高低温滤白柜进行滤白,将过滤后的全血严格按照《2019版血站技术操作规程》相关要求,置于本站久保田9942型大容量低温高速离心机进行离心,转速为3500r/min,离心17min,温度2-6℃,在普特LMB全自动血液成分分离机上分离出上层血浆,制备为去白细胞悬浮红细胞。

悬浮红细胞

悬浮红细胞

药物开发:悬浮红细胞在药物开发领域 有广泛应用,如药物筛选、药物评价等
• 生物药物:使用悬浮红细胞作为生物 药物的生产原料,如红细胞生成素、红 细胞激活剂等 • 基因工程产品:使用悬浮红细胞作为 基因工程产品的生产原料,如基因工程 红细胞等
• 药物筛选:使用悬浮红细胞作为药物 筛选模型,筛选出具有治疗作用的新药 物 • 药物评价:使用悬浮红细胞作为药物 评价模型,评价药物的疗效、安全性和 毒性等
红细胞分离与纯化
分离:红细胞分离是制备悬浮红细胞的关键步骤, 需要使用红细胞分离器进行
纯化:红细胞分离后需要进行纯化处理, 去除杂质和异常红细胞
• 红细胞分离器:利用密度差异原理, 将红细胞与血浆分离 • 分离过程:将处理后的血液加入红细 胞分离器,红细胞被分离出来,血浆和 水分保留在分离器中
• 杂质去除:使用红细胞洗涤液,去除 红细胞表面的杂质 • 异常红细胞去除:使用红细胞过滤器, 去除异常红细胞
DOCS SMART CREATE
悬浮红细胞:概念、制备与应用
CREATE TOGETHER
DOCS
01
悬浮红细胞的基本概念
悬浮红细胞的定义与来源
定义:悬浮红细胞是指从血液中分离出来的一种红 细胞制剂,其特点是细胞悬浮在液体中,不含凝血
因子和血小板
• 悬浮红细胞是血液的一种成分 • 含有红细胞、血浆和水分 • 悬浮红细胞主要用于临床输血和治疗
实验室研究:悬浮红细胞在实验室研究 中用于细胞培养、实验动物模型等
• 细胞培养:使用悬浮红细胞作为细胞 培养基,研究细胞的生长、分化和功能 等 • 实验动物模型:使用悬浮红细胞制备 实验动物模型,研究疾病的发病机制和 治疗方法等
生物制品与药物开发

去白悬浮红细胞容量标准

去白悬浮红细胞容量标准

去白悬浮红细胞容量标准去白悬浮红细胞是一种常用的血液制品,主要用于手术、外伤、癌症等需要补充红细胞的患者。

为了保证输血的安全和有效性,需要对去白悬浮红细胞进行容量标准控制。

一、去白悬浮红细胞容量的重要性去白悬浮红细胞容量是指单位体积中去白悬浮红细胞的数量。

保证去白悬浮红细胞容量的准确性对于输血治疗效果和患者安全具有重要意义。

以下是去白悬浮红细胞容量标准的重要性:保证输血治疗效果:输血治疗是通过补充失去的红细胞来纠正患者贫血症状的一种治疗方法。

如果去白悬浮红细胞容量不足,就无法满足患者的输血需求,影响输血治疗效果,甚至危及患者生命。

避免输血不良反应:输血治疗过程中,由于供者红细胞与患者免疫系统的不匹配,可能会出现输血不良反应,如发热、过敏等。

如果去白悬浮红细胞容量过多,会导致血液过度稀释,增加输血不良反应的风险。

提高输血安全性:去白悬浮红细胞容量标准可以保证输血治疗的安全性。

通过对去白悬浮红细胞容量的控制,可以避免因血液制品容量不足或过多带来的风险,从而提高输血安全性。

二、去白悬浮红细胞容量标准去白悬浮红细胞容量的标准因国家、地区和医疗机构而异。

一般而言,去白悬浮红细胞容量标准应满足以下要求:血液制品容量范围:根据国际标准,去白悬浮红细胞容量应介于250~450毫升之间。

这个范围保证了去白悬浮红细胞数量的充足性和安全性。

红细胞回收率:去白悬浮红细胞制备过程中,应保证一定比例的红细胞回收率。

一般来说,红细胞回收率应大于等于80%。

这样可以确保制备出的去白悬浮红细胞具有足够的红细胞含量,满足患者的输血需求。

红细胞压积(HCT):红细胞压积是评估血液制品中红细胞比例的指标。

国际标准要求,去白悬浮红细胞的HCT应介于0.4~0.6之间。

这样可以确保制备出的去白悬浮红细胞具有正常的携氧能力,有利于患者贫血的纠正。

细胞密度:去白悬浮红细胞的细胞密度应与正常人体血液中的红细胞密度相近。

一般来说,细胞密度应在1.060~1.080之间,以保证制备出的去白悬浮红细胞具有正常的物理特性。

去白细胞悬浮红细胞的制备

去白细胞悬浮红细胞的制备

去白细胞悬浮红细胞的制备1.引言1.1 概述概述部分的内容可以如下所述:悬浮在血液中的白细胞和红细胞在医学研究和临床应用中扮演着重要的角色。

然而,由于它们的不同特性和功能,分离和纯化这两类细胞成为了许多研究者和临床医生共同面临的挑战。

本文旨在探讨一种用于制备去白细胞悬浮红细胞的方法,以解决这一问题。

白细胞是免疫系统中的重要组成部分,其主要功能是抵御外来病原体和维持机体内环境的稳定。

然而,在某些疾病状态下,白细胞的数量和/或活性可能会过高,导致炎症反应或组织损伤。

因此,有时需要将白细胞与其他细胞类型分开,以便进一步研究或治疗。

与之相反,红细胞是负责氧气和二氧化碳的运输,以及维持机体血液酸碱平衡的关键细胞。

然而,在某些疾病情况下,如白血病或白细胞增多症,白细胞可能会大量存在于红细胞悬浮液中,影响血液功能和治疗效果。

因此,将红细胞从白细胞中分离出来具有重要的临床意义。

本文将重点介绍一种用于制备去白细胞悬浮红细胞的方法。

这种方法基于细胞的不同大小、形状和密度,利用离心、梯度离心和洗涤等步骤,来实现红细胞与白细胞的有效分离。

我们将详细描述每个步骤的操作方法和所需的实验条件。

最后,我们将通过实验结果和临床案例来评估该方法的可行性和应用前景。

我们希望这种方法能够为研究人员和临床医生提供一个可靠的工具,以便更好地理解和应对与白细胞和红细胞相关的疾病。

通过去除白细胞,我们可以更好地研究红细胞的功能和特性,为疾病的诊断和治疗提供新的思路和方法。

1.2 文章结构文章结构部分的内容可以按照以下方式编写:文章结构:本文主要分为引言、正文和结论三个部分。

1. 引言:在引言部分,我们将对制备去白细胞悬浮红细胞的重要性进行概述,并介绍本文的结构和目的。

2. 正文:正文部分将分为两个要点来详细介绍去白细胞悬浮红细胞的制备方法和技术。

2.1 第一个要点:在第一个要点中,我们将介绍传统的去白细胞悬浮红细胞的制备方法,包括离心法、沉降法等,并对其原理和步骤进行详细解释。

去白悬浮红细胞制备过程的质量控制

去白悬浮红细胞制备过程的质量控制

去白悬浮红细胞制备过程的质量控制摘要】目的:对去白悬浮红细胞制备过程进行质量控制,确保血液质量。

方法:从制备的每一个细节着手,持续改进,加强过程控制并对改进前后进行效果评估。

结果:规范去白悬浮红细胞制备过程中的各项标准和操作,加强各环节的质量控制后,白细胞过滤故障导致滤盘更换比例0.23‰,离心破损率0.78‰,红细胞保存液混入血浆比例0.11‰,三项指标均有所降低(P<0.05)。

一次成浆率70%,得到显著提高(P<0.01)。

结论:对去白悬浮红细胞制备过程进行细节管理,加强质量控制,能更好地保证血液质量,降低血液非正常报废率和制备成本。

【关键词】去白悬浮红细胞;制备过程;持续改进;质量控制【中图分类号】R446.11 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2019)19-0223-01血液经白细胞过滤器,白细胞去除率可以达到99.99%,红细胞回收率可以达到98%~99%[1]。

然而,去白悬浮红细胞制备过程多,工序繁杂,每个环节的细微疏漏都有可能造成血液输注无效、疗效不佳、甚至引起严重的输血反应,造成各种资源的浪费。

因此,自2016年1月以来,我们从血液制备的质量体系文件要求、制备环节各关键控制点的监控、人员培训等方面对去白悬浮红细胞制备过程进行质量控制,有效地降低了滤盘更换比例、离心破损率和红细胞保存液混入血浆的比例,提高了一次成浆率和工作效率,降低了制备成本。

现将体会报道如下。

1.资料与方法1.1 一般资料安顺市中心血站自全面启动白细胞过滤工作以来,经历了技术的萌芽、摸索、改进和提高四个阶段,由于不断持续改进、加强过程控制,在近年制备工作中取得一定成效,现将2016年6月1日—2017年6月30日生产的17157袋去白悬浮红细胞按不同时段分成两组,统计分析两组间滤盘更换比例、离心破损率、红细胞保存液混入血浆比例及一次成浆率的差异。

1.2 方法使用山东威高生产的一次性去白细胞塑料血袋采集全血,用国产低温滤白柜在2~8℃温度下进行白细胞过滤(发生过滤不畅时用山东威高生产的无菌接管机无菌连接新滤盘后再次过滤),德国贺利氏6000i离心机对血液进行离心,德国LMB全自动血液成分分离机进行成分分离(发生红细胞保存液混入血浆时血浆作报废处理,红细胞重新接驳红细胞保存液后添加)。

去白悬浮红容量标准研究

去白悬浮红容量标准研究
去白细胞悬浮红细胞容 量标准研究
宁夏血液中心
陕珊
目录
1 1 2
前沿进展 社会需求 研究目的
3
4
5
主要内容
研究方法
社会效应
一、前沿进展
经查阅资料,目前国内,只有广东、上海对该地 区献血者所献血液制备的去白细胞悬浮红细胞容 量标准进行过研究,而其它地区均未进行此方面 研究。在国外,也是针对某一地区献血者去白细 胞容量标准进行区域性研究。 宁夏地处西北地区,又是回族聚集地区,受自然、 地理、气候、饮食习惯等因素影响,献血者中血 液相关生理指标与全国其它地区存在一定差异, 从本地区献血者所献全血中分离制备的去白细胞 悬浮红细胞的容量标准与全国其它地区肯定不同。 宁夏没有针对本地区献血者去白细胞悬浮红细胞 的容量标准进行过研究,此研究领域为空白。
血液质量控制 需要
•由于缺少去白细胞悬浮红细胞容量标准,导致在血 液制备过程中无法准确判断去白悬浮红容量标准, 从而不能判断该袋血液容量是否合格。
输入容量评估 需要
•临床上要计算患者的血液输入量时医护人员无法准 确计算应输注的血液量,若建立具体的容量标准,这 一问题将得到有效解决,更加便于临床准确把握血液 输入量,提高输血安全水平。
需求
只有制定出宁夏地区的去白细胞悬浮红细胞 容量标准,究目的
建立宁夏地区去白细胞悬浮红细胞容量标准 通过对宁夏地区合格献血者所献全血制备的去 白细胞悬浮红细胞容量进行大量的检测和数据 分析,确定本地区去白细胞悬浮红细胞容量正 常值标准。 作为血液制剂日常质量控制的判断依据,进一 步保证血液质量,促进血液制剂标准化建设。 方便临床医生计算患者对去白细胞悬浮红细胞 制剂的输注量。
五、研究方法
• 制备方法标准化:

不同方法制备去白细胞悬浮红细胞和血浆的效果对比

不同方法制备去白细胞悬浮红细胞和血浆的效果对比

不同方法制备去白细胞悬浮红细胞和血浆的效果对比摘要:目的:探究不同方法制备去白细胞悬浮红细胞和血浆的效果对比。

方法:选取两市中心血站在2019年4月-2020年4月提供的无偿献血获得98份全血作为本次研究对象,进行制备去白细胞悬浮红细胞和血浆工作。

按照一定的分组顺序,分为观察组与对照组两组,对照组49份血液使用手工操作处理,观察组49份血浆使用全自动血液成分分离机处理,对比两组制备去白细胞悬浮红细胞与血浆的情况。

结果:观察组对全血的第一次分离得到血浆质量与对照组相比,质量更好,且血浆中血浆蛋白含量较高(P<0.05),但全血处理后,其红细胞情况,分布,血红蛋白情况以及血细胞比容相比较无统计学意义(P>0.05)。

结论:使用全自动血液成分分离设备比手工分离得到的去白细胞悬浮红细胞和血浆质量更好,值得在全血制备过程中推广使用。

关键词:不同方法;制备;去白细胞;悬浮红细胞;血浆效果血液对我们人体来说十分重要,患者在临床上获得血液可以在一定程度上保证治疗的安全性,提升手术成功的可能。

但是患者输入血浆主要的成分血,其血液纯度以及安全性更好。

常规的血液来源多为人们自愿献血,献血成分多为全血。

想要更好满足患者血液需求,需要将无偿献血获得的全血,进行处理,得到成分血,这个过程就叫做分离制备[1]。

在现阶段,常见血浆分离制备的方式多为手工操作进行,比如压浆板法和虹吸法等等,都是极为常见的。

随着医疗水平提升,全自动血液成分分离机逐渐被广泛用于临床血浆制备,并且取得了积极的成果。

本文对以上两种不同的方式对去白细胞悬浮红细胞和血浆的效果进行分析,现详细报道内容如下:1.资料与方法1.1基本资料选取两市中心血站在2019年4月-2020年4月提供的无偿献血获得98份全血作为本次研究对象,且98份血液量均相同,为400ml。

1.2方法对照组全血使用手工操作处理,方法的主要内容有,将49份全血中的白细胞进行有效的去除,操作完成后,得到去白细胞全血,在使用专业的全血离心设备进行离心处理,针对这一过程中需要主要注意离心时间控制在15min左右即可,接下来使用上述提到的虹吸法,或者压浆板法等物理方法处理去包细胞全血,最终得到我们想要的血浆。

去白细胞悬浮红细胞容量标准的制定

去白细胞悬浮红细胞容量标准的制定

去白细胞悬浮红细胞容量标准的制定发表时间:2014-05-13T08:51:51.937Z 来源:《中外健康文摘》2013年第41期供稿作者:胡海军[导读] 只有对各个环节均加以有效的控制,才能控制好去白细胞悬浮红细胞的容量指标,首先控制献血者的挑选。

胡海军(辽宁省本溪市中心血站质控科辽宁本溪 117000)【摘要】目的制定去白细胞悬浮红细胞容量的标准。

方法先通过计算拟制定去白细胞悬浮红细胞容量的理论值范围;再抽取一定数量的去白细胞悬浮红细胞进行称重,通过公式计算去白细胞悬浮红细胞容量的实际值范围;最后对理论值范围与实际值范围综合分析,最终制定去白细胞悬浮红细胞的容量标准。

结果本站手工制备的去白细胞悬浮红细胞容量标准,来源于400ml全血:350ml±40ml;来源于200ml全血:170ml±20ml。

结论不同地区的血站可根据本地健康人群血细胞比容的参考范围、所用的采血袋、离心条件和分离血浆的方法等因素制定去白细胞悬浮红细胞容量的标准。

【关键词】去白细胞悬浮红细胞容量标准【中图分类号】R457.1 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085(2013)41-0037-02 随着医学科学的发展,临床成分输血治疗日益扩大,人们对血液质量、输血治疗和输血安全提出了更高层次的要求[1]。

去除白细胞可有效避免白细胞代谢产物引起的各种输血反应已得到证实[2],去白细胞悬浮红细胞是临床成分用血中应用最多的成分血,GB18469-2012《全血及成分血质量要求》已于2012年7月1日实施,其中去白细胞悬浮红细胞容量标准为,标示量(mL)±10%。

而在实际应用中,国内绝大多数血站仍以“单位(u)”作为标示量单位。

鉴于GB 18469-2012《全血及成分血质量要求》中术语和定义中提到:标示量根据当地实际情况自行制定[3]。

笔者结合本站使用的血袋、离心机使用的参数及利用分浆夹手工制备的方法,通过理论的计算,拟定理论值范围,再通过实际抽检进行验证,经过分析,最终确定手工法制备去白细胞悬浮红细胞的容量标准。

红细胞悬浮的名词解释

红细胞悬浮的名词解释

红细胞悬浮的名词解释红细胞悬浮是指红细胞在液体中的分散状态。

红细胞,也被称为血球,是血液中最重要的成分之一,主要负责运输氧气到身体各个组织和器官。

红细胞悬浮的状态在医学和科学研究中具有广泛的应用和意义。

红细胞是人体血液中最常见的细胞,其主要成分是血红蛋白。

血红蛋白能够结合氧气,然后在循环系统中被红细胞携带到全身各个部分。

为了确保红细胞能够有效地完成这一任务,它们必须以悬浮的形式存在于血液中。

红细胞悬浮的状态对于维持人体正常的生理功能至关重要。

正常情况下,红细胞应该均匀地分散在血浆中,没有明显的聚集和凝结。

这种分散状态有助于红细胞与周围环境的气体交换,从而保证了身体各个组织和器官所需的充分供氧。

然而,有时候红细胞的悬浮状态会发生改变,导致它们在液体中聚集和凝结。

这种现象常常发生在某些疾病状态下,例如血液循环不良、炎症反应和某些遗传性疾病等。

红细胞的聚集和凝结会使其在血管中的流动性降低,从而影响到氧气的输送和代谢产物的清除。

如果这种现象得不到有效控制,可能会引发严重的并发症,如缺氧和器官功能障碍。

为了研究红细胞悬浮状态和了解其相关机制,科学家们开展了大量的研究工作。

他们通过各种实验技术和方法来观察、测量和分析红细胞的聚集和凝结现象。

这些研究不仅对于进一步理解红细胞的生物学特性有着重要意义,还有助于探索和开发治疗相关疾病的方法和策略。

除了疾病研究之外,红细胞悬浮还广泛应用于医学诊断和实验室检测。

临床医生可以通过观察和评估红细胞的悬浮状态,了解病人的健康状况和疾病进展情况。

实验室检测中,红细胞悬浮的状态常被用于血液相关检查和实验的标本制备。

红细胞悬浮技术还被广泛应用于药物和生物制品的研发和生产。

在这些领域中,科学家们利用红细胞的悬浮状态来评估药物对血液和血细胞的影响,并进行有效性和安全性的评估。

同时,红细胞悬浮技术还可用于生物制品的稳定性研究和质量控制,确保其在储存和运输过程中保持良好的活性和效果。

总之,红细胞悬浮是指红细胞在液体中的分散状态,是保障人体正常生理功能的重要条件之一。

去白细胞悬浮红细胞质量分析

去白细胞悬浮红细胞质量分析

去白细胞悬浮红细胞质量分析秦艳兰;谭少华;莫海英;叶柱江;何子毅【摘要】目的分析本中心制备的去白细胞悬浮红细胞的质量及其影响因素,为临床红细胞输注评估指标、合理输注红细胞剂量提供理论依据和参考方法.方法收集100袋去白细胞悬浮红细胞质量检测结果,分析其血容量、血红蛋白含量、红细胞压积和储存期末溶血率.结果 50袋1.5 U去白细胞悬浮红细胞血容量为(198±22) ml/袋,与理论值相比合格率为78%;血红蛋白含量(35.04±6.24)g,合格率92%:红细胞压积0.52±0.06,合格率92%;白细胞残留量(2.15±0.80)×106个/袋,合格率96%;储存期末溶血率(0.13±0.12)%,合格率100%.50袋2U去白细胞悬浮红细胞血容量(272±26) ml/袋,与理论值相比合格率为75%;血红蛋白含量(51.23±6.38)g,合格率96%:红细胞压积0.55±0.04,合格率100%;白细胞残留量(3.00±1.23)×106个/袋,合格率94%;储存期末溶血率(0.27±0.15)%,合格率100%.结论本中心制备的去白细胞悬浮红细胞血液制品无论是1.5U还是2U,其质量指标均符合2012版《血站技术操作规程》,能满足临床输血的质量要求.【期刊名称】《临床输血与检验》【年(卷),期】2016(018)004【总页数】4页(P308-311)【关键词】去白细胞悬浮红细胞;血红蛋白含量;储存期末溶血率【作者】秦艳兰;谭少华;莫海英;叶柱江;何子毅【作者单位】523930 广东省东莞市中心血站;中医院输血科;523930 广东省东莞市中心血站;523930 广东省东莞市中心血站;523930 广东省东莞市中心血站【正文语种】中文【中图分类】R331.1+4国家卫生部于2012年修订了《血站技术操作规程》和《全血及成分血质量要求》,规定全国各血站自2012年6月1日起实施,血液制品质量应以新的质控项目为标准。

悬浮红细胞保存末期的质量观察_彭楷

悬浮红细胞保存末期的质量观察_彭楷

摘 要:目的 开展乡镇卫生院、社 区 卫 生 服 务 中 心 临 床 实 验 室 室 间 质 量 评 价 活 动,从 而 提 高 实 验 室 分 析 能 力。 方 法 从
2008~2011年对参评实验室4类项目进行测评,并记录总项测定成绩合格率和单项目测 定 成 绩 合 格 率。 结 果 分 别 对 8 次 室 间
△ 通讯作者,E-mail:lwzdpm@163.com。
国际检验医学杂志2013年4月第34卷第7期 Int J Lab Med,April 2013,Vol.34,No.7
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参考文献
[1] 徐传国,苗温,董茵,等.1.5U MAP 保 养 液 保 存 悬 浮 红 细 胞 质 量 观 察 [J].中 国 输 血 杂 志 ,2011 24(1):43-44.
关 键 词 :实 验 室 ; 质 量 控 制 ; 医 院 ; 乡 村
DOI:10.3969/j.issn.1673-4130.2013.07.050
[8] Hovav T,Yedgar S,Manny N,et al.Alteration of red cell ag- gregability and shape during blood storage[J].Transfusion,1999, 39(3):277-281.
[9] 陈安心,张丽英,傅 冠 华,等.红 细 胞 悬 液 在 不 同 贮 存 期 的 生 化 指 标 [J].临 床 医 学 ,2004,24(5):6-7.
·质控与标规·
[6] 傅雪梅,陈颜,习燕.悬浮红细胞保存前 不 同 温 度 过 滤 对 保 存 期 溶 血 情 况 的 影 响 [J].中 国 输 血 杂 志 ,2008,21(5):363-364.

浓缩红细胞和去白细胞悬浮红细胞的区别

浓缩红细胞和去白细胞悬浮红细胞的区别

浓缩红细胞和去白细胞悬浮红细胞的区别浓缩红细胞和去白细胞悬浮红细胞是现代医疗领域中常用的两种血液制品。

两者在制备过程、成分组成及应用领域上有所不同。

本文将介绍浓缩红细胞和去白细胞悬浮红细胞的区别。

1. 制备过程1.1 浓缩红细胞浓缩红细胞是通过对新鲜全血进行离心分离制备得到的。

首先将新鲜的全血通过离心机进行离心,分离出其中的红细胞。

然后,通过洗涤和去除血浆等步骤,将红细胞浓缩成所需的比例。

1.2 去白细胞悬浮红细胞去白细胞悬浮红细胞是在浓缩红细胞的基础上进行进一步处理得到的。

制备去白细胞悬浮红细胞时,需要先对红细胞进行洗涤去除血浆,然后使用特定的方法和药物去除其中的白细胞。

2. 成分组成2.1 浓缩红细胞浓缩红细胞主要由红细胞组成,其中含有丰富的血红蛋白和氧气携带能力。

浓缩红细胞中没有白细胞和血小板等成分,也不含有血浆。

2.2 去白细胞悬浮红细胞去白细胞悬浮红细胞相比于浓缩红细胞,除了含有更多的红细胞外,还含有少量的白细胞悬浮液。

在去白细胞悬浮红细胞中,白细胞数量已经被有效地降低,但仍不可避免地存在一定的白细胞。

3. 应用领域3.1 浓缩红细胞浓缩红细胞主要用于治疗大量失血或贫血患者,以补充体内缺少的红细胞,提高氧气供应能力。

它在手术、创伤、产科等领域广泛应用。

3.2 去白细胞悬浮红细胞去白细胞悬浮红细胞在一些特殊治疗上具有优势。

由于白细胞可能引起一系列不良反应,去白细胞悬浮红细胞在某些骨髓移植、器官移植等领域中得到广泛应用。

4. 安全性4.1 浓缩红细胞浓缩红细胞制备过程相对简单,没有去白细胞的步骤,因此其安全性相对较高。

4.2 去白细胞悬浮红细胞去白细胞悬浮红细胞制备过程较为复杂,对白细胞的去除需要使用特定的方法和药物,因此相对于浓缩红细胞,其制备过程中存在一定的风险和需要更严格的质量控制。

5. 总结综上所述,浓缩红细胞和去白细胞悬浮红细胞在制备过程、成分组成、应用领域和安全性等方面存在显著的差异。

手工法和自动法制备去白细胞悬浮红细胞质量分析

手工法和自动法制备去白细胞悬浮红细胞质量分析

手工法和自动法制备去白细胞悬浮红细胞质量分析发表时间:2019-08-19T11:07:45.727Z 来源:《医药前沿》2019年18期作者:潘汉站[导读] 全自动血液分离机制备去白细胞悬浮红细胞的产品质量更高、更稳定、过程追踪更完善,在采供血机构成分血制备中应得到推广使用。

(广西血液中心广西柳州 545005)【摘要】目的:研究传统手工法和全自动血液成分分离机制备去白细胞悬浮红细胞的质量抽检结果差异。

方法:对传统手工法(2016年9月—2017年9月制备)和自动法(2017年10月—2018年10月制备)两种方法制备去白细胞悬浮红细胞进行质量抽检,按照国家质量标准计算合格率,对两种方法在容量、血比容、血红蛋白含量、储存期末溶血率等项目合格率进行统计分析。

结果:手工法和自动法制备的去白细胞县浮红细胞容量合格率分别为92.3%、92.3%,血红蛋白含量合格率分别为100%、100%,血比容合格率分别为75%、94%,储存期末溶血率的合格率分别为100%、100%.血比容合格率比较差异有统计学意义(P<0.05),其他项目检测合格率差异比较无统计学意义(P>0.05)。

结论:使用自动成分分离机制备去白细胞悬浮红细胞的质量比传统手工法高,应推广使用全自动血液分离机。

【关键词】全自动血液分离机;手工法;去白细胞悬浮红细胞;质量分析【中图分类号】R331 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2019)18-0219-02去白细胞悬浮红细胞是临床应用最为广泛的成分血液制品,近年来随着医学技术不断地发展,临床成分输血治疗日益扩大,人们对血液质量,输血治疗,输血安全提出了更高的要求[1],传统手工法分离去白细胞悬浮红细胞由人工来完成,工作效率低,产品质量不稳定。

为了满足临床需要,我中心近年来已经采用全自动血液成分分离机制备去白细胞悬浮红细胞。

为了解手工法和自动法制备的去白细胞悬浮红细胞抽检质量差异,推广使用自动化制备去白细胞悬浮红细胞标准化和自动化提供理论依据,笔者报告如下。

悬浮红细胞容量标示量和参考范围的制定

悬浮红细胞容量标示量和参考范围的制定
存液),规格28 ml/50 ml(Q-200),42 ml/75 ml (Q-300),56 ml/100 ml(Q-400)。
且多数ALT升高源于脂肪肝,同时伴随高脂血症;这
与长期的不良生活方式有关。合理饮食和倡导健康的 生活方式,有助于提高无偿献血者的健康水平,提高 公民献血率,有效发挥血站健康教育的职能。
悬浮红细胞容量标示量和参考范围的制定
刘艳芳 黄春萍 巫玲
【摘要】 目的 根据本地健康人群血细胞比容的参考范围、采血袋、离心条件和分离血浆的方法等因素,制定悬浮红
细胞容量标示量和参考范围,为临床输血工作提供可靠的数据支持。方法 随机抽样1 U悬浮红细胞236袋,1.5 U悬浮红细 胞303袋,2 U悬浮红细胞273袋,称其重量,通过公式计算得到实际血液容量,利用SPSS软件进行统计分析。 结果 悬浮红 细胞容量标示量,来源于200 ml全血:(160.64±16.06) ml ;来源于300 ml全血:(233.09±23.31)ml;来源于400 ml 全血:(318.80±31.88)ml。悬浮红细胞容量参考范围,来源于200 ml全血:(161.64±18.48)ml;来源于300 ml全血: (233.09±31.16) ml;来源于400 ml全血:(318.80±33.40) ml。 结论 标示量建议标示在血袋标签上,建议临床输血
需要精确记录液体出入量的患者,对输血前悬浮红细胞容量进行称量,具有重要的临床意义;参考范围作为内控标准,有效
控制悬浮红细胞容量。
【关键词】 悬浮红细胞 容量 标示量 参考范围
【中图分类号】 R331.1+41 【文献标识码】 A 【文章编号】 1671-2587(2018)01-0052-02
2012年5月卫生部发布的《全血及成分血质量要

建立悬浮红细胞类成分血内控标准的探讨

建立悬浮红细胞类成分血内控标准的探讨

建立悬浮红细胞类成分血内控标准的探讨【文章正文】1. 概述悬浮红细胞类成分血内控标准的重要性建立悬浮红细胞类成分血内控标准对于确保血液制品的质量和安全性至关重要。

悬浮红细胞类成分血液制品是由捐赠者的全血经过分离、洗涤和加工等步骤制备而成,在临床用途中具有广泛的应用。

而为了确保这些血液制品的有效性和安全性,建立一套合理且严格的血内控标准是必要的。

2. 悬浮红细胞类成分血内控标准的深度探讨2.1 悬浮红细胞类成分的定义和特征悬浮红细胞类成分是指血液中含有的红细胞成分,其主要特征是红细胞的悬浮状态。

这些悬浮红细胞类成分可以通过离心、洗涤和再悬浮等操作步骤获得。

在这些操作过程中,需要对悬浮红细胞类成分进行适当的控制,以确保其质量和安全性。

2.2 建立悬浮红细胞类成分血内控标准的必要性建立悬浮红细胞类成分血内控标准的必要性主要体现在以下几个方面:血液制品的质量和安全性对于患者的治疗效果至关重要。

悬浮红细胞类成分作为最常用的血液制品之一,其质量和安全性影响着患者是否能够获得有效的治疗。

建立血内控标准有助于规范制备过程中的操作步骤和质量控制。

通过建立血内控标准,可以明确制备过程中的关键控制点,并对其进行合理的控制和监测,从而确保制备的悬浮红细胞类成分符合质量要求。

建立血内控标准有助于提高血液制品的稳定性和一致性。

血内控标准可以作为制备悬浮红细胞类成分的参考标准,通过对不同批次产品的比较和监测,可以确保产品的稳定性和一致性。

3. 悬浮红细胞类成分血内控标准的广度探讨3.1 悬浮红细胞类成分血内控标准的内容建立悬浮红细胞类成分血内控标准需要考虑以下几个方面的内容:3.1.1 成分的纯度和红细胞含量血内控标准应包括对成分的纯度和红细胞含量的要求。

纯度是指成分中除了红细胞之外的其他成分的含量,如白细胞、血小板等。

红细胞含量是指制备的悬浮红细胞类成分中红细胞的浓度。

3.1.2 溶解度和稳定性血内控标准还应考虑成分的溶解度和稳定性。

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胞 与血浆界面更加明显和清晰 ,血浆在分离过程 中混入红细 胞 的机会大 为减少 , 一次离心分离 成功率高达 6 . %, 32 大部 3 分血浆无须进行再次离心去除红细胞污染 , 同样 , 由于大部分 血浆分离出来 ,制备的悬浮红细胞 H T容易达到质量标 准; C 当血袋 与水平离心力作用方向平行摆放( 竖放 )降低相对离 、
心力 、 减少离心时间时 , 制备的悬 浮红细胞内残 留的血浆量较
和大型冷冻离心机的制造成功 , 为血液成分分离提供 了良好
的物质基础 , 促进 了成分输血的发展。 目前 , 用物理方法制备各 种血液成分 的分离技术 、 质量
水平控制 已标 准化 , 临床应用剂量与适应证 均 已成熟 , 并在 此基础上正 向纵深发展 。 O世纪 6 2 0年代中期 , 血细胞分离机
心机工作 电压变化的影响 , 离心机使用较长时间( 年后 )由 5 , 于使用 的离心方式不 同, 造成血液离心效果存在一定的偏差。
如离心机具有 A E 功能的 ,应选用更科学 、合理 的 A E CT M c伽
动红细胞单采技术 ,一次从单个献血者采集浓缩红细胞 3 0 0
m , L 血浆 20m , 0 L 血小板 20m ,6r n内完成哪 0 L 8 i a 。
广西壮族 自治区玉林 市中心血站(3 0 0 5 70 ) 戴庆 昭
随着临床对成分血尤其是对悬浮红细胞需求的增加 , 血 站不 断提高制 备悬浮红细胞 的分离 率, 以保证 及时供应。但 由于 目前 国内尚无规 范的悬浮红细胞加工标准 , 地制 备悬 各 浮红 细胞的方法也不 同, 大多数血站 、 血液 中心仍采用传 统 的速度 、 时问、 温度的离心方式 , 按照最佳离心条件 对血液进 行离心制备 。为保证血液 质量 , 国内外学者就悬浮红细胞制
备质量控制进行 了探索研究 , 现将研究进展综述如下 。 1 血液成分锑备技术的发展
了基 础 。
2 悬浮红细胞产品的制备方法
红细胞是血液 的主要成分之一 。具有重要的运输氧气和 二氧化碳 的生理功能 , 改善机体的缺氧状态, 治疗多种原因引 起的贫血性疾病。临床上需要输血 的患者大约 8 %以上需补 o
不把 全血分离成血浆和血细胞两部分。这时发现血浆的输注
等舟 认为血袋垂直于水平离心力作用方向摆放( 横放 ) , 增大相
对 离心力 、 速度 和延长离心时间 , 红细胞沉降效果更 佳 , 红细
有 良好的抗休克作用 , 于是广 为抢救伤员所用 。血浆成分 的 大量应用促进 了血细胞成分的分离 、保存和应用的发展 , 战 争结束后延续为民用 。 O世纪 7 2 0年代初期 , 塑料工业的发展
多 , H T也就难以达到质量标准。 其 C 3 设备 、 . 2 电压 因素对离心效果 的影响 : 李健 民等啾 为 , 离 心效果受到离心机本身的磨损程度 、离心机工作 电压变化 和
的诞生 , 使安全地单采 各种血液成分变成 现实。新 技术的应 用, 新材料 、 产品的开发 , 新 为临床成 分输 血的开展 提供 了有 利的保证 , 成分血新品种的相继 问世与不 断开发新技术 和新 型的成分血制备方法分不开 。过滤膜技术在血液的分离 、 纯 化 中的应用 , 有效地 去除了血 浆的病毒 , 大大 提高 了血 液质
充红细胞I 悬浮红细胞又称添加剂红细胞 。 目前 国内外临 . 1 。 是 床应用最广泛的一种红细胞制品 。是用装有添加剂及含有抗
凝剂的多联袋采集全血 ,经重离心 ,尽量移除全血中的血浆 后, 加入红细胞保存液制备而成 。 3 影响红细胞质量的因素 31 血液离心方式和血袋摆放方式 : . 悬浮红细胞 的制备过程 中, 离心条件和离心 方式直接影响着离心分离效果。李雪梅
量, 减少 了输血反应和输血并发症Ⅲ 。如为 了减少人类 白细胞 抗原 ( L 引起的免疫性输血反应 , 国和 日本等研制 出各 H A) 美 种类型的白细胞过滤器, 白细胞去除率达到 9 %以上。 使 6 另外 , 血细胞分离机也在不断更新换 代。用电脑控 制的
血液本 身等 因素的影响。离心机在使用 15 - 年内 , 无论采用 速度一 时问一 温度或 A E 方式对血液进行离心 , 能达到较 CT M 均
离心方式 ,减少人为因素及血液离心时条件不断变化给离心
好的离心效果。 二者的主要区别在于 , 后者能真实显示和记录 每次血液离心完成时的数据 ,便于及时发现血液离心过程 中
可能出现的较大偏差 ,对保证血液离心效果起了间接的控制
作用 ,同时也为判断血液离心效果好坏提供 了 一定的理论依
据; 而前者不具备这些功能 , 只是在完成一次运行 。血液离心
时, 除本身 因素外 , 离心效果还受到离心机本身磨损程度 、 离
最新一代细胞单采 机和分离机 ,如 : am n tsP —pu 可 H e o e c c sls i 以从单个供血者身上一次采集血小板 30 1nL 自动控制自 . 0,, x
细胞的混入在危险值 1a 0 以下。 近来问世的 M S P实现 了自 C3
自从 1 1 8 8年英国生理学家兼妇产科 医生 Bu d1第一 ln e 1 个将人 的血液输给严 重出血的产妇得到治疗效果 , 人们逐渐 认识到输血在临床治疗 上的重要地位 ,但一直沿 用输 注全 血, 直到第二次世界大战期间 , 战伤的急救 中需大量的全血 , 而全血 当时 只能保存 7 1 , ~ 0d 出现全血供应 不足 , 以至不得

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实用医技杂志 20 年 1 09 月第 l 6卷第 l 期 Ju a0 P ccl ei l ehi e.aur 2O , o 1L o om l f r ta M d aTcn us Jna 9 V1 6 N a i c 口 yO .
・综述 Biblioteka 讲座 ・ 悬浮红细胞质量控制研究进展
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