锁阳中总黄酮的提取
中药中黄酮的提取,分离,含量测定及抗氧化研究实验注意事项

中药中黄酮的提取,分离,含量测定及抗氧化研究实验
注意事项
1. 实验操作过程中要穿戴实验服和实验手套,避免直接接触化学试剂。
2. 严格按照实验操作步骤进行操作,尤其是涉及有毒试剂时要注意操作方法。
3. 实验中使用的提取剂和溶剂应选择无毒、无害或低毒的物质,并进行适当的防护。
4. 注意提取剂和溶剂的选择和比例,以确保黄酮物质的高效提取和分离。
5. 在分离过程中,要注意对温度、pH值、时间等操作参数的控制,以保证分离效果和准确性。
6. 实验中测定研究黄酮含量的方法应选择准确且可重复的分析方法,并注意样品处理的一致性。
7. 在进行抗氧化研究时,要合理选择抗氧化实验模型和方法,并注意对照组的设置和处理。
8. 实验过程中要注意仪器设备的正确操作和维护,确保实验结果的准确性和可靠性。
9. 所有实验操作要遵循实验室的安全操作规范,并注意事故应急处理的流程和方法。
10. 实验结束后要及时清洗实验器材和实验台,处理废液和废弃物,保持实验环境的整洁和安全。
黄酮提取方法

黄酮提取方法黄酮是一类天然植物化合物,具有多种生物活性和药理作用。
以下是黄酮的一种常用提取方法:材料和试剂:-植物材料(如花朵、果实、叶子等)-乙醇或丙酮(有机溶剂)-蒸馏水(无机溶剂)-丙酮-水混合溶液(可选,用于分离黄酮类化合物)步骤:1. 准备植物材料:选择新鲜的植物材料,并将其洗净、晾干,去除杂质和不需要的部分。
根据具体植物材料的性质,可以选择使用花朵、果实、叶子等部位。
2. 粉碎植物材料:将植物材料切碎或研磨成细粉,以增加提取效率。
可以使用搅拌器、研钵或研磨机等设备进行粉碎。
3. 提取溶剂选择:选择适当的有机溶剂,如乙醇或丙酮,作为黄酮的提取溶剂。
这些溶剂具有良好的溶解性,能够高效地提取黄酮类化合物。
4. 溶剂提取:将粉碎后的植物材料与适量的有机溶剂混合,放入容器中,并密封。
让溶剂与植物材料充分接触,并进行提取。
可以选择常温静置提取、加热提取或超声波提取等方法,以增加提取效果。
5. 过滤:将提取液过滤,去除植物材料残渣和固体颗粒,得到澄清的提取液。
6. 浓缩提取液:使用浓缩设备(如旋转蒸发仪)将提取液中的溶剂蒸发掉,使其浓缩。
得到浓缩后的提取物,其中包含了黄酮类化合物。
7. 可选步骤:如果需要分离和纯化特定的黄酮类化合物,可以使用进一步的分离技术,如液相色谱(HPLC)或柱层析等方法。
这可以根据目标黄酮类化合物的性质和目的来选择。
以上是一般黄酮提取的常用方法,但需要根据具体的植物材料和实验条件进行调整和优化。
提取黄酮的方法可以因不同的植物种类和黄酮化合物的特性而有所差异。
因此,在实际操作中,建议参考相关的科学文献、专利或咨询专业人士的建议,以获取更详细和准确的提取方法。
此外,为确保实验操作的安全性和可靠性,请在进行实验之前仔细阅读和遵守相关实验室安全操作规程,并使用适当的个人防护设备。
在进行黄酮提取实验时,应注意溶剂的挥发性和易燃性,确保实验室通风良好,并遵循实验室废弃物管理规定。
最后,对于黄酮的提取和应用,建议与专业领域的研究人员、科学家或专业医疗人员进行深入讨论和咨询,以获取更准确和专业的指导。
新疆锁阳中总黄酮的提取工艺优化及含量测定

新疆锁阳中总黄酮的提取工艺优化及含量测定【摘要】目的优选新疆锁阳中总黄酮的提取工艺,比较不同产地新疆锁阳中总黄酮的含量。
方法以总黄酮含量为指标,以芦丁为对照品, 用分光光度法比较了回流法、超声法、煎煮法从锁阳干燥肉质茎中提取黄酮类化合物的提取效率,采用正交表进行实验优化了超声法的提取工艺。
比较了不同地区不同生长期的锁阳中总黄酮的含量。
结果固液比和超声时间对黄酮类化合物的提取效率有显着影响,乙醇浓度对提取效率影响不显着。
结论最佳提取工艺为60%乙醇、1:60固液比、超声 h,且总黄酮含量以奇台地区的锁阳最高,出土期比开花期高,花中总黄酮含量高于茎中。
【关键词】锁阳;黄酮类化合物;最佳提取工艺;超声Abstract:ObjectiveTo ascertain the optimum condition for extracting Cynomorium songaricum rutin as acomparison, we compared the extraction methods of the total flavones of Cynomorium songaricum Rupr., and studied the optimal conditions for extracting flavonoid compounds of Cynomorium songaricum using L9 (34) orthogonal table, and compared the total flavone contents of Cynomorium songaricum Rupr. from different regions at different growth The volume of alcohol and the time of extraction affected the total flavones significantly. ConclusionThe results showed that the highest extraction rate of the total flavones could be obtained with 60% ethanol solution at a ratio of solid to liquid 1:60 and ultrasound h and the highest content of the total flavones is obtained from Qitai region at unearthed stage.Key words:Cynomorium songaricum Rupr.; Total flavones; The optimumextraction process; Ultrasound锁阳Cynomorium songaricum Rupr.,又名不老药、铁棒槌、锈铁棒、地毛球、乌兰高腰(蒙语) 、锁严子,是锁阳科Cynomoriaceae锁阳属的单科单属单种植物, 多寄生于蒺藜科(Zygophyllaceae) 白刺属(Nityaria L. )植物根部, 是全寄生种子植物。
总黄酮的提取方法

总黄酮的提取方法总黄酮是一类在植物中广泛存在的生物活性物质,具有抗氧化、抗炎、抗肿瘤、抗菌等多种生物活性。
总黄酮的提取方法主要分为常规提取法、超声波辅助提取法、微波辅助提取法、超临界流体提取法等。
下面将详细介绍这些方法的原理和操作步骤。
1. 常规提取法:常规提取法是最常用的总黄酮提取方法之一。
该方法的原理是将植物样品与某种适合的溶剂进行浸提,溶剂中的总黄酮溶解出来,然后通过过滤和浓缩得到黄酮提取物。
操作步骤:(1) 将研磨后的植物样品与适量的溶剂加入烧瓶中,一般常用的溶剂有乙醇、甲醇、乙酸乙酯等。
(2) 将烧瓶放入提取装置中,加热浸提,提取时间一般为1-3小时,提取温度根据溶解度可在25-60之间选择。
(3) 提取结束后,使用滤纸、膜过滤或离心等方式分离固液,将液相收集到锥形瓶中。
(4) 将液相进行浓缩,可采用旋转蒸发、真空浓缩或减压浓缩等方法。
(5) 最后得到的黄酮提取物可在低温下保存或进行进一步的分离和纯化。
2. 超声波辅助提取法:超声波辅助提取法是在常规提取法的基础上结合超声波技术进行提取。
超声波的作用可以通过物理振荡和微压力变化,促使溶剂渗透进入植物细胞中,增加提取效率。
操作步骤:(1) 将样品与适量的溶剂放入超声波提取仪中,超声波输出频率一般在20-100 kHz之间。
(2) 开始超声波处理,提取时间一般较短,通常为10-30分钟。
(3) 提取完成后,进行过滤和浓缩等步骤,得到黄酮提取物。
3. 微波辅助提取法:微波辅助提取法是一种利用微波辐射能量加热样品,从而促进溶质的溶解和渗透的方法。
操作步骤:(1) 将植物样品与适量的溶剂放入微波辅助提取系统中。
(2) 设置合适的微波功率和时间,一般微波功率选取在200-1000 W之间,时间一般为5-20分钟。
(3) 提取完成后,进行过滤和浓缩等步骤,得到黄酮提取物。
4. 超临界流体提取法:超临界流体提取法是在超临界温度和压力条件下利用超临界流体作为溶剂进行提取的方法。
提取黄酮类的方法

提取黄酮类的方法
黄酮类是一类具有广泛生物活性的天然化合物,常用于药物和保健品的研究和开发。
提取黄酮类化合物的方法通常包括以下几个步骤:
1. 样品预处理:将待提取的植物材料(如花朵、叶片、茎皮等)进行洗涤、破碎或粉碎处理,以增加提取效果。
2. 溶剂选择:根据黄酮类化合物的特性,选择适合提取的溶剂,常用的有乙醇、甲醇、乙酸乙酯等。
不同的黄酮类化合物可能在不同的溶剂中具有不同的溶解性,因此溶剂的选择需根据具体化合物而定。
3. 固液提取:将预处理后的植物材料与选择的溶剂混合,进行固液提取。
可以采用浸泡法、回流法或超声波法等。
4. 过滤:将提取的混合物进行过滤,去除固体杂质,得到纯净的提取液。
5. 浓缩:将提取液通过蒸发或减压浓缩,浓缩至一定的体积,以增加目标化合物的浓度。
6. 结晶或萃取:根据黄酮类化合物的特性,可以通过结晶或萃取等方法将目标化合物进一步纯化。
7. 干燥:将提取得到的黄酮类化合物进行干燥处理,去除溶剂和水分,得到干燥的黄酮类化合物。
需要注意的是,以上提取方法仅为一般性的步骤,具体的提取方法还需根据目标化合物的性质和样品的特点进行优化和调整。
总黄酮的提取方法

总黄酮的提取方法
总黄酮是一种天然活性物质,广泛存在于植物中,常用于药物和保健品的制备。
目前常见的总黄酮提取方法包括以下几种:
1. 溶剂提取法:将原料粉碎后,使用有机溶剂(如乙醇、丙酮、乙酸乙酯等)进行浸提,振荡或浸泡一段时间,然后过滤、蒸发溶剂,得到纯化的总黄酮。
2. 超声波提取法:将原料与溶剂混合,通过超声波振荡破碎细胞壁,促进活性成分的释放,并加速提取过程。
该方法具有提取效率高、时间短等优点。
3. 超临界流体提取法:使用超临界流体(如二氧化碳)作为溶剂进行提取,利用其高渗透性和脱溶性能,能够高效提取总黄酮,并且溶剂易回收。
4. 水煎膏提取法:将原料与适量的水一起煎煮一段时间,提取活性物质。
该方法适用于一些水溶性总黄酮的提取。
5. 微波辅助提取法:将原料与溶剂混合,置于微波辐射区域,利用微波加热和共振效应,提高提取速度和效率。
6. 酶法提取:使用适当的酶(如纤维素酶、葡萄糖苷酶等)对原料进行酶解处理,使得总黄酮释放。
该方法能够提高总黄酮的提取率和纯度。
需要根据具体的实际情况选择合适的提取方法,因为不同的原料和需求可能对提取方法有不同的要求。
同时,提取方法的参数(如温度、时间、溶剂比例等)也需要进行优化,以提高提取效果。
新疆锁阳中总黄酮的提取工艺优化及含量测定

K ANG Xi pig, NA Ka smu , I —i g n— n RE — i L U Ya tn
( c ol fP am cl i l c ne, i a gMei l n e i , rm i 3 0 4 C ia S ho o h r aoo c i csXn n dc i r t U u q 8 0 5 , h ) g aS e i f a U v sy n
关 键 词 : 阳; 黄酮类化合物 ; 最佳提取 工艺 ; 超声 锁
中图分类号 : 2 4 2 R 编号 :0 80 0 ( 0 9 0 -15 2 10 -8 5 2 0 ) 1 0 - 0 0
Deemiaina dOpi m xrcino eT tl lv n so ij n "C n moim tr n t n t o mu E tat f h oa a o e fX ni g y o ru o t F a s
Ke y wor : y o d m o g r u Ru r ; ds C n mo u sn ai m p . c T tlf vn s oa a o e ; l h pi T eo t m xrcin po es Ul ao n mu e t t rc s ; a o t su d r
Ab ta t 0bet eT seti t piu odt nf x at gC nm r m sn ai m R p. tos T k g ui a sr c : jc v oacr n h ot m cn io r t c n yo oi g r u u rMeh d ai t s i a e m i oer i u o c nr n
L HZ E E IIEA DM T RAM DC E E R H20 O .0N . I IH NM DCN N A E I E IAR SA C 09V L2 O 1 S
总黄酮的提取和测定

总黄酮的提取和测定实验原理黄酮类化合物是植物的重要次生代谢产物,也是一些保健品和中药材的有效成分之一。
黄酮类化合物的定量方法常用的有 HPLC法和分光光度法,在实际生产和科研过程中,对于黄酮单体的定量常采用HPLC法,而对总黄酮的测定,考虑到方法的简便、快捷以及可行性,多采用在碱性介质中加铝盐显色的分光光度法。
在碱性条件下黄酮类化合物与铝盐形成络合物、在500nm波长处有最大吸收峰。
标准品选用芦丁。
试剂和器材一、试剂芦丁标准品。
5%NaNO2;10%A1(NO3)3;5%NaOH;70%乙醇。
二、材料新鲜银杏叶。
三、器材容量瓶10ml(×7),25ml(×1),100ml(×2);吸管 0.5ml(×2),1ml(×2),2ml(×1),5ml(×1);分光光度计。
操作方法一、制作标准曲线精密称取芦丁标准品5mg,用70%乙醇溶解,定容于25mL容量瓶中,摇匀,得0.2mg/mL的标准溶液。
精确吸取标准溶液0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2mL,分别置于10mL容量瓶中,加入 5%NaNO2 0.4mL,摇匀,放置6min;加入10%A1 (NO3)3 0.4mL,摇匀,放置6min;加入5%NaOH 4.0mL,再加水至刻度,摇匀,放置15min。
以试剂空白作为参比溶液。
用1cm比色皿,在500nm波长处测定吸光度,绘制标准曲线。
二、总黄酮的提取把新鲜的银杏叶低温烘干,使水分小于8%,制成干粉。
精确称取干粉1.0g,置于 100mL容量瓶中,加入70%乙醇30mL,浸泡24h。
超声波提取30min,过滤,滤液用70%乙醇定容于100mL容量瓶中,得到黄酮提取液,待用。
三、测定吸取黄酮提取液1.00mL, 置于10mL容量瓶中,加入5%NaNO3 0.4mL,摇匀,放置6min;加入10%A1(NO3)3 0.4mL,摇匀,放置6min;加入5%NaOH 4.0mL,再加水至刻度,摇匀,放置15min。
锁阳中儿茶素、根皮苷的提取及含量测定

锁阳中儿茶素、根皮苷的提取及含量测定李辰;陈卫林;郭玫;邸多隆【摘要】建立了高效泣相色谱一二极管阵列检测器联用测定中药锁阳中黄酮类化合物儿茶素、根皮苷的方法.用C18反相色谱柱梯度洗脱法成功分离了二者;以儿荼素和根皮苷含量总和为指标,以物料比、提取时间和提取次数为正交试验考察因素,优化了锁阳中黄酮的提取方法,得到的最佳提取条件为:28kHz、50℃条件下,以药材量7.5倍的甲醇超声提取3次,每次30 min.该方法提取效果好,精密度、准确度和稳定性较好,用于11个不同产地锁阳样品的提取和含量测定,可作为锁阳及其制品中儿茶素和根皮苷等黄酮类化合物提取、分析及质量控制的方法.【期刊名称】《五邑大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2011(025)001【总页数】6页(P23-28)【关键词】高效液相色谱;锁阳;儿茶素;根皮苷【作者】李辰;陈卫林;郭玫;邸多隆【作者单位】五邑大学分析测试中心,广东江门,529020;中国科学院兰州化学物理研究所西北特色植物资源化学重点实验室和甘肃省天然药物重点实验室,甘肃兰州,730000;甘肃中医学院,甘肃兰州,730000;甘肃中医学院,甘肃兰州,730000;中国科学院兰州化学物理研究所西北特色植物资源化学重点实验室和甘肃省天然药物重点实验室,甘肃兰州,730000【正文语种】中文【中图分类】O657.7;R914.4锁阳(Cynomorium songaricum Rupr.),锁阳科植物锁阳的干燥肉质茎,一种不含叶绿素的全寄生植物,主要分布于中国西北地区,如青海、甘肃、新疆、内蒙古、宁夏等地区的半荒漠或荒漠地带. 传统中药中,锁阳性味甘温有力,有补肾阳、益精血、补血、润肠通便之功效,用于腰膝痿软、阳痿滑精、肠燥便秘[1];现代医学证明:锁阳提取物对人免疫缺陷病毒(HIV)[2]、抗丙型肝炎病毒(HCV)[3]、人成神经细胞瘤[4]有抑制作用,还可用于治疗妇女绝经期症状[5]等. 目前,已从锁阳中分离出有机酸、酚类、甾体、脂肪酸、黄酮、三萜、氨基酸、蛋白质及多种维生素,多酚和黄酮等是锁阳的主要活性成分,儿茶素是黄酮类化合物中最重要的活性成分之一,其含量的准确测定非常重要. 目前以HPLC法同时测定锁阳中儿茶素(catechin,CA)和根皮苷(phloridzin,PH)的方法鲜有报道. 本文采用HPLC-DAD(二极管阵列检测器)法建立了同时测定锁阳提取物中儿茶素和根皮苷的方法,并应用于中国西部不同地区采集的11个锁阳样品中二者含量的分析比较.1.1 仪器Agilent 1200高效液相色谱仪(美国安捷伦公司,包括G1312A二元泵、G1315B(DAD)、自动进样器和Agilent Chemstation工作站),RE-52C型旋转蒸发仪,SHZ-D(Ⅲ)循环式真空泵(巩义市英峪予华仪器厂),BT 224S电子天平(德国赛多利斯仪器公司),KQ-250DE超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司).1.2 材料锁阳药材分别采自甘肃敦煌、民勤、安西、河西、张掖,新疆阜康、阿克苏,青海海西州、门源,宁夏恒武,内蒙古巴盟等11个地区,经兰州大学药学院马志刚教授鉴定为锁阳科植物锁阳的干燥肉质茎,样本存放于甘肃省天然药物重点实验室.1.3 试剂儿茶素对照品(中国药品生物制品检定所,批号877-200001),根皮苷对照品(Sigma公司,批号083K7072),纯净水,乙腈(色谱纯,北京J&K Chemical Ltd.),甲醇(分析纯,天津化学试剂公司),枸椽酸、N,N-二甲基甲酰胺、四氢呋喃等均为分析纯.2.1 色谱条件色谱柱:Eclipse XDB-C18柱(4.6mm×250mm ,5μm,美国安捷伦公司);保护柱:Eclipse XDB-C18(4.6mm×12.5mm ,5μm,美国安捷伦公司);流动相:乙腈(P)和水(W),梯度洗脱,12% P保持不变(0~6 min),12%~30% P(6~30 min),流速1.0 mL/min;DAD检测波长280 nm;柱温:室温;进样量:10 µL. 色谱峰定性由对照品保留时间和紫外光谱图确定,峰面积外标法定量.2.2 对照品溶液和供试品溶液制备2.2.1 对照品溶液制备分别精密称取儿茶素和根皮苷对照品3.10 mg和0.968 mg,以甲醇溶解并定容到5 mL的容量瓶中,二者浓度分别为0.602 mg/mL和0.194 mg/mL,作为储备液,冰箱4 ℃保存. 用前取出放至室温,再各稀释5倍,浓度分别为0.120mg/mL和0.0387 mg/mL.2.2.2 供试品溶液制备精密称取晾干并粉碎的锁阳药材约2.001 5 g,加入15 mL甲醇,在28 kHz和50 ℃条件下超声提取30 min,抽滤,滤渣再加入15 mL甲醇重复提取2次,抽滤,合并3次滤液,滤渣弃去. 将滤液浓缩近干,浓缩残余物以甲醇溶解并定容至5 mL,静置过夜. 测定前取出,放至室温,取上清液,过0.45 μm滤膜后,直接进HPLC分析.3.1 检测波长选择使用DAD在200~400 nm全波长扫描,监测目标化合物的最大吸收波长. 儿茶素和根皮苷的紫外吸收图谱如图1所示:儿茶素的特征吸收波长为210 nm和280 nm,根皮苷的特征吸收波长是225 nm和285 nm. 尽管二者在低波长处的吸收更大,但此处色谱背景的干扰也很大,故选择280 nm对待测成分进行同时检测.3.2 流动相选择由于儿茶素和根皮苷极性有差异,利用等度洗脱不能同时分离二者,故选用梯度洗脱. 比较后发现,乙腈—水梯度洗脱体系的分离效果优于甲醇—水体系. 优化后的梯度条件如下,流动相:乙腈(P)和水(W);梯度:0~6 min保持12% P不变,6~30 min 12%P逐渐递增到30%P;流速1.0 mL/min. 在此条件下,锁阳样品中的儿茶素、根皮苷与其他干扰成分完全分离,对照品和样品的分离谱图分别如图2和图3所示.3.3 样品前处理3.3.1 选择提取溶剂儿茶素和根皮苷易溶于甲醇、乙醇,比较乙醇、50%甲醇和纯甲醇3种有机溶剂作提取剂对二者提取效率的影响. 经HPLC实验发现:乙醇提取物成分复杂,对儿茶素和根皮苷的分离形成干扰;50%甲醇提取液提取出了较多难溶于甲醇的粘度较大的多糖成分,干扰测定;甲醇作提取剂,既能较充分地提取出所需的黄酮成分,又能减少水溶性成分的干扰,提取液浓缩定容也容易,对HPLC测定影响也小,因此,选定甲醇为提取溶剂.3.3.2 确定提取方法考察回流提取法、超声提取法和索氏提取法3种提取方式,经比较发现:超声提取法儿茶素和根皮苷含量最高,且操作简便省时. 以甲醇为溶剂进行超声提取,按表1正交试验设计法考察甲醇用量(A)、提取时间(B)和提取次数(C)等影响因素,结果见表2. 以儿茶素和根皮苷提取含量总和为考察指标,表2中极差R 值大小显示各因素作用主次为C>B>A;表3方差分析结果表明:A、B、C3种因素均无显著性意义(P>0.05),以A2B2C3为最佳提取条件,即优化后的最佳条件为:以药材量7.5倍(mL:g)的甲醇超声提取3次,每次30 min.在此基础上,再考察超声温度(30 ℃、40 ℃)和超声频率(20 kHz、28 kHz)对提取的影响,结果见表4:超声频率对结果影响不大,但温度影响具有显著性,温度越高越有利于提取. 通过实验发现:50 ℃提取效果更好,但为防止黄酮等有效成分在高温下发生变化,影响将来的药效学实验,最高提取温度应小于50 ℃为宜. 通过考察比较,最终确定的超声提取方法为28 kHz、50 ℃条件下,以7.5倍药材量(mL:g)的甲醇超声提取3次,每次30 min.3.4 方法学验证3.4.1 线性方程、线性范围、相关系数和检测限用自动进样器分别吸取0.120 mg/mL儿茶素和0.0387 mg/mL根皮苷的对照品溶液1 µL、2 µL、5 µL、10 µL、15 µL、20 µL、30 µL,依次进样,按上述色谱条件测定,以对照品进样量(µg)为横坐标、峰面积(mAU·s)为纵坐标绘制标准曲线. 结果表明:儿茶素在0.120~3.612 μg范围内线性关系良好,根皮苷在0.0194~0.774 μg范围内线性关系良好.以3倍信噪比计算检测限,得到儿茶素和根皮苷的检测限分别为2.15 ng和0.322 ng.3.4.2 精密度由日内和日间精密度评价方法的重复性,分别取0.602 mg/mL儿茶素对照品和0.194 mg/mL根皮苷对照品溶液连续进样5次,测得儿茶素和根皮苷峰面积的RSD分别为2.08%和1.92%;在6 d内,每天随机对儿茶素和根皮苷的对照品溶液进样1次,2个待测物峰面积6次测定结果的RSD小于3%,说明方法精密度良好.3.4.3 稳定性将同一锁阳样品溶液放置于室温下,连续考察5 d,每次进样4 µL,测得样品中儿茶素和根皮苷含量的RSD小于3%,说明方法稳定性较好.3.4.4 回收率精密称取已知含量的锁阳样品5份,分别加入适量的对照品溶液,按2.2.2项“供试品溶液制备”方法进行样品提取制备,按2.1项“色谱条件”进行分析,测得儿茶素和根皮苷的平均回收率分别为100.5%和99.26%,平行样的RSD分别为1.87%和2.54%,说明方法准确度较高.3.5 样品测定精密称取11个采自中国主要不同产地的锁阳样品,按2.2.2项“供试品溶液制备”方法和2.1项“色谱条件”,以HPLC测定药材中儿茶素和根皮苷的含量,每个样品重复测定3次. 样品的典型图谱见图3,由图可知待测组分没有干扰,提取物不同组分间分辨率较好. 不同产地锁阳中2种被测物的含量由相应标准曲线计算得到,结果列于表5.由表5可知:1)不同产地供试品中儿茶素和根皮苷含量差别较大(青海海西州锁阳儿茶素含量最高,为1.552 mg/g;内蒙古巴盟锁阳根皮苷含量最高,为0.046 mg/g),尤其儿茶素含量差别更大(0.145~1.552 mg/g). 2)不同产地供试锁阳样品中2种待测物均以儿茶素含量为主,且儿茶素含量远高于根皮苷的含量;这一结果与Chu等[6]用毛细管电泳—安培检测器测定锁阳的结果一致(他们测得不同产地锁阳中根皮苷含量为0.011~0.038 mg/g,亦与本文测定结果相近),但Chu[6]和张思巨[7](尤其后者)所测锁阳样品中儿茶素含量较本文所测结果高,其测定含量为分别0.251~2.319 mg/g和0.760~20.79 mg/g,这可能与药材生长环境、采集时间及药材的新鲜程度等有关,如张思巨等指出锁阳样品中儿茶素含量与药材新鲜程度有关,同一产地锁阳鲜品中儿茶素的含量约为陈品的3倍.本文建立了HPLC梯度洗脱同时测定锁阳中2种黄酮化合物儿茶素和根皮苷的方法,该方法操作简便,精密度和准确度较高. 利用该方法测定了采自中国西部主要产区的11个锁阳样品中儿茶素和根皮苷的含量,结果儿茶素含量均显著高于根皮苷含量,并比较了其含量与文献值的差别,指出这些差别可能是由于生长环境、药材采集时间和新鲜程度等不同造成的. 该RP-HPLC梯度洗脱方法可被用作锁阳及其制品的质量控制方法.【相关文献】[1] 苏格尔,常艳旭. 锁阳的化学成分及药理作用研究概况[J]. 中国民族医药杂志,2005, 11(6): 46-49.[2] MA Chaomei, NAKAMARA N, MIYASHIRO H, et al. Inhibitory effects of constituents from Cynomorium songaricum and related triterpene derivatives on HIV-1 protease [J]. Chem Pharm Bull (Tokyo), 1999, 47(2): 141-145.[3] MA Chaomei, WEI Ying, WANG Zhigang, et al. Triterpenes from Cynomorium songaricium-analysis of HCV protease inhibitory activity, quantification, and content change under the influence of heating[J]. Journal of Natural Medicines, 2009, 63: 9-14. [4] LU Yi, WANG Qingguo, MELZIG M F, et al. Extracts of Cynomorium songaricum protect SK-N-SH human neuroblastoma cells against staurosporine-induced apoptosis potentially through their radical scavenging activity [J]. Phytotherapy Research, 2009, 23(2): 257-261.[5] ZHANG Chunzhi, WANG Suxin, ZHANG Yan, et al. In vitro estrogenic activities of Chinese medicinal plants traditionally used for the management of menopausal symptoms [J]. Journal of Ethnopharmacology, 2005, 98(3): 295-300.[6] CHU Qingcui, TIAN Xiuhua, LIN Miao, et al. Electromigration profiles of Cynomorium songaricum based on capillary electrophoresis with amperometric detection[J]. J Agric Food Chem, 2006, 54(21): 7979-7983.[7] 张思巨,刘丽,于江永. 高效液相色谱法测定锁阳儿茶素的含量[J]. 中国药学杂志,2003, 38(8): 578-580.。
紫外分光光度法测锁阳中黄酮类化合物含量论文

紫外分光光度法测锁阳中黄酮类化合物的含量【摘要】目的建立中药锁阳中黄酮类化合物的含量测定方法。
方法采用紫外分光光度法测定波长510nm处的吸收度。
结果回归曲线方程为:a=0.6259c-0.0036,相关系数r2=0.9999,rsd=1.40%。
结论紫外分光光度法简便快捷,结果准确,可用于锁阳中总黄酮的含量测定和质量控制。
【关键词】锁阳;总黄酮;含量测定;紫外分光光度法doi:10.3969/j.issn.1004-7484(x).2013.06.566 文章编号:1004-7484(2013)-06-3321-01锁阳(cynom orium songaricum rupr),系锁阳科植物锁阳的干燥肉茎,主要分布于我国的西北地区,寄生于白刺的根上。
锁阳是我国传统中药材,《本草纲目》记载,锁阳“甘、温、无毒。
大补阴气,益精血,利大便。
润燥养筋,治痿弱。
”现代药理学研究证明锁阳有类糖皮质激素样作用,在清除自由基、抗衰老、抗应激、抑制血小板聚集等方面也具有重要医疗价值[1-2]。
近些年随着科研工作的不断深入,锁阳的药理活性、临床应用等方面越来越为更多的人所重视。
本实验采用紫外分光光度法[3],测定了锁阳中总黄酮的含量,为锁阳原药材的质量控制提供了依据。
1 仪器与材料紫外分光光度计(型号uv-2550,日本岛津)。
精密分析天平(210,日本岛津)。
酒精计(北京石景山玻璃仪器厂,3只组)。
容量瓶(01tx 50ml 25ml 20℃天津化学玻璃仪器厂)。
超声波清洗器(kq-500b型昆山市超声仪器有限公司)。
95%乙醇(分析纯天津市大茂化学试剂厂)。
2 方法与结果2.1 测定波长将对照品溶液和锁阳供试品溶液在450-600nm波长范围内进行扫描,发现在其在波长510nm处有最大吸收峰,故选择测定波长510nm。
2.2 线性关系移取芦丁标准品1ml、2ml、3ml、4ml、5ml、6ml 做含量测定,得回归曲线方程:a=0.6259c-0.0036(r2=0.9999),表明线性关系良好,见表1、图1。
黄酮类的提取方法

黄酮类的提取方法
提取黄酮类化合物的常用方法包括以下几种:
1. 溶剂提取法:将原料粉碎后与有机溶剂(如乙醇、丙酮、乙酸乙酯等)进行浸提,常用超声波辅助提取或连续提取,然后通过浓缩溶剂,得到黄酮类化合物的溶液。
2. 蒸馏提取法:将黄酮类含有的原料与溶剂共同蒸馏提取,在蒸馏过程中得到黄酮类化合物的提取物。
3. 水煎提取法:将原料切碎后加入适量的水,进行煎煮一段时间,然后通过过滤或离心等手段分离出液体,得到黄酮类化合物的提取物。
4. 萃取法:使用有机溶剂(如正己烷、二甲苯等)作为萃取剂,将原料与溶剂混合后搅拌或超声波辅助提取,然后通过分液漏斗或离心等分离工艺,得到黄酮类化合物的溶液。
5. 萃取树脂法:使用具有亲水或疏水性的萃取树脂固相萃取黄酮类化合物,将原料与树脂混合后搅拌或震荡一段时间,然后用适当溶剂洗脱黄酮类化合物。
需要注意的是,不同类型的黄酮类化合物在提取过程中可能需要采用不同的提取方法,因此具体的提取方法还需要根据目标黄酮类化合物的性质和特点来选择。
正交设计优选甘肃酒泉锁阳总黄酮提取工艺

公司) S22型电热温度干燥箱 ( ; Z0 浙江诸暨县马剑 电热仪器厂) H S ; H— 恒温水浴锅( 江苏金坛县医疗
仪器厂 ) 。
12 试 剂芦丁对照 品 ( . 太保制 药厂提供 )
乙醇 、 亚硝酸钠 、 氧化 钠 、 酸铝 均为 分 析纯 氢 硝
试剂 。
13 药材 ( 峪关市药 品检验所提供 ) . 嘉
l 器 材
I I 仪 器 ¥ 4紫 外可 见分 光 光度计 ( 海棱 光 技 . 5 上 术有 限公 司 ) K 30 Q 20型提 取 清洗 器 ( 山市 提 取 仪器 有 限 昆
6 mn 10 n时 间测 定 吸 光 度 , 果 表 明 , 品 在 0 i,2mi 结 样
10mi 2 n内稳 定 。R D=17 % 。 S .3
2 2 2 加 样 回收 率 实验 ..
精密 称取 已测 知含 量 的锁 阳样 品份 , 分别 加入
第 1 期
杨怀 武等 : 交设 计优 选甘肃 酒 泉锁 阳总黄 酮提取工 艺 i E
人 体衰老 与病 痛 的脂质 过 氧化 物连 锁 反应 , 合金 螫 属 离子使之钝 化 , 防止脂 肪氧化 酶作用 , 而具 有抗 从
衰老 作用 。是 一种具有广 泛开发前 景的天然抗 氧化 剂 p 。 目前 , 对锁 阳 中黄 酮类 化 合物 提 取 工艺 及
生理 活性报道 不多 。锁 阳为兰州太保 制药有 限公 司
杨 怀 武 许 强 万 雪荷 , ,
(. 1兰州太保制药有限公 司, 肃 兰州 7 0 5 ;.0 甘 30 0 25 4厂职工 医院 , 甘肃 兰州 7 0 6 ; 30 0 3嘉峪关市药品检验所 , . 甘肃 嘉峪关 7 50 ) 3 10 摘 要: 优选甘肃酒 泉锁 阳中总黄酮的提取工 艺 , 定甘肃 酒泉锁 阳中总黄酮在兰州太 保制药有 限公 司的提取工 确
提取总黄酮的原理

提取总黄酮的原理总黄酮是指植物中的黄酮类化合物的总和,它是评价植物药用价值的重要指标之一。
提取总黄酮的基本原理是:首先需要对植物原料进行预处理,通过干燥、碾碎等使其细胞结构破坏,这样可以提高提取率。
接着常用乙醇溶液浸提原料,乙醇可以溶解黄酮类化合物。
然后进行过滤除去残渣,得到的滤液中含有黄酮提取液。
对该滤液用正丁醇等有机溶剂萃取,可以进一步富集黄酮成分。
萃取液经减压浓缩后,利用硅胶柱层析技术等分离提纯黄酮类化合物。
具体提取步骤如下:1. 预处理原料:将新鲜植物材料洗净后风干或阴干,粉碎至积累过筛,充分破坏组织结构,便于提取。
2. 提取:称取一定量植物粉末,加入70%乙醇溶液,浸提2-4小时。
重复2-3次提取,合并滤液。
3. 浓缩:把提取得到的滤液在减压条件下浓缩,以除去溶剂。
4. 萃取:向浓缩后的水提液中加入等体积正丁醇,振荡萃取。
重复2-3次,合并正丁醇层。
5. 净化:将正丁醇萃取液用0.5% NaOH溶液洗涤,中和,无水Na2SO4干燥,过滤,旋干或减压除去溶剂。
6. 结晶:加入少量乙酸乙酯,置冰箱结晶析出黄酮类化合物。
7. 分离纯化:对黄酮粗品,可以进行各种现代分离技术进一步提纯,如薄层层析、硅胶柱层析、高效液相层析等。
在提取过程中,由于黄酮常与其他苷元物质如皂苷、萜苷等共存,提取液中也会含有这些杂质。
为了提高黄酮的提纯效果,可以选择合适的提取溶剂、优化提取过程,并通过各种分离纯化技术将黄酮与杂质有效分离,提高产品的纯度。
提取总黄酮时,不同植物原料及提取方法会影响提取效率。
常见影响提取率的因素有:1. 原料的种类、产地、采收时间等。
不同植物中的总黄酮含量有差异;同一植物在不同成熟期及存储时间,总黄酮含量也不尽相同。
2. 粉碎程度。
原料粉碎越细,组织破坏越彻底,有利于提高提取率。
但过度粉碎会产生更多细小颗粒,不易过滤分离。
3. 提取温度。
适宜的温度可以增加黄酮的溶解速率和溶解度。
但是温度过高会导致部分黄酮发生降解。
锁阳黄酮咀嚼片中总黄酮含量的测定

l i n e a r i t y we r e y = l 1 . 9 2 0 x + 0 . 0 0 7 2, r = 0 . 9 9 9 4, 4 . 0 2 I -  ̄ g / mL 一 6 4 . 3 2 I  ̄ g / mL, r e s p e c t i v e l y . T h e p r e c i s i o n( R S D%)
l f a v o n o i d s t bl a e t s wa s d e t e r mi n e d b y s p e c t r o p h o t o me t r y . e l i n e a r e q u a t i o n. r e l a t e d c o e fi c i e n t a n d r a n g e o f
Ga n s u,C h i n a; 2. Ke y L a b o f Ch e mi s t r y o f No r t h we s t e n r P l a nt Re s o u r c e s i n La n z h o u I n s t i t u t e o f Ch e mi c a l
P h y s i c s , an L z h o u 7 3 0 0 0 0 , G a n s u , C h i n a )
Ab s t r a c t : To e s t a b l i s h t h e me t h o d f o r c o n t e n t d e t e r mi n a t i o n o f f l a v o n o i d s i n C y n o mo nu m S o n g a r i c u m l f a v o n o i d s t a b l e t s .L u t o s i d e a s c o n t r o l a r t i c l e.t h e c o n t e n t o f t h e f l a v o n e o i d s i n Cy n o mo r i u m S o n g a r i c u m
中药中黄酮提取 -回复

中药中黄酮提取-回复中药中黄酮提取方法与应用中药中黄酮提取是一种常见的中药提取方法,可以从植物中提取出具有保健和药用价值的黄酮类化合物。
黄酮类化合物是一类天然化合物,具有多种生物活性,包括抗氧化、抗炎、抗菌和抗肿瘤等作用。
本文将介绍中药中黄酮提取的基本原理、常见的提取方法和其在药物和保健品开发中的应用。
一、中药中黄酮提取的基本原理中药中黄酮提取的基本原理是利用溶剂提取的方法,将植物中的黄酮类化合物从固态的植物材料中溶解到溶剂中,然后通过过滤和浓缩等操作,得到黄酮类化合物的纯品。
黄酮类化合物通常是非极性的,因此脂溶性溶剂如乙醚、氯仿和醚类等常用于提取过程中。
而在某些情况下,可以采用水提取的方法,将植物中的黄酮类化合物从水溶液中进行提取,这需要进一步调整提取条件和使用相应的辅助溶剂。
二、常见的中药中黄酮提取方法1. 溶剂提取法:将干燥的植物材料与脂溶性溶剂如乙醚、氯仿等进行浸泡,利用溶解度差异将黄酮类化合物从废弃物中分离出来,然后通过浓缩和加工得到纯品。
2. 水提取法:将植物材料与水进行浸泡,经过煮沸、浸泡或蒸馏等操作,将水溶性的黄酮类化合物从水中提取出来。
需要注意的是,水提取法中可能伴随着其他水溶性成分的提取,因此可能需要进一步进行分离和纯化。
3. 超声波辅助提取法:通过超声波的作用,可以促进溶剂与植物材料之间的物质传递,从而提高黄酮类化合物的提取效率。
超声波提取法是一种高效且环境友好的提取方法,已在实际应用中得到广泛应用。
4. 超临界流体萃取法:超临界流体萃取是一种高效且无需使用溶剂的提取方法。
通过调整温度和压力,将溶剂转变为超临界流体,与植物材料进行接触,从而实现黄酮类化合物的提取。
三、中药中黄酮提取的应用中药中黄酮具有多种药理活性和保健价值,因此其提取物常被用于药物和保健品的研发和生产。
黄酮类化合物可以作为药物原料,用于制备抗氧化剂、抗炎剂、抗菌剂和抗肿瘤药物等。
此外,黄酮类化合物还可以用于保健品的研发和生产,常用于制备抗衰老、抗癌、抗糖尿病和降血脂等保健品。
总黄酮的提取方法

总黄酮的提取方法1、熔剂法热水提取法、碱性水或碱性稀醇提取法、有机溶剂提取法2、2。
1 微波提取法微波提取是利用不同结构的物质在微波场中吸收微波能力的差异,使基体物质中的某些区域或提取体系中的某些组分被选择性加热,从而使被提取物质从基体或体系中分离,进入介电常数较小,微波吸收能力相对差的提取剂[1]。
这种方法的优点是对提取物具有较高的选择性、提取率高、提取速度快、溶剂用量少、安全、节能、设备简单3、 2.2 超声波提取法用超声波提取法提取黄酮类物质,是目前比较新的方法。
原理是利用超声波在液体中的空化作用加速植物有效成分的浸出提取,另外,还利用其次效应,如机械振动、扩散、击碎等,使其加速被提取成分的扩散、释放。
超声波提取法具有设备简单,操作方便,提取时间短,产率高,无需加热,同时有利于保护热不稳定成分,省时,节能,提取率高的优点.4、 2.3 超临界流体萃取法超临界流体萃取技术是利用超临界流体处于临界温度和临界压力以上,兼有气体和液体的双重特点,对物质具有良好的溶解能力,从而作溶剂进行萃取分离。
可做超临界流体的物质很多,一般为低分子量的化合物,如CO2、C2H6、NH3、N2O 等。
目前多采用CO2 做萃取剂,因为它具有密度大、溶解能力强、临界压力适中、临界温度接近常温、不影响萃取物的生理活性、无毒无味、化学性质稳定、生产过程中容易回收、无环境污染、价格便宜等一系列优点。
但单一的CO2作萃取剂只对低极性、亲脂性化合物有较强的溶解能力,对大多数极性较强的组分则不起作用,因此,在其中加入夹带剂,通过影响溶剂的密度和溶质与夹带剂分子间的作用力来影响溶质在二氧化碳流体中的溶解度和选择性[15]。
超临界流体萃取技术有许多传统分离技术不可比拟的优点:过程容易控制、达到平衡的时间短、萃取效率高、无有机溶剂残留、对热敏性物质不易破坏等[16]。
但它所需要的设备规模较大,技术要求高,投资大,安全操作要求高,难以用于较大规模的生产。
锁阳总黄酮最优提取方法研究

锁阳总黄酮最优提取方法研究
张庭瑞;李志忠
【期刊名称】《中国食品工业》
【年(卷),期】2011(000)001
【摘要】为了研究传统醇提法、微波碱水法、超声波辅助萃取法对锁阳总黄酮提取的影响,从而选择最优提取方法,本试验以芦丁为对照品,利用Na(NO3)2-
Al(NO3)3-NaOH络合显色可见分光光度法,通过多因素正交试验考察不同因素对提取锁阳总黄酮的影响.结果表明,采用超声波辅助萃取法,取1.0~5.0mL进样,以500W,20s/20s,60c的条件超声波处理2次,得最优提取率达26.487%.因此,超声波辅助与醇提法并用为锁阳中总黄酮最优提取法,其不仅具有节约、高效、省时等特点,且提高了有效成分的提出率以及原料的利用率.
【总页数】2页(P70-71)
【作者】张庭瑞;李志忠
【作者单位】兰州理工大学生命科学与工程学院;兰州理工大学生命科学与工程学院
【正文语种】中文
【相关文献】
1.响应面法优化锁阳总黄酮超声提取工艺 [J], 杨林;林鹏;钱娇玲;刘晓风;龙静;李伟娟
2.正交试验考察新疆锁阳中总黄酮的提取工艺 [J], 康新平;热娜·卡斯木;龚兰新
3.正交设计优选甘肃酒泉锁阳总黄酮提取工艺 [J], 杨怀武;许强;万雪荷
4.醇法提取锁阳中总黄酮的研究 [J], 张勇;李彩霞;李鹏;汪江;程军强
5.新疆锁阳中总黄酮的提取工艺优化及含量测定 [J], 康新平;热娜·卡斯木;刘亚婷因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
大孔树脂法分离纯化锁阳总黄酮

大孔树脂法分离纯化锁阳总黄酮
张喜峰;罗光宏;王春晖
【期刊名称】《中国酿造》
【年(卷),期】2015(034)010
【摘要】为了分离、纯化锁阳总黄酮,比较了5种大孔树脂的静态吸附过程,筛选出了适合分离锁阳总黄酮的树脂.结果表明,AB-8树脂对锁阳总黄酮有较好的分离纯化效果,其吸附过程可用Langmuir和Freundlich吸附等温式来描述;吸附条件:溶液质量浓度3.9 mg/mL,pH值为5,吸附体积5BV,流速2 BV/h,温度25℃;洗脱条件:体积分数为60%乙醇洗脱体积5BV,体积分数为70%乙醇洗脱体积10BV,流速2 BV/h,锁阳总黄酮纯度由9.83%升高至67.8%,其回收率为84.02%.因此,AB-8大孔树脂较适合分离纯化锁阳总黄酮.
【总页数】5页(P106-110)
【作者】张喜峰;罗光宏;王春晖
【作者单位】河西学院农业与生物技术学院,甘肃张掖734000;河西学院凯源生物技术开发中心,甘肃省微藻工程技术研究中心,甘肃张掖734000;河西学院农业与生物技术学院,甘肃张掖734000
【正文语种】中文
【中图分类】S567.9
【相关文献】
1.大孔树脂分离纯化罗勒叶总黄酮及抗氧化活性研究 [J], 姚佳;李世正;杜煜;侯鹏鹏
2.大孔树脂分离纯化黑穗醋栗叶片总黄酮的研究 [J], 李大龙;崔恩权;李兴国;张志坤;于泽源
3.大孔吸附树脂分离纯化锁阳总黄酮效果初探 [J], 张庭瑞;李志忠
4.大孔树脂在分离纯化畲药十二时辰总黄酮工艺中的应用 [J], 饶雪娥; 朱扶蓉; 陈镇权; 陈前顺
5.大孔树脂分离纯化柞树叶总黄酮及其抗氧化活性研究 [J], 王林美;岳冬梅;孙永欣;马淑慧;张波;李树英
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学生姓名李林林学号**********
所在学院化学与环境科学学院
专业班级化学1102
指导教师杨海涛
2015年3月20日
题 目
锁阳中总黄酮提取及其抗氧化活性的研究
一、选题的目的及研究意义
锁阳俗称“不老药”,又名绣铁棒、地毛球、羊锁不拉、乌兰-告亚(蒙名)、耶尔买他格(维名)、沙漠人参,为锁阳科锁阳属植物锁阳(Cynomorium songaricunt Rwpf.)的干燥肉质莲。
[2]杨林,林鹏,钱娇玲等.响应面法优化锁阳总黄酮超声提取工艺[J].中医药学报,2013,41(5):76-80.
[3]曾朝珍,张永茂,李新明等.锁阳生理活性成分研究进展[J].食品工业科技,2011,45(11):491-495.
[4]林鹏.锁阳化学成分类型检识、四类化合物提取工艺及生物活性研究[J].兰州理工大学,2013,22(2):234-456.
2、3月26日—4月10日:设计实验方案并与指导教师协商确定实验方案,准备实验试剂、仪器、设备,做实验的准备工作;
3、4月11日—5月10日:完成实验工作;
4、5月11日—5月21日:整理实验数据,撰写毕业论文初稿并提交;
5、5月22日—6月2日:进一步修改毕业论文,定稿并提交,参加毕业论文答辩。
六、指导教师意见
[13]Muhammad A, Anis I, Khan A, et al. Biologically active C-alkylated flavonoids from Dodonaea viscosa[J].Archives of pharmacal research, 2012, 35(3): 431-436.
3.3写作提纲
1、论文题目2、作者及工作单3、指导老师4、摘要5、关键词6、正文7、参考文献
8、英文题目9、英文作者及其工作单位10、英文摘要11、英文关键词
四、检索与本课题有关参考文献资料的简要说明
[1]郭豫,赵江燕,栾娜等.锁阳中黄酮的抗氧化功能研究[J].安徽农业科学,2011,39(32):19763-19764.
1.对开题报告的评语
2.对开题报告的意见及建议
指导教师(签名):
年 月 日
所在学院审查意见:
负责人签字(盖公章)
年 月 日
[5]杨怀武,许强,万雪荷.正交设计优选甘肃酒泉锁阳总黄酮提取工艺[J].甘肃科技,2011,27(1):150-151.
[6]包辉,王照友,王赞.黄酮类合物研究现状及发展趋势[J].科技风报,2011,16(10):163-163.
[7]李筱玲,邓寒霜.黄酮类化合物提取分离工艺的研究进展[J].食品工程,2015,23(45):26-7
[14]Terashima M, Kakuno Y, Kitano N, et al. Antioxidant activity of flavonoids evaluated with myoglobin method[J].Plant cell reports, 2012, 31(2): 291-298.
[8]文美琼,李璐,蔡晨波等.长根金星蕨总黄酮抗氧化活性研究[J].楚雄师范学院学报,2014, 29(3):44-48.
[9]邸娜,郑喜清,韩海军等.植物天然成分黄酮类化合物的提取方法[J].安徽农业科学,2014, 12(33):46-78
[10]刘红,陈燕芹,程霞等. 苦荞秸秆中总黄酮的提取及其抗氧化性[J].贵州农业科学,2014, (3):150-153.
[15]Routray W, Orsat V. Microwave-assisted extraction of flavonoids: a review[J]. Food and Bioprocess Technology, 2012,5(2):409-424.
五、毕业设计进程安排
1、3月4日—3月25日:根据任务书完成开题报告并提交;
近年来,锁阳的化学成分被逐渐认识,文献报道锁阳含有黄酮类、三萜类、甾体类、鞣质、有机酸等多种成分。黄酮类化合物具有抗溃疡、抗菌、抗炎、降血脂、防止动脉硬化或栓塞等作用。锁阳作为天然来源的黄酮类化合物,能有效地清除自由基和脂质过氧化物,捕捉生物体内的超氧化物及过氧离子,切断生物体内导致人体衰老与病痛的脂质过氧化物连锁反应,螯合金属离子使之钝化,防止脂肪氧化酶作用,从而具有抗衰老作用,是一种具有广泛开发前景的天然抗氧化剂。目前对锁阳中黄酮类化合物提取工艺及生物学活性的报道不多。本论文以锁阳为原料,单因素实验的基础上,正交实验优化其提取工艺,并对其抗氧化性进行评价,以期对锁阳资源的开发利用提供一定的实验依据。
黄酮类化合物的主要有这些提取方法:微波提取法、超声波辅助提取法、有机溶剂提取法、酶浸渍萃取法、超临界CO2萃取法。有机溶剂提取法操作简单、易实现;超临界萃取法速度快、操作简单,产品无溶剂残留;超声波辅助提取无需加热,对有效成分具有保护作用。在提取某些中草药黄酮类成分时,可以将二者结合使用。
黄酮类化合物具有多方面生物活性:具有降低心肌耗氧量、防治血管硬化等作用,同时也是一种天然抗氧化剂,具有抗衰老、增强机体免疫力、抗癌防癌、调解内分泌系统,护肝抗炎,抗过敏,抑菌,抗病毒等。正是其上述生物活性引起了人们的广泛重视,该类化合物的研究已成为国内外医药界研究的热点。因此,本论文以锁阳为原料,单因素实验的基础上,正交实验优化其提取工艺,并对其抗氧化性进行评价,以期对锁阳资源的开发利用提供一定的实验依据。
二、综述与本课题相关领域的研究现状、发展趋势、研究方法及应用领域等
随着科学技术的不断提高和科学家们的不断努力,锁阳的化学成分被逐渐认识,文献报道锁阳含有黄酮类、三萜类、鞣质、甾体类、有机酸、等多种成分。三萜类化合物有溶血、抗癌、抗炎、抗菌、抗病毒、降低胆固醇、杀软体动物等活性;有抗炎、抗氧化、抗过敏、降血脂、降血压、降血糖、镇静、镇痛等作用,同时具有抑制组织胺释放、保肝护肝、解毒、杀伤肿瘤细胞、平喘、解痉的效果。鞣质具有较强的还原性,可清除生物体内的超氧自由基,延缓衰老;此外,鞣质还有抗变态反应、抗炎、驱虫、降血压等作用。有机酸能刺激人体消化腺的分泌,增进食欲,有利于食物的消化;另一方面,有机酸使食物保持一定的酸度,对维生素C的稳定性具有保护作用。黄酮类化合物有明显的抗溃疡、抗菌、抗炎、降血脂等药用保健功能;有防止动脉硬化或栓塞等效果,可作血管保护剂;对胸闷、心悸及早搏均有一定作用;对眩晕综合征、急性耳鸣、口臭等症状有防治功能。作为天然来源的黄酮类化合物,也能够有效地清除自由基和脂质过氧化物,捕捉生物体内的超氧化物及过氧离子,切断生物体内导致人体衰老与病痛的脂质过氧化物连锁反应,螯合金属离子使之钝化,防止脂肪氧化酶作用,从而具有抗衰老作用,是一种具有广泛开发前景的天然抗氧化剂。近年来逐渐成为研究热点,尤其是其抗氧化作用。因此,从植物中提取黄酮已经成为科学工作者普遍关注的热门课题。
三、对本课题将要解决的主要问题及解决问题的思路与方法、拟采用的研究方法(技术路线)或设计(实验)方案进行说明(论文要写出相应的写作提纲)
3.1 本课题将解决的主要问题
本课题以锁阳为原料,提取锁阳中所含总黄酮,确定其最佳提取工艺,并对锁阳中黄酮的抗氧化活性进行研究。
3.2实验思路与拟采用的方法
本实验将以总黄酮提取率为考察指标,在单因素试验基础上,正交试验优化锁阳中总黄酮的提取工艺,确定其最佳提取工艺,并对锁阳中黄酮提取物的抗进一步开发利用提供一定的实验依据。
[11]李振华,郭静霞,崔占虎等.锁阳的研究进展与资源保护[J].中国现代中药,2014,16(10):861-869.
[12]杨润亚,明永飞,王慧.无花果叶中总黄酮的提取及其抗氧化活性测定[J].食品科学,2012,31(16):78-82.
[13]Terashima M, Kakuno Y, Kitano N, et al. Antioxidant activity of flavonoids evaluated with myoglobin method[J].Plant cell reports, 2012, 31(2): 291-298.