HPLC法测定红茶和绿茶葵瓜子中的食用合成色素
固相萃取-高效液相色谱法对食品中9种合成着色剂的测定
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固相萃取-高效液相色谱法对食品中9种合成着色剂的测定作者:唐一秋来源:《现代食品·上》2019年第04期摘要:本文建立了同时检测食品中9种合成着色剂柠檬黄、新红、苋菜红、胭脂红、日落黄、诱惑红、亮蓝、酸性红及赤藓红的高效液相色谱测定方法,通过运用固相萃取技术对样品前处理方法及仪器进行改进。
该法中,9种人工合成色素线性相关系数均为0.9999,检出限为0.016~0.19mg·kg-1,加标回收率为85.1%~103%,相对标准偏差(RSD)为0.78%~1.29%。
该法准确度好,灵敏度高,简单方便,适合于同时检测食品中的9种合成着色剂。
关键词:茶饮料;合成着色剂;高效液相色谱法;固相萃取中图分类号:O657.72民以食为天,人们为了让食物色香味俱全,常常加入一些辅料,色素就是其中一类,色素可改善食品的外观,提高人们的食欲。
随着科技的发展,现如今多用合成着色剂代替天然色素。
合成着色剂以苯、甲苯、萘等化工产品为原料,经过一系列的有机反应制成,以成本低、色泽鲜艳、性质稳定等优势被广泛使用,但过量摄入存在严重的安全隐患[1]。
GB2760-2014《食品安全国家标准食品添加剂的使用标准》,对各类食品中着色剂的限量做了明确规定,要严格控制使用范围和最大使用量,因此对食品中的合成着色剂进行准确测定具有重要意义。
1材料与方法1.1仪器与试剂1.1.1主要仪器高效液相色谱仪:配二极管阵列检测器,日本岛津LC-2040;旋转蒸发器:瑞士步琦有限公司R-210;超声波清洗器:上海科导超声仪器有限公司SK8210HP。
1.1.2主要试剂及耗材柠檬黄、苋菜红、新红、胭脂红、日落黄、诱惑红、亮蓝及赤藓红,浓度均为1mg·mL-1,厂家:北京海岸鸿蒙标准物质技术有限责任公司;酸性红标准溶液(1mg·mL-1)厂家:Certificateofanalysis。
甲醇:色谱纯;甲酸、乙酸铵、柠檬酸、冰乙酸及氨水,均为分析纯;实验用样品:市售瓶装果汁。
食品中多种合成色素的反相高效液相色谱法测定
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作者单位:山东省济南市疾病预防控制中心卫生检验科,250013作者简介:王春荣(1972-),女,济南人,主管技师,硕士,主要从事食品理化检验及液相方法开发研究。
文章编号:100120580(2005)0320359202 中图分类号:O 65717+2 文献标识码:B【检验技术】食品中多种合成色素的反相高效液相色谱法测定王春荣,张济,刘岚铮 我国批准使用的食用合成色素有21种,其中最常见的有柠檬黄、苋菜红、胭脂红、日落黄、亮蓝等〔1〕。
本文用反相高效液相色谱法实现了上述5种色素的同时测定,结果令人满意。
现报告如下。
1 实验部分111 主要仪器 美国Waters Aliance 2695高效液相色谱系统(带有自动进样器、四元梯度泵);Waters 2996二极管阵列检测器(DAD )和Empower 色谱信息管理系统。
112 主要试剂 甲醇;0102mol/L 乙酸铵溶液;甲酸;乙醇;氨水;聚酰胺粉(50目);5种合成色素(柠檬黄、苋菜红、胭脂红、日落黄、亮蓝)标准溶液由国家标准物质中心提供。
以上试剂除甲醇为色谱纯外,均为优级纯,且均需经0145μm 滤膜过滤后方可使用。
113 色谱条件 色谱柱:Waters Symmetry RP 18;150mm ×319mm (5μm );:254nm ;柱压力:1110~1214mPa ;进样量:10μl ;柱温:室温;流动相:0102mol/L 乙酸铵溶液-甲醇(梯度洗脱);流量:017ml/min 。
114 样品制备 (1)样品选取:选取5个有代表性的实际样品,1#吸的果冻,2#青苹果汁,3#柠檬味碳酸饮料,4#香橙果酱,5#苹果味碳酸饮料;(2)样品处理:参照G B/T 5009135-1996。
2 结果与讨论211 梯度洗脱条件的选择 为了利于色谱峰的分离,选用0102mol/L 乙酸铵溶液与甲醇进行梯度洗脱。
最初5min内,如甲醇浓度变化过快,柠檬黄和苋菜红不能很好的分离,采用甲醇首先缓慢上升而后快速上升,但总时间仍保持不变的方法,使5种色素得到很好的分离且灵敏度均有一定程度的提高。
HPLC法测定红茶和绿茶葵瓜子中的食用合成色素
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m L / m i n , c o l u m n t e mp e r a t u r e o f 3 5℃ , d e t e c t i o n w a v e l e n g t h o f 2 5 4 n m, a n d i n j e c t i o n v o l u me o f 1 0 t x L . S e v e n k i n d s o f p i g m e n t s ( 1 e m o n y e l l o w, s u n s e t y e l l o w, a m a r a n t h r e d , r o u g e r e d , b r i g h t b l u e , f a n c y r e d , e r y t h r o s i n e )c a n b e s e p a r a t e d b y c h r o m a t 0 g r a p h i c r e s o l u t i o n .T h e l i n e a r r a n g e s o f t h e m w e r e a l l b e t w e e n
Q I N Q i n g — — f a n g
( G u a n g x i L i u z h o u I n s t i t u t e s f o r F o o d s a n d D r u g C o n t r o l , L i u z h o u G u a n g x i 5 0 4 0 0 6 )
子 壳的为 8 8 . 8 % ~9 7 . 3 %, 瓜 子 仁 的为 8 3 . 0 % ~9 2 . 6 % 。 该 方 法准 确 可 靠 , 可用 于瓜 子 中合 成 色
食品中的合成色素检测技术
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食品中的合成色素检测技术随着社会的进步和人们生活水平的提高,人们对食品安全和品质的要求也越来越高。
在食品加工过程中,合成色素广泛应用于食品中,以增强其色彩和吸引消费者。
然而,不合格的合成色素可能对人体健康造成潜在风险。
因此,食品中的合成色素检测技术变得尤为重要。
食品中合成色素的检测技术种类繁多,包括物理、化学以及光谱学等多种方法。
以下将介绍其中几种常用的技术。
1. 高效液相色谱法(HPLC)高效液相色谱法是目前最常见和最常用的食品中合成色素检测技术之一。
该方法通过采用液相色谱柱将样品中的目标化合物分离,再通过色谱柱内置的检测器对目标化合物进行定性和定量分析。
HPLC方法具有准确、敏感、高效、可靠等优点,适用于各类食品中合成色素的检测。
2. 气相色谱法(GC)气相色谱法是另一种常用的食品中合成色素检测技术。
该方法通过将样品中的目标化合物通过气态吸附至色谱柱中,再通过色谱柱内的检测器对目标化合物进行分析。
气相色谱法具有分析速度快、分离效果好、灵敏度高等特点,适用于一些对分辨率要求较高的食品中合成色素的检测。
3. 质谱法(MS)质谱法是一种高级的分析技术,也可以应用于食品中合成色素的检测。
该方法通过将目标化合物通过离子化装置转化为气态或液态离子,并通过质谱仪对离子进行干涉和分析。
质谱法具有极高的灵敏度和准确度,能够对食品中微量级别的合成色素进行检测和定量。
4. 聚焦超声波技术(FUS)聚焦超声波技术是近年来新兴的食品中合成色素检测技术。
该方法通过利用超声波的高频振动特性,使样品中的色素颗粒高速振动并发生损伤,进而释放出特定带电的颗粒和组分。
通过电场的引导和检测系统,可以对释放的物质进行分析和检测。
聚焦超声波技术具有无损害、高效、快速等优势,尤其适用于对食品样品进行非破坏性检测。
除了上述几种常用的检测技术外,还有一些新兴的技术也在不断被探索和应用于食品中合成色素的检测。
例如,近红外光谱、核磁共振成像等技术都在食品科学领域取得了一些突破性进展。
HPLC测定食品中人工合成色素
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0 . 0 5
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2 0 1 3 年第0 4 期 ( 总第3 0 1 期)
吉 林 农 业
J I LI N AGRI CULTURE
NO . 0 4. 2 01 3
( C u mu l a t i v e t y N O. 3 0 1 )
H P L C 测 定食 品中人工合成色素
顾 晓 莉
( 南京特殊教 育职 业技术 学院实验 中心, 江苏 南京 2 1 0 0 3 8 )
摘 要 : 目的 :建 立 食 品 中人 工 合 成 色素 测 定的 高 效液 相 色谱 法 。方 法 : 采 用C 1 8 色谱柱 ,以 乙腈 和 乙酸铵 为流 动 相 ,梯度 洗 脱 , 流 速 为1 . 0 m l /m i n ,检 测波 长为2 5 4 n m 和3 0 0 n m ,柱 温2 5 ℃ ,在此 色谱 条件 下进 行检 测 。 结果 :该 方 法各 组 分检 出限 为0 . O 7 ~0 . 1 5 m g / k g , 线性 范 围 为1 . 0 ~5 0 . O m g / L ,加标 回 收率 为9 5 . 6 % ~1 0 2 . 2 % 。结论 :该 方 法操作 简便 , 准确 ,快 速 ,提 高 了样品检 出灵敏 度 , 能够 同时检 测6 种合 成 色素 的含 量 。 关键 词 :食 品; 高效液 相 色谱法 ;合成 色素 中图 分类 号 :0 6 5 7 . 7 + 2 文献 标识码 :A 文章编 号 :1 6 7 4 - 0 4 3 2( 2 0 1 3 )- 0 4 — 0 0 7 8 一 l
茶叶中人工合成着色剂的检测
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茶叶中人工合成着色剂的检测SPE-HPLC法1、适用范围本方案适用于茶叶中柠檬黄、新红、苋菜红、靛蓝、喹啉黄、胭脂红、日落黄、诱惑红、酸性红、亮蓝和赤藓红11种合成着色剂的测定,定量限为3.0 mg/kg。
2、标准品配制(1) 单标储备液1000 ug/mL,称取适量色素单标,用水配制成1000 ug/mL的单标储备液。
(2) 混标中间液50 ug/mL,分别吸取0.5 mL单标储备液1000 ug/mL于10 mL容量瓶中,用水定容至刻度,配制成50 ug/mL的混标中间液。
3、提取取1.0 g样品于200 mL烧杯中,加入50 mL50%乙醇水溶液,均质2 min,将上清液转移至50 mL 离心管中,8000 rpm离心2 min,准确收集20 mL上清液于另一50 mL离心管中,加入4 mL甲酸,混匀,待净化。
4、净化ProElut PWA-2 300 mg/6 mL (Cat.#65820)(1)活化:依次用5 mL甲醇、5 mL10%甲酸水,流出液弃去;(2)上样:将上样液加入柱中,流出液弃去;(3)淋洗:依次加入5mL水、5 mL甲醇,流出液弃去;(4)洗脱:加入6 mL15%氨水甲醇,收集洗脱液;(5)重新溶解:将洗脱液在50 ℃下氮气吹至0.5 mL,用乙酸铵(20 mM,pH9.0)定容至1 mL,8000 rpm离心2 min,收集上清,上机分析。
5、分析条件色谱柱:Diamonsil C18(2) 250×4.6 mm,5 μm(Cat.#:99603)流速:1.0 mL/min进样量:10 μL 柱温:35 ℃检测器:PDA 400-800 nm流动相:A:乙腈B:0.02 mol/L 乙酸铵溶液梯度设置6、添加回收结果茶叶中人工合成着色剂的HPLC检测的添加回收结果。
102030Time (min)0.000.02V o l t s 12345检测波长415 nm102030Time (min)0.000.020.04V o l t s 1234567检测波长520 nm102030Time (min)0.000.020.040.060.08V o l t s 12检测波长610 nm11种合成着色剂标准溶液(12 ug/mL )色谱图1 柠檬黄2 喹啉黄13 喹啉黄24 喹啉黄35 喹啉黄41 靛蓝2 亮蓝1 新红2 苋菜红3 胭脂红4 日落黄5 诱惑红6 酸性红7 赤藓红102030Time (min)0.0000.002V o l t s 12345检测波长415 nm102030Time (min)0.0000.0020.004V o l t s 1234567检测波长520 nm102030Time (min)0.0000.0020.0040.0060.008V o l t s 12检测波长610 nm11种合成着色剂标准溶液(1.2 ug/mL )色谱图1 柠檬黄2 喹啉黄13 喹啉黄24 喹啉黄35 喹啉黄41 靛蓝2 亮蓝1 新红2 苋菜红3 胭脂红4 日落黄5 诱惑红6 酸性红7 赤藓红102030Time (min)0.000.02V o l t s 12345检测波长415 nm102030Time (min)0.000.020.04V o l t s 1234567检测波长520 nm102030Time (min)0.000.020.040.060.08V o l t s 12检测波长610 nm添加水平为30 mg/kg 的茶叶中11种合成着色剂检测液相色谱图1 柠檬黄2 喹啉黄13 喹啉黄24 喹啉黄35 喹啉黄41 靛蓝2 亮蓝1 新红2 苋菜红3 胭脂红4 日落黄5 诱惑红6 酸性红7 赤藓红102030Time (min)0.0000.002V o l t s 12345检测波长415 nm102030Time (min)0.0000.0020.004V o l t s 1234567检测波长520 nm102030Time (min)0.0000.0020.0040.0060.008V o l t s 12检测波长610 nm添加水平为3.0 mg/kg 的茶叶中11种合成着色剂检测液相色谱图1 柠檬黄2 喹啉黄13 喹啉黄24 喹啉黄35 喹啉黄41 靛蓝2 亮蓝1 新红2 苋菜红3 胭脂红4 日落黄5 诱惑红6 酸性红7 赤藓红102030Time (min)0.0000.002V o l t s检测波长415 nm102030Time (min)0.0000.0020.004V o l t s检测波长520 nm102030Time (min)0.0000.0020.0040.0060.008V o l t s检测波长610 nm茶叶中11种合成着色剂(空白)液相色谱图。
HPLC法测定果实中花色素苷含量

HPLC法测定果实中花色素苷含量上海农业2006,22(3):25—27ActaAgriculturaeShanghai文章编号:1000—3924(2006)03—25—03HPLC法测定果实中花色素苷含量骆军',张学英,李光平(上海市农业科学院林木果树研究所.上海201106;上海市农产品质量标准与检测技术研究所.上海201106)摘要:建立了果实中花色素苷的HPLC测定方法,采用ODS-C18柱(250nrn×4.6nrn),流动相A:1.6%甲酸水溶液;B:1.6%甲酸甲醇溶液,梯度洗脱为0~5min,85%A+15%B;5~10min,80%A+20%B;10~30min,72%A+28%B;30--36rain,40%A+60%B;36--48min,100%B.检测波长510lain,流速为1mL/n~.2种花色素苷在0.00104--0.0104rag/mE范围内线性良好,最低检出限为0.02mL,平均回收率为99.5%和99.25%,平均标准偏差为1.98%和2.50%,并测定了大石早生李和藤稔葡萄中花色素苷含量.关键词:HPLC;花色素苷;李;葡萄中图分类号:S662.3;S663.1文献标识码:A花色素苷是植物体内次生代谢物质,是苯丙氨酸代谢途径的产物,在细胞质和内质网膜内合成,再运输到液泡,呈现红色和紫色.水果中富含花色素苷,其种类和数量的多少使不同种或不同品种的果实表现出不同的颜色.花色素苷具有强抗氧化性,有抗癌,抗动脉硬化的作用,其对人体的保健作用越来越受到人们的重视.果实中花色素苷含量的多少不仅是影响果实外观色泽的重要因素,也是其保健价值高低的一个指标,因此,精确测定果实中花色素苷含量具有重要意义.1材料与方法1.1材料大石早生李(Prunussalicina)和藤稔葡萄(V.tiniferaL.×V.1abruscaL.)均采自上海市农业科学院果树试验园.试验仪器为Waters液相色谱,双波长检测器,色谱纯的矢车菊素一3一葡萄糖苷(Cyanin一3一glucoside),矢车菊素一3一芸香糖苷(Cyanin-3一rutinoside),2种标样均购自ApinChemicals公司.甲酸为分析纯,甲醇为色谱纯,水为0.22/_tm过滤的纯水.1.2方法从大石早生李和藤稔葡萄果实赤道部位取0.001800.2g果皮,液氮研磨,用30mL含1.6%甲酸的甲醇溶液在4℃下浸提过夜,超声波处理0?0013515min,用0.22m滤膜过滤后Waters液相色谱测定花色素苷含量.《.?o.o9.ODS-C18柱(250nm×4.6nm),流动相A:1.6%甲酸水溶液;B:1.6%甲酸甲醇溶液,.?0004梯度洗脱为0~5min,85%A+15%B;5~10min,80%A+20%B:10~30min,72%A+.-0o00o28%B;30~36min,40%A+60%B;48rain,100%B.检测波长510nlTl,流速为1mL/min.柱温为40℃;外标峰面积法定量ll】.标样色谱图见图1.16.5022.0027.5033.0038.50Time(min)图1标样色谱图Fig.1Chromatogramofstandardsample收稿日期:2005—10—19初稿;2006一O6—21二改稿作者简介:骆军(1971一).男.大学本科.副研究员.研究方向:果树裁培与育种Td:(021)52235473:E-mail:l@vah00.∞m.∞上海农业22卷2结果与分析2.1标准曲线从标准品溶液中精确量取0.25,0.5,1.0,2.5,5.0mL分别定容至25mL,得系列浓度标准品,分别进样10L,测定峰面积.以进样量为横坐标,峰面积为纵坐标,得回归方程分别为:y矢车菊泰3.葡萄糖苷=一7795.73+44794.45X,r=0.99996;Y矢车菊泰3.芸香糖苷=一9236.38+40698.3X,r=0.99985.2.2精密度试验将同一份样品,重复进样7次,测定峰面积积分,2个标样的标准偏差分别为1.7%和2.3%.2.3重复性试验精密称取李同一批样品5份,各0.2g,参照"1.2方法"处理与测定,结果2种花色素苷标准偏差为2.1%和2.0%.2.4稳定性试验同一供李试品溶液,分别于配置后0,2,4,6,8,10,12,24h测定,2种花色素苷峰面积的标准偏差为2.4%和2.7%,表明供试品溶液在24h内基本稳定.2.5回收率测定在李样品中加入标样后测得回收率(表1)在95%~104%之间.表1样品中2种花色素苷的测定结果,回收率和标准偏差Table1Determinationresultsofsamples,recoveryratioandstandarddeviation样品号SampleNo.矢车菊素一3一葡萄糖苷(Cyanln3-glucoside)矢车菊素-3.芸香糖苷(Cyadin3-rutinoside)含量外加花色素量实际检测量回收率标准偏差含量外加花色素量实际检测量回收率标准偏差ContentAddedMeasuredRecoveryStandardContentAddedMeasuredRecoveryStandard (pg)amount(vg)value(vg)ratio(%)deviation(%)(vg)amount(vg)value(gg)ratio(%)devia tion(%)366.56416.16377.59386.7752.0o52.0052.0052.00417.5298470.241o4429.9o101436.17953.1O357.212.70400.001.20364.590.9O373.9352.0o52.0052.0052.00407.13966.1O454.081O41.10417.631022.20423.33950.602.6浸提液pH值的确定从表2可以看出,3种浸提液以pH值为2.65时浸提的比较充分,t测验结果表明,pH 值为2.65的结果与另外2处理的结果在0.05概率水平上差异显着.表2浸提液pH值对浸提效果的影响Table2EffectofpHvalueonextraction3结论采用以上方法对大石早生李和藤稔葡萄果皮中花色素苷含量进行了测定(图2),结果表明:李果皮中含有矢车菊素.3.葡萄糖苷,矢车菊素.3.芸香糖苷2种花色素苷,葡萄果皮中含有少量矢车菊素.3一葡萄糖苷,没有检测到矢车菊素.3.芸香糖苷,各种花色素苷均能分出,这与文献报道结果一致b】.国内测定花色素含量大多采用比色法,如胡桂兵等[4】测定荔枝果皮中花色素含量,王少敏等测苹果果皮中花色素含量均采用分光光度计法.胡亚东等[6报道液相色谱法测定桃果皮花色素含量,用醋酸铵和甲醇做流动相,最低检出限是0.2,g/g,线性范围是0.0625~0.25mg/mL,本方法最低检出限是0.02~,g/mL,线性范围是0.00104--0.0104mg/mL,且重复性好.Francisco等…用酸性甲醇和水做流动相检测桃和李果实花色素含量的方法中,用了4个泵进行梯度洗脱,比较烦琐.实践证明,本方法能够准确定量分析果实中花色素苷含量,精度高,重复性好.3期骆军等:HPLC法测定果实中花色素苷含量0.00360.00270.00180.00090.000012.O0l8.O024.O030.O036.O0Time(min)0.0320.0240.0160.0080.00021.0028.0035.0042.0049.00Time(min)1:车菊素.3.葡萄糖苷(Cyanin.3.glueoside);2:矢车菊素.3-芸香糖苷(Cyanin-3-rutinoside)圈2李,葡萄样品色谱圈Fig.2Chromatogramofsamples参考文献[1]FranciscoA TB,MaIG,Paedarc,eta1.DAI).ESIMSanalysisofphenoliccompoundinnect arine,peachesandplums[J].J.Agile.Food.Chem.2001.49:4748—4760.[2]LauraJaakoh,KaiSHMtt,AnnaMa,eta1.Expressionofgenesinvolvedinanthoey~nbios ynthesisinrelationtOant}Ⅸ蜩nin,proanthoeyanidin,andflavonollevdsduringbilberryfruitdevelopment[J].PlantPhysiol,20 02,130(2):729—739.[3]JoseAFernande~lopez,LuisAlmela,JoseAMunoz,eta1.Dependencebetweencolouran dindividualanthoeyaninoontentindpe~nggrapes[J】.Foodresearchinternational.1998.31(9):667—672.[4]胡桂兵.陈大成,李平.等.荔枝果皮色素,酚类物质与酶活性的动态变化[J].果树科学,2000,17(1):35—40.[5]王少敏.高华君,刘嘉芬,等.套袋短枝红富士果实内含物及果皮色素的变化[J].果树科学,2000,17(1):76—77.[6]胡亚东.贾惠娟.孙崇德,等.桃果实中花青苷的提取,检测及应用[J].果树,2004.21(2):167—169. DeterminationofanthocyanincontentinfruitsbyHPLCLUOJun,ZHANGXue-ying,LIGuang-ping2('ForestryandPomologyResearchInstitute,SAAS,Shanghai201106,China; InstituteforShanghaiAgro-foodStandardsandTestingTechnology,Shanghai201106,Chin a)Abstract:Themethodofdetermininganthocyanincontentinfruitsby唧LCwasestablished.AODC18column(250nmx4.6nm)wasselected.ThemobilephaseAandBWaswaterandmethano lcontaining1.6%formicacidrespectively.ThegradientelutionWas0~5min,85%A+15%B,5~10min,80%A+20%B,10~30min,72%A+28%B,30~36min,40%A+60%B,and36~48min,100%B.ThedetectionwavelengthWas510nrn,andtheflowrate1mE/min.Thecalibrationcurvesforcyan in一3一glucosideandcyanin一3一rutinisidewere1inearwithintherangeof0.00104-0.0104mg/mL.Themeanrecoveryratios forthemwere99.5%and99.25%.andthemeanstandarddeviationsforthem1.98%and2.5%. ThedetectionlimitofthismethodWas0.02~,g/mL.ThemethodWasappliedtoDashizaoshengpl umandFujiminorigrape~mples.Keywords:HPLC;Anthocyanin;Plum;Grape。
HPLC法测定五种食用色素的含量

应用报告 文档编号:LC-AR-0202005-STD
HPLC 法测定五种食用色素的含量
摘要:食用色素主要指用人工化学合成方法所制得的有机化合物,按其化学结构可分为偶氮化合物和非偶氮化合物两大类。
前者如:柠檬黄、日落黄、胭脂红、酸性红、苋菜红等;后者如:赤藓红、亮蓝等。
近年来食品安全越来越引起人们的关注,大量的研究报告指出,几乎所有的合成色素都不能向人体提供营养物质,某些合成色素甚至会危害人体健康。
因此对于食品中添加色素的含量测定成为必须。
本文应用RIGOL L-3000高效液相色谱系统,测定了5种食用色素的含量,获得了理想的分析结果。
方法验证实验表明,系统完全符合规定的各项要求,数据结果准确,重现性好。
关键词:食用色素、HPLC 色谱条件及谱图:
仪器:RIGOL L-3000高效液相色谱仪
色谱柱:RIGOL Compass C18, 5μm, 4.6mm×250 mm 柱温:30℃ 流动相:A:0.02mol/L 乙酸铵溶液(pH=4)B:甲醇 梯度洗脱 检测波长:254nm 流速:1.0mL/min 进样体积:10μL
图1. 五种食用色素对照品的色谱图
结论:本文中测试结果为:以柠檬黄峰计,理论塔板数为59990;以苋菜红峰计,理论塔板数为37748;以胭脂红峰计,理论塔板数为219705;以日落黄峰计,理论塔板数为245055;以亮蓝峰计,理论塔板数为301130。
5种食用色素的检出限分别为0.229ng ;1.286 ng ;0.119 ng ;0.346 ng ;1.353ng 。
实验结果表明可以采用RIGOL L-3000高效液相系统进行五种食用色素的含量测定.。
超高效液相色谱法同时测定饮料中5种人工合成色素
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Abstract :Objective: To develop an ultra performance liquid chromatography (UPLC) method for the determination of five
synthetic pigments such as tatrazine, amaranth, carmine, sunset yellow and brilliant blue in beverage. Methods: Synthetic
收稿日期:2010-04-14 基金项目:北京市科学技术研究院创新团队项目(IG200801N/C2) 作者简介:张婉(1984 —),女,实习研究员,硕士,主要从事理化检验研究。E-mail:wanzhang@ * 通信作者:张经华(1958 —),男,研究员,博士,主要从事分析化学及天然产物分离提纯研究。E-mail:z_j_h2006@
将质量浓度 0.5g/L 的色素单标溶液,根据需要混 合,并用超纯水稀释成质量浓度分别为 3.0、5.0、10.0、 20.0、50.0、80.0mg/L 的混合标准溶液,经 0.22μm 滤 膜过滤后,进行 UPLC 测定。 1.4 样品的制备
称取饮料试样 15g,置于 100mL 烧杯中,对碳酸 饮料样品加热驱除二氧化碳。加 20g/100mL 柠檬酸调节 试样 pH 值到 6,加热至 60℃,加入 1g 聚酰胺粉,充 分搅匀,以 G3 垂融漏斗抽滤,用 60℃ pH4 的去离子 水洗涤 3 次(10mL/ 次),然后用甲醇 - 甲酸(6:4)溶液洗涤 3 次(10mL/ 次),再用水洗涤至中性,用无水乙醇 - 氨水 水(7:2:1)溶液解吸 3~5 次(10mL/ 次),收集解吸液,加 乙酸中和,蒸发至近干,加水溶解,定容至 1 0 m L 。 定容后的样品经 0.22μm 滤膜过滤后,进行 UPLC 测定。
高效液相色谱法测定红茶中的5_种人工合成色素
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高效液相色谱法测定红茶中的5种人工合成色素曹莹莹(池州市质量监督检验研究院,安徽池州 247000)摘 要:在《食品安全国家标准食品中合成着色剂的测定》(GB/T 5009.35—2016)的基础上,改进样品前处理提取方式,使用固相萃取柱净化提取液,洗脱液蒸干定容后经流动相梯度洗脱,二极管阵列检测器190~800 nm全波长扫描,采用高效液相色谱法测定红茶中的5种人工合成色素,利用日落黄的特征光谱图和最大吸收波长483 nm有效排除假阳性干扰峰。
结果表明,在2.0~80.0 µg·mL-1各标准物质的浓度与峰面积呈很好的线性关系,相关系数均大于0.999 0,检出限为0.02~0.09 mg·kg-1,样品空白加标回收率为89.0%~99.6%,相对标准偏差为0.8%~3.2%(n=6)。
该方法新颖简便,回收率高、检出限低、精密度高,具有一定的实用价值。
关键词:红茶;固相萃取;高效液相色谱;合成色素Determination of Synthetic Pigment in Black Tea by High Performance Liquid ChromatographyCAO Yingying(Chizhou Quality Supervision and Inspection Research Institute, Chizhou 247000, China) Abstract: On the basis of GB/T 5009.35—2016, the extraction method of sample pretreatment was improved. Solid phase extraction column was used to purify the extract, eluent was dried at constant volume and eluted by mobile phase gradient, diode array detector was used to scan the full wavelength of 190~800 nm, and five artificial pigments in black tea were determined by high performance liquid chromatography. The false positive interference peaks were effectively eliminated by using the characteristic spectrogram of sunset yellow and the maximum absorption wavelength of 483 nm. The results showed that the five synthetic pigments showed a good linear relationship with peak area in the range of 2.0~80.0 µg·mL-1, the correlation coefficients were all greater than 0.999 0, the detection limits were 0.02~0.09 mg·kg-1, the recoveries were 89.0%~99.6%, and the relative standard deviations were 0.8%~3.2%(n=6). The method is novel, simple, high recovery, low detection limit, high precision, and has certain practical value.Keywords: black tea; solid-phase extraction; high-performance liquid chromatography; synthetic pigments红茶是一种发酵茶,因茶汤和叶底呈现红色而得名。
反相高效液相色谱法检验饮料中人工合成色素

反相高效液相色谱法检验饮料中人工合成色素作者:张琦惠梁伟刘庚来源:《食品界》2018年第10期目的:对饮料中7种人工合成色素(柠檬黄、新红、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、赤藓红)进行高效液相色谱法(HPLC)分析。
方法用聚酰胺吸附法或液-液分配法提取,将样品制成水溶液,经Mono Tower C18(3μm×100mm)色谱柱分离后,以甲醇:乙醇铵溶液(0.02mol/L)进行梯度洗脱,流速为1.00ml/min,在检测波长为254nm条件下进行检测,根据保留时间定性和与峰面积比较进行定量。
结果:7种人工合成色素在1.00-20.00mg/L质量浓度范围内的线性关系较为良好(r>0.999),回收率为95%- 101%,相对标准差(RSD)0.1%- 0.4%。
结论:高效液相色谱法操作简便,结果准确可靠,重复性好,可广泛应用于饮料人工合成色素的检测。
食品着色剂分为两类:人工合成色素和天然色素,两者相比,因人工合成色素的着色效果更佳,且成本较低,而被广泛应用于食品生产中。
人工合成色素的主要原料包括有苯、甲苯、萘和苯胺等,经有机反应(磺化、硝化、卤化和偶氮化等)后制成色素,长期食用后会对人体健康造成严重的损害。
GB 2760- 2011《食品添加剂使用卫生标准》中对食品添加剂的使用原则、允许使用的品种、使用范围和最大使用量或残留量进行了规定。
目前,我国允许使用的人工合成色素包括有柠檬黄、新红、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、赤藓红和酸性红等。
目前,人工合成色素的检测方式主要有薄层色谱法、高效液相色谱法、超高效液相色谱法和毛细管电泳法等。
此次研究根据GB5009.35- 2016《食品中合成色剂的测定》中的实验原理,利用高效液相色谱法对饮料中的人工合成色素(柠檬黄、新红、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、赤藓红)进行检测,为相关检测单位提供一定的参考依据。
材料和方法仪器。
Agilent 1260 高效液相色谱仪,二极管阵列检测器。
HPLC法测定茶叶中的6种合成着色剂
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Abstract: A high performance liquid chromatography (HPLC) method was developed for the simultaneous analysis of lemon yellow, new red, amaranth, carmine, sunset yellow and brilliant blue in tea. The analytes were extracted from the samples by ammonia-methanol solution, then purified and enriched with a weak anion exchange SPE column. The 6 kinds of synthetic colorants were separated on a C18 column by gradient elution with 20 mmol/L ammonium acetate and methanol as the mobile phases. The analytes were quantified by external standard method. The results indicated that the calibration curve showed a good linearity of 6 kinds of synthetic colorants in the range of 1.00~100.0 |Jig/mL (R2>0.999) . The recoveries of 6 kinds of synthetic colorants were in the range of 71.3%~85.3% with RSD (n=6) between 0.67% and 4.02%. The detection limits were 0.02~0.08 mg/kg. Key words: high performance liquid chromatography ; tea ; synthetic colorants ; lemon yellow ; new red ; amaranth ; carmine ; sunset yellow ; brilliant blue
高效液相色谱法测定饮料中8种人工合成着色剂的含量

高效液相色谱法测定饮料中8种人工合成着色剂的含量作者:***来源:《食品安全导刊·下》2024年第03期摘要:建立了固相萃取法结合高效液相色谱法测定饮料中8种着色剂含量的方法。
结果表明,8种着色剂在0.5~50.0 μg·mL-1浓度范围内线性关系良好,相关系数均大于0.999;精密度实验RSD在0.7%~2.2%;平均加标回收率为91.67%~93.79%,RSD≤3.8%。
对20批不同类型饮料中8种人工合成着色剂进行测定,结果显示饮料中色素均未超出规定限值。
本方法简便、高效,可用于同时测定饮料中8种人工合成着色剂。
关键词:饮料;高效液相色谱法;人工合成着色剂Determination of 8 Synthetic Colorants in Beverages by High Performance Liquid ChromatographyAbstract: A method for the determination of eight colorants in beverages by solid-phase extraction coupled with high performance liquid chromatography (HPLC) was established. The results showed that the linearity of the eight colorants was good in the concentration range of 0.5~50.0 μg·mL-1 with the correlation coefficients greater than 0.999; the RSD of the precision experiments were in the range of 0.7%~2.2%; and the average spiked recoveries were in the range of 91.67%~93.79% with the RSD≤3.8%. Eight artificial colorants in 20 batches of different types of beverages were measured, and the results showed that none of the pigments in the beverages exceeded the prescribed limit. This method is simple and efficient, and can be used for the simultaneous determination of 8 synthetic colorants in beverages.Keywords: beverage; high performance liquid chromatography; synthetic colorant飲料作为常见饮品,深受市场消费者欢迎,但外观多彩的饮料大多添加了人工合成着色剂。
高效液相色谱法测定配制酒中6种人工合成色素
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高效液相色谱法测定配制酒中6种人工合成色素吴晓红;蒋彩云;胡文彦;马美华【摘要】建立了高效液相色谱法测定配制酒中6种人工合成色素(柠檬黄、苋菜红、胭脂红、日落黄、诱惑红、亮蓝)的方法.采用C18色谱柱,以甲醇与0.02 mol/L乙酸铵溶液为流动相进行梯度洗脱,流速为1 mL/min,紫外检测器检测波长为254nm和600 nm,柱温为25℃,在此条件下进行检测.结果显示,该方法测定检出限为2.5 μg/mL,线性范围为0.010~0.120 mg/mL,加标回收率为92.0%~104.4%,相对标准偏差在1.4%~4.5%之间.该方法操作简便、准确、快速,能够同时检测6种合成色素的含量.【期刊名称】《酿酒科技》【年(卷),期】2014(000)005【总页数】3页(P102-104)【关键词】合成色素;配制酒;高效液相色谱法【作者】吴晓红;蒋彩云;胡文彦;马美华【作者单位】江苏经贸职业技术学院,江苏南京210007;江苏经贸职业技术学院,江苏南京210007;南京市产品质量监督检验院,江苏南京210028;江苏经贸职业技术学院,江苏南京210007【正文语种】中文【中图分类】TS262.8;O657.72;TS261.7;TS261.4配制酒在调制过程中允许加入人工合成色素进行调色,但合成色素大多是以煤焦油作为原始原料,在合成过程中可能会受铅、砷等有害物质污染。
故为了消费者的安全,配制酒中合成色素的含量必须加以限制。
国家标准规定了配制酒中合成色素的使用限量[1]。
合成色素测定方法主要有高效液相色谱法[2]和分光光度法[3-5],因混合色素吸收有重叠、干扰物质影响等因素,使分光光度法的应用受到限制。
高效液相色谱法方法灵敏、重现性好、准确度高,是国家标准方法[6]的第一法。
本工作采用简单的样品处理方法,以600 nm作为亮蓝的检测波长,梯度洗脱流动相,用高效液相色谱法同时测定了配制酒中的6种人工合成色素含量。
食品中常用合成色素的HPLC测定方法探讨
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食品中常用合成色素的HPLC测定方法探讨云创通官网摘要:目的:探讨食品中常用四种合成色素的高效液相色谱检测条件;方法:选择合适的高效液相最佳检测条件,样品经聚酰胺娄吸附,用甲醇-甲酸溶液洗涤后,再用氨-乙醇-水溶液解吸附,加乙酸中和后,水溶液蒸发近干,加水定容过滤,在C18(4.6mm*250mm,5μm)色谱柱上,以甲醇-乙酸铵溶液为流动相,用梯度洗脱条件,柱温35℃,紫外多波长扫描检测,外标法定量。
结果:操作相对简单,快速,不需要二极管阵列检测器的可变波长即可实现四种常用色素的分离检测,基线漂移较小,实验结果报告如下:色素作为食品添加剂,一般分类为食用天然色素和人工合成色素两类。
前一种可以安全使用,后一类本身并无任何营养价值,是用人工化学合成方法制得的有机色素,主要是以煤焦油中分离出来的苯胺染料为原料制成的,有些还具有一定的毒性,但由于其成本低廉,色泽鲜艳,着色能力强,配色方便在目前的食品市场被广大食品生产企业广泛使用。
目前我国批准使用的食用人工合成色素22种,其中最常见的有柠檬黄、苋菜红、胭脂红、日落黄、亮蓝等,近些年来,在市场经济的冲击下,越来越多的食品生产厂商在利益驱使下,超范围、超限量使用色素现象时有发生、屡禁不止。
为了更好的建立一种快速的、有效的合成色素检测方法,参照国家标准测定方法GB/T5009.35-2003《食品中合成色素的测定方法》中的第一法高效液相色谱法,灵敏度高、分离度好等优点,本文就该法的检测条件加以探讨。
1. 材料与方法1.1仪器与试剂东西电子LC5500高效液相色谱仪(紫外检测器、20μl 定量环、手动进样器),LC5500液相色谱工作站:色谱纯甲醇(天津四友,一级色谱纯);乙酸铵(MREDA TECHNOLOGYINC)HPLC GRADE;实验用水经(艾科浦AF-Z-2001-U)超纯水机处理;四种色素标准溶液柠檬黄、苋菜红、胭脂红、日落黄分别是中国计量科学研究院提供,证书编号分别为GBW9E)10001a-4a,浓度为1.00mg/ml的标准溶液。
HPLC法测定茶中茶氨酸、茶碱与咖啡因的含量
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1. 3 ,9 O 。结 论 O 4 1 .4
set e . C f ieso dg o n a e t nhpi tecne t t nrn eo . 7 -. 6 pci l ③ af n h we odl er l i si n h o cnr i a g f 0 765 180mg・ (一0 9 96 te vy e i r ao ao 0 mL r .9 ); h R D o rc i f o to a t l w s1 O ( S f e i o o n r l ri e a . 3 一6 ;h v r g aeo eo ey wa 9 4 ,n S a . 1 ( 一 5 , p sn c c ) t ea e a e rt f c v r s9 . 3 a d R D w s0 9 n r ) r s e t ey ④ T ec n e t f h a ie t e p yl ea d c f iew r 0 4 一 2 7 , . 3 一 2 7 a d 8 7 一 4 1 , e p ci l. v h o tn e nn ,h o h ln n af n e e . 6 1 . 0 0 5 3 . 8 o t i e n .8 2.2
该 方 法 简便 易行 , 用 于茶 叶 的质 量 控 制 。 可
关键词 : 叶 ; 氨酸 ; 茶 茶 茶碱 ; 啡 因 ; 咖 高效 液 相 色谱 法
d i1 . 9 9 jis . 0 42 0 . 0 2 0 . 0 o :0 3 6 /.sn 1 0 —4 7 2 1 . 3 0 5
绿茶瓜子、红茶瓜子都是色素染的?
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绿茶瓜子、红茶瓜子都是色素染的?
近日一条关于“我国大部分炒货制作过程中都违规添加明矾和
工业滑石粉”的微博被大量转载。
微博缘起上海媒体曝光,安徽、江苏等瓜子生产地有炒货老板自爆绿茶瓜子、红茶瓜子都是色素染的,为了使瓜子光滑、色泽明亮,甚至违规添加工业滑石粉和明矾。
质监部门表示,滑石粉在炒货的常规检查项目中,很少检出,而明矾不在检查之列。
有人将一种五香味散装葵花子放进透明的口杯,杯中的水随即显出一些杂质;30秒内,瓜子及香料浮到水面,杯底已经铺满了黑色的物质;1分钟后,杯内的水已浑浊。
对此,暨南大学食品研究中心主任傅亮解释:“如果只是浸水后出现浑浊,那可能是在炒制过程中受高温而自然炒焦的瓜子外壳及八角等香料,而不能说明含有不健康的人工添加剂,或者经过染色。
”
他介绍,市场上的瓜子制品中,葵花子染色的比较少,西瓜子和南瓜子染得比较多,多数是为了好看,尤其节日热卖的瓜子制品常被染成红色、绿色。
这些染色瓜子利用的色素基本上是人工合成的偶氮类色素,食用后会给身体带来消化、代谢的负担。
反相高效液相色谱法检验饮料中人工合成色素
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分析 检测反相高效液相色谱法检验饮料中人工合成色素 张琦惠 梁伟 刘庚 玉溪市食品药品检验所目的:对饮料中7种人工合成色素(柠檬黄、新红、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、赤藓红)进行高效液相色谱法(HPLC)分析。
方法 用聚酰胺吸附法或液-液分配法提取,将样品制成水溶液,经Mono Tower C18(3μm×100mm)色谱柱分离后,以甲醇:乙醇铵溶液(0.02mol/L)进行梯度洗脱,流速为1.00ml/min,在检测波长为254nm条件下进行检测,根据保留时间定性和与峰面积比较进行定量。
结果:7种人工合成色素在1.00-20.00mg/L质量浓度范围内的线性关系较为良好(r>0.999),回收率为95%-101%,相对标准差(RSD)0.1%-0.4%。
结论:高效液相色谱法操作简便,结果准确可靠,重复性好,可广泛应用于饮料人工合成色素的检测。
食品着色剂分为两类:人工合成色素和天然色素,两者相比,因人工合成色素的着色效果更佳,且成本较低,而被广泛应用于食品生产中。
人工合成色素的主要原料包括有苯、甲苯、萘和苯胺等,经有机反应(磺化、硝化、卤化和偶氮化等)后制成色素,长期食用后会对人体健康造成严重的损害。
GB 2760-2011《食品添加剂使用卫生标准》中对食品添加剂的使用原则、允许使用的品种、使用范围和最大使用量或残留量进行了规定。
目前,我国允许使用的人工合成色素包括有柠檬黄、新红、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、赤藓红和酸性红等。
目前,人工合成色素的检测方式主要有薄层色谱法、高效液相色谱法、超高效液相色谱法和毛细管电泳法等。
此次研究根据GB5009.35-2016《食品中合成色剂的测定》中的实验原理,利用高效液相色谱法对饮料中的人工合成色素(柠檬黄、新红、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、赤藓红)进行检测,为相关检测单位提供一定的参考依据。
材料和方法仪器。
Agilent 1260 高效液相色谱仪,二极管阵列检测器。
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粮油食品科技 第 22 卷 2014 年 第 2 期
质量安全
( 2) 空白溶液的制备 将制得的红茶瓜子,绿茶瓜 子脱壳后分别粉碎,按 1. 4. 2 操作,即得各空白溶液。 1. 5 测定 1. 5. 1 色谱条件
色谱柱: Agilent C18 ( 5 μm,4. 6 mm × 250 mm) ;
1. 3. 2 混合标准溶液 诱惑 红 标 准 溶 液: 精 密 称 取 诱 惑 红 标 准 品
5. 812 mg,置 10 mL 容量瓶中,加 pH 6 的水到刻度, 摇匀,即得 0. 4650 mg / mL 的诱惑红标准溶液。
赤藓 红 标 准 溶 液: 精 密 称 取 赤 藓 红 标 准 品 5. 473 mg,置 10 mL 容量瓶中,加 pH 6 的水到刻度, 摇匀,即得 0. 5019 mg / mL 的赤藓红标准溶液。
流动相: 甲醇 - 0. 02 mol / L 乙酸铵溶液( pH4. 0) 梯 度洗脱( 0 min →10 min →17 min →23 min →23. 01 min→30 min,甲醇 15% →35% →98% →98% →15% →15% ) ; 检测波长: 254 nm; 流速: 1. 0 mL / min,柱 温 35 ℃ ; 进样体积: 10μL。 1. 5. 2 色谱分析
批号 12001 08001 09001 12001 08002 70905 90825
表 1 色素标准品
含量 0. 5 mg / mL 0. 5 mg / mL 0. 5 mg / mL 0. 5 mg / mL 0. 5mg / mL
80. 0% 91. 7%
来源 中国计量科学研究院 中国计量科学研究院 中国计量科学研究院 中国计量科学研究院 中国计量科学研究院 Dr. Ehrenstorfer GmbH Dr. Ehrenstorfer GmbH
1. 4 样品 1. 4. 1 菜市 1 红茶瓜子( A 样) 、菜市 2 绿茶瓜子( B 样) 、菜市 3 红茶瓜子( C 样) 、菜市 4 红茶瓜子( D 样) 、菜市 5 绿茶瓜子( E 样) 、普通葵瓜子: 均为市售。 1. 4. 2 样品溶液的制备
( 1) 试样处理。瓜子壳: 分别称取剥离后的瓜 子壳和经粉碎混匀后的样品约 5 g,放入 100 mL 小 烧杯中,用热水 20 mL 反复洗涤色素,直到试样无色 素为止,合并色素漂洗液为壳试样溶液。瓜子仁: 分 别称取剥 离 后 的 瓜 子 仁,经 粉 碎 混 匀 后 的 样 品 约 5 g,放入 100 mL 小烧杯中,用热水反复洗涤色素, 高速离心,取上清液,残渣继续用热水反复洗涤和高 速离心,到试样无色素为止,合并上清液,用 20 mL 石油醚萃取 2 次,弃去石油醚层,水层为仁试样溶 液。
甲醇( 色谱纯) : 购自 J&K SCIENTIFIC LTD; 其 它试剂均为分析纯; 实验用水为超纯水( 电阻率值 为 18. 2 MΩ. cm) 。 1. 3 色素标品溶液 1. 3. 1 色素标准品
本试验使用的色素标准品的来源和含量见表 1。
名称 柠檬黄 日落黄 苋菜红 胭脂红
亮蓝 诱惑红 赤藓红
收稿日期: 2013 - 09 - 24 作者简介: 秦庆芳,1971 年出生,女,副主任药师]、 薄层色谱法[10]、紫外—可见分光光度法[11]、液—质 联用法[12]等,提取方法有聚酰胺吸附法[6 - 9]、用水 直接 溶 解 法[3 - 4]、QuEChERS 法[5] 等。 本 文 参 考 GB / T 5009. 35—2003《食 品 中 合 成 着 色 剂 的 测 定》[13],用聚酰胺吸附法提取合成色素,建立红茶瓜 子和绿茶瓜子中非法添加柠檬黄、日落黄、苋菜红、 胭脂红、亮蓝、诱惑红、赤藓红 7 种成分的高效液相 色谱分析方法。
混合标准溶液: 临用时精密量取柠檬黄、苋菜 红、胭脂红、日落黄、亮蓝、诱惑红、赤藓红标准溶液 各 1. 00 mL,置于同一 10 mL 容量瓶中,加水至刻 度,摇匀。制成含柠檬黄、日落黄、苋菜红、胭脂红、 亮蓝各 50. 00 μg / mL,诱惑红 46. 50 μg / mL 和赤藓 红 50. 19 μg / mL 的混合标准溶液。 1. 3. 3 系列混合标准溶液
含赤藓红的试样提取。将制备好的试样溶液放 入分液漏斗中,加 2 mL 盐酸、20 mL( 5% ) 三正辛胺 正丁醇溶液,振摇提取,分取有机相,重复提取至有 机相无色,合并有机相,用饱和硫酸钠溶液洗 2 次, 每次 10 mL,分取有机相,倒入蒸发皿中,水浴加热 浓缩至 10 mL,转移至分液漏斗中,加 60 mL 正己 烷,混匀,加浓氨水提取 2 ~ 3 次,每次 5 mL,合并氨 水溶液层( 含水溶性酸性色素) ,用正己烷洗 2 次, 氨水层加乙酸调成中性,水浴加热蒸发至近干,加水 溶解,定容至 5 mL,经滤膜 0. 45 μm 过滤,即得。 1. 4. 3 空白溶液的制备
( 2) 色素提取。取试样溶液加入柠檬酸溶液,将 pH 值调到 6,加热至 60 ℃ ,将适量的聚酰胺粉加少 量水调成粥状,倒入试样溶液中,搅拌片刻,使色素 完全吸附于聚酰胺粉中,以 G3 垂熔漏斗抽滤,用 60 ℃ 、pH = 4 的水( 水加柠檬酸溶液调 pH 值到 4) 洗涤 5 次,然后用甲醇 - 甲酸混合溶液( 6 + 4) 洗涤 5 次, 再用水洗至中性,用适量的乙醇∶ 浓氨∶ 水混合溶液 ( 7 + 2 + 1 ) 解吸 5 次,收集解吸液,加乙酸中和至 pH 值约为 7,蒸发至近干,加水溶解,定容至 5 mL ( 测定时超出线性范围的样品,应加水进行二步稀 释) ,经 0. 45 μm 滤膜过滤,即得色素提取液。
( 1) 空白红茶瓜子、绿茶瓜子的制备 分别准确 称取未染色的红茶叶、绿茶叶各 12 g、甘草各 1. 50 g,切成体 积、厚 薄 大 致 均 匀 的 薄 片,用 粉 碎 机 粉 碎 后,分别倒入 200 mL 沸水中,浸泡 30 min,用纱布过 滤,除去茶叶渣和甘草渣,得到茶叶甘草浸提液,加 入 1. 5 g 食盐,制得浸泡液。将红茶、绿茶浸泡液煮 沸,分别倒入生瓜子 100 g,浸泡 5 h。再将浸泡液滤 除,晾干,炒至香脆即制得红茶瓜子,绿茶瓜子空白 对照样品。
Determination of edible synthetic pigments in black tea and green tea sunflower seeds by HPLC
QIN Qing - fang ( Guangxi Liuzhou Institutes for Foods and Drug Control,Liuzhou Guangxi 504006)
粮油食品科技 第 22 卷 2014 年 第 2 期
质量安全
HPLC 法测定红茶和绿茶葵瓜子 中的食用合成色素
秦庆芳
( 广西柳州食品药品检验所,广西 柳州 504006)
摘 要: 建立 HPLC 法测定红茶、绿茶葵瓜子中食用合成色素的方法。样品溶液经聚酰胺吸附,用 氨∶乙醇∶水溶液解吸附,中和后用水浴浓缩,定量,过滤。采用 Agilent C18 柱,以 0. 02 mol / L 醋酸铵 溶液 - 甲醇为流动相,梯度洗脱,流速为 1. 0 mL / min,柱温 35 ℃ ,检测波长 254 nm。进样体积为 10 μL。在选定的色谱条件下,柠檬黄、日落黄、苋菜红、胭脂红、亮蓝、诱惑红、赤藓红 7 种色素均可 得到良好分离; 7 种色素在 10. 0 ~ 50. 0 μg / mL 范围内均呈较好的线性关系; 平均回收率( n = 9) 瓜 子壳的为 88. 8% ~ 97. 3% ,瓜子仁的为 83. 0% ~ 92. 6% 。该方法准确可靠,可用于瓜子中合成色 素测定。 关键词: 高效液相色谱法; 人工合成色素; 红茶葵瓜子; 绿茶葵瓜子 中图分类号: R 115. 5 文献标识码: A 文章编号: 1007 - 7561( 2014) 02 - 0067 - 04
Abstract: The synthetic pigments in black tea and green tea sunflower seeds were determined by HPLC. Sample solution was absorbed by polyamide,then desorbed by ammonia - ethanol - water,after neutralization concentrated by water bath,quantified and filtered. The gradient elution was performed with an Agilent C18 column,0. 02 mol / L ammonium acetate - methanol as mobile phase,at the flow rate of 1. 0 mL / min,column temperature of 35 ℃ ,detection wavelength of 254 nm,and injection volume of 10 μL. Seven kinds of pigments ( lemon yellow,sunset yellow,amaranth red,rouge red,bright blue,fancy red, erythrosine) can be separated by chromatographic resolution. The linear ranges of them were all between 10. 0 μg / mL and 50. 0 μg / mL,and the average recovery rate ( n = 9) of sunflower seeds shell 88. 8% ~ 97. 3% ,kernel of sunflower seeds 83. 0% ~ 92. 6% . The method is accurate and credibility,which can be applied to detect synthetic pigment in sunflower seeds. Key words: HPLC; synthetic pigment; black tea sunflower seed; green tea sunflower seed