血片制作(改)
血片制作与染色

如何确定疟原虫血片为阴性
● 检查全部厚血膜未查见疟原虫 ● 最少检查100个厚血膜油镜视野未查见
疟原虫(临床病人)
疟原虫与其它物体的鉴别
染色过程中所落在血膜上的灰尘、真菌、孢 子、水中原虫等误诊为疟原虫,应注意鉴别。 ● 灰尘和染色液的色素沉着:易被误认为是 疟色素,可依据其颗粒形状、大小、色泽及有 无核与胞浆的结构来鉴别。是否在一平面上, 若不在同一平面者一般不是疟原虫。
疟原虫镜检技术
显微镜检查疟原虫技术
1.血样采集 2.血片的染色与制作 3.染色时注意事项 显微镜的使用与保护
1.使用时 2.使用后
采集血样
采集血样涂片时,首先要核对患者的 姓名和年龄
采集血样
采血部位和取血方法:
耳垂或无名指,通常 在耳垂取血,先用75%酒 精棉球消毒取血部位, 待酒精干后,用左手拇 指和食指紧捏耳垂上方 或无名指指尖,右手持 消毒针迅速刺入皮肤, 不宜过深或过浅。
转换器 物镜
通光孔 载物台
光源 镜座
调节器
认识显微镜
目镜 镜筒
镜臂 弹簧夹尺
推进尺 粗细螺旋
开关
显微镜的使用
(1)使用时 : 打开电源,调节亮度,聚光 器上升至最高位置,油镜与聚光器对接,放 入待检血片,镜台上升直至油镜与血膜接触, 然后镜台徐徐下降,出现视野用微调调节。
(2) 使用后: 调节亮度至最小,关闭电源, 镜台下调,擦拭干净油镜,物镜转离聚光器, 聚光器下调,遮盖防尘罩。
薄血膜: 取洁净的载 玻片2张,1张平置在桌 上,以左手拇指,食指
夹持载玻片两端,用另
一张边缘平滑的载玻片
做推片,用推片一端边
缘的中点从取血部分取
制作血涂片实验报告
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制作血涂片实验报告制作血涂片实验报告引言:血涂片是一种常见的实验技术,用于观察和分析血液中的细胞形态和数量。
本次实验旨在通过制作血涂片,了解血液中各种细胞的形态特征,并掌握制作血涂片的步骤和技巧。
材料与方法:1. 血液样本:从健康人士的指尖或静脉采集新鲜全血。
2. 血液采集器:使用无菌注射器或采血针。
3. 血涂片:玻璃片或载玻片。
4. 血涂片制备工具:无菌棉签、无菌盖玻片、无菌滴管等。
5. 染色剂:酒精、甲苯、吉姆萨染色液等。
步骤:1. 消毒:将玻璃片、棉签、滴管等工具用酒精或甲苯擦拭消毒,保证实验无菌。
2. 采集血液:用无菌注射器或采血针采集适量血液样本,避免空气污染。
3. 制作血涂片:将一滴血液滴在玻璃片上,用无菌棉签将血液涂抹成薄膜状。
4. 干燥:将制作好的血涂片放置在通风处晾干,避免外界污染。
5. 固定:将干燥的血涂片浸入酒精或甲苯中,使细胞固定在玻璃片上。
6. 染色:将固定的血涂片浸入吉姆萨染色液中,使细胞染色。
7. 清洗:用蒸馏水或生理盐水轻轻冲洗血涂片,去除多余的染色剂。
8. 干燥:将清洗后的血涂片放置在通风处晾干,避免水分残留。
结果与讨论:通过制作血涂片并观察,我们可以看到血液中包含了许多不同类型的细胞。
其中,红细胞是最常见的细胞类型,呈圆形或凹陷状,无核,主要负责携带氧气和二氧化碳。
白细胞则有多种类型,包括中性粒细胞、淋巴细胞、单核细胞、嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞等。
它们在免疫和炎症反应中起着重要作用。
血涂片的制备过程中,固定和染色是关键步骤。
固定可以使细胞保持原有形态,并防止细胞脱落。
染色则能够突出细胞的形态特征,使其更易于观察和分析。
吉姆萨染色液是常用的染色剂,可以染出细胞核和胞质的颜色差异,便于细胞分类和计数。
制作血涂片的技巧也需要注意。
首先,血涂片的制备过程应尽量快速,避免血液样本在空气中暴露时间过长,以免细胞形态发生变化。
其次,血涂片的涂抹要均匀且薄,以确保细胞分布均匀,不会重叠或过于稀疏。
血片制作 PPT课件
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2019/9/7
3
血片制作染色与疟原虫计数
血膜的制作 用于检查疟原虫的血涂片有两种:一种是将血液涂
呈薄膜状,称薄血膜;一种是血辅在玻片上面。
发热病人血片 2019/9/7
标本片 4
52006-12-13
取血时机 现症病人一般可随时取血,疟疾普 查时可不考虑取血时机。但在诊断或需要某期 疟原虫作标本时,则应掌握适宜的取血时机。
2019/9/7
13
血片的染色 (一)染液的种类及染色原理
染液种类:目前所用的血片染色液,虽然名称 很多,但都是从罗门诺夫斯基氏创造的染液 变化过来的。总的可分为水溶液和酒精溶液 两大类,前者包括罗氏、西氏(Simon)、 J.S.B氏染液等,后者包括利氏 (Leishman)、瑞氏和吉氏染液等。这些染 液中的主要染剂都包含美兰、伊红和由美兰 氧化所成的天青,所以称多色性染剂。
涂制厚、薄血膜的位置 通常是将厚、薄血膜 涂在一张载片上。方法是将载片分为6等分, 第1、2格备贴标签及编号用;厚血膜涂在第3 格中央,薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部。 作为标本的血片每张玻片涂厚、薄血膜各1个; 门诊和发热病人血片每片1人,涂
涂2个厚血膜1个薄血膜,以
标标签签
防血膜脱落而影响检查;
2019/9/7
2
血片制作与染色镜检
2 采血制片 自耳垂或手指采血,厚血膜的血量约为火柴 头大小(4-5mm3),滴在载玻片的1/3处;薄血膜的 血量为其1/4,滴于玻片中央,立即用边缘整齐光滑的推 片与玻片之间成30-40度角平直向前推成薄血膜。再用推 片的一角将厚血滴涂制成直径约0.8-1cm的圆形厚血膜, 厚度以能清晰映出报刊上的铅字为宜。薄片的厚度为镜下 只见一层均匀紧密排列的红细胞为宜。血片涂制好后用 HB铅笔在干燥的薄血膜底部写上受检者的姓名或编号。 对疑为恶性疟者,可用皮肤划痕法刮取渗出的体液作涂片 染色,此法检出率较高,且可查见末梢血液中不常看到的 恶性疟原虫的滋养体和裂殖体。
血液涂片的制作与染色
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血液涂片的制作与染色一、血液涂片的制作1.材料准备制作血涂片所需的材料包括干燥、清洁的玻璃片、净化的草酸铵溶液、无副作用的橡胶手套和标本采集器具等。
确保上述材料都经过消毒处理,以避免交叉感染。
2.血液采集选择适当的采血部位,一般为患者的指尖或外周静脉。
在采血前,应向患者解释操作流程,让其放松,并确保患者的肢体血管处于稳定状态以提高采血的成功率。
3.制片过程(1)在取血前,先常规清洁手指或采血部位,并佩戴无菌橡胶手套。
(2)使用标本采集器具(例如针头或注射器),按规定的采血量采集患者的血液样本。
(3)快速地将采集到的血液滴在干净、干燥的玻璃片中。
(4)将一个玻璃片顶在另一个玻璃片上,迅速向两个玻璃片之间倾斜,使血液被充分涂抹在玻璃片上。
(5)用均匀的速度将两个玻璃片拉开,使得血涂片上形成一条逐渐变细、近乎透明的血液薄片。
(6)待血液薄片干燥后,即可进行染色。
二、血液涂片的染色1. Wright染色法Wright染色法是最常用的血液染色方法之一,能够清晰地显示细胞的结构。
染色步骤如下:(1)用染色液将血液涂片浸泡3-5分钟,以充分染色。
(2)用蒸馏水冲洗血涂片,使余胞器染料被去除。
(3)将血涂片放在水平位置晾干。
(4)待片子干燥后,用显微镜观察。
2.尼氏染色法尼氏染色法适用于染色器材简单的实验室,在显微镜下能够清晰地显示红细胞、白细胞和血小板等细胞的形态和特征。
染色步骤如下:(1)将血涂片浸入尼氏液中,时间约为30分钟。
(2)用蒸馏水将血涂片冲洗干净,直至水洗液不再出现颜色为止。
(3)用吸水纸轻轻吸干血涂片,然后放在阴凉处晾干。
(4)用显微镜观察已经干燥的血涂片。
总结起来,血液涂片的制作与染色是一项简单而重要的临床检验技术。
通过制作血涂片,可以快速、直观地观察和分析血液成分,帮助医生进行诊断和治疗决策。
通过染色,可以更好地展示细胞的结构和特征,提高结果的准确性和可靠性。
需要注意的是,在制作血涂片的过程中要注意卫生和消毒,以减少交叉感染的风险。
01血片制作与染色
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二、血片制作
薄血膜血量
取洁净的载玻片 2张,1张 以左手拇指,食指夹持载
玻片两端,用另一张边缘
平滑的载玻片做推片,用 推片一端边缘的中点取血 约1~1.5ul的血量(小米粒 大小),使血滴与平置的 载玻片接触,并形成 25~30 度夹角,待血液向
两侧扩展宽约2cm时,均
匀而迅速地轻轻向左推出 (约2.5cm长)。
间越久,染色力越强。通常在染液配制1~2周后才使用,盛装染液的瓶子应加
塞盖密,以防吸潮而影响染液质量。 3.染液稀释后使用时间 吉氏染液的主要成份是美蓝、伊红和由美蓝氧化产生的天青,三者能在酒精溶 液中溶解,但在水溶液中伊红遇到美蓝和天青即产生沉淀。因此,必须在稀释 染液当时使用,一般在半小时内染色力最强。
900 ml
900 ml 900 ml
三、血片染色
单张血片染色
在量筒内加2ml缓冲液或 ph7.0~7.2净水, 滴加吉 氏原液4滴(每ml2滴), 混匀,然后滴在已充分干
躁的厚薄血膜上,染色
30min。清水缓缓冲洗, 晾干(厚血膜朝下),等 待镜检。
三、血片染色
成批血片染色
根据血片多少来配应用液 选用ph7.0~7.2净水为好 吉氏原液的加量要根据厂 商提供的技术参数,最好 试染后再批量染。 可以用染色架
五、疟原虫镜检与其它鉴别
镜检结果登记
看完血片后,若为阳性应立即按血片编号登记原虫的
种、期、以防差错。为记录方便,对疟原虫的种、期
可使用英文字母缩写作为代号: 间日疟=P.v 三日疟=P.m 环状体=R 恶性疟=P.f 卵形疟=P.o 大滋养体=T
裂殖体=S
配子体=G
五、疟原虫镜检与其它鉴别
三、血片染色
缓冲液的配制
疟原虫血片制作

疟原虫血片的制作一、需要材料1.采血器材:75%酒精棉球、一次性采血针、玻片、推片、铅笔、干净的绸布或化纤布。
2.染色材料:①姬氏原液②.蒸馏水或纯净水:①稀释姬氏原液②染色时冲洗染液③固定剂:①用甲醇或无水乙醇(乙醇含量达99.9%),固定薄血膜②用无水乙醇擦洗油镜头。
④脱油剂:无水乙醚或二甲苯:镜检后的血片脱镜油。
油镜头脱油可用无水乙醚:无水乙醇的7:3混合液擦拭。
⑤擦镜纸。
二、采血前准备:1.玻片准备⑴我们现在用的玻片都是除去油渍的脱脂玻片,使用前可用绸布擦去玻片上纤维和浮灰,即可使用。
⑵新的尚未脱油脂的玻片:用洗衣粉水洗净后,一一浸泡于95%的酒精中约一周时间,然后一一取出,用软而洁净并没有棉花纤维的细布擦干,擦亮,收藏好。
⑶已用过的旧玻片:先消毒后用洗涤剂清洗,去除污渍,再一一浸泡于95%的酒精中约一周时间,然后一一取出,用软而洁净并没有棉花纤维的细布擦干,擦亮,收藏好。
2.玻片编号:在玻片的磨砂端用铅笔进行编号。
玻片编号、检验报告单号和登记号应一致,并具有唯一性。
3.采血时间:⑴间日疟、三日疟原虫患者可在发作的任何时间进行采血,但由于患者刚发冷发热以后,大部分是在环状体期,故这一时期区别疟原虫种类是不容易的。
所以在发作后的6~8小时内采血为最佳,这时环状体以滋养发育成晚期滋养体,较易识别。
⑵。
恶性疟原虫;从理论上讲,因为恶性疟原虫的裂体生殖是在内脏的毛细血管内进行的,所以在发作之前,患者的末梢血液中不易查到,但实际情况不尽如此,一般在受感染者的末梢血液中,随时能见到少量的恶性疟原虫的环状滋养体;虽然如此,较理想的采血时间,是在发作后的20小时左右,因为这个时候,环状体虽已发育至最高峰,但尚未回到内脏毛细血管中去进行裂体生殖。
环状体的数量和构造。
有助于疟原虫种类的鉴别,恶性疟原虫的配子体很容易识别,但在初发时,一般需要在发作7~10日后才能在末梢血液在出现,应当注意。
4.采血的部位和方法;部位:以耳垂采血为主。
血涂片制作实验报告
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一、实验目的1. 掌握血涂片的制作方法。
2. 熟悉血细胞的基本形态和分布特点。
3. 了解血涂片染色技术。
二、实验原理血涂片是血液学检查的基本方法,通过将血液涂布在载玻片上,经过固定、染色等步骤,使血液中的各种细胞在显微镜下呈现出不同的颜色和形态,便于观察和分析。
血涂片制作的关键在于血液的涂布、固定和染色。
三、实验器材与试剂1. 器材:载玻片、推片、采血针、酒精棉球、生理盐水、瑞氏染液、蒸馏水、显微镜等。
2. 试剂:10%甲醛溶液、95%乙醇、甘油等。
四、实验步骤1. 消毒与采血(1)取一支采血针,用酒精棉球消毒皮肤。
(2)将采血针对准皮肤,轻轻刺入,使血液自然流出。
(3)用生理盐水湿润载玻片,取少量血液滴在载玻片中央。
2. 推片(1)将推片的一端放在血滴上方,另一端紧贴载玻片。
(2)以30-40°角将推片平稳地推出,使血液均匀分布在载玻片上。
3. 固定(1)将血涂片在空气中晾干。
(2)将血涂片浸入10%甲醛溶液中固定5-10分钟。
4. 染色(1)将固定好的血涂片浸入95%乙醇中脱色2-3分钟。
(2)将脱色后的血涂片浸入瑞氏染液中染色3-5分钟。
(3)将染色的血涂片浸入蒸馏水中分化1-2分钟。
5. 观察(1)将染色的血涂片放在显微镜下观察。
(2)低倍镜下观察红细胞、白细胞和血小板的形态和分布特点。
(3)高倍镜下观察白细胞和血小板的细节结构。
五、实验结果与分析1. 红细胞:呈两面凹的圆饼状,无细胞核,细胞质内充满血红蛋白,略呈碱性。
2. 白细胞:分为三种类型:中性粒细胞、嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞。
中性粒细胞呈圆形或椭圆形,细胞核分叶;嗜酸性粒细胞呈椭圆形,细胞核为2-3叶;嗜碱性粒细胞呈圆形或椭圆形,细胞核为2-3叶。
3. 血小板:呈不规则形状,无细胞核,细胞质内含有血小板颗粒。
六、实验总结本次实验成功制作了血涂片,并观察到了红细胞、白细胞和血小板的形态和分布特点。
通过本次实验,我们掌握了血涂片的制作方法,提高了对血液细胞形态学知识的认识,为今后的临床诊断工作打下了基础。
疟疾血膜制作及染色技术

疟疾血膜制作及染色技术一、血片的制作1.材料准备载玻片:新玻片浸入有液态洗涤剂的清水中10-20分钟,干净棉巾逐个擦拭,再用清水冲洗干净,晾干备用。
1. 2. 采血针:一次性 . 玻片盒:防止污染和昆虫吸食血膜 1. 4. 75%酒精棉球:采血前后消毒 . 记号笔:玻片上书写号码2.血片的制作(厚、薄血膜)用于检查疟原虫的血涂片有两种:一种是将血液涂成薄膜状,称薄血膜;一种是血液涂成圆盘状,称厚血膜。
最好一张玻片上同时制作厚、薄两种血膜。
薄血膜涂片薄血膜取洁净的载玻片1张,左手持载玻片平置,右手持推片,推片一端边缘的中点刮取血液~微升(相当于1/4火柴头大小),使血滴与平置的载玻片中线接触,待血液向两侧扩展约2cm宽时,以25°~35°夹角均匀而迅速地向左推成舌状薄血膜(约长)。
厚度以薄血膜上的红细胞之间互相接触而不相互重叠为佳。
厚血膜涂片用推片的一角刮取4~5微升血量(相当于火柴头大小),使血滴涂于载玻片的中央偏右处,由里向外一个方向旋转2圈,涂成直径~的圆形厚血膜,血膜厚薄均匀,过厚易于脱落,过薄达不到检出率的要求(厚度以1个油镜视野内可见5~10个白细胞为宜)。
血膜位置通常将厚、薄血膜涂在一张载玻片上。
方法是将载片分为6等分,第1、2格备贴标签及编用;厚血膜涂在第3格中央;薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部。
血片的制作编号血膜制成后,立即在玻片面上写上受检者的号码(姓名)、单位(地址)、制片日期、以防差错;待血膜干后依次按顺序插入标本盒内。
血膜制作注意事项1. 清洗玻片,且勿碰撞、磨损2. 刚涂制的血膜要平放在标本盒内3. 血膜应自然干燥,要充分干燥。
二、血片染色:(吉氏染液的染色方法)1. 血膜染色前的处理固定薄血膜血片干燥后,用吸有甲醇的吸管在薄血膜表面轻轻涂抹,自然干燥。
注意固定时甲醇不要接触厚血膜,否则会影响厚血膜的溶血。
溶解厚血膜血片干燥后,用滴管滴水于厚血膜上,待血膜呈灰白色时,将水倒去,晾干。
疟疾血片制作

薄 血 膜 制 作
▲将推玻片向1的方向稍抽回,当 血液充满推玻片适当宽度(约 2cm)后,以一定均匀的速度 向2的方向滑动(约2.5cm)。
制作薄血膜:
制作薄血膜:
◆血涂片质量评价: 血膜均匀、厚薄度合适、无空泡、无划痕
薄血膜头体尾位置和形状好、无停顿起伏、 两侧留出空间
注意: 血滴大,速度快、角度大 血滴小,速度慢、角度小
血片的制作续…
2、采血时间:症状发作后数 小时至10小时之内。
3、采血部位消毒:用沾有碘 酒的棉棒在患者手指末端、 耳垂、拇趾或足跟(婴幼 儿)从内向外画同心圆。
4、采血:将采血针迅速刺入 取血部位1~2mm深,用大 拇指、食指协同挤出血滴。 第一滴血因含有酒精,用 棉签擦去。再挤出第二滴 血用于制作血片。
二、血片染色
▲血片染色在血片的制作过程中是 一个重要的环节,染色质量的好坏, 直接影响到疟原虫的检出率,也是 直接影响疟疾病例确诊与否的关键。
▲ 疟疾血片的染色有瑞氏染液和吉 氏染液两种,我们现在重点介绍吉 姆萨染液染色法。
血片染色续…
▲ 染液为省寄生虫病防治所统一配制的吉
姆萨染液;为方便开展工作,经省寄生虫 病防治所反复试验,缓冲液选择市面上供 应的娃哈哈矿泉水为佳(在条件允许时配 制pH7.0~7.2的缓冲液为最佳选择)。 ■注:珠海贝索生物技术有限公司生产的 Baso姬姆萨染液:
疟疾血片制作
临沧市疾病预防控制中心
史爱军 2016年3月
主要内容
■血片的制作 ■血片的染色 ■影响血片制作质量的因素及
注意事项
◆重点应掌握的要点:
▲疟疾血片厚、薄血膜的制作要领。 ▲疟疾血片制作注意事项。
▲掌握血片制作技巧、反复练习。
制作血涂片的实验报告

一、实验目的1. 掌握血涂片的制作方法。
2. 了解血涂片在临床医学中的应用。
3. 观察血细胞的形态和分布。
二、实验原理血涂片是临床医学中常用的一种检测方法,通过将血液涂抹在载玻片上,经过固定和染色处理,使血细胞在显微镜下清晰可见,从而对血液中的各种细胞进行形态学和数量的观察,有助于诊断某些疾病。
三、实验器材1. 载玻片2. 盖玻片3. 刺血针4. 消毒酒精5. 蒸馏水6. 瑞氏染液7. 显微镜8. 移液器9. 计数板四、实验步骤1. 采血:选择合适的采血部位(如耳垂或手指尖),用消毒酒精消毒皮肤,待干。
用刺血针刺破皮肤,血液自然流出。
2. 制备血涂片:a. 将载玻片倾斜45度,用移液器吸取少量血液。
b. 将血液滴在载玻片的右端,用另一载玻片作为推片,将推片的末端斜置于血液滴的左缘,成30°~40°角。
c. 将推片稍向后退,使之与血液滴接触,使血液在两载玻片之间充满斜角。
d. 将推片向前推动,使血液均匀涂抹在载玻片上,形成薄薄的一层。
e. 将盖玻片轻轻放置在血涂片上,避免产生气泡。
3. 固定:将血涂片放入固定液(如甲醇)中浸泡5分钟,取出晾干。
4. 染色:将固定后的血涂片放入瑞氏染液中染色10分钟,取出后用蒸馏水冲洗,晾干。
5. 观察:将染色的血涂片放在显微镜下观察,先低倍镜观察,再高倍镜观察。
五、实验结果与分析1. 观察到血涂片上红细胞呈两面凹的圆饼状,没有细胞核,细胞质呈淡红色。
2. 观察到白细胞有核,呈圆形、椭圆形或不规则形,细胞质呈蓝色或紫色。
3. 观察到血小板呈不规则形,细胞质呈蓝色或紫色。
六、实验总结通过本次实验,我们掌握了血涂片的制作方法,了解了血涂片在临床医学中的应用。
在实验过程中,我们观察到了红细胞、白细胞和血小板的形态和分布,为后续的医学诊断提供了基础。
七、注意事项1. 采血时,要确保采血部位消毒彻底,避免感染。
2. 制备血涂片时,要保持推片与载玻片之间的角度,避免血液涂抹不均匀。
血片制作改

血片的染色 (一)染液的种类及染色原理
注意:蛋白质是二性电解质,当其处于较等电点为酸的溶液中时, 便呈硷的作用,即与酸或阴离子结合,这就说明为何在染液偏 酸时,伊红的着色力强,使红细胞着色鲜艳而淋巴细胞和原虫 的胞浆着色不著;反之,蛋白质在偏硷的溶液中呈酸的作用而 中和硷基,也就说明为何染液偏硷时,红细胞和嗜伊红白细胞 的颗粒等被染成紫兰色。
(涂片操作)
厚血膜 用推片的一角,从取血部位刮取约4微升血 量(相当于火柴头大小),使血滴与平置的载玻片 接触,再由里向外一个方向旋转,转2~4圈,涂成 直径0.8~1厘米大小圆形厚血膜,血膜厚薄均匀, 过厚易于脱落,过薄达不到检出率的要求。
血膜的制作(涂片操作)
涂制厚、薄血膜的位置 通常是将厚、薄血膜 涂在一张载片上。方法是将载片分为6等分, 第1、2格备贴标签及编号用;厚血膜涂在第3 格中央,薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部。 作为标本的血片每张玻片涂厚、薄血膜各1个;
影响染色效果的因素
血片染色好坏除了与玻片是否清洁,血片 制作质量好坏等有关外,还受到以下几个 因素的影响:
(1)染料溶剂的质量 染料、甲醇和甘油 如果不纯,常使配制的染液偏酸或偏碱而 影响染色效果。因此必须用分析纯的甲醇 和中性甘油,而且在配制时所用的器具必 须干净而无水份。
影响染色效果的因素
伊红在水溶液内遇到美兰或天青,即可互相化合而产生沈 淀从而失去染色力,因此,吉氏母液绝对不能进水。
血片的染色
(二)吉氏染液母液配置方法
取吉氏粉0.5克置于研钵中, 加少量甘油充分研磨,再加再磨, 至25毫升加完为止,倒入60或 100毫升带有玻塞的有色玻瓶中。 在研钵中加少量甲醇,洗去甘油 浓液混入瓶内,至25毫升甲醇 洗净钵中甘油染液为止,塞紧瓶 塞,充分摇匀,置于55~60℃ 水浴中或温箱内24小时或室温 内3~5天,多加摇动,即成原 液。吉氏染液是目前较优良的血 膜染剂,即使在炎热天气中,亦 可经久不变。
改良外周血厚\薄血膜制片法
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改良外周血厚\薄血膜制片法卫辉位于河南北部,近几年无蚊传疟疾病例,大部分医院未开展疟疾检查。
今年按照全球基金河南疟疾项目办要求,各级各类医疗机构应建立门诊镜检站(发热门诊),全年对就诊的“三热”患者(临床初诊疟疾、疑似疟疾和原因不明发热)进行血检,所有外来流动人口和从高疟区回归的当地居民中的发热患者均应进行血检。
发热患者血涂片显微镜检查,是疟疾诊断和虫种鉴别的主要方法,是疟疾疾病控制和检测的重要手段。
其基本过程是采血-涂制血膜-染色前处理-染色-镜检。
常用的血膜涂片有两种,一种是借推片将血液薄薄地涂在载玻片上,使每个血细胞平铺,称薄血膜,因薄血膜血液干燥快,原虫形态极少变形,多用于观察疟原虫形态与鉴别虫种;另一种是把较多的血液涂成圆形,血膜中血细胞重叠,原虫较为集中,称为厚血膜,厚血膜涂布面积小,阳性率检出较高。
现采用的是一张载玻片上同时做厚、薄血膜各一个,检查是查厚血膜,薄血膜供编号和鉴别虫种用。
血片制作的好坏直接影响到疟疾的诊断,在实际工作中遇到一些问题:①厚血膜制作困难,在染色前处理环节溶血漂洗过程中常出现血膜与载玻片完全或部分剥脱;②厚血膜有时有发黑现象;③薄血膜有时也有剥脱现象。
从而导致制片失败,为此对厚、薄血片制片法进行改良。
资料与方法材料:载玻片、蒸馏水,染色架,染色缸、甲醇、滴管、吉姆萨染液。
方法:①制片:取玻片两张,1张做载片,1张做推片(具有光华边缘),在载片的中央偏右滴加1滴生理盐水,用右手大拇指和示指夹持推片侧缘中部,用推片的左下角刮取血液4~5μl(约火柴头大小)再用该端中部刮取血液1~1.5μl(约小米粒大小)。
将左下角的血滴涂于载片已滴加的生理盐水上,有里向外画圈涂成直径0.8~1cm的圆形厚血膜。
用干棉球抹净左角上的血迹,然后将推片下缘平抵载玻片的中部,推制薄血膜,并在薄血膜上编号。
平放待干。
②固定薄血膜:待血膜自然干燥后,在载片右侧下放另一载玻片,使载片厚血膜侧高于薄血膜侧,然后在薄血膜中部滴加1~2滴甲醇覆盖整个薄血膜,注意甲醇不可过量,过量有可能浸润厚血膜。
疟疾血片制作课件
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血片的制作(材料准备)
1.载玻片:新玻片浸入有液态洗涤剂的清 水中10-20分钟,干净棉巾逐个擦拭, 再用清水冲洗干净,晾干备用。 2. 采血针:一次性 3. 玻片盒:防止污染和昆虫吸食血膜 4. 75%酒精棉球:采血前后消毒 5. 记号笔:玻片上书写号码
血膜染色前的处理
固定薄血膜 血片干燥后,用吸有甲醇的吸管 在薄血膜表面轻轻涂抹,自然干燥。注意固定 时甲醇不要接触厚血膜,否则会影响厚血膜的 溶血。 溶解厚血膜 血片干燥后,用滴管滴水于厚血 膜上,待血膜呈灰白色时,将水倒去,晾干。 (吉姆萨染色:直接)
血膜制作注意事项
1. 清洗玻片,且勿碰撞、磨损 2. 刚涂制的血膜要平放在标本盒内 3. 血膜应自然干燥 ,要充分干燥。
D. 冲洗染液时,水流轻缓,勿冲走厚血膜。
疟疾检测的注意事项
1.同一个病人的血涂片样本要大于等于5张。 2.标本一定要做好标记,上报结果时,一定要 把观察到疟疾病原虫的血涂片标本一起交上来。 3.标本染色时,不要一次把所有标本全部染完, 分批次染,找到最好的血涂片进行观察。
血片的制作(血膜位置)
通常将厚、薄血膜涂在一张载玻片 上。方法是将载片分为 6 等分,第 1 、 2 格备贴标签及编号用;厚血膜涂在第 3 格中央;薄血膜涂在第4格前缘至第6格 中部。
血片的制作(编号)
血膜编号 血膜制成后,立即在玻片面上 写上受检者的号码,以防差错;待 薄血膜干后再用铅笔于薄血膜中写 上受检者的个人编号,依次按顺序 插入标本盒内。
制作血液涂片的技术改进
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制作血液涂片的技术改进陈学军;刘孝武;王英【摘要】Objective:To improve the traditional method of making blood smear slides to standardize the new method to effectively control the quality of blood tests.Methods:Using push-slides at an fixed angle of different degrees from 10° to 30° to make blood smear slides with a certain amount of EDTA anticoagulated blood.Under a microscope,the length of the blood membranes and the evenness of the distribution of cells were observed after staining the smear slides.Then measurement and comparison were performed to find out those smear slides which conform to established standards and identify the standard angles of push-slides.The standard blood smear slides were made using push-slides at the standard angles.The standard blood smear slides were compared with those made by the traditional method.Results:The blood smear slides were made with 5uL of blood using push-slides at an fixed angle of 17°/18° degree.The X and S values of membrane lengths for the slides were4.081/3.987 and 0.015/0.0103,respectively.The X and S values for the areas of evenly distributed cells for the slides were 3.033/2.971 and0.015/0.0104,respectively.The P value for the comparison between the slides by the traditional method and those by using push-slides at a fixed ang le of 17° was less than 0.001,which means there is significant difference between these 2 kinds of slides.Conclusion:Blood smear slides made by using push-slides at a fixed angle of 17° or 18° with 5uL of blood satisfiesthe requirements for standard blood smear slides,and are therefore helpful in controlling the quality of morphological examination of blood cells,thus increasing the accuracy of diagnosis.%目的:改进传统制作血液涂片技术,使其统一标准化,有效控制血液检验的质量。
血片骨髓片制备
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血片骨髓片制备一、准备工作:(一)清洁玻片:玻片须边缘光滑,十分清洁干燥,不带有油质,新玻片要先浸在清洁液(重铬酸钾2份,硫酸3份,水25份)内,除去游离碱质(否则染色偏碱,不适于观察),用自来水冲洗,再浸在70%酒精内,用时取出,并在火焰高处烘干。
旧的玻片要先用肥皂水煮10余分钟后,再用温水冲洗干净。
边缘玻碎、玻面有划痕的不能再用。
因手上带有油渍,在取用玻片时只可用两手指挟住玻片的两边,不可触及玻面。
(二)推片:推片推端要光滑(常用凹玻片做推片)并将其中锐角用镊子掰掉lmm左右(既宽度较载片窄2~3mm),在油石上平磨光滑。
因异常细胞如瘤细胞等,体积大比重轻,只在涂片边缘尾端才易找到,如涂膜宽至边缘,容易漏诊。
二、制片方法:三、注意事项:(一)玻片:玻片洁净,手指不能触及玻片面,将玻片一张一张地摆开,准备5张以上。
(二)推片:如置于载片上的血滴液或骨髓液滴较小,应推得较慢,且成<30°角时涂片较薄;如血滴或骨髓滴较大,应推得较快,且成>30°角时涂片较厚。
推时要注意用力均匀,动作不快不慢,不可复推。
(三)涂片:一张好的涂片应该厚薄均匀,分头、体、尾三部,尾部呈弧形,上下两边整齐(最好留出1~2mm的空隙)。
于显微镜下观察时,各类有核细胞分布均匀,红细胞互下重叠,而又不太分散者,为最佳涂片。
(四)涂片张数:抽出骨髓后应迅速涂片5张以上,涂片应薄而匀。
同时涂血片2~5张作为对照用和细胞化学染色等。
(五)染色:髓片染色时,先染2张,方法基本与血片染色相同,但染色液应稍淡,时间应稍长些。
其余的涂片留做细胞化学染色用。
(六)晾干涂片:涂好骨髓片后,应立即拿起标本,在空气中来回摆动,使之快干,以免细胞皱缩而形态变异,但不能在火焰上烘烤。
(七)骨髓液不宜用抗凝剂:尤其是双草酸盐抗凝剂易使细胞发生自溶现象,使核致密、变形、细胞内出现草酸盐结晶等。
必要时可用肝素抗凝。
(八)死后涂片:死亡后半小时内可采取骨髓液制作涂片,此时细胞已有改变,但不影响诊断。
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伊红在水溶液内遇到美兰或天青, 伊红在水溶液内遇到美兰或天青,即可互相化合而产生沈 淀从而失去染色力,因此,吉氏母液绝对不能进水。 淀从而失去染色力,因此,吉氏母液绝对不能进水。
血片的染色 (二)吉氏染液母液配置方法
取吉氏粉0.5克置于研钵中, 取吉氏粉 克置于研钵中, 克置于研钵中 加少量甘油充分研磨,再加再磨, 加少量甘油充分研磨,再加再磨, 毫升加完为止, 至25毫升加完为止,倒入 或 毫升加完为止 倒入60或 材料: 材料: 100毫升带有玻塞的有色玻瓶中。 毫升带有玻塞的有色玻瓶中。 毫升带有玻塞的有色玻瓶中 在研钵中加少量甲醇, 在研钵中加少量甲醇,洗去甘油 1、吉氏粉 克 、吉氏粉0.5克 浓液混入瓶内, 浓液混入瓶内,至25毫升甲醇 毫升甲醇 2、甘油 毫升 、甘油25毫升 洗净钵中甘油染液为止, 洗净钵中甘油染液为止,塞紧瓶 3、甲醇 毫升 、甲醇25毫升 塞,充分摇匀,置于55~60℃ 充分摇匀,置于 ℃ 水浴中或温箱内24小时或室温 水浴中或温箱内 小时或室温 内3~5天,多加摇动,即成原 天 多加摇动, 液。吉氏染液是目前较优良的血 膜染剂,即使在炎热天气中, 膜染剂,即使在炎热天气中,亦 可经久不变。 可经久不变。
涂片操作) 血膜的制作(涂片操作) 涂制厚、 通常是将厚、 涂制厚、薄血膜的位置 通常是将厚、薄血膜 涂在一张载片上。方法是将载片分为6等分 等分, 涂在一张载片上 。 方法是将载片分为 等分 , 格备贴标签及编号用; 第1、2格备贴标签及编号用;厚血膜涂在第 、 格备贴标签及编号用 厚血膜涂在第3 格中央,薄血膜涂在第4格前缘至第 格中部。 格前缘至第6格中部 格中央,薄血膜涂在第 格前缘至第 格中部。 作为标本的血片每张玻片涂厚、薄血膜各1个 作为标本的血片每张玻片涂厚 、 薄血膜各 个 ; 疟疾调查时, 疟疾调查时,每张玻片 可涂制2~3人血膜。 人血膜。 可涂制 人血膜
血片的染色 (三)吉氏染液血片染色方法
先用甲醇或无水酒精固定薄血膜, 先用甲醇或无水酒精固定薄血膜,待干后进行 染色。 染色。亦可在固定薄血膜后用清水对厚血膜溶脱血红 蛋白,然后才进行染色。 蛋白,然后才进行染色。 成批血片染色: 成批血片染色:将已固定薄血膜的血片插入染 色缸,倒入2%吉氏染液稀释液(2毫升原液加中性 吉氏染液稀释液( 毫升原液加中性 色缸,倒入 吉氏染液稀释液 蒸馏水98毫升稀释均匀即成),同时对厚薄血膜染 毫升稀释均匀即成), 蒸馏水 毫升稀释均匀即成),同时对厚薄血膜染 分钟( 色30分钟(如染液不合标准时,得酌情增减染色时 分钟 如染液不合标准时, ),然后用清水轻轻将染液冲去 然后用清水轻轻将染液冲去, 间),然后用清水轻轻将染液冲去,再用清水轻轻冲 洗一次,干净后将血片标本(血膜面朝下) 洗一次,干净后将血片标本(血膜面朝下)插于晾干 板上,待干镜检。 板上,待干镜检。
血片的染色 (一)染液的种类及染色原理
注意:蛋白质是二性电解质,当其处于较等电点为酸的溶液时, 注意:蛋白质是二性电解质,当其处于较等电点为酸的溶液中时, 二性电解质 等电点为酸的溶液中时 便呈硷的作用,即与酸或阴离子结合, 便呈硷的作用,即与酸或阴离子结合,这就说明为何在染液偏 酸时,伊红的着色力强, 酸时,伊红的着色力强,使红细胞着色鲜艳而淋巴细胞和原虫 的胞浆着色不著;反之, 的胞浆着色不著;反之,蛋白质在偏硷的溶液中呈酸的作用而 中和硷基,也就说明为何染液偏硷时, 中和硷基,也就说明为何染液偏硷时,红细胞和嗜伊红白细胞 的颗粒等被染成紫兰色。 的颗粒等被染成紫兰色。
制作血膜的注意事项 制作血膜的注意事项 血膜
3. 血膜让其自然干燥,切忌用太阳晒或 血膜让其自然干燥, 火烤,干透后才能用甲醇固定薄血膜。 火烤,干透后才能用甲醇固定薄血膜。 夏天标本尽可能24~48小时内固定染色; 小时内固定染色; 夏天标本尽可能 小时内固定染色 冬天也不能超过72小时 放置时间越久, 小时。 冬天也不能超过 小时。放置时间越久, 厚血膜越不易脱血,染色效果也差。 厚血膜越不易脱血,染色效果也差。若 不能及时染色, 不能及时染色,薄血膜宜先用甲醇固定 分钟) (1~3分钟)然后用过滤清水对厚血膜 分钟 溶血,晾干固定后装入盒内盖严, 溶血,晾干固定后装入盒内盖严,待以 后染色。 后染色。
标本片
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血膜的制作
血膜制成后, 血膜编号 血膜制成后,立即用特种 蜡笔或水笔于玻片面上写上受检者的 号码,以防差错, 号码,以防差错,待薄血膜干后再用 铅笔于薄血膜中写上血片种类的代号 和受检者的个人编号, 和受检者的个人编号,依次顺序插入 标本盒内。 标本盒内。
制作血膜的注意事项 制作血膜的注意事项 血膜
血膜的制作(取血操作) 血膜的制作(取血操作)
采血部位一般人为耳垂,指头, 取血方法 采血部位一般人为耳垂,指头, 通常在耳垂取血( 通常在耳垂取血(现场取血建议用大头针 采血,一人一针,避免血传疾病)。 )。先用 采血,一人一针,避免血传疾病)。先用 75%酒精棉球消毒取血部位(冬季用手 酒精棉球消毒取血部位( 酒精棉球消毒取血部位 捻动耳垂使其充血后再行消毒), ),待酒精 捻动耳垂使其充血后再行消毒),待酒精 干后,用左手拇指和食指紧捏耳垂上方, 干后,用左手拇指和食指紧捏耳垂上方, 右手持消毒针迅速刺入耳垂下端1~2毫米, 毫米, 右手持消毒针迅速刺入耳垂下端 毫米 不宜过深或过浅。 不宜过深或过浅。然后用右手中指轻轻向 挤压出血。 挤压出血。
血片的染色 (三)吉氏染液血片染色方法
先用甲醇或无水酒精固定薄血膜, 先用甲醇或无水酒精固定薄血膜,待干 后进行染色。 后进行染色。亦可在固定薄血膜后用清水对厚 血膜溶脱血红蛋白,然后才进行染色。 血膜溶脱血红蛋白,然后才进行染色。 单张血片染色:薄血膜经固定干燥后, 单张血片染色:薄血膜经固定干燥后, 吉氏染液稀释液1~2毫升,滴入血片 毫升, 用2%吉氏染液稀释液 吉氏染液稀释液 毫升 标本上染色30分钟左右 或用中性蒸馏水1毫 分钟左右, 标本上染色 分钟左右,或用中性蒸馏水 毫 加吉氏母液1~2滴,混合均匀后滴入血 升,加吉氏母液 滴 片标本上,染色10~20分钟,然后用清水轻 分钟, 片标本上,染色 分钟 轻将片上的染液冲洗干净,晾干镜检。 轻将片上的染液冲洗干净,晾干镜检。
血片制作染色与疟原虫计数
血膜的制作 用于检查疟原虫的血涂片有两种: 用于检查疟原虫的血涂片有两种:一种是将血液涂 呈薄膜状,称薄血膜;一种是血液涂成圆盘,称 一种是血液涂成圆盘, 呈薄膜状,
厚血膜。薄血膜上的血细胞要求平辅在玻片上面。 薄血膜上的血细胞要求平辅在玻片上面。
标本片 发热病人血片
血膜的制作(取血时间) 血膜的制作(取血时间)
1. 玻片清洗时,避免玻片碰撞、
磨损。制作血膜的载玻片必须完 全清洁而毫无油渍或污垢。制片 时,手指只能持载片的边缘,不 能接触玻片表面,以免油污使薄 血膜产生空白区以及厚血膜脱落。 作为推片的玻片边缘一定要平滑, 才能使推出的血膜均匀一致。
制作血膜的注意事项 制作血膜的注意事项 血膜
2. 刚涂制的血膜要平放在标本盒内,厚血膜 刚涂制的血膜要平放在标本盒内, 未干前勿使标本盒倾斜,以免血膜倾向一侧, 未干前勿使标本盒倾斜,以免血膜倾向一侧, 造成血膜厚薄不均, 造成血膜厚薄不均,厚处不一溶血和着色而影 响检查结果;晾干血膜时应注意防尘、 响检查结果;晾干血膜时应注意防尘、防止苍 蟑螂等昆虫吮吸血膜, 蝇、蟑螂等昆虫吮吸血膜,干后应及时装入标 本盒并盖严, 本盒并盖严,新的木制标本盒需敞开放置一段 时间,让木醇挥发后才能使用, 时间,让木醇挥发后才能使用,以免厚血膜红 蛋白被其固定,不能溶血或染色效果不佳。 蛋白被其固定,不能溶血或染色效果不佳。
血片的染色 (一)染液的种类及染色原理
染色原理: 染色原理:美兰与伊红都不能使原虫和白细胞 的核着色,必须由天青作为媒介(染媒) 的核着色,必须由天青作为媒介(染媒)才 能使其着色。天青虽然也是碱性染剂, 能使其着色。天青虽然也是碱性染剂,但又 具有染媒作用, 具有染媒作用,使原虫核和白细胞核等原来 只能染上极淡兰色的结构染上显著的酸性染 剂伊红,这样, 剂伊红,这样,就使白细胞粗大的核染成显 著的既兰又红的紫兰色, 著的既兰又红的紫兰色,而较小的原虫核和 淋巴细胞原浆中的颗粒染成紫红色。 淋巴细胞原浆中的颗粒染成紫红色。
血片的染色 (一)染液的种类及染色原理
染色原理:伊红是酸性水溶性钠盐,美兰是碱性 染色原理:伊红是酸性水溶性钠盐,美兰是碱性 酸性水溶性钠盐 水溶性盐酸盐,当它们各自溶化水中时, 水溶性盐酸盐,当它们各自溶化水中时,就离 解为带阳电和阴电的离子。 解为带阳电和阴电的离子。伊红主要离解为酸 性的阳离子,在遇到碱性的蛋白质如血红蛋白、 性的阳离子,在遇到碱性的蛋白质如血红蛋白、 嗜伊红白血球颗粒等即可结合成不易溶于水的 沈淀物染成红色。 沈淀物染成红色。美兰主要离解为碱性的美兰 离子,美兰就与疟原虫、 离子,美兰就与疟原虫、淋巴和大单核细胞的 胞浆、 胞浆、嗜碱性白细胞的颗粒等酸性蛋白质结合 染成兰色。 染成兰色。
取血量及涂片法(涂片操作) 取血量及涂片法(涂片操作)
取洁净的载玻片2张 薄血膜 取洁净的载玻片 张, 1张平置在桌上 , 以左手拇 张平置在桌上, 张平置在桌上 指,食指夹持载玻片两端 手指切勿接触玻片表面) ( 手指切勿接触玻片表面 ) , 用另一张边缘平滑( 用另一张边缘平滑 ( 最好为 磨口边缘) 的载玻片做推片, 磨口边缘 ) 的载玻片做推片 , 用推片一端边缘的中点从取 血部分取约1微升的血量 相当于1/4火柴头大小), 火柴头大小) ( 相当于 火柴头大小 使血滴与平置的载玻片接触, 使血滴与平置的载玻片接触 , 度夹角, 并形成25~30度夹角 , 待 度夹角 并形成 血液向两侧扩展约2厘米长 血液向两侧扩展约 厘米长 度时, 度时 , 均匀而迅速地轻轻向 左推出( 厘米长) 左推出(约2.5厘米长)。 厘米长
(涂片操作) 涂片操作)
用推片的一角,从取血部位刮取约4微升血 厚血膜 用推片的一角,从取血部位刮取约 微升血 相当于火柴头大小), ),使血滴与平置的载玻片 量(相当于火柴头大小),使血滴与平置的载玻片 接触,再由里向外一个方向旋转, 接触,再由里向外一个方向旋转,转2~4圈,涂成 圈 直径0.8~1厘米大小圆形厚血膜,血膜厚薄均匀, 厘米大小圆形厚血膜, 直径 厘米大小圆形厚血膜 血膜厚薄均匀, 过厚易于脱落,过薄达不到检出率的要求。 过厚易于脱落,过薄达不到检出率的要求。