叉柱花的组织培养技术探究

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

叉柱花的组织培养技术探究
作者:潘维强谢德欢彭小倩
来源:《南方农业·下旬》2018年第03期
摘要采用MS培养基进行叉柱花茎尖组织培养繁殖,建立叉柱花的快速繁殖体系。

通过在培养基中添加不同浓度的NAA和6-BA,实验结果显示培养基配方MS培养基+2 mg·L-1 6-BA+1 mg·L-1 NAA最利于叉柱花的生长。

该研究初步探索叉柱花组织培养繁殖的新方法,可以有效提高叉柱花的繁殖速率,缩短叉柱花的上市时间,有效补充市场缺口,能够为市场提供品质优良的无菌观赏水草。

关键词南美叉柱花;组织培养;快速繁殖;无菌观赏水草
中图分类号:S567.23 文献标志码:B DOI:10.19415/ki.1673-890x.2018.09.076
观赏水草是水族缸造景中必不可少的原材料,随着观赏水族的快速发展,观赏水草的需求量越来越大,各种水草繁殖培育技术亟待创新[1-2]。

南美叉柱花(Staurogyne repens),通常称作叉柱花,属爵床科、叉柱花属,是一种双子叶植物,原产于巴西、委内瑞拉等地,为挺水性水草。

南美叉柱花的水上草与水中草外观基本相同,主要的区别就是水中草比水上草而定叶片狭小。

水中草的叶片呈翠绿色,十字对生,披针形。

茎呈偏棕绿色,整体高度不超过10 cm。

叉柱花是近几年才引入我国的一种水草,由于其生长速度慢、植株矮、外观漂亮,常用作水族缸造景中的前景草,深受人们的喜爱,市场需求火热,供不应求。

叉柱花的繁殖主要依靠成体匍匐茎的分株,繁殖速率低,成本高。

叉柱花属短日照植物,在每年11月以后常常开花,引起植物早衰,叶片枯黄,失去观赏价值,不仅导致经济价值下降,还会引起秋冬季节市场供应短缺。

随着生物技术的发展,植物组织培养技术日趋成熟,已经应用到了许多花卉、果树等的苗种繁育,并且实现工厂化生产[3],如樱花[4-5]、彩色马蹄
莲[5]、香石竹[5]、金边凤梨[6]、网纹草[7-8]等。

近年来,一些观赏水草的生产繁育也成功的运用了组织培养技术,并且优点明显,如红柳[9]、大水榕[10-11]、小卷浪[12]、珍珠草[12]、长叶皇冠[13]等,有些已经实现工厂化生产,但还没有叉柱花工厂化生产的报道。

组织培养技术能够快速繁殖叉柱花,在较短的时间内获得大量的叉柱花苗种,并且在室内光照和温度恒定的状态下培育,没有明显的季节变化,避免了光照周期变化而引起的开花[14-15]。

此外,利用组织培养技术繁殖的叉柱花在无菌环境培育而成,经过优选、脱毒、无菌培育等工序,全程都在无菌环境下,无病菌侵扰,也没有藻类、害虫滋生,可塑性强[16]。

这就意味着,相比传统的水上叶和水下叶水草,叉柱花不会给水族缸带入病菌,藻类等,可以有效的避免观赏鱼疾病和水族馆爆藻。

利用组织培养技术培养的叉柱花具有超长的保鲜时间。

无菌的培养环境,特殊的营养基质,使水草能在杯内存活很长时间,所以在长距离运输、耐保存方面明显优于水上叶和水下叶的水草。

此外,组织培养繁殖的叉柱花适应能力强,转水快,不易溶叶。

本研究通过对叉柱花组织培养技术的探索,以期为叉柱花的工厂化快速繁育提供技术方案,提高市场供应量。

1.1 材料
2016年10月采自蠡园实验室自然繁育的水上叶的叉柱花,选用植株粗壮、健康的成品叉柱花作为外植体。

1.2 实验方法
采用无蔗糖的MS培养基,在其中添加适量的NAA、6-BA以及30 g·L-1蔗糖、8 g·L-1琼脂,pH值调至5.8±0.2,经高压灭菌锅121 ℃高压灭菌20 min。

培养条件:日温26 ℃,夜温22 ℃,湿度65%~80%,光照强度为2 000 lx,光照时间10 h/d。

1.3 外植体的消毒和灭菌
选取叉柱花幼嫩的带腋芽的茎段作为外植体,剪去叶片,用自来水流水冲洗1 min,然后在培养皿中将材料浸泡在煮沸冷却的水中,用毛笔刷洗,重复3次,每次更换水。

再用淡肥皂水浸泡10 min,取出,用自来水冲洗
1 min,然后转移至超净工作台中,用75%酒精在无菌烧杯中浸泡外植体6~10 s,再用0.1%升汞消毒9 min,浸泡时不断的摇晃外植体,以避免外植体上有气泡的产生,接着用无菌水冲洗6次,得到无菌外植体备用。

1.4 建立叉柱花无菌体系
配制6个NAA+6-BA组合不同浓度的培养基,用锥形瓶盛装,每个类型4瓶,共24瓶,激素浓度组合分为6种,编号为1~6,6-BA∶NAA(mg·L-1)浓度分别为0.5∶0.1、
1∶0.1、2∶0.1、0.5∶0.2、1∶0.2、2∶0.2。

把消毒好的外植体切成带腋芽小段,接种至培养基,进行诱导生长,经过15 d的生长后获得无菌苗,通过观察幼苗的生长状态初步确定其激素最适浓度配比。

1.5 叉柱花的扩繁
将获得的无菌苗拆成单株幼芽接种至新配培养基中确定NAA+6-BA的最适配比。

配制4种培养基,编号1~4,使用锥形瓶盛装,每种4瓶,激素浓度组合NAA∶6-BA(mg·L-1)分别为0.2∶1、0.5∶1、1∶1、1.5∶1。

经过20 d的生长,比对生长状态。

1.6 叉柱花的移植
当恒温培养箱中叉柱花幼苗长至苗高2 cm、根1 cm时,便可移出培养箱,在室内炼苗培养7 d,即可转入传统水草培养基质培养生产。

2.1 无菌体系的建立与诱芽
无菌体系一旦建立,便可通过扩繁不断的继代增殖培养,在短时间内获得大量的无菌苗,如图1所示。

在建立无菌体系的过程中,设定梯度较大的6-BA,而NAA只有两个浓度,从实验结果可以看出植株根系都不发达,而植株不定芽的生长状态随着6-BA浓度的增加而表现的愈加良好,但是随着浓度增加,不定芽的密度过密不利于后期实验操作,所以选定1mg/L的浓度作为最适添加浓度。

无菌体系培养过程中,编号1培养基芽较少、粗壮,根很少、细小;编号2培养基芽较多、均匀,根很少、细小;编号3培养基芽多、较短、密集,根很少、细小;编号4培养基芽较少、粗壮,根很少、短小;编号5培养基芽较多、均匀,根很少、短小;编号6培养基芽多、较短、密集,根很少、短小。

2.2 叉柱花的扩繁与生根培养
将无菌体系获得的植株直接分株接入新制培养基,培养14 d后,观察生根情况,如图2
所示。

结果显示0.2~1.5 mg·L-1浓度的NAA都能诱导生根,但是差别很大,0.2 mg·L-1浓度的根生长情况很差,根数目少而短小,而0.5 mg·L-1条件下的均匀,数目较多,长度适中,随着浓度的增加,1~1.5 mg·L-1根生长的长度越来越长,数目也有所增加。

所以结果显示0.5 mg·L-1时的NAA浓度最合适。

2.3 无菌苗的分炼和移栽
掌握NAA+6-BA最佳组合添加浓度后,后续扩繁生产都使用0.5 mg·L-1 NAA+1 mg·L-1 6-BA的添加量配置的培养基,培养14 d左右,叉柱花幼苗一般株高2 cm,根长1 cm,此时可以移栽到室内,经过7 d左右的生长,可上市。

或者分炼移栽至准备好的特制无菌水草杯,制成无菌杯草,同样培养7 d左右可上市。

3 讨论
国内观赏水草多引自国外,大多数来自南美洲、非洲、东南亚等热带地区[17]。

观赏水草需求量越来越大,已发展为一种重要的产业,但许多水草繁育难度大、要求高。

广东省广州市是我国进口水草的最大集散地,同时广东省也是国内最大的观赏水草产地,得益于得天独厚的气候条件,热带水草能够在这里繁育,而在北方,水草产量较低[18]。

因此天然条件对水草生产有着很大的影响。

运用组织培养技术则可以开发出更多种类的水草繁育方法,恒定的培养条件可以解除地域对水草生产的限制。

恒定的环境条件还可以有效的改变水草生长周期,对叉柱花来说,可以防止它冬天开花现象的出现,从而消除季节性的供应,可以长期连续的对市场提供叉柱花。

组织培养技术可以相对缩短叉柱花生产周期,快速获得成品植株,对提高上市产量有着重要意义。

现在的组织培养技术非常成熟,只是生产成本关系到它的应用范围。

在组织培
养快速繁殖技术中,建立无菌体系和增殖效率是关键,植物外植体通常包含有许多内生和外生细菌,在培养过程中无菌材料尤为关键。

要严格把控外植体在个处理步骤中的处理时间,不宜过长或过短,处理时间过短则有可能除菌效果差,处理时间过长又可能导致外植体活性变差,影响培养生长[12]。

本研究通过设置简单的梯度获得适合的NAA+6-BA组合,两种激素成本较低,效果理想,完全适合叉柱花的快速繁殖生产。

将培养基盛入定制的水草杯中,在后期分炼移栽中可以生产出无菌叉柱花,直接上市,这种无菌水草发展前景十分良好,在未来无菌水草很有可能代替一部分传统方法繁育的水草,对观赏水草行业的发展具有重大意义。

参考文献:
[1] 王红艳,王鸿磊,张志芬.我国观赏水草研究和应用现状浅析[J].黑龙江农业科学,2010(5):153-155.
(下转第页)
(上接第页)
[2] 张金锋.观赏水草的分类与繁殖方法[J].现代农业科技,2009(3):82-83.
[3] 熊丽,吴丽芳.观赏花卉的组织培养与大规模生产[M].北京:化学工业出版社,2003.
[4] 冷天波,李乐辉,柴德勇,等.樱花组织培养育苗技术[J].河南林业科技,2011(3):53-54.
[5] 姚连芳.名贵花卉组织培养工厂化育苗技术研究[D].杨凌:西北农林科技大学,2005.
[6] 陈秀玲,庄尔铮,何丽烂,等.金边凤梨组织培养快速育苗的研究[J].佛山科学技术学院学报(自然科学版),2001,19(1):62-65.
[7] 王立雪,范诸平,张彦妮.网纹草组织培养研究概述[J].天津农业科学,2015,21(6):15-17.
[8] 徐洁兰.红网纹草的组培快繁研究[J].安徽农业科学,2007,13(13):3846-3846.
[9] 王丽卿,季高华,周胜耀,等.4种观赏水草的组织培养试验[J].水产科技情报,2006,33(2):84-86.
[10] 莫昭展,覃贵毕.观赏水草大水榕的组织培养[J].林业实用技术,2009(11):46-48.
[11] 李洪波,丰锋,李映志,等.榕类水草的组织培养与快速繁殖[J].西南师范大学学报(自然科学版),2011,36(3):112-118.
[12] 彭军,黄茂,胡景荣.两种名贵观赏水草的组织培养技术研究[J].水产科技情报,2010,37(3):146-149.
[13] 顾福根,孙丙耀,苏国兴,等.长叶皇冠的组织培养与快速繁殖技术研究[J].广西植物,2013,33(2):181-184.
[14] 谭文澄.观赏植物组织培养技术[M].北京:中国林业出版社,1991.
[15] 曹春英.植物组织培养[M].北京:中国农业出版社,2006.
[16] 王亚玲.植物组织培养[M].杨凌:西北农林科技大学出版社,2010.
[17] 韩淑清.观赏水草的种类调查及栽培技术的研究[D].杭州:浙江大学,2005.
[18] 张金锋.世界观赏水草产业现状与展望[J].世界农业,2008(12):43-45.
(责任编辑:赵中正)。

相关文档
最新文档