中华猕猴桃茎段组培快繁系列技术研究
中华猕猴桃的组织培养及其实用快速繁殖
摘
要: 简述 了对 木本 经济植 物 中华猕 猴桃 ( cn i ci ni) A t i a hn s 进行 组 培快 繁 育 苗的 具体 方 法 。并针 id e s
对传 统 组培 法 育 苗不 太重 视试 管苗后 期 的 炼苗 移栽 等环 节 的 不足 , 别加 强 了对猕猴 桃 组培 苗在 成 为 田 特 间 商品 苗之 前 的培 育 管理 方 法的研 究 , 而提 高 了组培 苗 的移 栽 成 活 率 ( 8 % 以上 ) 本研 究成 果 是 对 从 达 5 , 传 统方 法 的改进 , 力 于真 正提 高农 业 生产 实践 中优 良果木 组 培 育苗 的 实际 成功 率 。 致 关键 词 : 中华猕 猴桃 ; 织培 养 ; 组 育苗
中图分 类号 : 9 9 9 Q 4 . 文献标 识 码 : A
植 物 组织 培 养技 术 自 2 世 纪 6 0 0年 代 以来 已逐 渐 发 展成 为 一 门较成 熟 的植 物 快速 繁 殖技 术 , 并在 农 业 、 林业 、 园艺 等领 域 逐 渐 得 到 应 用 。但 由于 仍 存 在 一 些 尚未解 决 的技 术难 题 , 碍 了此 技 术 在 生 产 实 践 中更 妨
足 人类 的需 求 , 年 来 一 些 生 物 技 术 已小 规 模 地 用 于 近
中容 易 出现 的褐化 现象 , 可在培养基 中加 入 0O %的抗 .l
氧化 剂 P P或 0 3 V . %的 活性 炭 。外 植体 在 温 度 为 2 5~ 2 8℃ , 照 l 光 2~1 ・ ~, 照 度 250 I 右 的条 件 4h d 光 0 x左 下 进行 培 养 。继 代培 养 的培 养基 配方 和培 养 条件 基 本 维普资讯 2OFra bibliotekO 2年 6月
猕猴桃组织培养论文
猕猴桃组织培养论文09xxxx 32号xxx 第一组摘要:我们以前对猕猴桃认识很少,这篇我将在组培的基础上全面介绍它,我们做组培时采材料时遇到的一个问题是不知道雌雄株怎样区别,然而雄株是不能繁殖、结果的,组培的优点就是在短时间内培育种苗,如果等到植株开花是才知道我们做的是雄株,那就是多做功了。
重点:猕猴桃的植株是分为雌雄的,雄株多毛,而叶小,雄株花也较早出现于雌花。
然而雌株却少毛,或无毛,叶一大于雄花关键词:猕猴桃组培灭菌前言:关于猕猴桃的介绍:猕猴桃(学名:Actinidia chinensis),是中华猕猴桃栽培种水果的称谓。
也称猕猴梨、藤梨、羊桃、阳桃、木子与毛木果等,原产于中国南方。
一般是椭圆形的。
深褐色并带毛的表皮一般不食用,而其内则是呈亮绿色的果肉和一排黑色的种子。
猕猴桃的质地柔软,味道有时被描述为草莓、香蕉、凤梨三者的混合。
因猕猴喜食,故名猕猴桃;亦有说法是因为果皮覆毛,貌似猕猴而得名。
猕猴桃在全国有五大产区:一是河南的伏牛山、桐柏山、大别山区;二是陕西秦岭北麓;三是贵州高原及湖南省的西部;四是广东河源和平县。
五是四川省的西北地区;培养价值:中医认为,猕猴桃味甘、酸,性寒。
入脾、胃经。
具有解热止渴,抗癌和胃降逆,通淋等功效。
适用于烦热, 消渴, 黄疸, 石淋, 痔疮等病症,治高热烦渴、治胃癌、食道癌、治消化不良、治急性肝炎、多吃猕猴桃头发更健康。
(1)正文:组培特点:1、组培材料经济2、组培条件可以人为控制3、生长周期短,繁殖率高4、管理方便,利于工厂化生产和自动化控制猕猴桃组培:一、组培方案设计:目的要求:信息收集全面,方案设计科学合理、符合实际,设计说明详细明确用具:实验室一切药品、工具,资料,网络方法步骤1)信息收集2)信息汇总分析3)方案设计4)方案论证5)培养基:诱导愈伤组织(初代)培养基:MS+GA1.0+BA0.5+NAA0.1+糖3%+琼脂0.7%从生芽增殖(继代)培养基:MS+GA0.1+BA2.0+NAA0.2+糖3%+琼脂0.7%壮苗(生根)培养基:1/2MS+IBA0.2+NAA0.2+糖3%+琼脂0.7%二、猕猴桃预备实验(一)目的要求:目的:运用所学知识及搜索资料,在正确的操作情况下做猕猴桃的初代培养。
猕猴桃组织培养研究进展
生植株成功。1 8 9 年我国蔡起贵首次报道了中华猕猴桃叶 8
愈伤 组织原生质 体再 生植 株 。 肖尊 安等 报道 了从 中华 猕猴 桃与美 味猕猴桃 叶子 愈伤组织分离 出原 生质体 , 经分离 诱导 获得 再生植株 。胡 家金_J 以美 味猕 猴桃 雄株茎 段 愈伤组 】等 织 为材 料 , 分离原 生质 体 , 采用二 步诱 导分 化方法 将原 生质 体来 源 的愈 伤组织诱 导 分化 出苗 , 再诱 导生 根 , 成完 整 的 形
,
摘要 综述 了国内外猕猴桃组 织培养 中外植体选择 、 培养条件 等方 面的 内容 , 并对猕猴桃 组织培 养的意 义及存 在 的问题进 行 了讨 论。 关键词 猕猴桃 ; 织培养 组 中图分 类号 Q 4 . 931 文献标 识码 A 文章编 号 o 1— 61 o61 — 05 0 57 61( o)3 31 — 3 2
21 基本培养基 .
猕猴桃组织培养常用基本培养基为 M S
和 12 S其中 1 M 主要用于生根培养。另外 , /M , / S 2 也有使用
、
了原生质体分离、 培养研究, 其中 3 个获得了再生植株。 11 猕猴桃的器官培养 丁士林 _等提 出, . 2 』 对美味猕猴桃
的组织 培养来说 , 茎尖为 快繁 的最佳外 植体 材料 。叶片虽然 分化慢 , 严格 消毒 条 件下 , 可选 用 。茎段 不宜 做 快速 但在 也
植株 。
外植体的种类及其选择在猕猴桃组织培养 中有重要影 响。目 前猕猴桃组织培养主要是器官培养和原生质体培养。
离 体培养 使用 最多 的是 带芽 的外 植体 、 、 化 的器官 组织 胚 分 ( 嫩茎 、 叶 、 层 、 、 等二倍 体 组织 )花粉 及胚 包括 嫩 形成 根 花萼 、
猕猴桃的嫩枝快繁技术
猕猴桃的嫩枝快繁技术猕猴桃的常规繁育一般是采用种子播种,尔后嫁接,培育一株规格良种苗需2年时间。
这里向你介绍一种植物非试管快繁技术,以大大提高繁育系数及加快优良品种的推广。
1、选择光照充足,排水良好的地方建立苗床,并安装好快繁智能控制系统。
2、制作繁材。
选生长良好的新梢,以中部组织充实部分作繁材为好。
繁材以剪留1-3个芽的带叶枝段为好,基部剪口紧挨节下剪断,因节上膨大部分贮藏养分较多,易于生根。
上端剪口距芽约3厘米处剪断,以避免剪口抽干影响第一芽萌发。
下部剪口必须用快刀削平,以利愈合生根。
繁材不带叶片不易生根,每根繁材大叶留1片,小叶留2片即可,其余叶片从基部剪去。
3、繁材的处理。
猕猴桃条髓大中空,快繁不易成活,必须进行生根处理,有以下两种方法可供选择:(1)化学药剂处理:用0.1%~0.3%的高锰酸钾或用1%~2%的硼酸溶液浸泡繁材下端5~10秒钟,效果很好。
也可将繁材下端浸在10%的白糖溶液中3~6小时,促根效果也很明显。
(2)生长素处理:用0.5%吲哚丁酸(IBA)浸蘸繁材,需3~5分钟;用0.5%的α-萘乙酸(NAA),浸蘸需1分钟。
繁材浸入深度以切口浸到为好。
4、.快繁。
于苗床上面铺20~25厘米厚的干净河沙。
充分灌一次透水,水下渗后备用,按株距3~10厘米,行距8~10厘米插扦在备好的苗床上,密度以叶片不重叠为准,繁材切口插入沙1厘米左右即可,这样有行通气,有利于快速生根。
插苗时就应立即启动快繁智能系统,进入运行状态5.管理。
置入苗床后前7-10天,运用定时作业功能。
10-15天转换成智能叶片功能,15-20天生根后转换成人工智慧,进入炼苗阶段。
待快繁苗形成二次根并且通过炼苗对外界湿度适应后即可移栽大田。
田间管理与种子嫁接育苗同。
采用快繁技术可使猕猴桃的生根成苗率达93%以上,是目前最为快速而先进的猕猴桃育苗新技术。
中华猕猴桃试管快繁技术初探
20 06年第 1 期 2
现代园艺
表 2 不同浓度 IA中华猕猴桃试管苗生长情长旺盛期 , 采集
雌株 当年生半木质化 的枝条剪 成带 2 3个芽 的 小段 , 自 在 来水下冲洗 l 小时 , 然后在超净工作台 上用 O %的升汞消毒 l~ 2 . 1 O l 分钟 , 再用无菌水冲 洗 45 , 次 沥干后剪成带 1 个腋 芽的茎段接种到 芽诱导培养基上 ( 在无菌条件下操作 ) 共接 3 , 0 瓶, 每瓶接 1 个外植体。 培养条件 : 温度 2 6 52  ̄ C, 光照强度为 101, 50 光照时间 l x 0小时 / ( 天 继代 培养和生根培养条件相 同 ) 诱导出芽后 , 。 转到继
结果小结如下 。 1 供试材料
芽诱导培养 : S B 0 + A . Z 1 继代 M + A . G 1 +T. 5 0 0;
培养 基 :配 方 1: S B 0 +B 0 ;配 方 2 M + A . IA - 5 3 :
M + A . IA . ; 生 根 培 养 基 : 配 方 3 S B O +B 01 5 5 :
代培养基上扩大繁殖 , 4 5 繁殖转到生根培 经 -代 一 养基上进行生根试验。
4 试验 结果
41 芽诱 导 .
43 生根 培养 .
将生长整齐一致 的中华猕猴桃 ( 无根苗 ) 转 接到 1 M +B 1 / S IA . I M +B 0 培养基上进 2 0和  ̄ S IA , 5
1 M +B 1 ; / S IA . 配方 4 I M +B O 2 O :/ S IA . 2 5。 以上配方中激素用量单位均为 m /, g 琼脂浓 L
度为 0 %, . 蔗糖浓度为 3 5 %。
3 试验 方 法
【CN109729975A】一种中华猕猴桃组织培养的方法【专利】
(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201910118022.0(22)申请日 2019.02.15(71)申请人 六盘水师范学院地址 553004 贵州省六盘水市钟山区明湖路六盘水师范学院(72)发明人 韩世明 王月霞 (74)专利代理机构 北京中南长风知识产权代理事务所(普通合伙) 11674代理人 周倩(51)Int.Cl.A01H 4/00(2006.01)(54)发明名称一种中华猕猴桃组织培养的方法(57)摘要本发明涉及一种猕猴桃的组织培养方法,具体为一种中华猕猴桃组织培养的方法。
所述中华猕猴桃组织培养的方法,包括以下步骤:步骤1:以一年生带腋芽的中华猕猴桃的嫩茎为接种外植体;步骤2:将无菌处理后的所述外植体的切口端插入增值培养基中进行培养,获得无菌苗;步骤3:将上述无菌苗的切口端在IBA溶液中浸泡;步骤4:将经IBA溶液浸泡后的无菌苗转接至生根培养基进行培养,以诱导所述无菌苗生根。
本发明提供的中华猕猴桃组织培养方法,能够大大缩短中华猕猴桃的组织培养时间和大大节约组织培养的成本。
权利要求书1页 说明书9页CN 109729975 A 2019.05.10C N 109729975A权 利 要 求 书1/1页CN 109729975 A1.一种中华猕猴桃组织培养的方法,其特征在于,包括以下步骤:步骤1:以一年生带腋芽的中华猕猴桃的嫩茎为接种外植体;步骤2:将无菌处理后的所述外植体的切口端插入增值培养基中进行培养,获得无菌苗;步骤3:将上述无菌苗的切口端在IBA溶液中浸泡;步骤4:将经IBA溶液浸泡后的无菌苗转接至生根培养基进行培养,以诱导所述无菌苗生根。
2.根据权利要求1所述的一种中华猕猴桃组织培养的方法,其特征在于,在步骤1中,所述外植体的长度为1~3cm。
3.根据权利要求1所述的一种中华猕猴桃组织培养的方法,其特征在于,步骤2中的所述无菌处理过程包括:步骤2.1:将预处理后的外植体转入超净工作台;步骤2.2:用无菌纸吸取所述外植体表面的水分,将所述外植体放入75%酒精中浸泡15s;步骤2.3:用无菌水清洗经酒精杀菌后的所述外植体;步骤2.4:清洗后的所述外植体用0.1%的升汞溶液浸泡6min;步骤2.5:用无菌纸吸取所述外植体表面残留的升汞,然后用无菌水清洗并用无菌纸吸干所述外植体表面水分;步骤2.6:切去所述外植体的切口端变色的部分。
一种猕猴桃组培快速繁殖培养基及方法[发明专利]
专利名称:一种猕猴桃组培快速繁殖培养基及方法专利类型:发明专利
发明人:段珍珍
申请号:CN201810748851.2
申请日:20180710
公开号:CN109006473A
公开日:
20181218
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开了一种猕猴桃组培快速繁殖培养基及方法,包括诱导叶片分化愈伤组织培养基、诱导茎尖或腋芽萌发生长培养基、诱导愈伤组织分化丛生芽培养基、丛生芽增殖培养基、无糖组培诱导不定根培养基,通过采用内源激素生根法,将无糖营养液置于特定培养容器中,人工控制微环境,既可缩短生根练苗周期,还可以提高移栽成活率。
生长旺盛,根系庞大,无需练苗,直接移栽至营养钵或大田中。
本发明的无糖生根方法的生产效率是传统有糖生根方法的18倍以上,大大提高了猕猴桃脱毒苗规模化生产的生产效率。
申请人:陕西青美生物科技有限公司
地址:721199 陕西省宝鸡市千阳县张家塬镇晖川村村委会院内
国籍:CN
代理机构:北京纽乐康知识产权代理事务所(普通合伙)
代理人:罗莎
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一种利用猕猴桃茎进行组织培养的方法[发明专利]
(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201810083297.0(22)申请日 2018.01.29(71)申请人 宝鸡松良农业科技有限公司地址 722300 陕西省宝鸡市眉县(国家)猕猴桃产业园区检测中心二楼(72)发明人 蔡小军 蔡军利 (74)专利代理机构 北京天奇智新知识产权代理有限公司 11340代理人 陈永宁(51)Int.Cl.A01H 4/00(2006.01)(54)发明名称一种利用猕猴桃茎进行组织培养的方法(57)摘要本发明涉及一种利用猕猴桃茎进行组织培养的方法。
诱导生根时把增殖后达到3cm以上,具有3片以上子叶的植株插入专用生根设备里面的基质上,该基质为MS+蛭石,光照时间16h,温度25±2℃,湿度80%,二氧化碳浓度900p p m -1000ppm,培养室洁净度1000级以上。
培养20天以后形成根系发达的猕猴桃完整植株。
本发明采用无性繁殖方式,使母本的优良性状完整保留。
并突破了木本组培苗生根质量差的难题,组培苗根系发达,完整,成活率高,无须炼苗。
权利要求书1页 说明书3页 附图3页CN 108271691 A 2018.07.13C N 108271691A1.一种利用猕猴桃茎进行组织培养的方法,其特征在于,诱导生根的方法为:把增殖后达到3cm以上,具有3片以上子叶的植株插入专用生根设备里面的基质上,该基质为MS+蛭石,光照时间16h,1500-2000LX,温度25±2℃,二氧化碳浓度950ppm,湿度80%,培养室洁净度1000级以上;培养20天以后形成根系发达的猕猴桃完整植株。
2.根据权利要求1所述的利用猕猴桃茎进行组织培养的方法,其特征在于,MS+蛭石为每升MS溶液加800g蛭石。
3.根据权利要求1或2所述的利用猕猴桃茎进行组织培养的方法,其特征在于,具体步骤为:1)采集猕猴桃新鲜茎杆,清水洗干净。
中华猕猴桃茎段组培快繁系列技术研究
中华猕猴桃茎段组培快繁系列技术研究
黄宝菊;王忠;林梅燕
【期刊名称】《福建农业科技》
【年(卷),期】2016(000)010
【摘要】以中华弥猴桃带腋芽茎段为外植体,研究不同处理方法对外植体灭菌效果的影响,不同激素组合培养基对外植体初代培养和组培苗生根的影响.试验结果表明,最佳灭菌处理:先用75%酒精灭菌30 s,再用0.1%升汞进行表面灭菌8 min,外植体成活率88%;最佳初代培养基:MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L,出芽率92%;最佳生根培养基:1/2 MS+IBA 0.15 mg/L+NAA 0.3 mg/L,生根率85.6%.
【总页数】3页(P1-3)
【作者】黄宝菊;王忠;林梅燕
【作者单位】安发(福建)生物科技有限公司 352199;安发(福建)生物科技有限公司352199;安发(福建)生物科技有限公司 352199
【正文语种】中文
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‘杨氏金红50 号’猕猴桃组培苗生根与移栽研究
平均愈伤组织直径(cm) 1.85±0.03d 1.89±0.02d 1.94±0.02d 2.14±0.06c 2.40±0.07a 2.37±0.05a 2.31±0.04ab 2.23±0.08bc 2.20±0.08c 2.16±0.06c
平均根数(条) 7.55±0.56e 8.62±0.55e 11.88±1.58d 13.71±1.03bc 14.26±0.55b 14.83±0.53ab 15.20±0.53ab 15.97±0.51a 14.36±0.60b 12.52±1.17cd
猕猴桃传统的育苗方法育苗时间长,成活率低,难以满 足市场的需求。利用现代生物技术——植物组织培养能实现 猕猴桃苗快速大量繁殖[3]。目前,国内对猕猴桃的组织培养 研究已获得很大进展,在猕猴桃茎段[4]、花药[5]、叶柄、叶片[6] 等器官的组织培养方面取得很多成果。为提高‘杨氏金红 50 号’猕猴桃组培苗的生根质量,本实验以其带芽茎段培 养的组培苗为生根培养原材料,探索最佳生根培养方法、炼 苗方法,提高移栽成活率,为猕猴桃的工厂化育苗提供技术 指导。
农业科学
N O N G Y E KE XU E
‘杨氏金红 50 号’猕猴桃组培苗生根与移栽研究
河南大学生命科学学院 刘立果
摘 要:以‘杨氏金红 50 号’猕猴桃组培苗为材料,进行生根培养、炼苗移栽研究。结果表明:‘杨氏金红 50 号’猕猴桃生根培养中, 愈伤组织块小的组培苗生根数多、根较长,且根深入培养基内部,易成活。生根培养的最佳培养基为 1/2MS+0.9mg/L IBA,愈伤组织直径 为 1.03cm,生根率 100%,生根数 12.58 条,根长 3.19cm。培养室开盖炼苗 7d 后进行细沙栽培,细沙培养到根布满培养瓶时移栽至黑色腐殖土 的田园土中,以成活率高。
红阳猕猴桃快繁技术体系研究
红阳猕猴桃快繁技术体系研究
红阳猕猴桃(A.chinensis var rufopulpa Liang et Ferguson)是在四川猕猴桃原产地苍溪发现的自然变异品种,具有极高的推广前景,其红肉的性状极具开发利用价值。
为加快这一珍贵资源的繁殖,本研究以红阳猕猴桃为试材,通过田间植株顶芽、带芽茎段、茎段、叶片、叶柄以及试管苗叶片等多种外植体离体培养,研究其诱导成苗、幼苗增殖、生根移栽技术,以建立红阳猕猴桃快速繁殖体系。
结果如下: (1)通过诱导丛生芽再生成苗的途径效果差被淘汰,而选择通过愈伤组织诱导成苗途径。
(2)愈伤组织成苗途径的适宜外植体为去皮茎段,取材最佳季节是夏季。
不同外植体产生愈伤组织、芽分化率差异大,茎段愈伤组织分化率最高达83.73%;叶柄的愈伤组织芽再生率12.88%;叶片的愈伤组织芽再生率仅为8.10%。
(3)带皮茎段离体培养,筛选出最佳培养基是:基本培养基MS 最佳诱导培养基MS+BA4.0mg/L+IAA4.0mg/L,出愈率达到61.24%分化培养基MS+BA2.0mg/L+NAA0.3mg/L,芽再生率达到88.82%生根培养基1/2MS+NAA0.2mg/L,生根85.87%增殖培养基MS+BA2.0mg/L+NAA0.4 mg /L+GA30.1 mg/L,月增殖系数达到5.32 (4)对试管苗叶块进行培养,得到叶片再生芽诱导最佳培养基为MS+BA2.0mg/L+NAA0.3mg/L,芽再生率为
87.03%。
(5)对生根苗进行了炼苗,移栽基质为蛭石25%+珍珠岩25%+河沙20%+大田土30%,成活率高,达到90%以上。
猕猴桃的组织培养
猕猴桃的组织培养猕猴桃的初代培养一、实验目的:通过实验,初步掌握猕猴桃材料消毒、接种的无菌操作技术以及猕猴桃初代培养的方法。
二、实验器材:1、实验材料:猕猴桃的茎尖2、实验试剂:0.1%升汞、吐温80、酒精3、实验设备:初代培养基38瓶、无菌水,灭菌工具、超净工作台,高压灭菌锅等;三、实验方法和步骤:1、培养基的制备,猕猴桃初代培养基:MS+GA1.0+BA0.5+NAA0.1+糖3%+琼脂0.7%配0.5L2、灭菌工作:将配好的培养基放进高压灭菌锅中,同时将一些无菌水纱布也放进去一同灭菌。
3、接种:在接种前,打开超净工作台紫外灯,照射约15分钟;然后关闭紫外灯,打开超净工作台的风机,并微启超净工作台的玻璃挡板,通风20mi n后,即可进行无菌操作。
用75%的酒精纱布擦拭超净工作台面,再将接种工具放进超净工作台中。
4、猴桃茎尖的处理:⑴到基地取一些长势良好的猕猴桃茎尖⑵猕猴桃表面处理:①修剪②刷去表面的绒毛③用饱和洗衣粉浸泡1分钟④流水冲洗30秒⑤沥干水带进接种室⑥用70%-75%酒精浸30分钟,倒出⑦用0.1%升汞+吐温80浸泡5分钟⑧用无菌水冲洗5-6次5、无菌操作:在超净工作台中,将灭好菌的猕猴桃茎尖放在接种工具上,清除没有用的部位,将切好的的猕猴桃放进猕猴桃初代培养基上。
6、培养:将接种好的猕猴桃外植体控制在温度25±2℃,光照周期12h/d,光照强度2000lx,培养20天。
四、实验报告:㈠、观察材料:1、3月7号对初代培养基进行配置与灭菌。
共有38支试管培养基。
2、3月14号开始我们第一次的预备实验,一切准备完好,接了20支试管猕猴桃苗,每支试管有两株材料。
3、3月21号,观察材料的情况,总结如下:①有1支试管材料受真菌污染污染的原因,我想可能是我们在操作时人为带入空气,接种工具灭菌不彻底。
猕猴桃的几种组织培养快繁技术
猕猴桃的几种组织培养快繁技术
周国英
【期刊名称】《经济林研究》
【年(卷),期】1997(15)1
【摘要】猕猴桃的几种组织培养快繁技术周国英(中南林学院,株洲,4120
06)在猕猴桃的栽培繁殖过程中,幼苗难以辨别雌雄,给生产管理带来很大麻烦。
为了扩大雌株的繁殖,除采用扦插以外,还可以采用现代生物技术,通过用猕猴桃的基段、基尖或叶为材料,进行组培而获得大量...
【总页数】2页(P45-46)
【作者】周国英
【作者单位】中南林学院
【正文语种】中文
【中图分类】S663.903.5
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陇南野生中华猕猴桃组培快繁体系的建立
陇南野生中华猕猴桃组培快繁体系的建立作者:陈强田凤鸣何九军王永斌刘琼来源:《甘肃农业科技》2021年第10期摘要:以陇南野生中华猕猴桃种子为材料,在无菌条件下培养萌发产生实生苗,将无菌实生苗地上部分转接到培养基上建立的初代培养体系为基础,发现继代增殖最适培养条件为:MS+6-BA 2.5 mg/L+NAA 0.4 mg/L+GA3 0.2 mg/L,生根培养最适条件为1/2 MS+IBA 0.6 mg/L;用商品基质在温室移栽组培苗,成活率可达87.5%。
关键词:野生中华猕猴桃;无菌实生苗;组织培养;快繁体系中图分类号:S663.4;Q943.1 文献标志码:A 文章编号:1001-1463(2021)10-0035-04doi:10.3969/j.issn.1001-1463.2021.10.009Establishment of Tissue Culture and Rapid Propagation System of Wild Kiwifruit in Southern Gansu ProvinceCHEN Qiang 1, 2, TIAN Fengming 1, 2, HE Jiujun 1, 2, WANG Yongbin 1, 2,LIU Qiong 1(1. College of Life Science,Longnan Teacher College, Longnan Gansu 742500, China; 2. Center for Research and Development of Longnan Characteristic Agro-Bioresource, Longnan Gansu 742500, China)Abstract:The seeds of Actinidia chinensis var. Longnan were used as explants to produce seedlings under aseptic conditions. Based on the primary culture system established by transferring the above ground part of aseptic seedlings to the medium, it was found that the optimum conditions for subculture and multiplication were MS+6-BA 2.5 mg/L + NAA 0.4 mg/L+GA3 0.2 mg/L, and the optimum conditions for rooting culture were 1/2 MS+IBA 0.6 mg/L, The survival rate of tissue culture seedlings can reach 87.5% by transplanting in greenhouse with commercial substrate.Key words:Wild kiwifruit; Aseptic seedling; Rapid propagation system猕猴桃俗称阳桃、山洋桃、毛桃等,属猕猴桃科猕猴桃属多年生藤本植物。
猕猴桃组织培养研究进展
猕猴桃是多年生藤本植物,是20世纪人工驯化栽培野生果树最早的四大树种之一。
我国发现利用的最早,无论是种群数量,分布范围还是总蕴藏量,均居世界首位,故有“猕猴桃故乡”之称。
猕猴桃营养丰富、医疗价值高,被誉为营养、保健、长寿、美容的世界珍果,水果之王,已经成为当今世界的新兴栽培果树。
20世纪70年代开始猕猴桃组织培养的研究获取了不少成功,近年来对猕猴桃的组织培养研究进展较大。
外植体外植体的种类及选择在猕猴桃的组织培养中有重要影响。
目前猕猴桃组织培养主要是器官培养和原生质体培养。
离体培养使用最多的是带芽的外植体、胚、分化的器官组织(包括嫩茎、嫩叶、形成层、根、花萼等二倍体组织)、花粉及胚(单倍体组织)都可以作为猕猴桃组织培养的外植体,但生殖器官:花、果实、种子少见报道。
猕猴桃原生质体培养始于1983年,至今已在中华猕猴桃、毛花猕猴桃、美味猕猴桃、葛枣猕猴桃、狗枣猕猴桃、软枣猕猴桃等基因型种质资源进行了原生质体分离、培养研究,其中三个获得了再生植株。
猕猴桃的器官培养丁士林等提出,对美味猕猴桃的组织培养来说,茎尖为快繁的最佳外植体材料。
叶片虽然分化慢,但在严格消毒条件下也可选用。
茎段不宜做快速繁殖的材料。
朱德瑤等提出中华猕猴桃茎段愈伤组织诱导成苗可以达到55.28%,叶柄为1.67%,而叶片没有分化。
洪树荣指出软枣猕猴桃田间苗茎段愈伤发生率仅50%。
贾景明等以东北地区软枣猕猴桃不同外植体进行诱导培养和继代培养,结果发现以幼茎作为外植体愈伤组织诱导率最高,可达75%,并从诱导出的愈伤组织上继续进行分化培养,获得了再生植株。
郭延平等展开了猕猴桃果肉的愈伤组织诱导,暗培养3d,获得了愈伤组织,诱导率为100%。
汪建亚等以猕猴桃顶芽作为外植体进行离体培养,芽分化率最高,高达79.1%,侧芽和茎段分别可达45.8%和24.1%,叶片的芽分化率为0。
1982年,黄贞光等报道了从中华猕猴桃的胚乳获得了三倍体植株。
桂耀林等报道中华猕猴桃、硬毛猕猴桃的胚乳培养在MS+ZT3mg/kg+2,4-D0.5mg/kg+CH400mg/kg的分化培养基上诱导产生愈伤组织,在MS+ZT1mg/kg+CH400mg/kg的分化培养基上产生胚状体和长成完整的小植株。
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2016年第10期菽I砷政1中华猕猴桃茎段组培快繁系列技术研究黄宝菊,王忠,林梅燕[安发(福建)生物科技有限公司352199 ]摘要:以中华弥猴桃带腋芽茎段为外植体,研究不同处理方法对外植体灭菌效果的影响,不同 激素组合培养基对外植体初代培养和组培苗生根的影响。
试验结果表明,最佳灭菌处理:先用 75%酒精灭菌30 S,再用0.1%升汞进行表面灭菌8 min,外植体成活率88%;最佳初代培养基: M S+6 - BA 1.5 mg/L + NAA 0.2 m g/L,出芽率 92% ;最佳生根培养基:1/2 M S + IBA 0• 15 mg/L+ NAA0.3 m g/L,生根率 85. 6%。
关键词:中华弥猴桃;茎段;组织培养;灭菌条件;激素配方;出芽;生根DOI: 10. 13651/ki.fjnykj.2016. 10.001Tissue culture and rapid propagation technique for Actinidia chinensisHUANG Bao-ju, WANG Zhong, LIN Mei-yan[Anfa {Fujian) Bio-technology Co., Ltd., Fujian Province 352199]A bstract:Effects of different treatments on explant sterilization, different hormone formulation on initial culture of explantand rooting of tissue culture seedling, were studied, using Actinidia chinensis stem with axillary bud as explant. The results showed that the best sterilizaiton treatment was 75% alcohol for 30 s firstly, and then 0.1% Mercury(II) chloride for 8 min, and the survival rate of explant reached 88%. The optimum initial culture medium was MS + 6 - BA 1. 5 mg/L + NAA 0. 2 m g/L, the budding rate of which was 92%. The optimum rooting culture medium was 1/2 MS + IBA 0. 15 m g/L + NAA0. 3 m g/L, with 85. 6%of the rooting rate.Key words :Actinidia chinensis;stem ;tissue culture ;sterilization conditions ;hormone formulation ;budding ;rooting中华猕猴桃(简称:猕猴桃)属于猕猴桃科猕 猴桃属多年生藤本植物,是20世纪人工驯化栽培 的野生果树中最有成就的四大果种之一。
其果实具 有丰富的营养价值和良好的药用价值,尤其是含有 大量的维生素C,素有“V c之王”的美称。
猕猴 桃雌雄异株,倍性复杂,育种周期长。
传统的育苗 方法主要有扞插和嫁接,但成活率和繁殖效率低。
同时在生产栽培中,称猴桃经常发生溃疡病等严重 病害,导致枝条萎蔫、枯死等[1]。
目前,大量的猕 猴桃种苗生产主要来源于组织培养[2]。
要加快其种苗繁殖速度和促进健康栽培,迫切 需要建立科学合理的组培快繁生产体系。
近年来,有关称猴桃组培技术的报道颇多,前人对總猴桃组 培的研究方向各有不同。
本文以安发(福建)生物收稿日期:2016-08 -07作者简介:黄宝菊,女,1988年生,研究实习员。
科技有限公司自主选育的猕猴桃新品种——回回1号带腋芽茎段为材料,从外植体的灭菌,初代培养 诱导出芽,生根培养诱导生根三方面进行试验研究,以期为建立和完善其快繁体系提供理论依据。
1材料与方法1.1试验材料供试材料为回回1号两年生雌雄株,于2014 年8月下旬至9月下旬的晴天,取长10 ~ 15 cm的健壮新梢上的带腋芽茎段为试验材料。
1.2试验方法与处理设计1.2.1 不同消毒方法对外植体灭菌效果的试验 将带腋芽的茎段,置于自来水下冲洗30 min,再移 至超净工作台中,将无菌水倒于烧杯中搅拌清洗 6 ~ 8遍。
先用75 %酒精灭菌,再用0. 1%升汞进行 表面灭菌,然后无菌水冲洗6 ~8遍,最后用无菌 滤纸吸干茎段表面水分。
灭菌后,将茎段以腋芽为单位进行裁剪,剪成1.〇 ~ 2.0 cm带1个腋芽的茎 段,腋芽朝上竖直插人初代培养基中,每个培养瓶 中接5个茎段,5次重复。
初代培养基为1\«+6-BA 1.Omg/L+ NAA0•2 m g/L。
培养室温度为(25 ± 1)丈,空气相对湿度60%,每天光照时间14 h,光 照强度2400 lx。
初代培养7 d统计污染率、21 d统 计成活率。
设75%酒精(灭菌时间分为20 s、30 s、40 s)和0. 1%升汞(灭菌时间分为6 min、8 min、10 min)9个灭菌组合的处理(表1),5次重复。
污染率=污染外植体数/接种外植体数X 100%成活率=成活外植体数/接种外植体数x100% 1.2.2不同培养基对初代培养的试验将已灭菌的1.0 ~2. Ocm带1个腋芽的茎段,腋芽朝上竖直 插人诱导培养基中,每个培养瓶中接5个茎段。
培 养室温度为(25 ± 1)丈,空气相对湿度80%,每 天光照时间14 h,光照强度2400 lx。
诱导培养40 d 时统计生长状况(出芽率)。
设不同激素水平组合的9个初代培养基处理:M S+ 6 - BA(1.0、1.5、2_0) mg/L + NAA (0_1、0.2、0.3) mg/L(表2),5 次重复。
出芽率=出芽外植体数/接种外植体数x100% 1.2.3不同培养基对组培苗生根的试验将经过诱导培养的茎段转接人生根培养基,腋芽朝上竖直 插人生根培养基中,每个培养瓶中接5个茎段。
培 养室温度为(25 ± 1)丈,空气相对湿度80%,每 天光照时间14 h,光照强度2500 lx。
生根培养30 d 时统计根生长状况。
设不同激素水平组合的9个生根培养基处理: 1/2MS+ IBA (0.10、0.15、0.20) mg/L+ NAA (0_2、0.3、0.4) mg/L(表3),5 次重复。
生根率=生根外植体数/接种外植体数x100%生根数=外植体生根总根数/接种外植体数根长=外植体根的总长度/外植体生根总根数2结果与分析2.1不同消毒方法对外植体灭菌效果的影响由表1看出,酒精或升汞对外植体灭菌的影响 是相似的,当灭菌时间不足时(处理1: 75%酒精 20s+0_l%升汞6min),污染率高达80%;适当 延长灭菌时间,污染率显著降低,当75%酒精灭菌 40 s+0_ 1%升汞灭菌8 min时,污染率降至8%。
表1结果还表明,虽然延长灭菌时间能够达到好的灭菌效果,但外植体的成活率却随着灭菌时间的延 长呈现先升后降的趋势,这与过度灭菌对外植体细 胞产生的毒害作用有关。
从污染率和成活率两方面 考虑,以处理5的效果最理想,其污染率20%、成 活率88%,即以先用75%酒精灭菌30 S,再用 〇. 1%升汞进行表面灭菌8 min为最佳灭菌处理。
表1不同灭菌处理对猕猴桃茎段成活率的影响处理代号75%酒精(s)0. 1%升亲(min)接种数(个)污染率(%)成活率(%) 120625802022082568283201025563243062540645308252088 63010251672740625125284082582494010258242.2不同培养基对不定芽诱导培养的影响由表2看出,适宜的植物生长激素组合对外植 体不定芽的诱导具有促进作用,结合出芽率数据分 析,当植物激素浓度较低时(处理1: MS+6-BA 1.0 mg/L+ NAA0. 1m g/L),出芽率最低;植物激 素浓度适当升高,出芽率显著提高,以处理5的出 芽率最高;但是,当植物激素浓度继续升高时,出芽率反而降低,这与高浓度的植物激素抑制了不定 芽的诱导有关。
综上所述,MS+6-BA 1.5 mg/L+ NAA0.2 mg/L为最佳初代培养基。
表2不同诱导培养基对猕猴桃茎段出芽率的影响处理代号6 -B A(mg/L)NAA(mg/L)出芽率(%)1.00.1602 1.00.2683 1.00.3724 1.50.1885 1.50.2926 1.50.3847 2.00.1768 2.00.2729 2.00.370注:基础培养基为MS 。
2.3不同培养基对组培苗生根的影响由表3看出,适宜的植物生长激素组合对外植 体不定芽生根的诱导具有促进作用,当激素浓度较 低时(处理1、处理2),生根速度慢,根系虚弱;激素浓度适当升高(处理5),生根速度加快,根 系较强壮;当激素浓度继续升高时,根系生长趋于 弱化,这与高浓度的植物激素抑制了对不定芽生根 的诱导作用有关。
综上所述,1/2M S + IBA 0• 15 mg/L+ NAA0.30 m g/L为最佳生根培养基。
表3不同生根培养基对猕猴桃组培苗生根的影响处理代号IBA(mg/L)NAA(mg/L)生根开始时间⑷生根率(%)生根数(条)根长(cm)10. 100.201760.0 1.72 1.3220. 100.301667.0 1.84 1.4530. 100.401573.0 1.92 1.5840. 150.201482.02.52 1.8250. 150.301385.6 2.76 2.3460. 150.401381.02.32 1.9370.200.201476.0 2.04 1.6680.200.301452.0 1.96 1.4290.200.401548.0 1.92 1.33?主:基础培养基为1/2MS。
3结论与讨论相对于不同灭菌试剂或灭菌试剂组合的效果,灭菌试剂处理时间对外植体的成活率影响很大,直 接表现为灭菌试剂处理时间短,灭菌效果差;而灭 菌试剂处理时间过长则可能对外植体的细胞和组织 造成损害[3^4]。
本试验结果表明,对猕猴桃外植体 的最适宜灭菌条件为:先用75%酒精灭菌30 s,再 用0. 1%升隶进行表面灭菌8 min。